果胶裂解酶活性检测试剂盒 微量法

果胶裂解酶（PL）活性检测试剂盒说明书

微量法

规格: 100T/96S

产品组成：使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致

溶液的配制：

试剂一：溶液中如果有沉淀存在，可以 50℃水浴助溶。

产品说明：

果胶裂解酶（EC4.2.2.10）是果胶酶的重要组成部分，催化果胶分子链的消除裂解。来源比较广泛，主要来源于微生物，在食品加工工业中提高果汁产量方面有重要意义，在减少环境污染和降低能源消耗方面也具有潜在的应用价值。

果胶裂解酶作用于果胶中的 α-1,4 糖苷键，生成在还原端 C4 和 C5 之间位置具有不饱和键的不饱和寡聚半乳糖醛酸，在 235nm 处有特征吸收峰，测定 235nm 下吸光度的上升来表示果胶裂解酶的活性。

注意：实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品：

紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、恒温水浴锅、微量石英比色皿/96孔UV板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤：

一、样本处理（可适当调整待测样本量，具体比例可以参考文献）

1．组织：按照组织质量（g）：提取液体积（mL）为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL 提取液），进行冰浴匀浆。10000g ，4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。

2．细菌、真菌：按照细胞数量（10⁴ 个）：提取液体积（mL）为 500~1000：1 的比例（建议 500 万细胞加入 1mL提取液），冰浴超声波破碎细胞（功率 300w，超声 3 秒，间隔 7 秒，总时间 3min）；然后 10000g，4℃离心 10min，取上清置于冰上待测。

3. 培养液：直接测定。

二、测定步骤

1、 分光光度计/酶标仪预热 30min 以上，调节波长至 235nm，蒸馏水调零。

2、 操作表：

三、果胶裂解酶活性计算

注意事项：

1、 若 ΔA 大于 0.5，将粗酶液用蒸馏水稀释后再进行测定。若 A 测定管大于 1.5 时，建议将样本用蒸馏水稀释后再进行测定。

2、 建议一次测定不要测定过多样本以免耽误过多的酶促反应时间。

3、 空白管正常情况下变化不超过 0.02。

实验实例：

1、 取 0.1g 香蕉皮加入 1mL 提取液进行冰浴匀浆。10000g ，4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。之后按照测定步骤操作，用微量石英比色皿测得计算 ΔA 测定管= A2 测定-A1 测定=0.528-0.5254=0.0025，按样本质量计算酶活得：

PL 活性（U/g 质量）= 64.1×ΔA÷W=1.5964 U/g 质量。

2、 取适量大肠杆菌（500 万）加入 1mL 提取液冰浴超声波破碎细胞（功率 300w，超声 3 秒，间隔 7 秒，总时间 3min）；然后 10000g，4℃离心 10min，取上清置于冰上，之后按照测定步骤操作，用微量石英比色皿测得计算 ΔA 测定管= A2 测定-A1 测定=1.2213-0.8277=0.3936，按照细菌、真菌数量计算：

PL 活性（U/10⁴ cell）= 64.1×ΔA÷细胞数量=241.67U/104 cell。

特别提示：本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！