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COLD-PCR和高分辨率溶解结合使用,高效的筛查和鉴定癌症基因低水平的未知突变

2010-12-16 10:13

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癌症中体细胞分子层面的突变,常常需要在大量野生型DNA中辨识低浓度的DNA突变。但是,突变检测方法的选择率和灵敏度常常限制了鉴定低浓度突变的可靠性。最近开发的COLD-PCR(低变性温度下的复合扩增,李等人。2008)解决了低含量基因突变检测的一些局限性,在PCR扩增过程中利用关键变性温度丰富含有突变的扩增子,不论突变位于序列的什么地方。COLD-PCR的一个主要属性是富集突变体以便于在PCR后的直接测序。然而碱基测序仍然是昂贵的选择,从而通过高通量扫描序列预检是有吸引力的办法。高分辨率融解(HRM)是一种可用于预筛查测序之前未知突变的技术,但不能确定具体的检测基因突变的身份。因此,为了富集、快速筛查和鉴定低浓度的未知突变,我们把HRM突变扫描和COLD-PCR相结合,随后进行已知突变的直接测序鉴定。

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低水平突变的检测促使了许多新方法的发展。我们结合现有的三个技术:数字PCR,非标记探针法和MAAB(突变等位基因的偏向性扩增)(见图1)。数字PCR(Vogelstein and Kinzler,1999)需要许多重复的样本使模板稀释至约1拷贝/反应。将原始的数字PCR进行一些改进后可以进行高分辨溶解曲线分析(HRM),要求模板稀释为5个拷贝/反应 (McKinney, 2007)。这表明,如果存在突变的等位基因,一个反应中至少包括20%的等位基因并且可以检测到异源双链的存在。通常数字PCR检测的灵敏度约为2%。并且灵敏度是可以增加的,这主要取决于重复检测的数量。非标记探针法在PCR反应中加入3’端封闭的非标记寡核苷酸(Zhou,2005)。在使用HRM仪器时除了进行扫描之外,非标记探针增加了基因分型的功能(见图2)。非标记探针的灵敏度大约在5%(Wall,2007)。MAAB利用非标记探针增加了稳定性,探针与野生型等位基因完全匹配,和突变的等位基因不完全匹配,使突变的等位基因得到优势扩增。MAAB的灵敏度可以低于1%(McKinney,2009)。本实验中,我们结合这三种方法来增加HRM的灵敏性和有效性。 如需要全文请下载或者登录北京思博全公司网站获取http://www.spectron.com.cn

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