BM15000 DNA Marker 分子量标准 (250,1000,2500,5000,7500,10000,15000bp)

BM15000 DNA Marker       分子量标准                            (250,1000,2500,5000,7500,10000,15000bp)

商品属性：

 产品介绍：

保存条件：融化后于4℃保存，-20℃永久保存。
产品说明：
 本公司生产的DNA Marker均通过酶切质粒得到，该工艺生产的Marker背景干净、条带清晰，质量稳定且能实现对Marker精确定量。产品含有两种染料（青色染料和黄色），电泳时可通过颜色变化判断电泳的迁移速率，青色染料在1%的琼脂糖凝胶中与3-5kb的迁移速率相同，黄色染料的迁移速度约与50bp条带的迁移速率相同，肉眼可直接观察电泳进度，使用方便且电泳图像清晰。
本产品为即用型产品，已含有1xLoading Buffer，可根据实验需要，直接取适量Marker进行电泳。BM15000 DNA Marker由7条DNA条带组成，DNA条带分别为：250bp(50ng/5μl)、1000bp(50ng/5μl)、2500bp(50ng/5μl)、5000bp(50ng/5μl)、7500bp(40ng/5μl)、10000bp(40ng/5μl)、15000bp(40ng/5μl)。

操作方法：

1. 电泳时的加样孔孔宽小于6mm时，每次取5μl产品进行电泳，如果加样孔较宽，可以适当增加上样量；
2. 建议电泳的条件为1%琼脂糖凝胶，电压4-10V/cm，在紫外条件下观察电泳条带。
注意事项：

1. Agarose的纯度对DNA条带的清晰度影响很大， 电泳时请使用高质量的Agarose。
2. 琼脂糖凝胶浓度与与DNA片段的分离性能有密切关系，电泳时请使用合适浓度的凝胶。
3. 及时更换电泳缓冲液并使用新制备的琼脂糖凝胶，以免影响电泳结果。
4. 进行电泳时，彻底的溶解混匀,避免反复冻融和污染。

pcr相关试剂实验结果分析：

PCR实验结果的分析涉及多个方面，‌包括实验操作、‌试剂质量、‌实验条件等，‌这些因素都会影响PCR实验的成功率和结果的准确性。‌以下是对PCR实验结果分析的一些关键点：‌

循环次数过多：‌增加模板量减少循环次数，‌缩短退火时间及延伸时间，‌或改用两种温度的PCR循环，‌可以有效避免循环次数过多导致的问题。‌

退火温度过低：‌退火温度的适当调整对于PCR反应的成功至关重要，‌过低的退火温度可能导致非特异性扩增，‌影响结果的准确性1。‌

电泳体系问题：‌包括凝胶中缓冲液和电泳缓冲液浓度相差太大、‌凝胶没有凝固好、‌琼脂糖质量差等问题，‌这些都会影响DNA片段的分离效果。‌

试剂盒问题：‌运输储存不当可能引起试剂盒失效，‌试剂盒本身质量问题如引物选择、‌循环参数设置不当也可能导致实验失败1。‌

降解的陈旧模板：‌使用降解的陈旧模板进行扩增容易产生涂布，‌影响结果的解读1。‌

PCR假阴性结果：‌可能由引物长度不够、‌试剂浓度不标准、‌靶序列突变或缺失、‌循环参数设置错误、‌标本中有Taq酶抑制剂、‌PCR产物检测系统灵敏度不够等因素引起。‌

为了获得准确的PCR实验结果，‌需要注意以下几点：‌

确保PCR反应体系中各种试剂的配比和操作步骤的精准度。‌

在PCR反应过程中需要对PCR产物进行实时监测，‌以便及时对反应条件进行调整。‌

防止样本的污染和交叉感染，‌以免影响PCR反应的准确性和可靠性。‌

通过上述分析，‌可以更好地理解和控制PCR实验中的关键因素，‌从而提高实验结果的准确性和可靠性。‌

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