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数字PCR和高分辨率熔解法在肿瘤样本中发现微量突变体的应用

2010-12-17 09:28

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摘要: Vogelstein和Kinzler(美国国家科学院院刊,1999年)第一次描述了Digital PCR(dPCR)的概念,一种在微量细胞群中(如原发性肿瘤组织)鉴定突变的方法。通过稀释样品DNA到一个单个分子水平,它可以把PCR自然模拟指数转化为数字信号。当PCR成功的扩增出这些单个分子,产物可以通过对观察到的预期的体细胞纯合突变峰进行测序分析,而不是典型测序反应中的被遮盖在背景杂峰中的少量低峰。通过扩增足够多的单个分子的扩增产物, 基于观察到的突变体与全部的成功扩增产物的比,微量突变体可以被鉴定出。 方法: 我们采用一种加入HRM使用的改良dPCR方法,通过特殊的HRM曲线图在原发性肿瘤样本中发现低含量的突变部分。 数字PCR要求以单个DNA分子作为扩增模板,从而使末端检测变为数字读出而不是模拟的DNA混合物。为了应用HRM,需要获得更多的扩增产物,来得到更加可靠的HRM曲线图组,因此我们选择了五不同的稀释浓度。 这些稀释样本是基于后续的灵敏度接近于20%的测序手段去检测微量突变体. HRM表现出高敏感性,下至2-5%的突变体都可被检出。因此,一个单一突变基因的复制足以在溶解曲线图中发现他们的差异.

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低水平突变的检测促使了许多新方法的发展。我们结合现有的三个技术:数字PCR,非标记探针法和MAAB(突变等位基因的偏向性扩增)(见图1)。数字PCR(Vogelstein and Kinzler,1999)需要许多重复的样本使模板稀释至约1拷贝/反应。将原始的数字PCR进行一些改进后可以进行高分辨溶解曲线分析(HRM),要求模板稀释为5个拷贝/反应 (McKinney, 2007)。这表明,如果存在突变的等位基因,一个反应中至少包括20%的等位基因并且可以检测到异源双链的存在。通常数字PCR检测的灵敏度约为2%。并且灵敏度是可以增加的,这主要取决于重复检测的数量。非标记探针法在PCR反应中加入3’端封闭的非标记寡核苷酸(Zhou,2005)。在使用HRM仪器时除了进行扫描之外,非标记探针增加了基因分型的功能(见图2)。非标记探针的灵敏度大约在5%(Wall,2007)。MAAB利用非标记探针增加了稳定性,探针与野生型等位基因完全匹配,和突变的等位基因不完全匹配,使突变的等位基因得到优势扩增。MAAB的灵敏度可以低于1%(McKinney,2009)。本实验中,我们结合这三种方法来增加HRM的灵敏性和有效性。 如需要全文请下载或者登录北京思博全公司网站获取http://www.spectron.com.cn

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