氨基酸(AA)含量检测试剂盒 微量法

氨基酸（AA）含量检测试剂盒说明书

微量法

注意：本产品试剂有所变动，请注意并严格按照该说明书操作。

规格：100T/96S

产品组成：使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致

溶液的配制：

1、 试剂四：临用前取 1 支加 1 mL 蒸馏水，充分溶解，用不完的试剂-20℃分装保存 2 周；（1 支粉剂溶解后可做 100T，为了延长使用时间，此产品多给 1 支粉剂）

2、 标准品：10 mg 半胱氨酸。临用前加入 4.13 mL 蒸馏水，得到 20 μmol/mL 的半胱氨酸标准溶液备用，用不完的试剂可以 4℃保存 4 周。

产品说明：

动物肝脏、肾脏是氨基酸代谢的主要器官，故尿中氨基酸的变化最能反应肝、肾的生理状态。另外，氨基酸还能反应灼伤、伤寒等方面情况。植物体内氨基酸含量对研究植物在不同条件下及不同生长发育时期氮代谢变化、植物对氮素的吸收、运输、同化及营养状况等有重要意义。

氨基酸的α-氨基可与水合茚三酮反应在570nm有特征吸收峰；通过测定570nm吸光度，来计算氨基酸含量。

注意：实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品：

台式离心机、可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、微量玻璃比色皿/96孔板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、无水乙醇、冰和蒸馏水。

操作步骤：

一、样本处理（可适当调整待测样本量，具体比例可以参考文献）

组织样本：称取约 0.1g 组织，加试剂一 1mL，室温下充分研磨，转移到 1.5mL EP 管中，盖紧后（防止水分散失）置于沸水浴提取 15min；自来水冷却后，10000rpm，4℃离心 10min，取上清液，待测。

细菌或细胞样本：收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照每 500 万细菌或细胞加入 1mL 试剂一，超声波破碎细菌或细胞（功率 200W，超声 3s，间隔 10s，重复 30 次）；10000rpm，4℃离心 10min，取上清液，待测。

液体：吸取 0.5mL 液体加入 0.5mL 试剂一，盖紧后（防止水分散失）置于沸水浴提取 15 min；自来水冷却后，10000rpm，4℃离心 10min，取上清液，待测。

二、测定步骤

1. 分光光度计/酶标仪预热 30min 以上，调节波长至 570nm，蒸馏水调零。

2. 标准品稀释：取50μL 20μmol/mL 标准液加入150μL蒸馏水得5μmol/mL标准溶液进行实验。

3. 操作表：（在 EP 管中进行）

三、氨基酸含量计算

注意事项：

1、 试剂四均需临用前配制，且避光保存。

2、 为保证实验结果的准确性，需先取 2-3 个样做预实验。

3、 脯氨酸和羟脯氨酸与茚三酮反应在 570nm 处无吸收峰，因此，570nm 处测定结果不含这两种氨基酸的量。

4、 如果 ΔA 测定管大于 1.6，建议将样本上清液用试剂一稀释后进行测定。

5、 因提取过程中会使蛋白变性，若使用蛋白浓度计算时需用 PBS 或生理盐水单独提取后再测定。

实验实例：

1、 取 0.21g 小鼠心脏组织加入 1mL 试剂一进行样本处理，取上清后按照测定步骤操作，使用 96 孔板测得 A 测定管=1.603、A 标准管=0.786、A 空白管=0.120，计算 ΔA 测定管=A 测定管-A 空白管=1.603-0.120=1.483，ΔA标准管=A 标准管-A 空白管=0.786-0.120=0.666，按样本质量计算含量得：

氨基酸含量（μmol/g 质量）=5×ΔA 测定管÷ΔA 标准管÷W=5×1.483÷0.666 ÷0.21=53.02 μmol/g 质量。

2、 取 0.1g 冬青叶片加入 1mL 试剂一进行样本处理，取上清后按照测定步骤操作，使用 96 孔板测得 A 测定管=0.485、A 标准管=0.786、A 空白管=0.120，计算 ΔA 测定管=A 测定管-A 空白管=0.485-0.120=0.365，ΔA 标准管=A 标准管-A 空白管=0.786-0.120=0.666，按样本质量计算含量得：

氨基酸含量（μmol/g 质量）=5×ΔA 测定管÷ΔA 标准管÷W=5×0.365÷0.666÷0.1=27.40 μmol/g 质量。

特别提示：本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！