植物中酰脲含量检测试剂盒 微量法

植物中酰脲含量检测试剂盒说明书

微量法

规格：100T/48S

产品组成：使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致

溶液的配制：

1、提取液 A 液：自备无水乙醇；

2、试剂五：临用前取 1 瓶加入 2 mL 蒸馏水溶解备用，可分装后-20℃保存，-20℃保存一周；

3、试剂六：自备浓盐酸；

4、标准品：10 mg 尿囊素。临用前加入 632.5 μL 蒸馏水配制成 100 μmol/mL 酰脲标准液。

产品说明：

选育高固氮活性豆科植物品种是提高豆科植物固氮能力的一个有效途径。大豆根瘤菌固氮的最初输出产物主要是酰脲（尿囊素和尿囊酸）。酰脲是大豆一根瘤菌共生固氮中的氮代谢产物，是氮素贮藏和运输的主要形式，在大豆氮代谢中起着重要作用。可通过测定豆科植物组织中酰脲的含量，从而评估其固氮能力。

尿囊素在过酸或碱条件下水解产生乙醛酸，然后在苯肼和强酸条件下可被氧化，生成红色络合物，在 535nm 处有特殊吸收峰，据此可由吸光值计算出样本中酰脲的含量。

注意：实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品：

可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅/恒温培养箱、鼓风烘箱、微量玻璃比色皿/96 孔板、可调式移液枪、研钵、30~50 目筛、冰和蒸馏水、EP 管。

操作步骤：

一、样本处理（可适当调整待测样本量，具体比例可以参考文献）

植物样本：将供试的植物样本在 65℃的鼓风烘箱中烘干，研磨成粉状，过 30~50 目筛。按质量（g）︰提取液体积（mL）1︰10~20 比例（建议称取 0.1 g 烘干样本，依次加入 1.0 mL 提取液 A 与 1.0 mL 提取液 B，禁止将提取液 A 与提取液 B 混匀待用），漩涡混匀，在 80℃水浴锅中萃取 5 min，然后 3500 rpm，室温，离心 15 min，弃沉淀，取上清液置于冰上待测。

二、测定步骤

1、 分光光度计/酶标仪预热 30 min 以上，调节波长至 535 nm，蒸馏水调零。

2、 将试剂六与试剂七置于冰水浴中预冷 30 min 以上，并置于冰上待用。

3、 标准液的处理：将标准品配制成 100 μmol/mL 的标准液后，用蒸馏水稀释至 25、12.5、6.25、3.125、1.5625、0.78125nmol/mL 的标准溶液备用。

4、 操作表：（在 1.5mL EP 管中操作）

注意：对照管不进行水浴加热处理；尿囊酸测定管只需进行第二次的沸水浴；测定管、标准管及空白管在沸水浴加热时，EP 管盖紧并用封口膜密封，避免液体蒸发影响试验数据。

三、植物中酰脲含量计算

1、 标准曲线的绘制：

以各个标准溶液的浓度为 x 轴，其对应的 ΔA 标准为 y 轴，绘制标准曲线，得到标准方程 y= kx+b，将 ΔA 尿囊酸和 ΔA 酰脲分别带入方程得到 x₁（nmol/mL）和 x₂（nmol/mL）。

2、 豆科植物中酰脲含量的计算：

尿囊酸含量（nmol/g 质量）= x₁×V 提取÷W==2×x₁÷W

酰脲含量（nmol/g 质量）= x₂×V 提取÷W=2×x₂÷W

V 提取：加入提取液体积，2 mL；W：样本质量，g。

注意事项：

1、同一批检测样本需配 1-2 个空白管。

2、当 OD 值高于 1.5 时，建议将样本稀释后检测，并在计算公式中乘以稀释倍数。

3、试剂六与试剂七在使用之前请先置于冰上预冷 30 min 以上。

实验实例：

1、取0.1g马齿苋，进行样本处理，按照测定步骤操作，使用96孔板测得计算ΔA酰脲=A酰脲测定管-A对照管=0.332-0.226=0.106，带入标准曲线 y=0.0548x-0.024，计算 x₂=2.3723，按照计算公式计算：

酰脲含量（nmol/g 质量）=2×x₂÷W=2×2.3723÷0.1=47.446 nmol/g 质量。

特别提示：本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！