红珊瑚

AISA机载遥感成像仪由超光谱探头，小型GPS/INS探头及数据采集系统组成。 以其体积小、重量轻及低成本广泛应用于生物量分布监测、珊瑚礁分布监测、森林管理与监测、石油泄漏清除指引、浮游植物检测、湿地研究、矿藏及石油勘探等。如有需求，欢迎与本公司营销部联系 AISA EagleAISA HawkAISA Dual光谱范围400-970 nm970-2450 nm400-2450 nm空间像素512 或 1024320320光谱通道488256500帧速160 Hz100 Hz100 Hz

PFD系列高光谱相机光谱范围涵盖400-1000 nm（VNIR）范围，具有高分辨率、高图像速率、灵活的波段选择和坚固的结构，是一款非常优秀的高光谱测量监测产品。该系统集成了Imspector成像光谱仪和面阵单色相机，它以推扫式行扫描成像获取数据，并为每个像素提供完整、连续的光谱信息。PFD由一个400-1000nm波段范围的Imspector V10E光谱仪和一个高速CMOS探测器组成。光谱仪中使用的透射衍射光栅和光学透镜提供了高质量、低失真的图像，满足了最苛刻条件下的规格要求。 这种光谱相机提供了工业质量控制应用所需的灵活性和高速采集。多个兴趣区域和binning的结合为用户提供了最佳系统设置和控制的可能性。可以150fps的速率采集1312个空间通道的完整光谱数据，最高可达100赫兹，空间分辨率高达1775像素。通过选择部分光谱范围，还可以达到1000 fps的采集速度。主要特点l 400 - 1000nml 光谱分辨率2.8 nml 空间分辨率1312像素l 帧速率:65帧/秒(全帧)，binning条件下可达180帧/秒l 传感器:CMOSl 优良的信噪比与binning，大多数应用领域推荐使用相机规格光学特性光谱相机PFD-65-V10EPFD4K-65-V10E光谱范围400-1000nm光谱分辨率FWHM3.0nm（30μm狭缝）光谱采样0.78-6.27nm/pixel（根据binning调整）空间分辨率RMS光斑大小＜9μmF值F/2.4狭缝宽度30μm（50或80μm可选）有效狭缝长度10.5mm14.2mm总效率＞50%与极化无关杂散光＜0.5%（卤素灯，590nm LPF）电气特性探测器CMOS空间像素13121775光谱波段数768像素大小8.0×8.0μm相机输出数字12bit接口基本CameraLink相机控制CameraLink帧频高达150fps高达100fps附加特性光谱binning高达8x空间或光谱方向多重ROI 曝光时间范围0.1-100ms功耗＜5W输入电压12V（OEM），24V（套装式）环境特性存储温度-20… ﹢50℃操作温度﹢5… ﹢40℃，无凝水机械特性OEMCASED大小231×80.5×78mm330×85×90mm重量1.8kg2.7kg机身带安装螺孔的阳极氧化铝材质镜头支座标准C-mount用户调节不支持快门选配支持，USB控制附件配置：PFD系统提供多种附件供用户扩大应用领域l 前置物镜：为整个光谱范围提供最佳质量的图像和光谱数据l 采集光纤：将相机转换成多点光谱仪，所有的点均在没有移动复用器的情况下同时测量l 镜像扫描器或旋转平台：用于扫描静态目标和户外场景，或结合X-stage sample mover用于桌面和显微镜应用。l LUMO软件：PFD支持LUMO软件，用于采集数据、设置参数、影像实时可视化、ENVI兼容格式数据立方，支持多款通用软件进一步处理分析。应用领域l 质量控制l 食物及植被研究l 在线分类和质量监控l 植物与植被研究l 环境监测l 防伪检测应用案例使用遥感专题分类方法是珊瑚礁调查研究的理想方法，高光谱成像对研究珊瑚礁的生长模式、颜色和珊瑚属、生态位等很有意义。以下案例使用PFD-VNIR对位于以色列埃拉特港北端亚喀巴湾8公里处的珊瑚礁海洋公园。研究地点被划分为相对较小的边缘礁 (礁约25米宽，2公里长)。位置的选择是基于过水干结构和相对平坦的珊瑚礁表面。 如上图： (A)用于初步参考和经验鉴定的真彩色图像，(B)原始高光谱图像，(C)图像中识别的AOIs分为两大类:样本用于分类模型构建(小AOIs，小圆点)，大AOIs用于验证。(D-F)是用来验证三种分类决议(分别为15类、10类和6类)的参考图。 上图显示了不同珊瑚种类的光谱曲线，右下图为三个类解析输出的可视化表示。左边分别显示了15、10和6个类的参考引用图；正常分类结果显示在中间；GLS（气-液-固体色谱法）结果如右图所示。黄色刻度箭头表示1m的正方形区域。红色框中突出显示的是三个示例误差。顶部的红框显示了黄色硬珊瑚和软珊瑚的组合。中间的红框显示错误分类，如混淆软珊瑚和死珊瑚；底部红框显示典型的“珊瑚内”错误分类 黄色珊瑚被错误地归类为棕色珊瑚。无论哪一种方法，都无法避免一些微小误差。比如暴露过度的岩块可能被绘制在一块礁岩上。可以看到，通过对珊瑚光谱特性研究分析，再辅以彩色图像对比，其分类结果和标准参考结果及GLS方法极为接近，而且相比GLS方法，高光谱更为高效，便捷。

随着荧光光纤氧气测量技术的问世，精确、高通量测量微小生物如藻类等浮游植物、浮游动物、鱼卵胚胎、斑马鱼等水生微小生物或组织的的呼吸与能量代谢成为可能。荧光光纤氧气测量技术具有超短反应时间、高精确度和高可靠性、适用于气相和液相等优势，在实验生物学研究、污染生态学与环境毒理学、环境科学与气候变化研究等领域具有越来越重要的应用价值。 系统由内置荧光光纤氧气传感器的封闭式孔多孔板、氧气测量主机模块及在线数据采集分析软件组成，可对24个、96个乃至最多240个通道的样品进行同步测量。 功能特点l 氧气测量高精度、高可靠性、低功耗、低交叉敏感性、快速响应时间l 轻松校准l 气体、液体样品均可使用l 非侵入性和非破坏性测量l 紧凑的设计，适用于温控培养箱和/或摇床l 其他应用领域包括：高效筛选、过程工程、小规模细胞培养和呼吸速率测量、酶活性测定、环境分析等 技术参数1. ×24通道高通量呼吸测量系统1.1 检测技术：光纤氧传感器技术。1.2 适用场景：原位检测，可在培养箱里或摇床上使用，便于温度控制。1.3 呼吸室：硼硅酸盐玻璃材质的24孔板，每孔容积80-1,700 µ l。可使用酒精轻松清洗、重复使用。1.4 读取器：单个重380g，163 x 89 x 22 mm；可1-10个进行组合。1.5 氧气测量范围：0-50%或0～22.5mg/l1.6 检测极限：0.15%或15ppb溶解氧1.7 氧气测量精度：±1%@20.9%氧气。1.8 氧气测量分辨率：±0.4%@20.9%氧气或±5μmol@283.1µ mol1.9 响应时间：＜30s1.10 氧气测量漂移：＜1%空气饱和度（一周/10min采集一次）1.11 通道数：最多可串联10个读取器，形成240个通道 2. ×96通道高通量呼吸测量系统2.1 REDFLASH技术：基于独特的分析物敏感REDFLASH传感器材料，以红光激发并在近红外（NIR）区域显示分析物依赖的发光。2.2 技术优势：红光激发显著减少了由自发荧光样品引起的干扰。NIR检测技术显著减少了与环境光的干扰。2.3 可选氧气传感器类型：薄膜贴或者纳米颗粒。2.4 薄膜贴直径约为1-1.5毫米，固定在孔底中心，无光学隔离。2.5 配套采集软件：新一代用户友好且多功能的采集软件，可在同一个窗口管理多达3台设备。2.6 配套分析软件：提供耗氧率计算和漂移补偿等数据分析的功能。2.7 呼吸室：圆底（270 μL）或平底（350 μL）孔的透明聚苯乙烯多孔板，支持预消毒（EtO环氧乙烷）处理。 应用案例l 浮游植物细胞光合放氧和呼吸作用测定2017年，不列颠哥伦比亚大学的Bernhardt适用200mL的高通量呼吸系统测量了浮游植物细胞光下的放氧量及黑暗条件下的氧气消耗量，用以计算其质量归一化代谢率（氧通量/总细胞体积）和光合作用的活化能。实验中使用了透明的PCR膜密封呼吸室，在3小时内每隔15秒测量一次氧气浓度。 l 鱼类胚胎呼吸代谢测量2017年，美国加利福尼亚大学的Flynn和Todgham采用高通量呼吸测量技术，对发育的南极鱼代谢活动进行了测量和分析（下图）。 l 珊瑚幼虫耗氧率测定美国海洋和大气管理和研究局的（NOAA）Xaymara Serrano等（2018）使用200微升的高通量呼吸系统测量了两个物种的加勒比礁珊瑚幼虫的耗氧率（参见下图）。研究团队的成员来自位于迈阿密的大西洋海洋和气象实验室以及迈阿密大学海洋与大气学院，他们研究了多种因子（如温度、硝酸盐富集）对幼虫的活动的影响，研究结果刊登在《Coral Reefs》杂志上，并在论文里详细介绍了他们是如何使用该技术测量如此微小的生物的耗氧率。 参考文献1. Glass, B.H., Jones, K.G., Ye, A.C., Dworetzky, A.G., Barott, K.L., 2023. Acute heat priming promotes short-term climate resilience of early life stages in a model sea anemone. PeerJ 11, e16574. 2. Gö pel, T., Burggren, W.W., 2024. Temperature and hypoxia trigger developmental phenotypic plasticity of cardiorespiratory physiology and growth in the parthenogenetic marbled crayfish, Procambarus virginalis Lyko, 2017. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology 288, 111562. 3. Kä mmer, N., Reimann, T., Ovcharova, V., Braunbeck, T., 2023. A novel automated method for the simultaneous detection of breathing frequency and amplitude in zebrafish (Danio rerio) embryos and larvae. Aquatic Toxicology 258, 106493. 4. Karlsson, K., Sø reide, J.E., 2023. Linking the metabolic rate of individuals to species ecology and life history in key Arctic copepods. Mar Biol 170, 156. 5. Mathiron, A.G.E., Gallego, G., Silvestre, F., 2023. Early-life exposure to permethrin affects phenotypic traits in both larval and adult mangrove rivulus Kryptolebias marmoratus. Aquatic Toxicology 259, 106543.6. Pettersen, A.K., Metcalfe, N.B., Seebacher, F., 2024. Intergenerational plasticity aligns with temperature-dependent selection on offspring metabolic rates. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences 379, 20220496. 7. Powers, M.J., Baty, J.A., Dinga, A.M., Mao, J.H., Hill, G.E., 2022. Chemical manipulation of mitochondrial function affects metabolism of red carotenoids in a marine copepod (Tigriopus californicus). Journal of Experimental Biology 225, jeb244230.8. Ricarte, M., Prats, E., Montemurro, N., Bedrossiantz, J., Bellot, M., Gómez-Canela, C., Raldúa, D., 2023. Environmental concentrations of tire rubber-derived 6PPD-quinone alter CNS function in zebrafish larvae. Science of The Total Environment 896, 165240. 9. Scovil, A.M., Boloori, T., de Jourdan, B.P., Speers-Roesch, B., 2023. The effect of chemical dispersion and temperature on the metabolic and cardiac responses to physically dispersed crude oil exposure in larval American lobster (Homarus americanus). Marine Pollution Bulletin 191, 114976. 10. Varshney, S., Lundå s, M., Siriyappagouder, P., Kristensen, T., Olsvik, P.A., 2024. Ecotoxicological assessment of Cu-rich acid mine drainage of Sulitjelma mine using zebrafish larvae as an animal model. Ecotoxicology and Environmental Safety 269, 115796.