蛋白质稳定性定量分析仪

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蛋白质稳定性定量分析仪相关的厂商

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    北京优纳珂科技有限公司是瑞士DECTRIS(德科特思)指定的在中国同步辐射和实验室领域总代理商,负责DECTRIS(德科特思)产品在中国的软硬件售前、售后服务工作;以及瑞典EXCILLUM公司OEM合作伙伴,负责EXCILLUM公司产品在中国的安装售后服务工作。同时也是德国STOE公司、英国牛津OxfordCryosystems公司、德国MarXperts公司负责在中国的驻华销售办事处及售后服务中心,专业从事X-射线散射及衍射结构分析类仪器及相关配件、耗材在国内推广、销售及研发与生产,我们经过不懈努力向客户提供全集成的,高附加值的全方位解决方案。我公司目前的主要产品为X-射线散射及衍射专业领域的所有应用产品,主要包括生物大分子、小分子及高压全套单晶衍射仪(XRD)、粉晶衍射仪(XRD),小角广角X射线散射仪(SAXS/WAXS)、X射线成像,及配套的高低温设备,高压设备,拉伸装置,X-光强度测试仪,各种配套用测角仪和样品台,最新性能的探测器等全系列X射线结构分析类产品。 仪器设备的应用覆盖从基础研究到工业质量控制的材料性能表征,涉及元素分析,材料研究,结构分析等等, 我们通过提供高精密度,高分辨率的仪器设备来保证包括化学,化工,冶金、石油,材料,制药,半导体,生命科学,纳米技术的企业客户和学术研究单位对单晶及粉晶的结构分析及各类材料的小角广角散射分析的高端及创新型的科研需要。 - 对新型化合物、 催化剂、 医药, 天然产物,蛋白质,核酸等需明确表征分子的三维(3D)原子 结构的结构分析等 - 无机晶相,有机晶相,多功能材料等的物相定性、定量分析,矿物的X射线定性、定量分析等 - 纳米结构分析(形状、尺寸和内部结构),分散稳定性,颗粒成核现象,孔隙度(比表面),结晶度和取向,溶液中的生物大分子(Bio-SAXS),纳米结构表面 (GISAXS)等。 我公司以提供一流的诚信、质量、效率为追求目标,以高新技术为依托,本着“信誉第一、客户至上”的原则,提供专业的产品、 技术服务与支持,满足客户日益复杂化和多样化的需求。 欢迎来电来函咨询有关业务。我们将以饱满热忱的服务让您满意!
  • 400-860-5168转5915
    沃亿生物基于显微光学切片断层成像(MOST)技术的系列仪器设备,在国际上率先建立了可对厘米大小样本进行突起水平精细结构三维成像,填补了核磁共振成像和电子显微镜之间的空白。MOST系列设备不仅可以获得单细胞分辨的全脑神经连接图谱、定位神经环路、追踪单神经元长程投射、构筑血管网络三维拓扑结构;还可用于细胞空间定量分析、单细胞形态学分析,全器官蛋白质及基因表达空间定位;适用于多种模式生物的全器官或组织三维结构可视化,在基础科学研究、病理机制研究、药物筛选与评估、生物3D打印、三维解剖学数据库构建等领域发挥极大作用。
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蛋白质稳定性定量分析仪相关的仪器

  • - Bradford、BCA太过繁琐? UV测蛋白结果不准确?- 全球第一台红外微定量分析仪Direct Detect - 2ul样本、1分钟检测、无需染色,准确读取蛋白定量结果Direct DetectTM全球第一台基于红外原理的生物分子微定量分析系统,只需要2ul样本及空白对照(Blank),就可以直接获取结果。无需样品处理,无需每次制作标准曲线,无需比色杯、没有废液。Direct DetectTM系统直接基于酰胺区在红外吸收光谱分析,无需考虑氨基酸的组成、染料性质、氧化还原电位这些因素,避免了比色法分析的缺陷,可以获得更加准确的结果。蛋白、脂肪、碳水化合物以及核酸都有可被区分的特定红外吸收光谱,所以您可以很轻松实现复杂混合物各种组分浓度的准确分析。浏览Direct Detect中文产品手册更多详情,请访问:
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  • 细胞异质性存在于生命医学研究的各个领域,包括肿瘤学,干细胞分化发育,免疫学等。重大生命医学问题的解决,必须首先解决细胞异质性的问题。通过单细胞检测技术,对异质性细胞进行分类,是细胞异质性分析的主要手段。单细胞测序技术实在基因层面的单细胞分析,但是所有生物学效应,包括生理学效应,病理学效应,药物反应等,最后都是通过特定蛋白质来发生和调控的。Milo单细胞蛋白质表达定量分析系统,技术来源自美国著名大学加州大学伯克利分校Amy E. Herr教授实验室,该实验2014年原创性技术发表在Nature Method,题目Single cell western blot。ProteinSimple借助强大的软件及硬件研发实力,将其开发为单细胞蛋白质表达定量检测系统,用于细胞异质性及稀缺细胞样本(比如循环肿瘤细胞等)研究。检测流程Milo单细胞蛋白质定量表达分析系统,是第一款单细胞水平,蛋白质表达定量分析系统。Milo系统采用专利的微流控western blot芯片,通过单细胞微孔设计,采集单细胞,然后原位裂解细胞,释放蛋白,进行蛋白质电泳,将不同分子量蛋白进行分离,提高免疫学检测特异性。之后,采用专利技术进行蛋白质原位捕获,使用western blot验证抗体及荧光标记二抗直接杂交,扫描仪进行芯片扫描后,Scout软件对扫描结果进行深度定量分析。因为Milo对单细胞蛋白质表达分析的独特优势,在7月份上市之后,连续获得了MIT technology review 年度创新奖,美国著名杂志 The Scientist 年度创新产品第一名。 Milo具有极其强大的功能: 1. 单张芯片可进行1000-2000个单细胞western blot检测 2. 单个细胞可进行数十个靶蛋白检测 3. 仅需使用western blot验证抗体 4. 基于western blot技术,蛋白质分离后检测,提高免疫学检测特异性 5. 全程检测4-6小时 6. 适用于:细胞异质性研究及稀缺样本检测。 5. Single cell–resolution western blotting,1508 | VOL.11 NO.8 | 2016 | Nature protocols
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  • 告别传统Western Blot耗时长、手工操作多、定量不准、重现性差(CV35%)、样品量多等不便!全自动Digital Western系统,让您从此享受Western Blot实验!Jess多功能全自动蛋白质表达定量分析系统利用微量毛细管,结合内涂层技术,可以实现仅需3μL微量样品,全自动吸取、分离、捕获蛋白质,并通过后续的免疫反应、化学发光、多色荧光检测定量的目的蛋白。无需人工干预。1. 化学发光2. 双色荧光3. 总蛋白归一化定量 Jess四大特点:1. 高重复性:Jess从取胶,上样,电泳,抗体孵育,定量检测,全程无缝衔接,全自动化完成,成就高重复性实验数据。 2. 高通量:Jess单次可运行13或者25个样本,多色荧光,使得多重检测成为可能,单次可以获取更多数据。3. 快速:Jess单次实验,全程只需3小时。最快速度获取珍贵实验数据。4. 定量:Jess软件直接输出定量数据,结果定量轻而易举。标准曲线绝对定量,总蛋白归一化相对定量,内参蛋白定量均可实现。Jess节约珍贵样本: Jess创新使用400nl毛细管 (长: 5cm,直径: 100um,体积400 nL),只需1pg左右总蛋白,即可进行目标蛋白表达水平准确定量检测。解决稀缺样本蛋白质检测瓶颈1. 分选干细胞2. 激光显微切割3. 分选免疫细胞4. 临床穿刺样本 5. 临床样本库6. 发育胚胎7. 肿瘤微环境 Jess 覆盖2-440KD:小至2KD多肚,细胞因子,神经递质,激素等,大至440KD蛋白,Jess均有标准程序可以覆盖,一键敲击,即可自动完成全程检测。Jess双色荧光轻松检测蛋白质翻译后修饰:磷酸化等蛋白质翻译后修饰对蛋白质分子量影响很小,单靠分子量无法实现靶蛋白及其修饰体的完全分离,影响准确的定量检测。Jess双色荧光,可以轻松实现靶蛋白及其修饰体的同时检测。Jess总蛋白归一化定量检测:只需加入蛋白质归一化试剂,Jess即可利用技术实现靶蛋白的归一化定量。无论是使用0.4ug/ml的Hela裂解液,还是1ug/ml的Hela裂解液,归一化处理后,靶蛋白信号一致。 Jess自动完成靶蛋白定量:当实验结束时,Jess可以自动输出条带图,信号积分图及定量信号值 (Area)。 —— 技术参数 —— 关于ProteinSimple:美国纳斯达克上市公司Bio-techne (Nasdaq: TECH) 集团旗下的行业领先蛋白质分析品牌,一直致力于研发和生产更精准、更快速、更灵敏的创新性蛋白质分析工具,包括蛋白质电荷表征、蛋白质纯度分析、蛋白质翻译后修饰定量检测、蛋白质免疫实验如 Western 和 ELISA 定量检测蛋白质表达等技术,帮助生物制药、细胞治疗、生物医学和生命科学等领域科学家解决蛋白质分析问题,深度解析蛋白质和疾病相互关系。 关于上海昊扩:上海昊扩科学器材有限公司成立于2019年,总部位于上海,是一家实验室设备/耗材及分析仪器的专业服务商。公司致力于为生物、医药、物性检测、化工分析、食品、工业生产等相关领域客户提供国内外高科技专业设备以及技术咨询服务。2024年,上海昊扩正式与美国Bio-techne集团旗下的行业领先蛋白质分析品牌ProteinSimple达成合作,成为其华东大区授权代理商。了解更多产品信息,欢迎访问官网:www.hankosci.com
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蛋白质稳定性定量分析仪相关的资讯

  • ​研究蛋白质热稳定性的几种方法
    研究蛋白质热稳定性的几种方法蛋白跟核酸不一样,核酸都是由四个碱基组成,只是组成的顺序不一样,但是整体的结构都是类似的双螺旋结构。而蛋白由20多种不同氨基酸组成,需要折叠成正确的三维结构才能发挥自身作用。所以每个不同功能的蛋白长得样子其实都是不同的。蛋白的高级结构决定其功能,行使功能需要正确折叠。蛋白由20多种不同氨基酸组成,需要折叠成正确的三维结构才能发挥自身作用。蛋白质在一定的物理和化学条件(加热、加压、脱水、振荡、紫外线照射、超声波、强酸、强碱、尿素、重金属盐、十二烷基硫酸钠)下,其空间构象容易发生改变而失活,因此研究蛋白的构象和构型变化对其应用有重要的价值。蛋白质的变性作用主要是由于蛋白质分子内部的结构被破坏。天然蛋白质的空间结构是通过氢键等次级键维持的,而变性后次级键被破坏,蛋白质分子就从原来有序的卷曲的紧密结构变为无序的松散的伸展状结构(但一级结构并未改变)。热变性是蛋白质变性中最常见的一类现象。蛋白质的热稳定性是指蛋白质多肽链在温度影响下的形变能力,主要体现在温度改变时多肽链独特的化学特性和空间构象的变化,变化越小热稳定性越高。蛋白质的热稳定性受到不同温度、pH值、离子强度等外界因素的影响,在生物技术、药物研发以及食品工业等领域,具有重要意义。蛋白质变性温度是生物学家们研究蛋白质的热稳定性的一个重要的概念,是指蛋白质在特定温度条件下受到热力作用时,其结构发生变化的温度点,一般温度较高时,蛋白质从稳定的三维结构变化成松散的无序结构。蛋白质的热稳定性一般使用热变性中点温度(meltingtemperature,Tm)来表示,即蛋白质解折叠50%时的温度。蛋白质的热变性过程与其空间构象的改变密切相关,Tm值能反映变温过程中蛋白质构象改变的趋势,是衡量蛋白质热稳定性的一个重要指标。蛋白质Tm值的测定在生物医药行业具有广泛的应用,如嗜热蛋白、工业酶等的改造与筛选,蛋白质药物与配体、制剂或辅料的相互作用,蛋白质药物的缓冲液稳定条件筛选等。目前,许多多种方法可以用来测量蛋白质的变性温度,如圆二色光谱法(circulardichroism,CD)、差示扫描量热法(differentialscanningcalorimetry,DSC)、动态光散射法(DynamicLightScattering)和差示扫描荧光法(differentialscanningfluorimetry,DSF)等。 目前,许多多种方法可以用来测量蛋白质的变性温度,如圆二色光谱法(circulardichroism,CD)、差示扫描量热法(differentialscanningcalorimetry,DSC)、动态光散射法(DynamicLightScattering)和差示扫描荧光法(differentialscanningfluorimetry,DSF)等。 01 圆二色谱法(CD)圆二色光谱(简称CD),或红外(傅里叶变换红外(FourierTransformInfrared,FTIR)光谱),是应用最为广泛的测定蛋白质二级结构的方法,是研究稀溶液中蛋白质构象的一种快速、简单的方法。圆二色谱法诞生于20世纪60年代,其原理是利用左、右两束偏振光透过具有手性结构的生物大分子等活性介质,获得的圆二色谱来分析其结构特点,是蛋白质、核酸、糖类等生物大分子二级结构分析的常规手段之一。蛋白由α螺旋和β折叠构成,α螺旋和β折叠在红外和紫外光段有特异的光吸收。蛋白质对左旋和右旋圆偏振光的吸收存在差异,利用远紫外区(190~260nm)的光谱特征能够快速分析出溶液中蛋白质的二级结构,进而分析和辨别出蛋白质的三级结构类型,变温过程中测量蛋白等物质的圆二色谱,能反映其随温度升高结构变化的趋势。此外,通过测定蛋白质在不同温度下的平均残基摩尔椭圆度[θ]可以获得蛋白质的Tm值。 特点:圆二色光谱(CD)适用于测定稀释溶液的热稳定性,操作相对简单,成本较低。但是相关仪器很昂贵,对缓冲液要求也高,要求溶液不能有任何的紫外吸收,也很难做到高通量检测。 02 差示扫描量热法(DSC) 蛋白变性时会有温度变化,检测温度变化就能知道蛋白变性程度。差示扫描量热法的应用始于20世纪60年代,是在程序控温下,通过测量输给待测物和参比物的功率差与温度的关系,以获得吸放热量的技术。差示扫描量热法能定量测量热力学参数,可提供与蛋白质热变性过程中构象变化有关的热效应信息。差示扫描量热法(DSC)是一个很经典的一个技术,基于的蛋白变性过程中对热量的吸收。蛋白是有三维结构的,比如氢键,疏水键,范德华力。一旦通过加热然后把结构破坏掉,需要吸收热量。所以可以测量热量变化,就是加热结构变化过程中的热量吸收。通过对参照物和样品同时进行升温或冷却处理,测定两者为保持相同温度所产生的热量差,从而计算蛋白质的Tm值。 特点:差示扫描量热法(DSC)能够提供直接的热量变化数据,定量准确、操作简便。但检测通量低、耗时较长,需要的样品体积和浓度比较大。相关仪器中最核心的部件是样品池,对周围环境要求极高。 03 动态光散射法(DLS)动态光散射是基于光学的方法,检测的是蛋白变性之后会发生聚集,导致颗粒的大小发生改变,对散射信号的影响。蛋白在变性过程中,从一个规则高级折叠结构打开,变成一个线性的松散结构。本来外部是亲水的氨基酸,内部是疏水的氨基酸。一旦打开之后,这些疏水的氨基酸会相互就是结合到一起。就是因为疏水的一个相互作用,然后变成一个球状聚集体。此过程会引起这个光的散射的变化。基于动态光散射的信号随着加热的过程的变化就代表粒径的变化,可以计算出蛋白质的Tm值。动态光散射用于表征蛋白质、高分子、胶束、糖和纳米颗粒的尺寸。如果系统是单分散的,颗粒的平均有效直径可以求出来,这一测量取决于颗粒的心,表面结构,颗粒的浓度和介质中的离子种类。DLS也可以用于稳定性研究,通过测量不同时间的粒径分布,可以展现颗粒随时间聚沉的趋势。随着微粒的聚沉,具有较大粒径的颗粒变多。同样,DLS也可以用来分析温度对稳定性的影响。特点:动态光散射可以做到孔板式的检测,具有比较高的通量。但是对于某些样品的检测有限制,因为并不是所有的蛋白在变异之后都会形成这种聚集体,而有一些可能需要很高的浓度才会提升,浓度较低条件下,就观察不到粒径的变化。 04 外源差示扫描荧光法(DSF)差示扫描荧光(DSF)也被称为热荧光法(ThermoFluor),是一种经济高效且易于使用的生物物理技术,通过检测当温度升高或变性剂存在时荧光发射光谱的相应变化来确定蛋白质的变性温度(热变性温度Tm值或化学变性Cm值)。Pantoliano等最先应用此技术测定了上百种蛋白质的热稳定性。差示扫描荧光法分为添加外源荧光染料与不添加荧光染料两种方式,都是利用加热使蛋白内部疏水基团暴露这一特点进行检测Tm值。传统DSF经常使用350/330比值法来进行数据分析根据荧光源不同分为内源荧光DSF和外源荧光染料DSF。基于外源染料荧光的DSF其原理是利用能与蛋白内部疏水基团相互作用的染料为荧光源。蛋白质加热变性后疏水基团暴露,疏水基团与亲和性染料结合产生荧光信号,检测荧光强度变化测定蛋白质的Tm值。特点:借助荧光定量PCR适用于高通量筛选,信号强度可控,灵敏度和准确性都较高。但添加的外源染料可能会对蛋白质结构和功能产生影响,且操作较复杂,不适用于所有蛋白研究。比如做膜蛋白研究时,溶液环境中需要添加双亲性的分子,一端疏水一端亲水。这种情况荧光分子会直接结合到疏水端,导致直接产生荧光信号。并且染料种类的选择、浓度的选择也很繁琐。外源荧光染料DSF也可能会产生背景荧光以及非特异吸附等假阳性结果。 05 内源差示扫描荧光法(inDSF)内源差式扫描荧光inDSF,基于蛋白质中特定氨基酸的荧光特性。这些氨基酸的荧光强度与其所处的微环境密切相关,因此,当蛋白质的结构发生变化时,这些氨基酸的荧光信号也会随之改变。不需要额外的荧光染料加入到检测体系中,利用蛋白内部芳香族氨基酸的自发光原理。不需要任何额外的标记或固定步骤,避免引入结果的不确定性。研究发现,蛋白质分子中芳香环氨基酸在处于不同极性的微环境时(如疏水或亲水环境中),其被激发的内源荧光的最大发射光谱会发生位移。蛋白质中内源荧光主要来自含芳香环氨基酸如色氨酸(Trp),苯丙氨酸(Phe)和酪氨酸(Tyr),其中以色氨酸内源荧光最强。当它在蛋白内部时,发射光主要在330波段,当蛋白一旦去折叠,暴露在溶剂中,发出的光就会从330波长红移到350。所以通过280激发,检测330/350的比值变化,就能测量蛋白质的Tm值。以色氨酸为例,在蛋白质疏水的内核微环境中,其内源荧光最大发射波长在330nm左右,而在亲水的极性微环境中,色氨酸的内源荧光最大发射波长则出现在350nm左右。蛋白质热变性或者化学变性通常会导致色氨酸残基周围微环境的极性发生变化,使通常被包埋于蛋白质疏水内核的色氨酸逐渐暴露于亲水的环境中,从而导致发射内源荧光最大发射波长发生红移(RedShift),即向更大的波长区域移动。特点:内源差式扫描荧光DSF无需复杂的样品处理或标记步骤,实验过程简单方便。但不是所有蛋白质都含有足够的荧光基团,所以对于部分样品检测灵敏度不够,且检测可能会受其他基团影响。 06 技术对比总结总得来说,DSF和DLS法在样品用量及测定效率上更有优势,比较适合进行高通量筛选。但DSF法需要样品含有色氨酸、酪氨酸或额外添加荧光染料,这可能会对样品测量范围带来一定限制,DLS对样品浓度有要求。DLS还可以获取聚集体粒径大小的信息。DSC法虽然在样品用量与检测效率上不及DSF,但作为量热的经典方法仍是不可缺少的Tm值测量手段,在进行批量样品的热稳定性筛选时,可以使用DSF法初筛,DSC法复筛。此外,DSC能测定蛋白质变性过程中的热容变化ΔCp、焓变ΔH、解折叠自由能ΔG、玻璃态转变温度、分子流动临界温度等其他重要热力学参数。CD作为检测蛋白二级结构的经典方法,在Tm值测定方面具有其独特优势和一定的局限性,也是研究加热过程中蛋白结构改变的重要方法。蛋白质Tm值测定具有重要的实际应用价值,例如辅助生物药物开发、生产和质量控制,评估生物相似性、优化蛋白药物配方等,还可以作为探索蛋白质高级结构的手段之一指导蛋白质工程,如比较不同突变对蛋白质稳定性的影响,研究结构域改变与功能活性改变关联性等。比较不同Tm值测定方法,全面了解技术特点及测量效果对于Tm值测定的实际应用具有一定的指导意义,在科研或生产工作中可以灵活选用或联用多种技术来阐明不同条件下的结构变化特点。 07 国产蛋白稳定性分析仪PSA-16 北京佰司特科技有限责任公司于2023-10-01日推出了自主研发的第一款国产蛋白稳定性分析仪,该设备性能和参数达到进口设备的水平,价格却远低于进口产品,弥补了目前国产自主设备在蛋白稳定性专业研究分析领域的空白。多功能蛋白稳定性分析仪PSA-16是一款无需荧光染料、高通量、低样品消耗量的检测蛋白质稳定性的设备。该设备基于内源差示扫描荧光技术(intrinsic fluorescence DSF),通过检测温度变化/变性剂浓度变化过程中蛋白内源紫外荧光的改变,获得蛋白质的热稳定性(Tm值)、化学稳定性(Cm值)等参数。可应用于蛋白缓冲液条件筛选及优化、小分子与蛋白结合情况的定性测定、蛋白质修饰及改造后的稳定性测定、蛋白变/复性研究、不同批次间蛋白稳定性对比等多个方面。 多功能蛋白稳定性分析仪PSA-16应用涵盖植物、生物学、动物科学、动物医学、微生物学、工业发酵、环境科学、农业基础、蛋白质工程等多学科领域。蛋白质是最终决定功能的生物分子,其参与和影响着整个生命活动过程。现代分子生物学、环境科学、动医动科、农业基础等多种学科研究的很多方向都涉及蛋白质功能研究,以及其下游的各种生物物理、生物化学方法分析,提供稳定的蛋白质样品是所有蛋白质研究的先决条件。因此多功能蛋白稳定性分析仪PSA-16在各学科的研究中都有重要的意义。1. 抗体或疫苗制剂、酶制剂的高通量筛选 2. 抗体或疫苗、酶制剂的化学稳定性、长期稳定性评估、等温稳定性研究等3. 生物仿制药相似性研究(Biosimilar Evaluation)4. 抗体偶联药物(ADC)研究5. 多结构域去折叠特性研究6. 物理和化学条件强制降解研究7. 蛋白质变复性研究(复性能力、复性动力学等)8. 膜蛋白去垢剂筛选,膜蛋白结合配体筛选(Thermal Shift Assay)9. 基于靶标的高通量小分子药物筛选(Thermal Shift Assay)10. 蛋白纯化条件快速优化等
  • 内源差示扫描荧光技术如何应用到多功能蛋白质稳定性分析
    内源差示扫描荧光技术如何应用到多功能蛋白质稳定性分析北京佰司特贸易有限责任公司蛋白质是生物体中广泛存在的一类生物大分子,具有特定立体结构的和生物活性以及诸多功能,根据这些功能我们可以将其应用于蛋白质的分子设计、蛋白质功能的改造、疾病的基因治疗以及新型耐抗药性药物的开发与设计甚至是发现生物进化的规律等先进科研领域上。因此,蛋白质具有非常重要的研究价值。进行蛋白质性质和功能研究的前提是获得稳定的蛋白质样品,而由于蛋白质自身性质的复杂性,难以保证获得的蛋白质样品是否具有正确的三维结构以及功能,因此急需一种技术手段或设备,对蛋白质的稳定性进行分析,确定获得蛋白质最ZUI适宜的缓冲液条件、蛋白质的长期储存稳定性等。另外在进行蛋白质-配体小分子相互作用研究时,因为需要筛选的小分子配体数量巨大,因此也急需一种技术手段或设备,可以高通量的对配体结合进行筛选。蛋白中的色氨酸和酪氨酸可以被280 nm的紫外光激发并释放出荧光,其荧光性质与所处的微环境密切相关。蛋白变性过程中,色氨酸从疏水的蛋白内部逐渐暴露到溶剂中,荧光释放的峰值也从330 nm逐渐转移到350 nm。内源差示扫描荧光技术(intrinsic fluorescence DSF),通过检测温度变化/变性剂浓度变化过程中蛋白内源紫外荧光(350 nm/330 nm比值)的改变,获得蛋白的热稳定性(Tm值)、化学稳定性(Cm值)等参数。相比传统的方法,无需添加染料,通量高,样品用量少,数据精度高。 多功能蛋白质稳定性分析仪PSA-16是一款无需加入荧光染料、高通量、低样品消耗量检测蛋白质稳定性的设备。该设备基于内源差示扫描荧光技术(intrinsic fluorescence DSF),通过检测温度变化/变形剂浓度变化过程中蛋白内源紫外荧光的改变,获得蛋白质的热稳定性(Tm值)、化学稳定性(Cm值)等参数。可应用于蛋白缓冲液条件筛选及优化、小分子与蛋白结合情况的定性测定、蛋白质修饰及改造后的稳定性测定、蛋白变/复性研究、不同批次间蛋白稳定性对比等多个方面。基于内源差示扫描荧光技术(intrinsic fluorescence DSF),在无需添加外源染料的条件下,对蛋白进行升温变性,通过内源荧光和散射光的变化与三级结构变化的关系,PSA-16可用于测定不同buffer中蛋白的Tm值变化,获得蛋白质正确折叠的最ZUI优buffer条件;测定不同detergent条件下膜蛋白Tm值,进行detergent筛选;测定不同添加剂对蛋白稳定性的影响;测定添加配体后Tm值变化进行配体结合筛选;测定蛋白中变性部分的比例,进行质量控制;测定蛋白Tm值与浓度的相关性,获得最ZUI优蛋白浓度进行后续结晶等实验;测定蛋白去折叠过程,进行蛋白复性条件筛选;测定蛋白folding enthalpy,研究蛋白的长期稳定性;测定不同批次和存储后的蛋白的稳定性,并进行相似性评分,对蛋白进行质量控制。多功能蛋白质稳定性分析仪PSA-16,无需对蛋白进行荧光标记,可以直接测定蛋白在不同缓冲液条件中的Tm值,进行缓冲液筛选和优化;同时还可以测定添加不同配体化合物对蛋白稳定性的影响,通过Tm值变化进行配体结合筛选。PSA-16满足我们目前对于蛋白质稳定性分析的迫切需求。多功能蛋白质稳定性分析仪PSA-16可用于评估蛋白(抗体或疫苗)热稳定性、化学稳定性、颗粒稳定性等特性,实现非标记条件下的高通量的抗体制剂筛选、分子结构相似性鉴定、物理稳定性、长期稳定性、质量控制、折叠和再折叠动力学研究等功能。★ 蛋白热稳定性分析★ 蛋白化学稳定性分析★ 蛋白等温稳定性分析★ 蛋白颗粒稳定性分析★ 免标记热迁移实验(dye-free TSA)★ 蛋白去折叠、再折叠、结构相似性分析★ 蛋白质量控制分析 多功能蛋白质稳定性分析仪PSA-16基于内源差示扫描荧光(ifDSF)技术,广泛应用于蛋白质稳定性研究、蛋白质类大分子药物(抗体)优化工程、蛋白质类疾病靶点的药物小分子筛选和结合力测定等领域,具有快速、准确、高通量等诸多优点。蛋白质中色氨酸/酪氨酸的荧光性质与它们所处的环境息息相关,因此可以通过检测蛋白内部色氨酸/酪氨酸在加热或者添加变性剂过程中的荧光变化,测定蛋白质的化学和热稳定性。PSA-16采用紫外双波长检测技术,可精准测定蛋白质去折叠过程中色氨酸和酪氨酸荧光的变化,获得蛋白的Tm值和Cm值等数据;测定时无需额外添加染料,不受缓冲液条件的限制且测试的蛋白质样品浓度范围非常广(10 µ g/ml - 250 mg/ml),因此可广泛用于去垢剂环境中的膜蛋白和高浓度抗体制剂的稳定性研究。此外,PSA-16具有非常高的数据采集速度,从而可提供超高分辨率的数据。同时PSA-16一次最多可同时测定16个样品,通量高;每个样品仅需要15 uL,样品用量少,非常适合进行高通量筛选。PSA-16操作简单,使用后无需清洗,几乎无维护成本。★ 非标记测试★ 10分钟内完成16个样品的分析★ 仅需10μL样品,浓度范围0.005mg/ml—200mg/ml★ 15-110℃温控范围,升温速率0.1-7℃/min★ 适用于任意种类的蛋白分子★ 无需清洗和维护★ 可增配机械手臂实现全自动工作 性能参数:★ 直接检测蛋白质内源紫外荧光,测定时无需额外添加染料,不限制蛋白缓冲液。★ 可同时测定16个样品。★ 样品管材质:高纯度石英管,8联排设计,可使用多通道移液器批量上样,亦可单管使用。★ 样品体积:15 μL/样品。★ 样品浓度范围:0.01 mg/mL–250 mg/mL。★ 温控范围:15-110℃可选。★ 升温速度范围:0.1-15℃/分钟可调。★ 温控精度:+ 0.2℃。★ 采样频率:1 HZ,1/60 HZ可选。★ 应用范围:热稳定性实验、化学稳定性实验、等温稳定性实验、温度循环实验、TSA实验。★ 软件具备比对功能,可通过热变性曲线对蛋白进行相似性评分。★ 测定参数:Tm、Ton、Cm、ΔG、Similarity。★ Tm测定精度:0.5% CV。★ 仪器使用时无需预热及预平衡,实验完成后无需清理,无后续维护费用。★ 一体机,可以通过触摸屏进行试验设置,实时采集数据和显示数据,生成详细的结果报告。应用领域:多功能蛋白质稳定性分析仪PSA-16应用涵盖植物、生物学、动物科学、动物医学、微生物学、工业发酵、环境科学、农业基础、蛋白质工程等多学科领域。蛋白质是最终决定功能的生物分子,其参与和影响着整个生命活动过程。现代分子生物学、环境科学、动医动科、农业基础等多种学科研究的很多方向都涉及蛋白质功能研究,以及其下游的各种生物物理、生物化学方法分析,提供稳定的蛋白质样品是所有蛋白质研究的先决条件。因此多功能蛋白质稳定性分析系统在各学科的研究中都有基础性意义。 1. 抗体或疫苗制剂、酶制剂的高通量筛选2. 抗体或疫苗、酶制剂的化学稳定性、长期稳定性评估、等温稳定性研究等3. 生物仿制药相似性研究(Biosimilar Evaluation)4. 抗体偶联药物(ADC)研究5. 多结构域去折叠特性研究6. 物理和化学条件强制降解研究7. 蛋白质变复性研究(复性能力、复性动力学等)8. 膜蛋白去垢剂筛选,膜蛋白结合配体筛选(Thermal Shift Assay)9. 基于靶标的高通量小分子药物筛选(Thermal Shift Assay)10. 蛋白纯化条件快速优化等
  • 安捷伦与AFG合作开发蛋白质定量分析方法
    6月25日,安捷伦科技公司和Anderson Forschung Group LLC (AFG)表示,将合作开发多肽定量分析方法,旨在加快蛋白质生物标志物的开发和验证速度。  在合作中,AFG将利用其稳定同位素标准和用抗肽抗体提取(SISCAPA)技术,与安捷伦的1200系列HPLC-芯片和6400系列三重串联四极杆质谱仪(MS)相结合。用这种组合开发测定复杂样品(如,血浆)酶解产物中多种多肽含量的方法。其成果将使双方受益,财务细节尚未披露。AFG首席执行官Leigh Anderson表示:候选生物标志物的SISCAPA分析可以大大受益于安捷伦平台的重现性和灵敏度,我们期待着对这一组合进行优化。  据了解,Agilent 1200系列HPLC-Chip/MS系统是一个在聚合物芯片上集成了液相色谱柱、连接毛细管和纳流喷雾喷射器的微流控平台,即使样品载入量很小,也可以提供无与伦比的色谱性能。信用卡大小的装置插入安捷伦的HPLC-Chip Cube中,与质谱连接。芯片载入、溶剂和样品输送、液流的高压切换,以及在质谱离子源中芯片的定位,全部实现了自动化。 Agilent 6400系列三重串联四极杆LC/MS系统可以在宽质量范围提供飞克级灵敏度。该仪器以其对复杂基质中痕量有机化合物的可靠定量而享有盛誉,包括,测定药物代谢物、食品中农药残留和地下水中的污染物等。SISCAPA方法是利用抗体包被的磁珠和一个旋转的磁珠捕集装置,捕获目标多肽,然后用纳流LC-MS/MS系统进行测定。目的是对样品酶解液中极少量多肽的量进行测定,创建一种对高级诊断有潜在用途的研究工具。  安捷伦科技有限公司是分析仪器系统的领导供应商,其产品正在化学、环保、食品、医药和生命科学领域中广泛使用。安捷伦具有世界最先进的化学分析仪器,丰富的法规适应性和专业技术经验,以及优良的支持服务系统,这些都能够帮助您的实验室超前应对分析的挑战。

蛋白质稳定性定量分析仪相关的方案

  • 研究蛋白质热稳定性的几种方法+蛋白质+稳定性
    蛋白质的热稳定性是指蛋白质多肽链在温度影响下的形变能力,主要体现在温度改变时多肽链独特的化学特性和空间构象的变化,变化越小热稳定性越高。蛋白质的热稳定性受到不同温度、pH值、离子强度等外界因素的影响,在生物技术、药物研发以及食品工业等领域,具有重要意义。蛋白质变性温度是生物学家们研究蛋白质的热稳定性的一个重要的概念,是指蛋白质在特定温度条件下受到热力作用时,其结构发生变化的温度点,一般温度较高时,蛋白质从稳定的三维结构变化成松散的无序结构。蛋白质的热稳定性一般使用热变性中点温度(meltingtemperature,Tm)来表示,即蛋白质解折叠50%时的温度。蛋白质的热变性过程与其空间构象的改变密切相关,Tm值能反映变温过程中蛋白质构象改变的趋势,是衡量蛋白质热稳定性的一个重要指标。蛋白质Tm值的测定在生物医药行业具有广泛的应用,如嗜热蛋白、工业酶等的改造与筛选,蛋白质药物与配体、制剂或辅料的相互作用,蛋白质药物的缓冲液稳定条件筛选等。
  • 利用LUM稳定性分析仪评估低温花生粕蛋白在饮料中的稳定性
    花生蛋白被公认为是继大豆蛋白之后,又一优质的食用蛋白资源。低温花生粕是花生冷榨提油后的副产物,蛋白含量达48%以上。与传统热榨工艺不同,冷榨工艺制备的花生饼粕中蛋白质变性程度小,产品后续应用空间更大。尤其是经过适度改性后的花生蛋白,其溶解性、持水性、乳化性及乳化稳定性等功能特性表现良好,具有非常优良的食品加工特性[。食品应用体系中,加强花生蛋白在饮料中的应用研究,一方面可以发挥花生蛋白独特风味、抗营养因子含量低等特点。另一方面可以增加饮料体系的蛋白质含量提高饮料附加值。但传统的花生蛋白饮料大多采用花生仁直接打浆、调配添加剂等工艺制成,生产成本较高,且饮品中脂肪含量高影响产品的营养价值和口感。顺应发展的需要与迫切性,已经出现一些以花生蛋白为原料,制备富含蛋白质的饮料的相关研究。但是数量和研究深度有限,且存在制备的花生蛋白加工特性不理想、饮料体系稳定性有待提高等问题。利用LUMiSizer稳定性分析仪,以压榨低温粕为原料制备的花生分离蛋白在饮料体系中应用的可行性。
  • 微波辅助蛋白质水解效果稳定性研究
    摘 要:目的:考察微波辅助蛋白质水解效果的稳定性。方法:以鱼粉和豆粕为研究对象,采用微波辅助蛋白质水解-柱后衍生-紫外检测法测定氨基酸,通过比较分析一定时期内鱼粉和豆粕样品氨基酸结果的变化,研究微波辅助蛋白质水解效果的稳定性。结果:在一定时期内,采用微波辅助蛋白质水解,进口鱼粉、豆粕样品氨基酸测定结果RSD值均小于4.0%。结论:微波辅助蛋白质水解效果的稳定性好,可替代传统蛋白质酸水解方法,并为保证氨基酸检测结果的准确性提供技术支持。关键词:氨基酸分析;微波辅助蛋白水解;稳定性

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  • 【原创大赛】蛋白质热稳定性的研究机理

    [align=center]蛋白质热稳定性的研究机理[/align][align=center]西安国联质量检测技术股份有限公司[/align][align=center]食品事业部:魏娜[/align] 疏水作用被认为是决定蛋白质结构的主要作用力。蛋白质的天然结构是由以下类型的共同作用力维持其结构的热稳定性(例如,H键,离子键和范德华力)。德国专家Dil回顾了支持这一理论的证据:(一)非极性溶剂使蛋白质变性 (二)疏水残基可以很典型的把核心部位分开,在其核心部位他们在很大程度上避免了与接触水 (三)在蛋白质核心部位的残基和疏水基团比任何其他一种残基具有更坚固的保守区和结构(核心部位疏水残基的取代物一般比任何一种代替物更具有破坏性)。(四)蛋白质展开涉及大量增加的热容量。给定的疏水作用的中心对在蛋白质折叠也有一定的影响,很容易以为疏水作用还是负责蛋白稳定性的主要动力。在过去20年里,序列、结构和诱变等信息的积累证实了疏水作用,事实上,更是蛋白质稳定性的主要动力。两个观察报告指出常温的和极端嗜热的微生物的同源体具有相同的最基本的稳定性,这种稳定性由保守的蛋白质核心提供:(1)疏水相互作用以及中心残基所影响的二级结构比特征区域表面更保守。(2)在有溶解能力的被暴露的区域发现了大量稳定的代替物(可以在常温及极端嗜热蛋白质结构的比较以及在蛋白质定向突变的实验中观察到)。常温以及嗜热蛋白质同源体的核心具有高度的相似性,这些性质表明常温蛋白质尽可能高效的与那些在核心外部的没有太多空间稳定性的蛋白质进行折叠。极端嗜热蛋白质稳定的相互作用经常在蛋白质的不保守区被发现。如下所示,如表面离子对减少了溶剂暴露疏水面,和与之稳定结合(即N和C末端以及氨基酸循环)的蛋白质表面似乎有助于极端嗜热蛋白质的热稳定性。 在近年来足够的实验证据(如序列,诱变,结构,和热力学)被积累,但没有一个单一的机理可以解释极端嗜热蛋白质的显著的稳定性。增加的热稳定性可以在数量很少的精确突变中找到,这样的突变常常不遵循任何一种固定的法则。[b] 氨基酸组成和内在倾向[/b]蛋白质的氨基酸组成长期以来被认为与其热稳定性有关。第一个数据分析对比了常温和极端嗜热蛋白质的氨基酸组成,发现趋向于Gly→Ala,Lys→Arg的替换,嗜温蛋白质的组成中含有大量Ala,主要是由于Ala最易于螺旋结构的形成。随着更多实验数据的积累(尤其是,全基因组序列的测序 ),通常的嗜热适应规则不能依据显著性差异来定义蛋白质中氨基酸的组成已经变得越来越明显了。通过对8个常温和7个极端嗜热微生物的基因组序列的对比得出常温和极端嗜热蛋白质的残基存在这种趋势的差异(如表4所示)。另外发现,极端嗜热蛋白质比常温蛋白质带有更多的带电残基(多3.24%),以及较少的极性未荷电残基(-4.98% 特别是谷氨酰胺,-2.21%)。嗜热蛋白质比常温蛋白质还含有更多的疏水残基和芳香残基。从基因组测序中获得的这些数据不能普遍化,在极端嗜热的微生物基因组中自身存在着很多的突变。敏捷气热菌实际上比在表4中列出的嗜温菌含有有更少的带电残基(23.64%),更少的大体积的疏水残基(27.29%),以及更少的芳香性残基(7.42%)。相反,敏捷气热菌含有较多的Ala,Gly,Pro,Ser,和Thr残基。因此,极端嗜热蛋白质的氨基酸组成可能经常和突变性有关,而不是与其适应高温的指标有关。蛋白质中氨基酸残基的分布与其相互作用比氨基酸残基的组成对蛋白质的热稳定性更相关。这两种同源蛋白酶解淀粉芽孢杆菌枯草杆菌蛋白酶BPN9和普通高温放线菌嗜热蛋白酶包含数量相同的带电残基,但嗜常温酶的嗜热蛋白酶包含比八个更多的离子对。有关的想法,蛋白质的稳定性取决于稳定的紧密包裹的疏水内核,个别残基的固有倾向是参与螺旋或链结构,这作为一个潜在的稳定机制被研究。比较嗜温和嗜热蛋白结构,Facchiano等人观察到嗜热蛋白质的螺旋结构通常比的嗜温蛋白质更稳定。他们检测到的唯一的趋势是在嗜热蛋白质的螺旋(二支链残基没有得到很好的耐受性螺旋线性残留有)中C[sub]β[/sub]分支残基的减少(Val,Ile,和Thr)。许多实例存在于未遵循这一趋势。该P.球菌和T. litoralisGDHs包含更多数量的Ile。如果将Leu和Ile残基进行比较,这两个残基具有最高的(和等同的)部分特定卷。在蛋白质中,Leu侧链最常发现两种旋转异构体的构象(180°和300°×1),但不是在一个与X1 =60°。在Ile侧链频繁采用四种不同的旋转异构体的构象,以及三个X1值被发现。随着这种构象的柔性,Ile可能能够更好地填补在蛋白质内核折叠时出现的空缺。Dil还指出,环境的影响(例如,盐桥的形成,芳烃相互作用,疏水表面的包埋,以及填充膜腔)可以作为重要内在的螺旋倾向。在许多情况下,二级结构在蛋白质结构不对应于所找到的二级结构预测的内在倾向,表明该固有倾向不足以解释蛋白质中α-螺旋的稳定性。Arg残基的几个特性表明,他们将比Lys残基更好地适应高温:该Argδ-胍基部分由于其高的pKa和共振稳定而降低的化学反应活性。δ-胍基部分比Lys氨基为带电的相互作用提供了更多的表面积。Arg参与多种非共价相互作用的能力。因为在Arg侧链比Lys少一个亚甲基,它具有开发较少不利触点的电位与溶剂。最后,因为它的pKa值(约12)是Lys的1倍以上(11.1),在温度升高的时候,精氨酸更容易保持离子对和净正电荷(因为温度的增加,pKa值下降)(252,354)。在嗜温菌的蛋白质池和在表中列出超嗜4(0.73+ - 0.37和0.87+ - 0.60,分别)平均精氨酸/赖氨酸的比率与大标准偏差相关。(其中超嗜热,精氨酸/赖氨酸的比率范围从Aquifex0.52超嗜热菌蛋白到2.19敏捷气热菌。)这些结果表明,如果增加精氨酸确实会变得稳定,这种机制是不能够普遍使用于极端嗜热菌中。[b] 二硫键 [/b]二硫键被认为主要是通过降低蛋白质裂解状态的熵维持蛋白质的稳定。当两个半胱氨酸键断裂时,二硫键的熵效应成比例地以对数方式增加残基的数量。 因为在高温下,半胱氨酸和二硫键的敏感性遭到破坏,,100℃被认为是蛋白质维持二硫键稳定性的上限。这一概念是基于这样一个事实,早期的研究描述蛋白质活性的研究机理,在那个时期仅形成了一种可利用的酶:常温酶。这些研究确定了所有蛋白质研究,研究包括的二硫键在100℃时β-消除有相同的速率。这个速率不依赖于蛋白质的结构并且在pH=8.0(半衰为1小时)比在pH =6.0(半衰期为12.4小时)时速度快。这些研究的限制是在100℃时所有蛋白质是在展开状态时进行研究的。在最近包括二硫键的蛋白质的描述中,在100℃时这些蛋白质具有最大的活性和稳定性,表明在100℃时二硫键维持了这些蛋白质的稳定性并且构象环境和溶剂可被决定因素保护,防止破坏二硫键。当描述大肠杆菌时,S.solfataricus 5’-甲硫腺苷磷酸化酶形成了不正确,不稳定的二硫键。这一观察间接反映了,二硫键在天然酶中表现出的稳定性。嗜火液丝氨酸蛋白酶被描述为包含8半胱氨酸(无存在于枯草杆菌蛋白酶BPN')。处理二硫苏糖醇从半衰期为90 小时 85℃,减少到少于2小时。在高温下二硫苏糖醇不稳定进一步表明这种酶的确含有二硫键并且它们是高度不稳定的。这种酶在半衰期为6小时 温度为105℃ pH=9.0时,要比它在蛋白质展开中pH=8.0 半衰期为1小时二硫键计算的长,表明这种酶的二硫键通过蛋白质中二硫键的无法靠近以保护二硫键不被破坏。因此,不是所有的二硫键对热稳定破坏具有相同的易感性。[align=center][b]疏水作用[/b][/align] 在极端嗜热蛋白质中,疏水作用是蛋白质热稳定性的一个机理。平均增加1.3千卡/摩尔(±0.5)的稳定性对于增加甲基埋在蛋白质折叠(取决于腔产生突变,这种突变中,大的脂族残基被替换为一个较小的脂族残基)。当突变产生了往往需要局部重排的不利的范德华力作用时,突变试图填充凹处往往是更不稳定的。疏水性相互作用在蛋白质结晶中的热稳定作用的,实验证据是可用于确认所述极端嗜热蛋白质中疏水作用的区域。存在于沃氏甲烷球菌和M.jannaschiladenylate激酶中的这种酶嵌合体的结构的稳定部分表明,更大和更具极端嗜热酶疏水酶核心(这是由于增加的脂肪族残基含量和脂族侧链体积)可能是负责分枝詹氏甲烷球菌的腺苷酸激酶的热稳定性。该从嗜热栖热菌3-异丙基苹果酸脱氢酶热包含亚基间的疏水相互作用的没有在大肠杆菌中酶存在。嗜三异丙基脱氢酶Leu246Glu/ Val249Met和大肠杆菌Glu256Leu/Met259Val突变衍生物构建了动摇并稳定在栖热和大肠杆菌酶,分别的突变体和野生型的聚丙烯酰胺凝胶电泳在尿素的存在下酶表明,疏水性相互作用使二聚体解离更有抵抗力。[b]氢键[/b]由于氢键的作用使得核糖核酸酶T1趋于稳定。核糖核酸酶T1平均长度86 H键。他们的核糖核酸酶T1稳定(约贡献110千卡/摩尔,如通过诱变和展开实验确定),H键贡献(307)1.3千卡/摩尔能力。因为识别H键的高度依赖于距离截止和因为一批超嗜热蛋白质结构没有被细化到足够高的分辨率,通过结构研究的热稳定性H键的作用分析没有提供明确的答案。一项研究由唐纳等人完成的。H键使得蛋白质的热力学稳定:(i)关联的去溶剂化罚与掩埋诸如H键小于去溶剂化罚掩埋离子对的(即包括两个电荷的残基),和(ii)一个充电中立H键的焓奖励是大于由于中性中性H键的电荷 - 偶极相互作用。chargedneutral之间的这种相关性H键和GAPDH稳定性表明的作用在稳定蛋白质电荷的残基可以不限于形成离子对。带电中性h的人数增加债券还发现了T. maritima的铁氧还蛋白(表5)。这些H键或者稳定转弯或锚的结构变为另一个。[b]离子对[/b]因为离子对通常存在于在少量蛋白质和因为它们不是高度保守的,它们是不驱动在蛋白质折叠的力。去溶剂化作用8筒体螺旋A8和A1)还通过测试SDM。在85.5°C,突变Arg241Ala增加酶变性率几乎3.酶的EA的一个因素展开在85℃下降3.2千焦耳/摩尔,这表明Arg241-Glu73对参与的动力学稳定这种酶。在P.球菌确定的离子对网络,P. kodakaraensis,和T. litoralis的GDH的结构进行了研究由SDM。这三种酶是83至87%相同,但它们的thermostabilities减小的方向P.球菌GDH。P. kodakaraensis GDH。T. litoralis的GDH。它们都含有相同的18离子对网络在它们的六聚体界面。突变Glu158Gln,其中去掉2离子对的该网络的中心,显著不稳定P. kodakaraensisGDH的。一个离子,包括六对网络被控残留物只存在于P.球菌GDH。相同的离子对网络在P.kodakaraensis GDH和T. litoralis的创建GDH由SDM。这两种酶是由新稳定的介绍离子对网络(280,348)。这些研究证实离子对网络在巴斯德球菌,P的作用kodakaraensis和T. litoralis的GDH thermostabilities。 Lebbink等。 (203)介绍了16个残基的离子对网络的在T. maritima的GDH亚基界面来创建一个界面类似于在体育球菌的GDH在18离子对网络。该三不稳定的突变组合产生了三重突变酶(Ser128Arg-Thr158Glu-Asn117Arg),这是稍微更稳定和嗜热比野生型酶。这个结果示出合作的高级别存在这种离子对网络的不同成员之间。该结果还支持18个残基的离子对的作用网络中的P.球菌GDH稳定。在早先的研究中,Tomschy等。(337)已拆除2位于两个α-螺旋在T. maritima的表面上的离子对GAPDH。由于这些突变不影响所述酶稳定性,作者得出结论认为,表面离子对不能被认为是热适应的总体战略。选择在本研究Bothion对分别螺旋内的离子对。这些2双可能已经位于蛋白质领域的人过约束,而不是蛋白质的地区之一最容易展开。与此相反,在其它实施例上述说明的热稳定效果非本地离子对和离子对网络,连接不相邻的残基(和二级结构)的序列中。离子配对中的作用的附加的,间接的证据热稳定性是来自基因组测序。与嗜热蛋白质带电残基相比,常温蛋白,主要是在不带电荷的极性为代价残留物。[b]脯氨酸及脯氨酸展开过程中的熵的减少[/b]Matthews等人提出已知的蛋白质三维结构可以通过展开时他们的熵的减少维持稳定。在展开状态下,甘氨酸是带有最高构象熵的残基,没有C[sub]β[/sub]。脯氨酸,可以采用只有几个配置并限制允许前述残余物的配置(313),具有最低的构象熵。因此,该突变Gly3Xaa或Xaa3Pro应该减少熵及的蛋白质的展开状态稳定的蛋白质,只要作为改造的残留不引入不利菌株中的蛋白质的结构。这一技术已被用来工程师酶是热力学更稳定。例如,杆状stearothermophilus中性蛋白酶失活通过自溶,其中针对特定柔性表面环(残基63到69)(93)。脯氨酸在循环中引入使其不易展开。只有定位65至69是适合脯氨酸替换。在其他位置,一脯氨酸将消除非共价相互作用,产生构象株,或有不恰当的扭转角度。许多嗜热和嗜热蛋白也利用这个稳定机构(255)。Pro177和Pro316在两个N个末端螺旋和Pro24中的B-转弯位置2被证明是稳定(215)。(脯氨酸分别在相应的引入地点在拜氏梭菌的酶。)至少有其中仅发生在嗜热芽孢杆菌脯氨酸22位置寡聚1,6-葡糖苷酶。其中大多数脯氨酸是在位置2的溶剂暴露B-圈(七个脯氨酸的),在循环内的线圈(9人),或在N帽一个螺旋在桶结构(其中四个)。脯氨酸是在嗜温的相应位置引入蜡状芽孢杆菌寡-1,6-葡糖苷酶。热稳定性一般随着引入脯氨酸的数量。稳定性增长最为显著时添加的脯氨酸位置两个B-转弯或在一个螺旋瓶盖ñ 。少稳定的突变可能引入不利范德范德华相互作用或删除稳定H键(361)。在那不勒斯栖热袍木糖异构酶包含两个脯氨酸在参与亚基间的相互作用是一个循环。这些脯氨酸缺席在不太稳定的Thermoanaerobacteriumthermosulfurigenes酶。动力学稳定性两个T的性能thermosulfurigenes木糖异构酶突变体Gln58Pro和Ala62Pro说明如何重要突变位置为SDM(313)的结果。两Gln58和Ala62有骨干二面角这使得为脯氨酸,既不参与非共价稳定相互作用,以及Asp57和Lys61不得不二面角那允许前面的脯氨酸残留。的构象在Gln58侧链非常接近的脯氨酸吡咯烷酮环,并且因此没有构象菌株由临介绍 突变Gln58Pro稳定的蛋白质主要是通过降低展开的熵。相反,突变Ala62Pro之间创建一个卷的干扰脯氨酸吡咯烷酮环(镉原子)和Ly61侧链(CB原子),这可能导致不稳定的构象变化。突变Ala62Pro降低了酶的T1 /2为85℃下的10倍。[b] 构象应变作用力的作用[/b]左手螺旋构象的残基(Φ=40至60°,Ψ=20〜 80°)有着末端构象稳定性除非它们通过分子内的非共价相互作用来稳定。(左旋螺旋构象非甘氨酸残基被认为比右旋结构少0.52.0千卡/摩尔而不太稳定)。在左手螺旋构象的残基中,β- 碳和羰基氧的紧密相连在蛋白质结构中产生了一个局部的构象张力。左手螺旋构象的两个残基,谷氨酸15在枯草芽胞杆菌的DNA结合蛋白HU和赖氨酸95大肠杆菌核糖核酸酶H1,在旋转区域,是通过在嗜热酶的相应部分甘氨酸残基取代。突变体谷氨酸15甘氨酸和赖氨酸95甘氨酸分别在枯草杆菌DNA结合蛋白HU和大肠杆菌RNA酶H1,消除在左旋螺旋构象中由残基产生的构象张力,以及两种蛋白质的热力学稳定性的显著增加。在这两个例子中,由于构象张力的释放增加的蛋白质的稳定,通过它的稳定性影响二级结构的相互作用被加强。大肠杆菌核糖核酸酶H1包含两个额外左旋螺旋构象的非甘氨酸残基。残基色氨酸90和天冬酰胺100,而相比之下,赖氨酸95,酶内部的点,并且它们弥补了极性或疏水的相互作用。左旋螺旋构象中,常温的铁氧还蛋白含有三个残基在他们簇结合区域。在海栖热袍菌和T. litoralis的同系物中,簇结合区域的空间位阻通过具有三个甘氨酸残基的左旋螺旋构象的残基取代物被释放。这三个甘氨酸残基都涉及了拥有硫原子簇的H键。其他类型的构象张力释放作为稳定机制已经被提及。例如在α-螺旋中,具有低螺旋倾向的残基可以通过具有高螺旋倾向的残基被替换。这样的替代物通常发生在残基的侧链没有得到很好的安置的α-螺旋时。位于α-螺旋的一个特殊取代物是C末端(或C帽)。因为它缺乏了的支链以允许它采用没有张力的左手螺旋构象,并且由于主链羰基氧可以与溶剂分子形成氢键,所以在C帽甘氨酸是最有利的残基。该P.furiosus柠檬酸合成酶至少包含了7个具有C-帽的甘氨酸螺旋。他们的对稳定性的影响仍是未知的。虽然,在一般情况下,这些构象张力释放的类型不被期望提供显著的稳定性,并且它们在极端嗜热蛋白结构中没有扮演细致的角色。他们还与其他稳定机制相竞争(如倾向疏水相互作用,H键,或离子对)。[b] 螺旋偶极作用力对结构稳定的作用[/b]螺旋偶极可以通过邻近N-末端带负电荷的残基,以及邻近C-末端带正电荷的残基维持稳定。在S.solfataricus吲哚-3-甘油磷酸合成酶中,螺旋的偶极。也被稳定在杆状stearothermophilus和海栖热袍菌PGKs中:常温酶只有9 N帽和12 C帽(猪PGK)和10 N帽9 C帽(酵母PGK)通过相反的电荷被稳定。嗜热脂肪芽孢PGK数量稳定的N和C帽提高到16 N帽和13 C和在海栖热袍菌的PGK的提高到17 N帽和14C帽。尼克尔森等人展示N帽可通过约0.8千卡/摩尔增加酶的△Gstab。虽然,在一般情况下,N和C帽子和其他稳定的以及不稳定机制相竞争(例如,倾向H键或离子对)。[b]金属键对稳定性的影响[/b]长久以来,金属键以稳定和激活酶而众所周知。木糖异构酶连接两个金属离子(选自Co[sup]2+[/sup],Mg[sup]2+[/sup]和Mn[sup]2[/sup][sup]+[/sup])。一种阳离子是直接参与催化 第二种主要是结构。两种金属结合位点具有不同的特异性,并且一种阳离子与另一种阳离子的替换经常显著的改变酶的活性,底物特异性,热稳定性。存在和不存在于地衣芽孢杆菌木糖异构酶的金属键其酶稳定性的研究稳定结果表明的演变动力学稳定性遵循的热力学稳定性以及这两种类型的稳定性是金属呈现出的固有的功能。这些观察表明,主要稳定力与呈现在全酶中的金属相连。 对于金属在极端嗜热蛋白质中的稳定性起的作用的间接证据是在酶中除去金属遇到困难。α-淀粉酶特殊结合Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup]。α-淀粉酶催化位点位于两个领域的分裂结构之间(具有8管和一个回路)。属于这两个领域的配体相调整,Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup]配体对酶的催化活性和热稳定性是必不可少。巴斯德球菌胞外α-淀粉酶最初描述为Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup]无关的酶,因为室温下EDTA处理对其活性没有任何影响。进一步鉴定表明,这种酶包含至少两个Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup]阳离子,这种阳离子在70℃以下不能被EDTA去除。在90℃下处理EDTA30分钟除去大约60%至70%的结合的Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup]。Thermococcus profundusα-淀粉酶做出类似的观察结果(约80%相同的P.furiosua,胞外α-淀粉酶)。这种酶被激活并通过Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup]使其稳定,但室温处理EDTA对活性没有任何影响。 一些嗜热和极端嗜热酶曾被描述为含有金属原子,这些原子不出现在它们同源的常温酶中。来自于Sulfolobus sp.de 铁氧化还原蛋白张力7包含一个额外的40残基的N-末端延伸,这个延伸通过Zn结合位点被连接到核心蛋白上。锌原子通过N-末端结构域的三个组氨酸残基与核心结构域的1个天冬氨酸残基相连接。这种结构(N-末端延伸加锌结合位点)是不存在于真细菌同源微生物中的但是被保存在所有其他的嗜热嗜酸菌中 。逐行N末端缺失和两三个定向突变的配体表明,N端延伸和这两个锌原子对热力学稳定性很重要。虽然,它们的存在或缺失没有任何影响,但是影响着铁氧还蛋白功能。锌原子是负责9°C增加Tm值。它是如此的紧密结合在蛋白质内,在没有移除这两个FeS时锌原子不能被移除。普通嗜热放线菌枯草杆菌蛋白酶型丝氨酸蛋白酶的嗜热蛋白酶包含了三个Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup]结合位点 它们中的一个不出现在其常温酶同系物中(331)。嗜热酶的嗜热同系物,芽孢杆菌AK1蛋白酶比嗜热酶包含更多的Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup],并且它比在嗜热酶中出现的Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup]具有更显著的动力学稳定(半衰期为15小时80℃下与19分钟为嗜热酶)。因为Ca[sup]2[/sup][sup]+[/sup]优先与羧酸盐以及其他含氧等配体结合(它是最有可能被位于蛋白质表面上的金属配位体),这种金属比其他金属在蛋白质稳定性可能扮演更显著的稳定作用。[b] 蛋白质翻译后的修饰作用[/b] 蛋白质糖基化广泛存在于真核生物的酶上,以及一些细菌的胞外酶被糖基化。只有几个例子是公知的被糖基化的极端嗜热蛋白,并且它们的碳水化合物部分还没有被广泛表征。虽然,大多数的酶被糖基化(细菌,古细菌和真核微生物),但在细菌中仍然保留了其催化作用和稳定性。一些研究使用天然糖基化的真核生物蛋白质表明,糖基化可能在不影响蛋白质折叠的方式或它们的构象下造成显著地热稳定作用。较高倾向去糖基化的酶在热失活下聚集,表明糖基化也可以防止部分折叠或来自于聚合蛋白质的展开。牛科胰核糖核酸酶A和核糖核酸酶B区别仅在于连接核糖核酸酶B的Asn34部分的碳水化合物不同。这碳水化合物解释说明了核糖核酸酶B更高的动力学以及热力学稳定性。先进的碳水化合物部分的假说表明,稳定性的不同是由于在第一个糖单元连接到Asn34。 糖基化对热稳定性的影响两个杆菌β-葡聚糖酶在大肠杆菌和酿酒酵母的表达。这两个之一酶在70℃时,通过糖基化有强烈的动力学稳定性,其最佳动力学稳定活性温度更高。对热稳定水平比对糖基化的程度更依赖于碳水化合物部分在蛋白质中的位置。虽然在自然界中糖基化可能不是大众的热稳定方法,上述被引用的几个例子表明,对于酶的热稳定或是溶解,糖基化可能代表了一种替代方法。 翻译后赖氨酸甲基化(形成于 N-ε-单甲基赖氨酸)已经描述为许多硫化的蛋白。天然的小的来自的 S.嗜酸热的DNA结合蛋白Sac7d(单甲基化赖氨酸 Lys5和Lys7)在100℃下发生可逆地变性(pH为7.0)。该重组Sac7d在92.7℃下变性。天然和重组的Sac7d之间的Tm 7°C的区别已被归因于赖氨酸的甲基化,赖氨酸的甲基化不存在于重组蛋白之中。由于Sso7d的稳定性(在S.Sulfolobus中是Sac7d的同系物)是不依赖于甲基化的,赖氨酸的甲基化在Sulfolobales是否是一般的热稳定机制。[b]盐离子的稳定性[/b]无机盐稳定蛋白有两种方式:(ⅰ)通过特定的影响,其中,金属离子于一个构象方式的蛋白质相互作用(参见“金属键”),(ii)通过一般盐的影响,主要影响水活性。 Thauer以及他的同事研究了盐对热稳定性的影响以及5种如甲烷噬热菌产甲烷的酶的活性(36,37,181,224,225)。然而这5种酶通过盐被激活以及机械的被稳定,盐影响的程度是酶的依赖性。 K[sup]+[/sup]和NH[sup]4[/sup][sup]+[/sup]通常比其他阳离子更有效地稳定酶。所有的阴离子,SO4[sup]2[/sup][sup]-[/sup]和HPO4[sup]2[/sup][sup]-[/sup]有最强的激活效应。酶盐的要求并不总是由细胞内盐浓度满足。分枝如甲烷噬热菌细胞内的盐浓度(大于1M钾加1M的环状2,3-二磷酸甘油酸)似乎对MkCH活性有利(最大浓度为1.5M盐)在其稳定(最佳浓度低于0.1M盐)。盐对来自于如甲烷噬热菌,M.thermoautotrophicum, Archaeoglobus fulgidus以及Methanosarcinabarkeri的CHOtetrahydrormethanopterin(H4MPT)甲酰基转移酶的影响进行比较。通过盐在甲酰基转移酶活性的不同是与在不同的生物体细胞内cDPG浓度直接相关。通过盐按照MkFT的活性分析了MkFT的结构。两种功能被提出相关的性质:(一)在疏水性表面MkFT呈现出下降的趋势,以及亚基间的界面在很大程度上是疏水的 和(ii)四聚体表面呈现与24个基本过量的负电荷残基(48个残基)。酸性残基可以形成较强的氢键和多H键的水分子,确保这些残基与无机阳离子或水竞争。所有的残基中,谷氨酸具有结合水分子的最高容量。48个表面带负电荷的,33个是谷氨酸和15是天冬氨酸。高易溶的盐浓度被认为由于在负电荷残基表面增加的无机阳离子增加了表面离子作用,并且间由于盐析的影响提高了亚基疏水相互作用效果。MkFT寡聚物构象显示出了需要比磷酸钾更高的NaCl浓度(更强易溶的盐),表明在MkFT热稳定中盐析的影响起主导作用。这种蛋白质可能有演变为最佳地稳定性表现在高的胞内盐浓度中。 当在98℃时,如甲烷噬热菌细胞中含有约的1M cDPG。cDPG中的钾盐,2,3-DPG以及磷酸盐在激活如甲烷嗜热酶环化酶中同样有效。然而,在同等离子浓度cDPG比在稳定的MkFT中更有效。在如甲烷噬热菌中,cDPG浓度对MkCH和MkFT的活性以及稳定性是最佳的。合成CDPG需要4 分子ATP。在这个合成的最后反应是唯一一个能够放出足够的能量来驱使合成cDPG而非其前体2,3-DPG。此外,在pH=7.0,cDPG是三阴离子,而2,3-DPG是五阴离子 因此cDPG比2,3-DPG在离子强度方面有更小的影响。[color=#ff0000] [/color]M. fervidus[color=#ff0000] [/color]磷酸甘油醛脱氢酶(GAPDH)本质上动力学稳定仅达到75℃。通过盐来研究这种酶的热稳定性表明,相对于盐的效果—K[sub] 3[/sub] PO[sub] 4[/sub]Na[sub]3[/sub]PO[sub]4[/sub][sub] [/sub]K[sub]2[/sub]SO[sub]4[/sub]Na[sub]2[/sub]SO[sub]4[/sub]KCLNaCL—都与他们保持一致各自的能力以减少酶在水溶液中的溶解度。它们的盐析影响了他们活性的分布。 M. fervidus GAPDH可能由cDPG被稳定在体内,它以约为0.2〜 0.3M出现在生物体中。有趣的是,其他的M.fervidus酶是唯一依赖于低于生物体的最佳生长温度的以维持稳定,这表明在该生物体中通过盐的稳定性是共同的机制。 [b]压力的影响[/b] 因为许多高温环境同样也是高压环境并且因为微生物无法逃避压力和温度,所有的大分子细胞成分必须能适应高的压力。因此,并不奇怪的是找到极端嗜生物体也是嗜压微生物(如嗜热barophilus),并发现通过高压使这种酶被稳定以及被激活(例如,M。詹氏甲烷球菌的蛋白酶和氢化酶)。通过压力这种稳定性背后的理论说明压力有利于体积最小的结构。蛋白质主要通过疏水被稳定因此,预计在高呀下被稳定,而通过离子相互作用被稳定的蛋白质应该是不稳定的。例如,P.furiosus 红素氧还蛋白主要是由静电相互作用稳定。这种酶在高压力不稳定。由于许多化学反应在高温高压进行的,在高压下酶的稳定性可能很大程度上对生物催化作用有利。

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