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Northern杂交分析

2015-11-17 08:47

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资料摘要:

.RNA的提取见前。 2.变性胶的制备:取琼脂糖0.2g,加入 DEPC H2O 12.4ml,加热熔化,冷却至60℃时加入5×甲醛凝胶电泳缓冲溶液4.0 、37%甲醛3.6ml、混匀、制胶。待胶凝固后,置于1×甲醛凝胶电泳缓冲溶液中预电泳5min。 3.样品制备 取总RNA4.5 ,加入5×甲醛凝胶电泳缓冲溶液4.0 、37%甲醛3.6 、甲酰胺10、于65℃温浴15分钟,水浴冷却。加入上样缓冲液2 。 4.电泳 上样(约15~40 ),50V电泳(电泳约2小时), 直至染色剂跑到凝胶边缘为止。用已知相对分子质量的RNA作标准参照物,如用18s和28srRNA或者9s兔β珠蛋白的mRNA,这些RNA的长度分别为6333,2366和710个核苷酸。 5.电泳结束后,切下相对分子质量标准参照物的凝胶条, 浸入含溴乙啶的染色液中浸泡30~40分钟,紫外灯下照相,测量每个RNA条带到加样孔的距离。以RNA片段大小的Ig值对RNA条带的迁移距离作图,以此计算杂交相对分子质量的大小。 6.将变性RNA转移至硝酸纤维素滤膜 (1)将凝胶用刀片切割,切掉未用掉的凝胶边缘区域,把含有变性RNA片断的凝胶转至玻璃平皿中。 (2)在一个大的玻璃皿中放置一个小玻璃皿或一叠玻璃作为平台,上面放一张Whatman3MM滤纸,倒人20×SSC缓冲溶液使液面略低于平台表面,当平台上滤纸湿透后,用玻棒赶出所有气泡。 (3)将NC膜切割成与凝胶大小一致的一块,用去离子水浸湿后转入20×SSC缓冲液浸泡半小时。注意不能用手直接接触NC膜。 (4)凝胶置于平台上湿润的3MM滤纸中央,滤纸和凝胶之间不能有气泡。 (5)将NC膜放在凝胶上,小心不要使其再移动,赶出气泡,做好记号。 (6)NC膜上覆盖另一层Whatman 3MM滤纸(用20×SSC缓冲溶液预先浸湿),再次赶出气泡,依图所示加上纸巾、玻板、重物,使NC膜上的RNA发生毛细转移,转移需6~18小时,纸巾湿后应更换新的纸巾。 (7)取下NC膜,浸入6×SSC缓冲溶液(由20×SSC缓冲溶液稀释得到)中,5分钟后取出晾干,放在两层滤纸中间,于80℃真空炉中烘烤0.5~2小时。烘干的膜用塑料袋密封,4℃保存备用。 7.探针标记 (1) 取模板DNA25ng于0.5ml离心管中,95~100℃变性5min,冰浴5min。 (2) dNTPmix制备:取dGTP 1 、dATP1 、dTTP1 混匀。 (3)将下列反应成分混合,加入上述微量离心管中: dNTPmix ,BSA(10mg/ml) ,5×buffer , Klenow酶 ,αdCTP 加入适量ddH2O使反应总体积为50 ,轻轻混匀。室温下反应1h。 8.预杂交 将膜的反面紧贴杂交瓶,加入预杂交液5ml,42℃预杂交3h。 9.杂交 将变性的探针(95~100℃变性5min,冰浴5min)加入到预杂交液中,42℃杂交16h。 10.洗膜:倾去杂交液,2×SSC/0.1% SDS,室湿洗15min,0.2×SSC/0.1% SDS,55℃洗15min×2次。 11.压片 将膜用双蒸水漂洗片刻,用滤纸吸去膜上水分。用保鲜膜将尼龙膜包好,置于暗盒中,在暗室中压上X光片。暗盒置-70℃放射自显影7天左右。

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