大鼠血浆中拉非尼片检测方案(二手分析仪器)

HPLC测定甲苯磺酸索拉非尼片及其在大鼠血浆中的含量 何春晓1，2，黄翔2，孙燕雯2，何昱2，张茹萍2，卢红阳1，严叶萍2，张沂平1*(1.浙江省肿瘤医院化疗中心，杭州310022；2.浙江中医药大学，杭州310053)摘要：目的建立高效液相色谱法测定索拉非尼含量，并探索大鼠血浆中索拉非尼浓度的测定方法。方法采用EclipseXDB-C18色谱柱(150mmx4.6 mm， 5 pum)；流动相：0.05%甲酸和0.05%三乙胺的水溶液：乙腈=35：65；流速：1.0 mL·min：柱温：30℃；检测波长：265nm。 结果索拉非尼浓度在 0.4~12 ug*mL"内线性关系良好， r=0.999 9；加样回收率为 100.8%， RSD 为 1.470%。大鼠按 65 mg^kg灌胃给药，其血浆中索拉非尼的药物浓度为 2.830 ug*mL。结论 本法可用于甲苯磺酸索拉非尼片中药物含量的测定，方法简单、灵敏，同时可检测大鼠血浆中索拉非尼的浓度。 关键词：高效液相色谱法；索拉非尼；含量测定 中图分类号：R917.101 文献标志码：B 文章编号：1007-7693 Determination of Sorafenib in Tablet and Rat Blood Plasm by HPLC HE Chunxiao12， HUANG Xiang， SUN Yanwen， HE Yu， ZHANG Ruping，LUHongyang，YAN Yeping， ZHANG Yiping (1.Department ofMedical Oncology， Zhejiang Cancer Hospital， Hangzhou 310022，China； 2.Zhejiang Chinese Medical University， Hangzhou 310053， China) ABSTRACT： OBJECTIVE To establish a high-performance liquid chromatographymethod for determination of sorafenib， explore a method of measuring the sorafenibconcentration in rat blood plasma. METHODS Agilent EclipseXDB-C18 column (150mmx4.6 mm， 5 um) was used. The mobile phase was 35%(0.05% formic acid and0.05% triethylamine) in aqueous solution and 65% acetonitrile while the flow ratewas 1.0 mL·min. The column temperature was 30 ℃. The detection wavelength was265 nm. RESULTS The standard curve of sorafenib concentration was linear in the 者：张沂平，女，主任医师 Tel：(0571)88122188 E-mail： zyp@medmail.com.cn range of 0.4-12 ug*mL"(r=0.999 9). The average recovery rate of the method was100.8%， RSD was 1.470%.The rat was treated by gavage with sorafenib at the dosageof 65 mgkg. The sorafenib concentration in rat blood plasm was 2.830 ugmL"CONCLUSIONThe method is suitable for the determination of sorafenib. It ispracticable， simple， sensitive， and can be used to measure the sorafenib concentrationin rat blood plasma. KEY WORDS： HPLC； sorafenib； determination 索拉非尼(sorafenib， 商品名多吉美， Nexavar)是拜耳和 Onyx 公司共同研制的一种多靶点的生物靶向抗肿瘤新药。目前已被 FDA 批准用于治疗晚期肾细胞癌和晚期肝细胞癌。该药属于二芳基脲类，临床上用的是索拉非尼的甲苯磺酸盐，化学名为 4-(4-3-[4-氯-3-(三氟甲基)苯基]脲基苯氧基)-N2-甲基吡啶-2-羧酰胺-4-甲苯磺酸盐，分子式为 C21H16CIF3N4O3C7HgO3S， 分子量为 637.03 gmol。目前国内外关于索拉非尼含量检测的方法报道较少，国外以研究鼠血清、人血清或腹膜透析液中索拉非尼泥量测定为主[1-2]，国内有少量关于索拉非尼原料药的含量检测研究及索拉非尼在大鼠肠吸收特性的研究B-51。本实验采用 HPLC 检测索拉非尼含量，方法简单、检测时间短，流动相中缓冲液无需调节 pH， 且峰形良好。本实验进一步对灌胃给药后大鼠血浆中的索拉非尼浓度测定方法进行了相关研究，为索拉非尼的质量评价和其在动物体内的药动学研究提供依据。 1.仪器与材料 Agilent 1260型高效液相色谱系统(美国 Agilent 公司，包括 G1316A 柱温箱、G1329B标准型自动进进器、G1311C四元低压梯度系统、G1315D DAD 检测器)；超纯水仪(美国 Milipore 公司)； FA2204B 电子天平(上海维菱科学仪器有限公司)；KQ3200E 型超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司)； D-37520 离心机(德国Kendro 公司)；WH-866 涡旋混合器(太仓华利达实验室设备公司)； UFC500396超滤管(杭州浩克生物技术有限公司)。 索拉非尼对照品(美国 Selleckchem公司，批号：S104004，纯度100%)；甲苯磺酸索拉非尼片(德国拜耳医药保健有限公司，批号：H20110599，规格200mg*60 片*1盒)；甲酸(美国ROE公司，色谱纯，批号：F8124-0500)；乙腈(批号：102489)、甲醇(批号：101437)均为色谱纯，均购于美国 Fisher公司；三乙胺 (成都市科龙化工试剂厂，批号：20110419，分析纯)；肝素钠注射液(上海第一生化药业有限公司，批号：100909，规格 2ml：：12500U*10支*1盒)；流动相用水为超纯水，其他溶液配制用水为蒸馏水。 Wistar大鼠，合，体质量300g左右，购于浙江省实验动物中心提供，合格证号 SCXK(浙)2012-0001。 2.方法与结果 2.1甲苯磺酸索拉非尼片药物含量测定 2.1.1溶液制备 2.1.1.1对照品溶液的制备 精密称取索拉非尼对照品2 mg， 置于5 mL 量瓶中，加甲醇定容至刻度，混匀，配制成400 ugmL的索拉非尼对照品储备溶液。精密吸取 0.125 mL 对照品储备溶液，置于5 mL量瓶中，加甲醇定容至刻度，混匀，配制成10 ugmL的对照品溶液。 2.1.1.2供试品溶液的制备 取甲苯磺酸索拉非尼片，去包衣后用研钵研碎成均匀粉末。精密称取甲苯磺酸索拉非尼片粉末 5 mg， 置于5 mL量瓶中，加甲醇定容至刻度，混匀，配制成1 mg*mL"的索拉非尼供试品储备溶液。精密吸取 0.05 mL供试品储备溶液，置于5mL量瓶中，加甲醇定容至刻度，混匀，经0.22 u.m微孔滤膜滤过，即得10 ugmL"的供试品溶液。 2.1.2色谱条件色谱柱为EclipseXDB-C18 色谱柱(150 mmx4.6 mm， 5um)；流动相：(0.05%甲酸和0.05%三乙胺)的水溶液-乙腈=35∶65；柱温30℃；流速1.0mL.min. 液相中的 DAD 检测器可在色谱分析过程中自动记录色谱峰对应组分的光谱图。索拉非尼对照品的紫外-可见光谱可见在265 nm 有最大吸收，由此确定检测波长为265nm。 在所选择的色谱条件下，索拉非尼对照品和供试品溶液的色谱图见图1。 A 图1对照品溶液和供试品溶液的高效液相色谱图A-阴性对照溶液；B-对照品溶液；C-供试品溶液 Fig 1 HPLC cextograms of the control and sample solutionsA-negative control solution； B-control solution； C-sample solution 2.1.3线性关系 精密吸取 400 ugmL的索拉非尼对照品储备溶液5， 25， 50.， 100，125，150uL 置于5 mL量瓶中，加甲醇定容至刻度，混匀，配制成浓度分别为0.4，2.0，4.0，8.0，10.0，12.0 ug*mL"的溶液，依次进样量20 pL， 记录色谱图，计算峰面积。以索拉非尼峰面积(Y)为纵坐标，以浓度(X， ug/mL)为横坐标进行线性回归，回归方程为Y=98.893X-5.927 4，r=0.9999。结果表明，索拉非尼检测浓度在 0.4~12 ug*mL内与峰面积呈良好线性关系。 2.1.4仪器精密度试验 取10 ugmL"的对照品溶液，按“2.1.2”项下色谱条件，于1d内连续进样6次，分别进样20pL，记录色谱峰，测定峰面积，计算日内精密度。结果对照品索拉非尼峰面积的 RSD 为 0.25%，表明仪器精密度良好。 2.1.5中间精密度试验 以在不同时期、不同实验人员按“2.1.1”项下方法制备6 分供试品溶液，对同一样品分别测定。测得 RSD 为1.7%。表明中间精密度良好。2.1.6重复性试验 精密称取同一批索拉非尼6份，按“2.1.1”项下方法配制6份供试液，各取20uL进样，记录色谱图，测定峰面积。结果6份供试液中索拉非尼含量的RSD 为0.31%。表明此方法的重复性好，操作误差小。 2.1.7稳定性试验 取质量浓度为 10 ugmL的同一供试品溶液，在制备好后的0，2，4，8：12， 16， 24 h进样20uL， 记录色谱峰，测定峰面积。结果索拉非尼峰面积的 RSD为0.63%，表明供试品溶液在24h内稳定性良好。 2.1.8加样回收试验 精密吸取已知含量的按“2.1.1”项下方法配制的9份甲苯磺酸索拉非尼溶液各2 mL，置于5mL量瓶中，再精密加入一定量的对照品溶液(约相当于样品中对照品80%，100%，120%)，加甲醇定容至刻度，混匀，即为加样回收试验供试液。按“2.1.2”项下色谱条件，进样20pL，结果见表1。 表1加样回收试验结果(n=6) Tab Recovery of sorafinib(n=6) 含量/ug 加入量 测得量 回收率 平均回收率 1RSD /ug /ug /% /% /% 11.47 8.000 20.03 102.9 11.48 8.000 19.52 100.2 11.46 8.000 19.21 98.70 11.48 10.00 21.75 101.3 100.8 1.470 11.47 10.00 21.68 101.0 11.49 10.00 21.59 100.5 11.48 12.00 24.14 102.8 11.45 12.00 23.16 98.80 11.46 12.00 23.67 100.9 2.1.9样品含量测定取甲苯磺酸索拉非尼片粉末适量，按“2.1.1”项制备方法配制供试品溶液3份，分别进样20uL， 记录色谱峰，测定峰面积。计算得供试品溶液中索拉非尼浓度为 5.741 ugmL"，故药片中索拉非尼的含量为57.41%。 2.2大鼠血浆中索拉非尼的浓度测定研究 2.2.1灌胃液的制备 取甲苯磺酸索拉非尼片一片，去包衣后用研钵研碎成均匀粉末，加生理盐水40 mL，制成5 mgmL"'的混悬液。 2.2.2血样采集 大鼠实验前禁食12h，水自由饮取。在清醒状态下以甲苯磺酸索拉非尼片65 mgkg 灌胃给药。给药后1h用10%水合氯醛按 4 mL.kg 将大鼠麻醉，颈部剃毛后分离出颈静脉，插入聚乙烯管。在给药后2.5 h， 在涂有肝素的试管中收集颈静脉血3mL。 2.2.3血浆样品的处理取采集血液的的离心管，5000 rmin 离心 10 min，吸取上清液置于另一离心管中，贮存于-20℃冰箱，备用。取 0.2 mL 血浆样品，加甲醇0.8mL，涡旋振荡混合1 min， 10 000 rmin 离心10 min。取 0.5 mL上清液加入到超滤管中，10000 rmin离心10 min。 2.2.4血浆样品检测结果 将血浆样品按“2.1.2”项下色谱条件，进样100 pL， 记录色谱图，测定峰面积。结果索拉非尼色谱图见图2。按“2.1.3”项下得的回归方程计算算血浆样品中索拉非尼的药物浓度为 1.132 ug'mL"， 故大鼠血浆中索拉非尼的药物浓度为 2.830 ug*mL。 图2大鼠血浆中索拉非尼色谱图 Fig 2HPLC chromatograms of the sorafinib in rat serum 3.讨论 3.1溶￥液配制 索拉非尼热稳定性好，不吸水。在水溶液中溶解度低，在强酸条件下溶解度稍增加，略溶于酒精，溶于聚乙烯甘油400。考虑到索拉非尼的溶解特性，故采用甲醇来溶解索拉非尼。当配制成质量浓度为 10 ug'mL"的溶液时，对照品溶液澄清，无悬浮颗粒，供试品溶液有极少量的小的白色悬浮颗粒，可能是甲苯磺酸索拉非尼片的辅料。 3.2流动相的选择 流动相的组成和比例对索拉非尼的峰形和与杂质的分离度影响较大。故本试验参考了相关文献[3-41和预试验，确定流动相为(0.05%甲酸和0.05%三乙胺)的水溶液：乙腈=35：65。在此流动相的色谱条件下，不仅可以检测甲苯磺酸索拉非尼片中的药物含量，还能检测到大鼠血浆中索拉非尼的药物含量，并且峰形良好，与杂质达到很好的分离。 3.331血浆样品处理方法的确定 血浆样品用高效液相色谱进行分析前，需经去蛋白处理。目前去蛋白的常用方法有加有机溶剂、强酸等[7-8]。本试验曾尝试用6%高氯酸沉淀蛋白，但在血浆样品中未能检测索拉非尼的峰形，原因可能是索拉非尼的血浆蛋白结合率过高，高氯酸在沉淀蛋白的同时，将索拉非尼一并除去。故本试验最终采取加有机溶剂的方法，在沉淀蛋白的同时，将索拉非尼溶解在甲醇中，能较好地检测索拉非尼含量。 ( References ) [1] AFIFY S， RAPP UR， HOGGER P. 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