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肝脂酶(HL)活性检测试剂盒说明书
微量法
规格: 100T/48S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致
溶液的配制:
1、试剂三:临用前加入 10 mL 双蒸水,充分溶解待用,用不完的 4℃保存两周;
2、试剂四:临用前取 1 支加入 1 mL 双蒸水,充分溶解,用不完的试剂可-20℃分装保存一周,避免反复冻融;
3、标准品:临用前加入 6.94 mL 丙酮,配成 10 μmol/mL α-萘酚标准溶液,充分溶解待用,用不完的-20℃保存两周。
产品说明:
肝脂酶(hepaticlipase,HL)是一种脂肪分解酶,在肝实质细胞中合成,存在于肝脏窦周间隙内皮细胞表面和窦周间隙腔面的肝细胞微绒毛表面,可水解各种脂蛋白中的甘油三酯(TG)和磷脂(PL),使各种脂蛋白颗粒的大小和密度发生变化,当血浆中的 HL 及其活性增高时,可导致血浆中低密度脂蛋白(LDL)水平升高,加速动脉粥样硬化的发生与发展。
肝脂酶水解 α-乙酸萘酯产生 α-萘酚,可与固蓝 B 盐形成紫红色偶氮化合物,在 595nm 有特征吸收峰,其颜色深浅在一定范围内与肝脂酶活性成正相关。
注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计/酶标仪、天平、低温离心机、水浴锅、微量玻璃比色皿/96 孔板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、漩涡震荡仪、EP 管、丙酮、蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
二、测定步骤
1、 分光光度计/酶标仪预热 30 min 以上,调节波长至 595 nm,用蒸馏水调零。
2、 将试剂三在 30℃预热 20 min 以上。
3、 将 10 μmol/mL 的标准溶液用试剂一稀释为 5、2.5、1.25、0.625、0.3125、0.15625、0.078 μmol/mL 的标准溶液备用。
4、 操作表:
三、HL 酶活计算
注意事项:
1、 若样本为动物肝脏,建议将样本用试剂一稀释 25 倍以上再进行检测,并在计算公式中乘以稀释倍数。
2、 若样本为肥胖型动物血清或血浆,建议将样本用试剂一稀释 5 倍以上再进行检测,并在计算公式中乘以稀释倍数。
3、 当 ΔA 大于 1.3 时,建议将样本用试剂一稀释后再进行测定,并在计算公式中乘以稀释倍数。
实验实例:
1、取 0.1g 大鼠肝脏,进行样本处理,取上清稀释 24 倍后按照操作步骤进行操作,使用 96 孔板测得计算 ΔA=A测定管-A 对照管=0.605-0.046=0.559,带入标准曲线 y=0.265x+0.0033 计算 x=2.097,按照样本质量计算酶活得:
HL 活性(U/g 质量)=x×V 样÷(W×V 样÷V 样总)÷T×24=50.328 U/g 质量。
2、取火鸡血清稀释 6 倍后按照操作步骤进行操作,使用 96 孔板测得 ΔA=A 测定管-A 对照管=0.449-0.003=0.446,带入标准曲线 y=0.265x+0.0033 计算 x=1.671,按照样本质量计算酶活得:
HL 活性(U/g 质量)=x×V 样÷(W×V 样÷V 样总)÷T×6=1.003 U/g 质量。
特别提示:本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!