10min病毒DNA/RNA提取试剂盒

10min病毒DNA/RNA提取试剂盒

商品属性：

 操作方法：

（1）在 1.5mL 离心管（自备）中加入 200μL 病毒液 （粪便提取液、血清、血浆等），加入 50μL Virus DNA/RNA LB1和 20μL 蛋白酶 K，漩涡混合均匀，室温消化 5min。
（2）消化完毕后，向上述样本中加入 700μL Virus DNA/RNABB2，漩涡混合 1min。
（3）将上述混合液全部倒入到吸附柱中，13000rpm 离心1min。
（5）倒掉废液。向吸附柱中加入 500μL Washing Buffer，13000rpm 离心 15s。重复此步骤。
（6）将吸附柱重新放回离心机，13000rpm 空离心 1min，将残留的乙醇彻底甩干。
（7）将吸附柱芯放入到 1.5mLRnase Free 收集管中，向吸附柱芯中加入 30~80μLNucleaseFree，13,000rpm 离心1min，洗脱液即为 DNA/RNA 产物，冷冻保存。

产品介绍：

该取试剂盒采用独特的裂解液，可快速可靠的从粪便、淋巴液、血清、血浆样本中纯化出高纯度的病毒 DNA/RNA。应用本试剂盒提取的 DNA/RNA 可直接用于反转录、One-Step RT-PCR、文库构建等多种分子生物学实验。

注意事项：

（1） 首本试剂盒中的 Washing Buffer 中已经加乙醇，无需单独添加。
（2）Virus DNA/RNA LB1，储存时可能会有白色结晶沉淀，放置于 56℃水浴锅溶解后，不影响使用效果。
（3）蛋白酶 K（20 mg/ml）长期保存请储存于-20℃，短期室温保存（6 个月），其它组分储存于室温。
（4）该试剂盒的保质期为 2 年。

pcr相关试剂实验结果分析：

PCR实验结果的分析涉及多个方面，‌包括实验操作、‌试剂质量、‌实验条件等，‌这些因素都会影响PCR实验的成功率和结果的准确性。‌以下是对PCR实验结果分析的一些关键点：‌

循环次数过多：‌增加模板量减少循环次数，‌缩短退火时间及延伸时间，‌或改用两种温度的PCR循环，‌可以有效避免循环次数过多导致的问题。‌

退火温度过低：‌退火温度的适当调整对于PCR反应的成功至关重要，‌过低的退火温度可能导致非特异性扩增，‌影响结果的准确性1。‌

电泳体系问题：‌包括凝胶中缓冲液和电泳缓冲液浓度相差太大、‌凝胶没有凝固好、‌琼脂糖质量差等问题，‌这些都会影响DNA片段的分离效果。‌

试剂盒问题：‌运输储存不当可能引起试剂盒失效，‌试剂盒本身质量问题如引物选择、‌循环参数设置不当也可能导致实验失败1。‌

降解的陈旧模板：‌使用降解的陈旧模板进行扩增容易产生涂布，‌影响结果的解读1。‌

PCR假阴性结果：‌可能由引物长度不够、‌试剂浓度不标准、‌靶序列突变或缺失、‌循环参数设置错误、‌标本中有Taq酶抑制剂、‌PCR产物检测系统灵敏度不够等因素引起。‌

为了获得准确的PCR实验结果，‌需要注意以下几点：‌

确保PCR反应体系中各种试剂的配比和操作步骤的精准度。‌

在PCR反应过程中需要对PCR产物进行实时监测，‌以便及时对反应条件进行调整。‌

防止样本的污染和交叉感染，‌以免影响PCR反应的准确性和可靠性。‌

通过上述分析，‌可以更好地理解和控制PCR实验中的关键因素，‌从而提高实验结果的准确性和可靠性。‌

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