Carboxyl-Terminated Magnetic Beads 羧基磁珠

Carboxyl-Terminated Magnetic Beads 羧基磁珠

商品属性：

 产品介绍：

产品介绍： Carboxyl-Terminated Magnetic Beads 是均匀的，表面覆盖有高密度羧基官能团的 二氧化硅基质的磁珠。它的亲水性表面基团保证了磁珠在实验过程中，具有极低的非 特异性吸附率、且有良好的分散性，并易于在各种缓冲液中处理。磁珠表面上高密度 的具有悬垂功能性的羧基基团，可以通过形成稳定的酰胺键共价结合含伯胺的配体。 Carboxyl-Terminated Magnetic Beads 适合结合大的蛋白质。 Long-arm Carboxylterminated Magnetic Beads 建议结合小分子肽回收， 因为长臂的亲水连接基团可以减 少位阻现象。 Carboxyl-Terminated Magnetic Beads 可以完美地作为各种生物分离实验的亲和材 质，将分子、细胞和部分细胞提取物进行提炼纯化。在与配体结合后，将磁珠添加到 含有目标分子的样品中，然后混合、孵育、洗涤和洗脱目标分子。

产品特点：

· 便于使用
· 稳定的共价键，低水平的配体泄漏
· 可重复使用的免疫亲和基质
· 极低的非特异性结合率
· 可固定 1-10mg 蛋白或 0.1-1mg 多肽/ml 的磁珠
用途： 用于纯化抗体，蛋白质/肽，DNA / RNA；细胞筛选、免疫沉淀
操作步骤

提示：
1. 强烈建议在实验过程中进行滴定优化，以确定每个实验中应用的磁珠数量。该协议可以相 应地放大和缩小。
2. Coupling buffers 应具有最小的离子强度，且不应含有任何具有氨基（如 Tris）或羧基（如 醋酸盐、柠檬酸盐）的成分。但 Wash buffers 或者 Storage buffers 可含有氨基或羧基。
所需耗材和试剂：
磁力分离器（适用于手动操作）：根据实验时生物样品的体积，使用者可以选择一下不同型号的磁力分离器。
Coupling Buffer: 10 mM K3PO4, 0.15 M NaCl, pH 5.5 或者 0.1 M MES 缓冲液,0.15 M
NaCl, pH 4.5-5.5. EDC [1-ethyl-3 (3-dimethyaminopropyl) carbodiimide], Sigma, Cat# E7750
NHS (N-hydroxysuccinimide), Sigma, Cat#56480
Wash/Storage Buffer: 10 mM Tris, 0.15 M NaCl, 0.1% (w/v) BSA, 1mM EDTA, 0.01%叠
氮化钠, pH 7.5
Blocking buffer: 1 M Glycine, pH 8.0
Ⅰ.一步法偶联实验过程：
提示：一步偶联方式适用于不含羧基基团的配体，因为羧基基团可能与缓冲液中 EDC反应并导致配体聚合。但是，由于该方法简单且通常具有较高的产率，因此它仍然是首选的耦合方法。为了补偿因为聚合造成的配体损失，可以在偶联反应中加入较多的配体。
A.磁珠准备
1. 将 30mg 磁珠与 1ml 的 Coupling buffer 在离心管中混合，并通过涡旋或移液器吹吸
方式充 分混合。
2. 将试管插入磁力分离器中 1-3 分钟，直到上清液变的澄清。将试管留在磁力分离器
中的同时， 用移液器吸出并丢弃上清液。
3. 磁珠准备用来偶联。
B.蛋白的偶联
1. 用 Coupling buffer 制备 1ml 蛋白质溶液（0.5-1mg/ml），并与上述所得磁珠混合，
并充分混匀。
2. 制备新鲜的含有 2%的 EDC 溶液的 Coupling buffer。注意：准备后 15 分钟内使用。
3. 向蛋白质溶液中加入 100µl 上述 2% EDC 溶液并充分混合。
4. 室温条件下，在保持良好混匀情况下过夜孵育。
C.清除未结合蛋白
1. 反应完成后，将管放在磁力分离器上 1-3 分钟。当磁珠完全沉淀时，去除上清液。
2. 清洗磁珠使用 5 ml 的 Wash/storage buffer，重复三次。
3. 在室温下用 1ml 的 Blocking buffer，在保持良好混匀情况下将磁珠孵育 1-2 小时。
4. 使用 5ml 的 Wash/storage buffer 清洗磁珠三次
5. 用所需体积的 Wash/storage buffer 悬浮磁珠，并在 4ºC 下储存。
II. 两步偶联法实验过程：
提示：两步方案：该方案适用于含有羧基的配体，或者只有有限数量的配体可用
A.磁珠准备
1. 将 30mg 磁珠与 1ml 的 Coupling buffer 在离心管中混合，并通过涡旋或移液器吹吸方式充分混合。
2. 将试管插入磁力分离器中 1-3 分钟，直到上清液变的澄清。将试管留在磁力分离器中的同时， 用移液器吸出并丢弃上清液。
3. 制备新鲜的含有 5% EDC 和 5% NHS 的 Coupling buffer。注意：准备后 15 分钟内使用。
4. 向含有磁珠的试管中加入 500µl 上述含有 5%EDC 和 5% NHS 的 Coupling buffer 并充分混合。
5. 在室温下，保持磁珠良好混匀情况下，将磁珠孵育 30 分钟。
6. 孵育完成后，将试管插入磁力分离器中 1-3 分钟，直到上清液变的澄清。将试管留在磁力分离器中的同时，用移液器吸出并丢弃上清液。
7. 清洗磁珠使用 5 ml 冰浴过的 Coupling buffer，重复三次。
8. 磁珠准备用来偶联。
B．结合蛋白
1. 用 Coupling buffer 制备 1 ml 蛋白质溶液（0.5-1mg/ml），并与上述所得已清洗的磁珠混合。
2. 在室温下孵育过夜，过程中确保充分混合。
C.清除未结合蛋白
1. 反应完成后，将试管放在磁力分离器上 1-3 分钟。当磁珠完全吸附到磁力分离器上时，去除上清液。
2. 使用 5 ml 的 Wash/storage buffer 清洗磁珠，重复三次。
3. 在室温下用 1ml 的 Blocking buffer，在保持良好混匀情况下将磁珠孵育 1-2 小时。
4. 使用 5ml 的 Wash/storage buffer 清洗磁珠三次
5. 用所需体积的 Wash/storage buffer 悬浮磁珠，并在 4ºC 下储存。
III．通用式亲和层析方法
提示：
该方案是一个通用的亲和纯化发法。因为没有两种蛋白质是完全相同的，所以不可 能为所有的蛋白质纯化设计一个通用的协议。为了获得最佳结果，每个用户必须确定纯化单个目标蛋白的最佳工作条件。
建议根据粗样品中目标蛋白质的含量，进行滴定，以优化每个单独实验中使用的磁珠数量。使用过的磁珠将导致较高的背景，而使用过少的磁珠将导致较低的产量。每毫克磁珠通常可与 1-20μg 靶蛋白结合。
1. 将适量的磁珠转移到试管中。将试管放在磁力分离器上 1-3 分钟。当磁珠完全吸附时， 去除上清液。
2. 取下试管，加 入 5 倍磁珠溶液体积的 PBS 缓冲液，通过震荡重新悬浮磁珠，涡旋30 秒。将试管至于室温环境孵育 1-3 分钟，再将管放在磁力分离器上 1-3 分钟。当磁珠完全吸附时，去除上清液。
3. 重复步骤 2 两次。
4. 向含有目标蛋白质的粗样品中添加洗涤过的磁珠，并在室温或所需温度下孵育 1-2小 时（温度越低，孵育时间越长）。
5. 用 5 倍磁珠体积的 PBS 缓冲液或 1M NaCl 彻底清洗磁珠，直到 280nm 处洗涤液的吸光度接近背景水平（OD280<0.05）。
6. 通过适当的方法洗脱目标蛋白，如低 pH（2-4）、高 pH（10-12）、高盐、高温、亲和洗脱或 加入 SDS-PAGE 上样缓冲液煮沸。

pcr相关试剂实验结果分析：

PCR实验结果的分析涉及多个方面，‌包括实验操作、‌试剂质量、‌实验条件等，‌这些因素都会影响PCR实验的成功率和结果的准确性。‌以下是对PCR实验结果分析的一些关键点：‌

循环次数过多：‌增加模板量减少循环次数，‌缩短退火时间及延伸时间，‌或改用两种温度的PCR循环，‌可以有效避免循环次数过多导致的问题。‌

退火温度过低：‌退火温度的适当调整对于PCR反应的成功至关重要，‌过低的退火温度可能导致非特异性扩增，‌影响结果的准确性1。‌

电泳体系问题：‌包括凝胶中缓冲液和电泳缓冲液浓度相差太大、‌凝胶没有凝固好、‌琼脂糖质量差等问题，‌这些都会影响DNA片段的分离效果。‌

试剂盒问题：‌运输储存不当可能引起试剂盒失效，‌试剂盒本身质量问题如引物选择、‌循环参数设置不当也可能导致实验失败1。‌

降解的陈旧模板：‌使用降解的陈旧模板进行扩增容易产生涂布，‌影响结果的解读1。‌

PCR假阴性结果：‌可能由引物长度不够、‌试剂浓度不标准、‌靶序列突变或缺失、‌循环参数设置错误、‌标本中有Taq酶抑制剂、‌PCR产物检测系统灵敏度不够等因素引起。‌

为了获得准确的PCR实验结果，‌需要注意以下几点：‌

确保PCR反应体系中各种试剂的配比和操作步骤的精准度。‌

在PCR反应过程中需要对PCR产物进行实时监测，‌以便及时对反应条件进行调整。‌

防止样本的污染和交叉感染，‌以免影响PCR反应的准确性和可靠性。‌

通过上述分析，‌可以更好地理解和控制PCR实验中的关键因素，‌从而提高实验结果的准确性和可靠性。‌

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