脉冲调制叶绿素荧光仪

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脉冲调制叶绿素荧光仪相关的厂商

  • 浙江赫迈仪器技术有限公司 是一家经营实验室光谱、色谱、生物、药检、农林业等专用分析仪器的贸易商。   公司经营的实验室仪器有:在生命科学领域公司提供离心机、超低温冰箱、细胞破碎仪、二氧化碳培养箱、酶标仪、培养箱、基因扩增仪、化学发光成像系统等产品;在食品安全领域公司提供生物安全柜、高压灭菌锅、匀浆器、色差仪、旋光仪、折光仪、菌落计数器等产品;在分析领域公司提高效液相色谱仪、紫外分光光度计、原子荧光光谱仪,原子吸收光谱仪、X-射线衍射仪、红外光谱仪等产品;在农林业方面公司提供光合/荧光测量系统、叶绿素含量测定仪、土壤水分测定仪等产品,在通用仪器领域公司提供烘箱、水浴、移液器、蠕动泵、真空泵、纯水器、电子天平、酸度计、旋转蒸发仪等各类实验室通用仪器和设备;   另外,公司拥有一支高级顾问团队,进行现代化实验室工程设计,建立实验室国际标准管理体系,实验室信息化管理系统、与高等院校合作进行人员培训、技能教育,合作进行仪器设备研究开发、帮助机关团体、企事业单位建立国际标准化管理体系、上门指导服务等等。
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  • 山东塑邦荧光科技有限公司自1998年创始至今,只专注于荧光增白剂及其中间体的研发、生产和销售。此产品被广泛用于塑料、洗化、油墨油漆、水性涂料、鞋材、印染、纺织、建材等领域。山东塑邦产品科技含量高、生产设备先进、技术力量雄厚、检测手段齐全,并同国内知名大学:华东理工、山东大学、大连理工等建立了长期科研协作关系。并且有自营进出口权,可出口创汇。公司产品销售到全球50多个国家和地区,与数十家国际著名化工企业建立了长期稳定的供求关系。山东塑邦专注打造全球专用化学品领域的“领军”企业;坚持环保可持续发展;坚持科技创新发展;持续提升社会责任。山东塑邦全体员工欢迎业界人士共同发展,欢迎业界精英加盟和协作,为社会做出应有的贡献和努力!山东塑邦荧光科技有限公司是专业生产:塑料荧光增白剂OB-1,PVC塑料荧光增白剂、塑料荧光增白剂OB,扣板荧光增白剂、化纤荧光增白剂、塑编荧光增白剂,鞋材荧光增白剂、吹膜荧光增白剂、印染荧光增白剂、造纸荧光增白剂,洗涤荧光增白剂,水性油墨油漆荧光增白剂,涂料荧光增白剂的生产厂家
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  • 400-860-5168转1895
    北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年,为中关村高新技术企业,致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务,特别是在光谱成像技术(高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等)、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面,与国际领先企业PSI、Specim、Sable等合作,致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域先进仪器技术的引进推广和技术研发集成,为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80%以上具备硕士或硕士以上学位,并与中国科学院研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了长期的技术合作交流关系。 公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoTech实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心(与陕西师范大学合作建立)、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem全自动化学分析仪、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro+光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备,可以进行实验研究分析、实验培训等,欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。 易科泰公司与欧洲PSI公司(叶绿素荧光技术与表型分析技术)、美国SABLE公司(动物能量代谢技术)、欧洲SPECIM公司(高光谱成像技术)、欧洲WORKSWELL公司(红外热成像技术)、欧洲ATOMTRACE公司(LIBS元素分析技术)、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司(样芯密度扫描与元素分析)、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等国际著名生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系,在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生理生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验,成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究技术支持力量。由公司研制生产的EcoDrone无人机遥感平台、SoilTron多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox土壤呼吸测量技术、PhenoPlot轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2/O2梯度监测系统、植物生理生态监测技术、动物能量代谢测量技术等,在中科院修购项目、农业部学科群项目、CERN网络(生态系统监测网络)等项目中发挥重要作用。 “工欲善其事,必先利其器”,易科泰公司将秉承“利其器,善其事”的经营理念,为国内生态-农业-健康研究与发展提供最优的技术方案和服务。欢迎关注易科泰公众号:
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脉冲调制叶绿素荧光仪相关的仪器

  • OS5p+采用的是独特的调制-饱和-脉冲技术,可选择性的原位测量叶绿素荧光,以此来检测植物光合作用的变化。OS5p+的调制测量光足够低,可以只激发色素的本底荧光,而不引起植物任何的光合作用,这保证了基础荧光Fo的准确性。OS5p+具有很高的灵敏度和选择性,即使在野外或实验室内很高的外部光强下,也可准确测定叶绿素荧光参数。因此,OS5p+不但适合在条件可控的实验室内进行测量,还可在条件多变的自然环境中开展野外的试验研究。OS5p+广泛应用于植物生理、生态、农学、园艺、浮游植物、生物技术等学科的叶绿素荧光相关研究,特别是在植物逆境生理研究中应用广泛,几乎可以测量所有类型的植物胁迫。 1 特点◆可测量几乎所有类型的植物胁迫:OS-5p+通过Fo、Fm、Fv/Fm、Fod (or Fo’)、Fms (or Fm’)、qP、qN、NPQ、qE、qT、qI、Y 或ΔF/Fm’、以及 O、 J、 I、 P、 T等参数,测量绝大多数类型的植物胁迫。同时,OS-5p+独一无二的N-300或N-200氮(硫)胁迫测与硫胁迫量单元,还可获得叶绿素含量的参数。◆更新的测量协议Vredenberg OJIP淬灭协议:使用高时间分辨率,测量与OJIP相关的NPQ。 ◆叶绿体迁移测量Cazzaniga 2013和Dal’Osta 2014近期的文章表明,叶绿体迁移已经替代了在高光强水平下中间时间范围的荧光变化,之前该变化一直被认为是由于状态转换和严重的光抑制引起的。OS5p+是市面上唯一可测量叶绿体迁移引起的荧光淬灭的仪器。◆更加可靠的测量精度保证创新的PAR叶夹:采用独特的余弦校正技术,校正叶片朝向引起的误差;同时对传感器位置引起的误差、光谱的误差进行校正,相较于未校准的PAR传感器,测量结果更加准确。◆高光强下荧光测量的校正多次饱和光闪技术:采用非常短的饱和脉冲和回归模型方法,可以获得无穷大光强下的荧光,对具有高光强照射历史的植物,进行Y(II)和ETR测量的校正,用户自行决定是否开启该功能。◆更广泛的可自动编程测量协议:所有测量均可通过仪器的内置程序自动完成,并且可根据实际需要,更改测量参数。2 组成标准配件: OS5p+主机、光纤、暗适应叶夹、标准PAR叶夹、开放式叶夹、用户手册、1 GB MMC/SD存储卡、USB数据线、USB SD读卡器、便携箱。可选配件: 藻类测量单元、PAR调节支架、三脚架。3 技术参数◆测量和计算的参数:Y(II)或ΔF/Fm’或Y、ETR、PAR、T、Fv /Fm 、Fv /Fo 、Fo 、Fm、Fv 、Fms 或 Fm、Fs 或F、RLC、rETRMAX、Ik、Im; Hendrickson Quenching with NPQ (standard):Y(NPQ)、 Y(NO)、 Y(II)、 NPQ、 F v /F m;Kramer Quenching (standard):q L 、Y(NPQ)、Y(NO)、Y(II)、F v /F m;Puddle model parameters (standard):NPQ、q N、q P 、Y(II)、F v /F m;Quenching relaxation protocol (standard):q E、q T 、q I 以及 puddle model或Hendrickson model参数;OJIP - Vredenberg OJIP 淬灭协议;OJIP - Strasser 协议直接读出: OJIP、t100μs、t300μs (或K step)、tFm (or P or Fm )、 A (or area above the curve)、Mo (RC/ABS)、PlABS (performance index)、 Fo 、Fm、Fv 、Fv /Fm 、Fv /Fo;存储于数据文件内的Strasser OJIP参数:ABS/RC、TR o/RC、DIo /CS、ETo /RC、TRo /ABS、ETo /TRo、ETo /CS、RC/CSo 、RC/CSM、S、M、T。OJIP图形最多可有32条曲线重叠,每个数据文件最多可以存储32挑曲线的数据,存储的数据文件可达1G。◆光源: 饱和强度:690nm 短波滤波片LED,12000μmols;调制光源:红色:660 LED,690nm短波滤波片; 蓝色:450nm LED光化光源:3000μmols白色 LED; 可选:用于OJIP的红色光化光源远红外光源:高于740nm◆检测方法:脉冲调制式检测;◆检测器与过滤器:PIN 光敏二极管,具有700 ~ 750 nm 滤波片;◆采样速率:每秒1到1000000 个点,根据测量阶段自动转换;◆调制光调节:自动最优化调节调制光强,也可采用手动调节;◆Multi-flash:可应用与所有光适应测量协议,用于校正Fm’,也可以手动关闭;◆测量时间:从0.1s到12h可调;◆存储量: 1 GByte 非破坏性闪存;◆数据输出: USB、1 GB MMC/SD;◆用户界面:菜单式触摸屏;◆电源供给:可充电镍氢电池◆电池使用时间:8h到12h连续测量◆尺寸:17.8 cm x 14cm x 8.3cm◆重量:1.36 kg4 产地:美国5 参考文献 Brian Michael Leckie、C. Neal Stewart Jr. Agroin?ltration as a technique for rapid assays for evaluating candidate insect resistance transgenes in plants. Plant Cell Rep. 2011 (30): 325–334K Ghassemi-Golezani、M Taifeh-Noori、S Oustan、M Moghaddam、S Seyyed Rahmani. Physiological Performance of Soybean Cultivars Under Salinity Stress. Journal of Plant Physiology and Breeding. 2011、1(1): 1-7M.A. Sobrado. Leaf gas exchange and fluorescence of two teosinte species: Zea mays ssp. parviglumis and Z. Diploperennis . Journal of Tropical Agriculture. 2011 49 (1-2) : 91-94.Xiaoqing Yu、Guihua Bai、Na Luo、Zhenbang Chen、Shuwei Liu、Jianxiu Liu、Scott E. Warnke、Yiwei Jiang. Association of simple sequence repeat (SSR) markers with submergence tolerance in diverse populations of perennial ryegrass. Plant Science. 2011 (180): 391–398.........
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  • 用途: 非便携式,适用于实验室,由交流电供电,自配电池携带到田间测定。适于田间操作和室内。广泛应用于植物生理学、植物生态学、植物病理学、农学、园艺学、林学、环境科学以及藻类生物学等领域:研究植物在各种环境条件下的光化学效率、光抑制和光破坏防御机制。研究植物在干旱、低温、高温、UV、污染、重金属等各种逆境条件下的抗逆性。用于高光效植物和抗逆品种的筛选。研究藻类或液体样品的叶绿素荧光指标。测定原理:FMS1+利用脉冲调制荧光技术把作用光信号与荧光信号区分开,在测定时,给植物材料施加一个脉冲调制光束,该脉冲光使植物叶片产生一个脉冲的荧光信号,脉冲荧光信号的大小可以反映出叶片生理状况,所以由脉冲调制光束诱导出的脉冲荧光信号便用来作为研究植物在各种环境条件下的光化学效率、光破坏防御以及抗逆性的有力工具。 测定参数:暗适应参数:Fo, Fm, Fv, Fv/Fm, Fv/Fo光适应参数:Fs, Fo', Fm', Fv'/ Fm',ΦPSⅡ(△F/ Fm'), qI, qE, qT, qP, qNP, NPQ, ETR环境参数:PAR, Temp准确记录叶绿素荧光诱导动力学曲线(O-I-D-P),快速光曲线(RLC),荧光启动曲线等。主要功能:功能及兼容性强大的Windows环境操作软件,操作简单的程序编写功能;整合式光量子探头及温度探头叶夹,测定各种光适应条件下的荧光参数;准确记录叶绿素荧光诱导动力学曲线;慢速荧光诱导曲线及猝灭分析;暗弛豫分析;快速光曲线和荧光启动曲线;选配液相样品探头可测定藻类或液体样品的叶绿素荧光参数;配置适配器可与英国Hansatech公司的各种氧电极联用可同时测定藻类、叶绿体或植物叶片的光合放氧速率与荧光参数;与美国PP-Systems公司的CIRAS系列便携式光合仪联用,可同时测定温度、光照及CO2控制条件下的光合及荧光参数;技术参数:调制光594 nm 的调制光束,4种可调频率光化光0~3,000μmolm-2s-1,50个可调梯度饱和脉冲光0~20,000μmolm-2s-1 ,99个可调梯度远红光730 nm,用于激发PSI样品采集速率每秒10~20,000次,由用户设置确定软件功能Windows系统下强大的可视化自主编程软件,可单机或连接电脑进行各种荧光参数及各种响应曲线的测定检测器PIN光电倍增管700nm光合有效辐射测定范围PAR 0~20000μmolm-2s-1用户界面20×4LCD显示,主机全新设计四健快捷操作存储256KB,RAM存储2430条曲线或12850组参数电信号16bit的165微处理器,12bit分辨率的8A/D转换器,4个外接I/O数字接口,12bit数模转换器DAC(0-4095mV)叶温测定范围-10 ~90℃体积26×23.5×8.3cm重量2.8 KgFMS 1+ 便携调制式荧光仪标准配置 :部件名称 数量主机 Control Unit1 台光缆 Fiber optic assembly1 根暗适应夹 FMS/LC pack of 10 dark adaptation clip10个开放式光纤适配器 Open fiber optic adapter 1 个密闭式光纤适配器 Closed fiber optic adapter1 个传输线 Serial Cable1 根外接电源 Main Power supply1 个操作手册 Instruction Manual1 本软件 Windows Software on Diskette1 套箱子 Transport case1 个
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  • 用途:FL 6000双调制叶绿素荧光仪测量叶绿素a(ChlA)的荧光强度。测量时,一组发光二极管发出持续几微秒、强度很低的测量光,激发叶绿素产生叶绿素荧光,叶绿素荧光由PIN光电二极管检测,并由16位A/D转换器数字化。该仪器支持脉冲光调制测量,同时可以捕捉快速的OJIP瞬态曲线、快速测量QA-再氧化动力学,S状态转换。FL 6000-F快速版双调制叶绿素荧光仪,可以进行闪光荧光诱导(FFI)实验,用于计算光合色素有效天线尺寸、天线连通性和快速光曲线。FL 6000-F的主要特点是配置有高功率的矩形光化光以及620nm的激发光源,特别适用于蓝藻的测量。QA受体的完全还原在25us内即可完成,仪器可以测量在单翻转饱和脉冲时的叶绿素荧光。该技术用于光系统II的有效天线尺寸及异质性和连接性的研究,不受DCMU或其它除草剂的干扰。FL 6000光学检测部件FL 6000-S,标准版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率4us 叶绿素a检测浓度:100ng/L 支持的荧光实验程序: -瞬时荧光 -QA再氧化 -Kautsky诱导效应 -淬灭分析 -快速OJIP曲线 -S状态转换FL 6000-F,快速版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率1us 叶绿素a检测浓度:1mg 支持标准版所有荧光实验程序 特殊实验程序:闪光荧光诱导(FFI) 特点:内置叶绿素荧光诱导测量、PAM脉冲调制测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA再氧化动力学、S状态转化、荧光淬灭测量测序,快速版具有闪光荧光诱导(FFI)测量功能;双调制技术,具备调制光化学光和持续光化学光;标准版时间分辨率达4us,快速版高达1us,是目前时间分辨率较高的叶绿素荧光仪;叶绿素检测灵敏度高,达1ug Chla/L;QA再氧化测量曲线应用领域:光合自养型微生物研究PSII光化学效率的测定水生生物初级生产力估算浮游植物光合性能和代谢扰动的研究光合突变体的筛选生物和非生物胁迫的检测;植物抗胁迫能力或者易感性研究;专业软件,内置淬灭分析、QA-再氧化、Kautsky诱导效应、OJIP等多种实验程序 技术规格:主体实验程序叶绿素荧光诱导测量、PAM(脉冲调制)测量、QA再氧化、OJIP曲线、S状态转换、叶绿素荧光淬灭分析PAM荧光淬灭测量FO;FM;FV;FO';FM';FV';FT;FV/FM、FV'/FM'、PhiPSII 、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等50多个叶绿素荧光参数和曲线OJIP快速荧光动力学测量OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数QA再氧化动力学测量QA–再氧化动力学曲线,用于拟合QA–再氧化过程中快相(Fast phase)、中间相(Middle phase)和慢相(Slow phase)各自的振幅(A1,A2,A3)和时间常数(T1,T2,T3)S状态转换荧光衰减曲线,用于拟合计算无活性光系统II (PSIIX)反应中心数量测量光标准:620nm和460nm,其他波长可选单翻转饱和脉冲100000µ mol(photon).m-2.s-1,最大持续时间150us光化光最大光强3000µ mol(photons).m-2.s-1;检测器FL 6000-F:1µ sFL 6000-S:4µ s控制单元双通道通用高精度自动微处理器样品管10x10mm,容积4mlA/D16位;500kHz通讯方式USB控制盒尺寸29*20*11cm测量单元尺寸直径16cm*6cm高重量5kg功率20W测量室可选,定制测量光、光化光和饱和脉冲以及检测波段氧气测量模块可选,测量藻类氧气释放温度控制器TR 2000,0-70℃,精度0.1℃,可选电磁搅拌器密封不锈钢,IP64,手动调速100-1000rpm,8x3mm磁力棒,可选远红光LED中心波长730nm,用于光系统I激发,测量Fo’,可选软件功能创建和存储实验草案、可通过FluorWin向导功能自动建立实验方案、实验数据的获取和输出、数据处理和显示 产地:捷克
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脉冲调制叶绿素荧光仪相关的资讯

  • 2010年北京易科泰上海叶绿素荧光技术及应用研讨会通知
    20世纪80年代,Quick等(1984)发明了脉冲调制技术(PAM)测量叶绿素荧光,从而催生了美国Optics及德国Walz等的脉冲调制荧光仪产品。进入90年代,双调制荧光仪(Trtilek等,1997)的研制成功,使荧光测量时间解析度(采样频率)达到100ns,从而可以进行精细的OJIP测量分析及天线色素的大小和异质性等研究分析。90年代后期,随着PSI公司(Photon Systems Instruments)率先生产出叶绿素荧光成像测量系统,叶绿素荧光成像技术开始应用并日趋成熟和迅速发展。  易科泰生态技术有限公司Ecolab实验室与中科院上海植物生理生态研究所合作,特邀请双调制叶绿素荧光仪发明者、PSI科学研究与研发总监Martin Trtilek博士,在上海植物生理生态研究所举办“叶绿素荧光技术及应用”专题讲座,并示范叶绿素荧光测量仪、叶绿素荧光成像等部分仪器。讲座内容包括:   叶绿素荧光测量技术,包括快速叶绿素荧光测量仪、高灵敏度和超高灵敏度叶绿素荧光测量仪、藻类荧光在线监测等仪器技术及其应用   叶绿素荧光成像技术,包括开放式叶绿素荧光成像、封闭式叶绿素荧光成像、多广谱荧光成像、显微叶绿素荧光成像、FMT多功能荧光动态显微监测系统、叶绿素荧光三维成像系统、样带叶绿素荧光成像系统等   光养生物反应器技术,利用叶绿素荧光技术在线监测生理状态及生物量   LEDs植物/藻类培养与在线监测技术   叶绿素热释光测量技术  欢迎各单位的研究人员、各高校的老师和同学参与和交流。在此之前PSI公司与易科泰生态技术有限公司将在第15届国际光合作用大会期间(北京,2010年8月22-27日)携样品仪器展出,欢迎大家光临。  讲座时间:2010年8月30日(周一) 9:30  地点:上海市枫林路300号 中国科学院植物生理生态研究所 新大楼一楼报告厅  内容:1报告:叶绿素荧光技术及应用 主讲人:Martin Trtilek博士  2 PSI仪器展示  联系人信息:Ecolab生态实验室 张谧、李欢  电话:010-82611269转810 Email:info@eco-lab.cn  易科泰生态技术有限公司  Ecolab生态实验室  8月13日
  • 111万!广西大学水下调制叶绿素荧光仪等采购项目
    项目编号:GXZC2022-J1-002014-KLZB项目名称:专用仪器设备采购采购方式:竞争性谈判预算金额:111.0000000 万元(人民币)最高限价(如有):111.0000000 万元(人民币)采购需求:水下调制叶绿素荧光仪1台(预算金额:人民币590000元),珊瑚原位呼吸代谢测量仪1台(预算金额:人民币520000元)。简要技术需求或者服务要求见附件(具体内容详见本竞争性谈判文件)。合同履行期限:自签订合同之日起90日内整体完成供货安装调试。本项目( 不接受 )联合体投标。
  • 国内首台脉冲式电子顺磁共振波谱仪在合肥高新区发布!
    p style="text-indent: 2em text-align: justify "近日,国仪量子(合肥)技术有限公司在合肥高新区召开发布会,宣布国内首台脉冲式电子顺磁共振波谱仪诞生。该产品具有自主知识产权、填补国内空白,在微波脉冲产生、高精度时序控制器、任意波形发生器、探头设计等核心技术上达到国际领先水平,并在科研和产业等方面具有广泛应用前景。/pp style="text-indent: 2em text-align: justify "电子顺磁共振是当代重要的物质科学研究手段。对于自旋标记的生物分子样品,可通过顺磁共振技术获取分子的动力学、结构等重要信息。这些信息主要源于电子自旋的精细和超精细结构,它们均可以从顺磁共振谱中提取。国仪量子发布的国内首台脉冲式电子顺磁共振波谱仪,具有国际领先的微波脉冲产生技术,原创性的复杂脉冲调制功能,可实现多种复杂的脉冲实验,能产生500瓦高功率、高相位稳定性的微波脉冲,微波脉冲的时间分辨率为50皮秒。该产品具有个性化、可定制、易扩展、高集成度、高稳定性等特性,且具有灵活的波形产生和数据处理方式。/pp style="text-indent: 2em text-align: justify "科学仪器装置,被誉为“国之重器”。国仪量子源于中科大中科院微观磁共振重点实验室,是一家以量子精密测量为核心技术的高新技术企业,今年已获批国家重点研发计划“重大科学仪器设备开发”重点专项。该公司专注大型科学仪器平台的研制开发,发展全球领先的量子精密测量技术,瞄准突破极限指标的仪器,为各行各业物质科学研究提供尖端科学装置平台。/p

脉冲调制叶绿素荧光仪相关的方案

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  • 叶绿素荧光显微成像技术在光合作用研究中的应用

    [align=center][size=16px][/size][/align][size=16px] 光合作用是地球上最重要的化学反应,植物、藻类及光合细菌等吸收光能、将[/size][size=16px]CO[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]和水转化为有机物并释放[/size][size=16px]O[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]。获得光能的叶绿素分子从基态跃迁到激发态,激发态的叶绿素分子可通过三种途径释放能量回到基态:推动光化学反应、以热的形式耗散、释放光子产生荧光。这三种途径的总和是一定的,因此叶绿素荧光的变化反映了光化学效率和热耗散能力的变化。叶绿素荧光成像是[/size][size=16px]广泛应用[/size][size=16px]的[/size][size=16px]光合生理研究的重要探针[/size][size=16px],[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像又将研究尺度进一步拓展到细胞、亚细胞水平。叶绿素荧光技术发展出了很多不同的测量程序,以慢诱导荧光动力学曲线为例,通过测量光([/size][size=16px]ML[/size][size=16px])、作用光([/size][size=16px]AL[/size][size=16px])、饱和脉冲光([/size][size=16px]SP[/size][size=16px])激发样品,记录动力学曲线并计算叶绿素荧光参数[/size][size=16px],[/size][size=16px]可以用于反映植物光合作用机理和光合生理状况([/size][size=16px]朱新广[/size][size=16px],[/size][size=16px]2021[/size][size=16px])。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光成像技术能记录整个叶片、植株等样品不同区域的荧光动力学分布变化,实现从宏观到微观的光合机理研究。叶绿素荧光成像由于其无损、高通量的技术特征,在光合作用相关突变体筛选领域成为了广泛应用的重要技术,为光合作用机理及抗[/size][size=16px]逆研究[/size][size=16px]提供了强大的技术支持。叶绿素荧光显微成像技术最早出现于[/size][size=16px]2000[/size][size=16px]年,[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px]等人将叶绿素荧光脉冲调制式激发光源与显微镜结合,首次获得了显微尺度的叶绿素荧光图像([/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2000[/size][size=16px])。叶绿素荧光显微成像技术在国外已经展开多方面研究应用,[/size][size=16px]目前国内的叶绿素荧光成像显微研究尚处于起步阶段,多个课题组都[/size][size=16px]正[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索[/size][size=16px]这项技术[/size][size=16px]在[/size][size=16px]不同研究领域中[/size][size=16px]的[/size][size=16px]应用。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光技术[/size][size=16px]适用研究样品微观结构上光[/size][size=16px]合功能[/size][size=16px]的空间差异,例如叶片横截面栅栏组织与海绵组织的差异,[/size][size=16px]C[/size][size=16px]4[/size][size=16px]植物花环结构[/size][size=16px]中维管束鞘细胞与叶肉细胞的差异[/size][size=16px],藻类中有差异的单个细胞、异形胞[/size][size=16px]等。我们多年来与[/size][size=16px]吉林师范大学、四川省农业科学研究院[/size][size=16px]等[/size][size=16px]单位[/size][size=16px]合作[/size][size=16px],[/size][size=16px]目前已合作发表的[/size][size=16px]3[/size][size=16px]篇相关论文是国内该领域[/size][size=16px]开创性[/size][size=16px]的应用成果,[/size][size=16px]以叶绿素荧光显微成像的特色优势技术[/size][size=16px]为光合作用的微观[/size][size=16px]探究提供有力支撑[/size][size=16px]。[/size][size=16px][/size][size=16px] Yu[/size][size=16px]等[/size][size=16px]发现[/size][size=16px]狗枣猕猴桃[/size][size=16px]([/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia [/size][size=16px]kolomikta[/size][size=16px])[/size][size=16px]的白化[/size][size=16px]叶片[/size][size=16px]通过调整叶片结构及基因表达调控,仍然保持了相对较高的光合能力[/size][size=16px]。[/size][size=16px]应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像技术[/size][size=16px]比较了[/size][size=16px]白化和绿色叶片栅栏组织、海绵组织的叶绿素荧光参数,[/size][size=16px]揭示了白化叶片海绵组织光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强的机理[/size][size=16px]。[/size][size=16px]绿叶中栅栏组织[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px](最大光化学效率)[/size][size=16px]更高,而白叶中海绵组织[/size][size=16px]显著增厚,[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更高[/size][size=16px],[/size][size=16px]光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强,补偿[/size][size=16px]了[/size][size=16px]白化的影响,成为叶片光合作用主力组织[/size][size=16px]([/size][size=16px]Yu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px])[/size][size=16px]。[/size][size=16px]接下来[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px]等又比较了两种猕猴桃白化叶片的光保护策略差异[/size][size=16px],狗枣猕猴桃的白叶[/size][size=16px]主要通过反射实现光保护,强光下花青素[/size][size=16px]积累,叶片[/size][size=16px]转变为粉色[/size][size=16px],更有效地保护叶片[/size][size=16px];[/size][size=16px]而[/size][size=16px]葛[/size][size=16px]枣猕猴桃([/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia[/size][size=16px] [/size][size=16px]polygama[/size][size=16px])[/size][size=16px]强光下[/size][size=16px]仍为白色[/size][size=16px],[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有更[/size][size=16px]强[/size][size=16px]的叶绿[/size][size=16px]素荧光参数,说明[/size][size=16px]它[/size][size=16px]具有更高的强光适应能力[/size][size=16px]([/size][size=16px]Chen[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 202[/size][size=16px]3[/size][size=16px])。[/size][size=16px]Liu[/size][size=16px]等比较了干旱处理下的玉米叶肉细胞和维管束鞘细胞,发现这两种细胞具有不同的不同光保护策略[/size][size=16px]。对玉米[/size][size=16px]完整叶片的分析显示,[/size][size=16px]随着干旱处理程度增强,[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px](实际光化学效率)[/size][size=16px]降低,[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px](非光化学猝灭[/size][size=16px]系数[/size][size=16px])[/size][size=16px]显著升高[/size][size=16px]。进一步应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像[/size][size=16px]的分析结果[/size][size=16px]与完整叶片[/size][size=16px]相符合,并且发现[/size][size=16px]与叶肉细胞相比,维管束鞘细胞[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更低,干旱胁迫后[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]升高更显著[/size][size=16px],[/size][size=16px]不同细胞的变化趋势[/size][size=16px]差异[/size][size=16px]表明它们[/size][size=16px]具有不同的光保护策略[/size][size=16px],[/size][size=16px]维管束鞘细胞中可能具有更强的热耗散能力[/size][size=16px]([/size][size=16px]Liu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px])。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿[/size][size=16px]素[/size][size=16px]荧光显微成像技术在光合作用的微观研究领域具有独特的技术优势,在[/size][size=16px]光合作用机理研究、环境及毒理胁迫与抗性筛选、优良品系选育等领域[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有广阔的应用前景。目前多家单位的科研人员[/size][size=16px]都[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索该技术[/size][size=14px][size=16px]的新应用,我们也正在[/size][size=16px]将该技术拓展到[/size][size=16px]多个新的领域,例如对[/size][size=16px]原生质体[/size][size=16px]以及[/size][size=16px]种子、茎秆等非叶片器官的[/size][size=16px]研究[/size][size=16px]。[/size][/size][font='黑体']参考文献:[/font][font='calibri'][size=13px][1] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]朱新广[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]许大全主编[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]光合作用研究技术[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]上海科学技术出版社[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2021[/size][/font][font='calibri'][size=13px][2] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Küpper[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]I[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]?etlík[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Trtílek[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Photosynthetica[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2000, 38, s553-570 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][3] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Yu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]D[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 856732 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][4] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] D[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Q[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Wen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] G[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Shi[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]et al.[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Physiol. Plant.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2023, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]175:[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]e13880[/size][/font][font='calibri'][size=13px][5] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]W[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] J[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Y[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] E[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 885781[/size][/font]

脉冲调制叶绿素荧光仪相关的耗材

  • 激光脉冲选通系统
    高重复频率(10KHz、20KHz、50KHz、100KHz)激光脉冲选通系统高速激光脉冲选通系统专门为再生激光放大种子注入和脉冲提取而设计,也适合激光脉冲拾取/斩波、锁模脉冲选通、Q开关和倒腔应用。该高速激光脉冲选通系统适合腔内和腔外两种应用,脉冲上升时间和下降时间短至3ns, 它提供了可靠、全固态、高电压开关设计和优良的电光普克尔盒方案。高速激光脉冲选通系统利用高速HV MOSFET开关电路和普克尔盒技术,提供了4种重复频率/电压范围,它使用方便,寿命长,可靠性强,无噪音。高速激光脉冲选通系统高压MOSFET开关模块比较适合RTP电光调制器在550&mdash 2000nm范围内的半波电压,也适合BBO电光调制器在200-532nm上的电压需求。用户只需要旋转控制器面板上的旋钮,就能使得系统在全部电压范围上工作---从小于四分之一电压到半波电压而损失其效率或改变上升和下降时间。与该高速激光脉冲选通系统相配备的电光调Q模块主要有两种:一种是1147型RTP普克尔盒,另一种是1150系列BBO普克尔盒。这两种普克尔和的资料在普克尔和专栏中给出。高速激光脉冲选通系统参数:光谱范围:200-2200nm最大输出脉冲@PRF: 10KHz, 20Khz, 50KHz, 100KHz上升时间:3-4ns光学脉宽:输入输出脉冲延迟:50ns-1000ns输出脉冲抖动:更多高速激光脉冲选通系统,激光脉冲选通系统,脉冲选通系统内容请浏览:
  • 激光脉冲整形器
    我们提供的这款进口激光脉冲整形器是一种性能高度可靠,完全固态化的激光脉冲整形系统。这款激光脉冲整形器的上升和下降时间快到3ns, 非常适合再生放大器的开关,激光脉冲的选择控制,锁模脉冲选通,腔倒空以及Q开关应用。该激光脉冲选择器具有可靠,最低辐射噪音,固态,高电压开关等优点,适合内腔和外腔应用。这套激光脉冲整形器本身包含了高压驱动,电光调制器和高速开关驱动,可独立使用,只需要24V直流电和两个外部出发信号就可以操作使用。激光脉冲整形系统非常紧凑可靠,全固态设计,完全符合美国和欧盟的EMC标准,对人体充分安全。激光脉冲整形器可在宽范围电压下工作,高压驱动模块输出的电压满足300-2000nm电光调制器的半波电压和四分之一波电压的要求。输出脉冲的幅度可通过自带的电位器调节。激光脉冲整形系统参数波长范围:LiNbO3: 700-2500nm KD*P: 300-1100nm上升和下降时间:3-4ns脉宽范围:输出脉冲重复频率:1Hz-2KHz输入输出脉冲抖动:输出脉冲延迟:35ns触发输入电阻:50ohms触发输入脉冲电压:2-5V触发输入脉宽:50-500ns电力要求:24VDC@up to 1.5A尺寸:4x4.5x9.5英寸领先的进口精密激光光学器件旗舰型服务商--孚光精仪!
  • Amphos超短脉冲激光:输出功率200W
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