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[color=#444444]有没有哪位大侠做过叔亮氨酸的液相检测,文献里面查到1.用手性色谱柱,以2mM硫酸铜、5%异丙醇做流动相,流速1mL/min,254nm检测;2.同样是手性柱,用硫酸铜做流动相,检测波长为220nm。3.用C18柱,以0.25%磷酸二氢铵:甲醇=100: 5,检测波长205nm。4.另外有用OPA衍生后再检测的,检测波长340nm。由于目前没有标品,不知道叔亮氨酸的最大吸收波长在什么位置,叔亮氨酸上没有共轭结构,254nm检测是不是不靠谱啊?求有相关经验的大大指条明路[/color][img=,absmiddle]http://muchongimg.xmcimg.com/data/emuch_bbs_images/smilies/wink.gif[/img][img=,absmiddle]http://muchongimg.xmcimg.com/data/emuch_bbs_images/smilies/wink.gif[/img][color=#444444]另外听说手性柱金贵的很,求指教平时使用的注意点[/color][img=,absmiddle]http://muchongimg.xmcimg.com/data/emuch_bbs_images/smilies/biggrin.gif[/img]
[color=#444444]用OPA柱前衍生反向高效液相色谱测定L-叔亮氨酸的色谱图中出现了两个面积差不多的峰是什么原因?叔亮氨酸是手性氨基酸,流动相A用的是20mmol/ L 乙酸钠缓冲液,用1 %稀乙酸调p H 至71 2 流动相B ∶乙腈和甲醇混合液(1 ∶1),洗脱程序是等度洗脱,A:B是3:2. 求解释!!![/color]
我的产物是L-叔亮氨酸,但高效用的标品是其盐酸盐,请问会有什么影响?[em0808]