离心机的安放必须选择坚固的台面，放置平稳，开机前一定要在转子固定好后再使用离心机。及时清理离心腔内的积水。样品应预先平衡，使用离心、微离心时应进行配重。具有挥发性功能的腐蚀性液体离心时应使用盖自有密封圈的离心管，并确保液体不外漏以免腐蚀机腔或造成事故。离心机运转时不要人为地打开应急锁，任何时候不可开盖使用离心机。

PRP美容简单地说就是用你自身的“再生因子”，用自身的因子来帮助自身！用离心机把血液中的红细胞和白细胞全血分离，留下的血小板就是PRP。离心分离后的血小板PLT浓度提高到全血浓度的3倍以上的血浆，也就是高浓度的 “富血小板血浆”才能称为PRP。

本文建立更简便、快速、准确、灵敏的测定血清维生素 C 含量的方法, 并对血清维生素 C 稳定性进行研究。方法 血清样品经 10% (vöv) 偏磷酸溶液提取, 旋涡混匀 30 s, 离心 10 m in (4 000 röm in, 4 ℃) 后, 用带二极管阵列检测(DAD ) 的高效液相色谱(H PL C) 仪对维生素 C 进行定性定量分析, 流动相为 100 mmo löL KH2PO 4, pH 值为 310, 检测波长为 243 nm , 流速为 1 m löm in。用此方法测定不同处理和储存条件下的血清维生素 C 含量, 比较其稳定性。结果 在上述色谱条件 下, 血清中维生素 C 能得到良好分离, 该方法的日内变异系数和日间变异系数分别为 0142% 和 2111% ; 回收率范围为 82%～ 8815% ; 维生素C 的最低检测限为 0105 Λgöm l。在对血清维生素C 稳定性的研究中, 发现血清维生素C 在放置过程 中很容易被氧化降解, 其偏磷酸提取液相对稳定, 但在 5 d 后含量也开始明显下降, 到第 44 d 后血清和提取液中维生素 C 含量均几乎完全消失。结论 建立了高速、高效、高灵敏度的测定血清维生素 C 含量的H PL C 法; 血清维生素 C 在保存过 程中极不稳定, 获得样品后应立即测定, 当无条件立即分析样品时, 也应将样品用偏磷酸提取, 并将提取液冷冻保存在- 70 ℃, 5 d 以内分析完毕。

青椒中还原型维生素C 含量的测定.pdf青椒中还原型维生素C 含量的测定.pdf青椒中还原型维生素C 含量的测定.pdf

原子吸收光谱法间接测定苯丙氨酸.pdf原子吸收光谱法间接测定苯丙氨酸.pdf原子吸收光谱法间接测定苯丙氨酸.pdf原子吸收光谱法间接测定苯丙氨酸.pdf

以下介绍一种最常用的方法： 碱裂解法：此方法适用于小量质粒DNA的提取，提取的质粒DNA可直接用于酶切、PCR扩增、银染序列分析。方法如下： 1、接1%含质粒的大肠杆菌细胞于2ml LB培养基。 2、37℃振荡培养过夜。 3、取1.5ml菌体于Ep管，以4000rpm离心3min，弃上清液。 4、加0.lml溶液I(1％葡萄糖，50mM/L EDTA pH8.0，25mM/L Tris-HCl pH8.0)充分混合。 5、加入0.2ml溶液 II(0.2 mM/L NaOH，1％ SDS)，轻轻翻转混匀，置于冰浴5 min 。 6、加入0.15m1预冷溶液III(5 mol/L KAc，pH4.8)，轻轻翻转混匀，置于冰浴5 min 。 7、以10，000rpm离心20min，取上清液于另一新Ep管

21世纪，随着分子生物学，动物学，基因学，遗传工程研究应用的发展需要，离心分离技术也在不断更新，技术也逐步成熟，由低速离心机到超大容量冷冻 离心机的一系列创新后，我们国家的离心机技术也得到了世界各国的认可。本文为大家介绍离心机在临床使用过程中出现的故障和排除的方法等维护注意事项。 离心机的电机故障 症状：不能正常启动 分析： 1.若主电源指示灯正常发光，则检查炭刷磨损程度的大小，一般，炭刷磨损超过总量的三分之一，应及时更换新的碳刷. 2.若主电源指示灯不正常发光或者不亮，则检查指示灯的保险丝和室内线路的保险丝是否完好，电源线接触是否良好，逐一排除... 3.看下真空泵表及油压指示值，如果优雅过高而主机也不能启动，这时必须检查各油路是否堵塞了，尤其是节流小孔是否畅通，如果不通畅应清洗使之畅通. 4.若轴承损坏或转动受阻，大多是轴承内缺油或轴承内有污垢较多而引起摩擦阻力增大，电机达不到额定转速，此时应及时清洗或更换轴承. 5.整流子表面有一层氧化物，甚至烧成凹凸不平或电刷与整流子外缘不吻合也可使转速下降，应清理整流子及电刷，使其接触良好。 6.如转子线圈中短路或断路，可用万用表检查，重新绕制线圈。转子在使用时可因金属疲劳、超速、过应力、化学腐蚀、选择不当、使用中转头不平衡及温度失控等原因而导致离心管破裂，样品渗漏，转子损坏。 7.只要把上面6点做好了，离心机的不能正常启动的问题基本上解决了！ 离心机的电源问题 症状：冷冻机启动及制冷效果差 分析： 1.电源不通是导致冷冻机启动及制冷效果差的原因之一，与电机不转的故障相同，应分别检查电源及保险丝。 2.电压过低，安全装置故障也可使冷冻机不能启动，电压过低可能是电网电压低；配电板配线过多；电源线过长(理想长度为3米)等。电源线容量不够，不仅使电压降低，还会造成意外事故。当电源电压降到180-190VJ时，冷冻机不能启动，影响制冷效果。 3.通风性能不好，如仪器安装在日光直射或通风不良处，散热器效果差，或散热器盖满灰尘，也中会影响制冷效果。 4.离心管重量不平衡，放置不对称；转子孔内有异物，使负荷不平衡；转轴上端固定螺帽松动，转轴磨擦或弯曲；电机转子不在磁场中心会产生噪音；转子本身损伤等都可导致机体震动剧烈、响声异常。 5.以上原因大部分均系不正确操作所致，在找出原因后，正确操作即可消除不正常现象。在工作过程中，如出现任何异常现象均应立即停机，不得强行运转，以免造成不必要的损失。 离心机的维护及注意事项 1.离心机在安装时必须根据离心机的性能选择合作的地点放置，对一般低速离心机(台式)可放在平稳、坚固的台面上，借助其自身重量，可使离型机紧贴于台面，保证工作安全。 2.大容量低速离心机、高速离心机和高速冷冻离心机要相应地安放在坚实的地面上，水平放置。在离心机工作前，应将负荷平衡，重量误差减到越小越好，否则会引起剧烈震动，损坏离心转子及转轴。 3.离心器支架、离心器分离支架必需在安置浩离心管后运作，严禁空架运转。 在日常的工作中，只要熟练的掌握操作程序，选用合适的离心管和离心转子，严格控制好每个操作步骤，尽可能的减少人为损伤，保证转子在安全系数和保证期内使用，很多安全事故都是可以避免的。

实验室离心机使用注意事项 在拥有质量可靠的机器后，还必需严格遵循必要的注意事项，才能更好发挥作用。所谓铁打的营盘流水的兵，实验室里学生一批批进来又毕业，特别要严格培训才能减少意外发生。还记得多年前学校里一世行贷款的大离心机坏了请老外来维修，看看离心腔壁上液迹斑斑，残留在个别转子孔里面临时平衡用的草纸或者胶垫，学生们配平时的随随便便，老外嘀咕了一句——难以相信中国著名学府的研究生是这样做实验的。类似的话在若干年后又听到了多次，比如上海送来维修的一把自动测序的排针式上样器——上样的细金属针应该浸泡清洗，但是却被用火烧来消毒——针都堵掉了，或者被人为地扭曲或折断了，当时也有人问——这就是你们中国最好的学府、最好的实验室、最好的学生用过的？每一次听到都一样的无地自容。其实很多仪器的损坏仅仅是因为我们怕麻烦、马虎一点或者想省点事——也许当时没有立即出问题，但损坏却一点一点的累积下去。每个学生都严格一点，不单可以减少无谓的损坏，也可以使实验顺利很多。 1.样品的装载和平衡　由于离心时产生很大的离心力。当转子所带的样品不平衡时会产生很大的力矩，轻者引起机器发抖和震动，重者会扭断转轴造成事故。因此离心样品的平衡装载是特别要注意的问题。离心转速越高，对平衡的要求也越高，除了小型离心机转轴较软有一定调节能力而允许目测平衡外，所有离心机均要求用天平平衡样品。离心管至少要两两对称平衡，或者三个一批对称平衡，最好是一样重。水平转子不要空转。在平衡时不仅要保证对称的两管样品等重，还要保证二者密度和体积相当。因为离心时产生的力矩不仅与样品的重量有关，还和样品的旋转半径有关。例如一管水和半管砂子虽然重量相等，但半管砂子的旋转半径要大一些，所以力矩相差很大，转动起来并不平衡。所以处于对称位置的两个离心管必须装载密度相近的样品。例如要同时离心两个样品，一管是用蒸馏水稀释的，另一管是用60%的蔗糖配制的。虽然两管重量相等，但不可配成一对离心，而必须另装一管水和一管60%的蔗糖作为平衡物分别配重，否则不能正常运转。 2. 转子的保管和使用要严格按照说明。 3. 离心管的选择应该参照离心管的说明和材料，防止不适当的使用导致破裂，不但损失样品还会污染转子和离心机。在超速离心时为了减小阻力，都是在真空状态下运行。所以除了不锈钢和厚壁聚碳酸脂(PC)离心管外，样品必须装满，否则离心管会因真空而变形或破裂。常规的高速或者低速离心则不要装满，所有带盖的转子、水平吊篮、试管盖都要盖紧，防止样品外泄而失去平衡。使用角转子时必需盖转头盖，否则离心腔内会产生很大的涡流阻力和摩擦升温，这等于给离心机的电机和制冷机增加了额外负担，影响离心机的使用寿命。

常用离心管材料: 玻璃离心管不能在高速或者超速离心机上使用。 PP (polypropyiene，聚丙烯) 半透明。化学及温度性能稳定，但低温下发脆。不要在4℃以下离心。 PA (polyallomer，聚丙烯和聚乙烯的聚合物) 半透明。化学性质最稳定，但高温易变软。 CAB (cellulose acetobutyrate，醋酸丁酯纤维素)　LH为0－15℃下使用，HT为20－40℃下使用。透明。可用于较稀的酸、碱、盐。但当pH=8以上，有机溶剂，重盐如CsCl时仅有限条件下可用。适用于酒精及蔗糖梯度。 PC (polycarbonate，聚碳酸酯)：透明度好，硬度大，能耐高温消毒。但不耐强酸强碱及某些有机溶剂如酒精、油、MDSO。可不装满。主要用于5万rpm以上离心。 PCR (polyclear，超透明)　与PC相似，但比PC更硬 PE (polyethylene，聚乙烯) 不透明。对丙酮、醋酸、盐酸等稳定。高温易变软，必须装满。 PS (polystyrol，聚苯乙烯)　透明坚硬。对大多数水溶液稳定，但不能沾许多有机物，一次性使用。多用于低速离心。 PF (polyflor，聚氟)　-100℃－140℃下使用，半透明。 不锈钢　能抗热，抗化学腐蚀，能高压消毒，但较重，也较贵。 CN管：质地较软，透明，但不耐强酸强碱及某些有机溶剂，不能高压消毒。适合于蔗糖、甘油等密度梯度离心。透明，利于收集。

工业用离心机按结构和分离要求，可分为过滤离心机、沉降离心机和分离机三类。 离心分离机的作用原理有离心过滤和离心沉降两种。离心过滤是使悬浮液在离心力场下产生的离心压力，作用在过滤介质上，使液体通过过滤介质成为滤液，而固体颗粒被截留在过滤介质表面，从而实现液-固分离；离心沉降是利用悬浮液(或乳浊液)密度不同的各组分在离心力场中迅速沉降分层的原理，实现液-固(或液-液)分离。 还有一类实验分析用的分离机，可进行液体澄清和固体颗粒富集，或液-液分离，这类分离机有常压、真空、冷冻条件下操作的不同结构型式。

实验室离心机使用时注意事项：是我自己总结的，有很多漏洞，请见谅 就三条： 1.放置离心管的时候一定要对称的放置！！这样才能转起来，保证不偏，比如有四个放置离心管的位置，一定要放入两个离心管而且是隔一个放一个 2.在开启离心机的时候一定要将离心机的盖子盖上 3.开启和关闭离心机的时候一定是速度慢慢增加或者减小的，不能一下子使速度改变很快 还有一点，就是在保证离心管对称外，还要保持重量相当。 液体最好也不要是沸点太低的，要注意内外气压比。 如果是有毒试剂还要做好通风处理。

离心时间的确定 相同离心力，离心时间与试液中分离的物质比重差异成反比，物质比重大的分离时间短，比重小的分离时间长。 相同试液，分离时间与离心力成反比，离心力大，离心时间短。离心力小，离心时间长。 离心时间与最小离心半径有关，较长的吊篮(试瓶)需要较长的离心时间。 所以分离时间难以计算，一般由试验来决定。

3. 处理组织：把组织块置于烧杯中，用Hanks液漂洗2~3次，去除血污；如怀疑组织可能污染，可先置于含有青链霉素的混合液中30~60分钟。 4. 剪切：用眼科剪把组织切成2~3毫米大小的块，以便于消化。加入比组织块总量多30~50倍的胰蛋白酶液，然后一并倒入三角烧瓶中，结扎瓶口或塞以胶塞。 5. 消化：或用恒温水浴，或置于37℃温箱消化均可，消化中每隔20分钟应摇动一次，如用电磁恒温搅拌器消化更好。消化时间依组织块的大小和组织的硬度而定。 6. 分离：在消化过程中见消化液发混浊时，可用吸管吸出少许消化液在镜下观察，如组织已分散成细胞团或单个细胞，立即终止消化，随即通过适宜不锈钢筛，滤掉尚

层析, 经典的蛋白质鉴定方法如氨基酸序列分析等, 现代质谱技术, 基因组学研究的各种手段, 现代计算机信息学和计算机网络通讯技术等等, 任何可用于蛋白质研究的技术手段, 蛋白质组学都可能会采用。 它体现的是一个开放的思维和研究方式。 　　蛋白质-蛋白质的相互作用是细胞生命活动的基础和特征。 这种千变万化的相互作用以及由此形成的纷繁复杂的蛋白质联系网络同样也是蛋白质组学的研究内容, 相应的工作也已经开展。 　　酵母双杂交系统(yeast two-hybrid system)自建立以来已经成为分析蛋白质相互作用的强有力的方法之一。 该方法在不断完善, 如今它不但可用来在体内检验蛋白

1． 细胞培养 10cm细胞培养皿，50ml、15ml一次性离心管，10ml玻璃吸管（灭菌），与玻璃吸管配套的吸球及胶管，二氧化碳培养箱，倒置显微镜。 细胞营养液（DMEM液体培养基，10％胎牛血清，双抗100单位/ml），消化液（0.05％胰酶，0.53mM EDTA•Na），Hank’s液。

4. 从液氮保存罐中取出冻存管，立即放入400C水浴中，快速摇晃，直至冻存液完全融化。 5. 将细胞悬液移入15ml离心管，缓慢加入4ml培养液，离心（1000r/min，5min）。 6. 用培养液悬液混悬沉淀细胞，调整细胞浓度，方培养箱中培养。 7. 记录复苏日期。 【注意事项】 1. 取细胞的过程中注意带好防冻手套，护目镜。此项尤为重要，细胞冻存管可能漏入液氮，解冻时冻存管中的气温急剧上升，可导致爆炸。 2. 冻存液的问题：冻存液的配置已是常识，

以分析其表达，测定表达对细胞生长的影响，或将高表达的基因产物纯化。将外源DNA导入哺乳动物细胞有两种途径：稳定（永久）或暂时性转染。稳定转染的目的是将转移基因整合到细胞染色体DNA上，形成稳定表达转移基因的细胞系。一般需要共转染一个选择标记，用于追踪转染成功的细胞或转染效率。暂时性转染的目的是为了分析转移基因的暂时转录或表达，一般在转染后1-4天内进行。针对培养细胞的外源DNA导入已发展出多种技术，其中常用的有磷酸钙介导的转染，DEAE-葡聚糖介导的转染，脂质体介导的转染，电穿孔法等。这4种方法除DEAE-葡聚糖法外，均可用于暂时性转染和永久性转染。但它们有各自适用的细胞系。培养的细胞不同，其在摄取和表达外源DNA的能力上可能存在几个数量级的差异。因此针对细胞系优化并比较几种不同方法的效率很重要。

者是将抗原液与佐剂按比例混合后，置于混合器上使之剧烈振荡(频率2900转／分，振幅6mm)；后者是将免疫用的佐剂和抗原液按比例混合后，吸入注射器内再将注射器连接于三腔管上反复抽吸研磨。这两种方法约1小时即可使抗原充分乳化。 3.佐剂一方面可提高特异性免疫反应的效果获得高效价的免疫血清，但若抗原不纯时，可使抗原中极微量的污染物(0.005mgN)产生抗体，以致导致免疫血清的纯

选择离心分离机须根据悬浮液(或乳浊液)中固体颗粒的大小和浓度、固体与液体(或两种液体)的密度差、液体粘度、滤渣(或沉渣)的特性，以及分离的要求等进行综合分析，满足对滤渣(沉渣)含湿量和滤液(分离液)澄清度的要求，初步选择采用哪一类离心分离机。然后按处理量和对操作的自动化要求，确定离心机的类型和规格，最后经实际试验验证。 通常，对于含有粒度大于0.01毫米颗粒的悬浮液，可选用过滤离心机；对于悬浮液中颗粒细小或可压缩变形的，则宜选用沉降离心机；对于悬浮液含固体量低、颗粒微小和对液体澄清度要求高时，应选用分离机。

(1)正确安装和拆卸转头，拆下的转头要妥善保养，及时擦拭和涂油；(2)正确选用转头，不能在高速运转时使用低速转头，否则将可能导致转头损坏，发生事故；(3)当转头有严重腐蚀时应停止使用；(4)由于转头的长期运转会引起材料的疲劳损伤．因此有必要作好使用时间记录，当转头的使用时间达到规定的期限后，即使肉眼观察没有发现问题也应停止使用，避免发生事故。 c．转头的温度设定 离心机有三个温度值，一是由操作者用SET旋钮设定的需要的工作温度SETTEMP，二是由操作者用OVERTEMP旋钮设定的转头超温保护系统的起控温度OVERTEMP，三是转头运转时的实际温度ACTUALTEMP。要使电机正常运转

功能"的,这样可以有效的降低采购成本，但是选购的时候需要注意选择，转子拆装方便的离心机，一般的离心机转子与主轴直接配合，厂家为了降低噪音往往把主机和转子的配合度做得相当高，但这样最大的弊端就是转子容易与主轴咬死造成拆卸不方便，另外，这种转子与电机的配合方式还存在很强的方向性，当转子方向与电机主轴配合发生偏移时会造成较大的噪音影响整机的使用寿命，严重的话将会造成主轴断裂，转子爆炸。象德国sigma离心机就是采用膨胀夹套方式将转子固定在主轴上，这样不论多长时间都能轻松的拆装转子，不会出现咬死的情况。最常用的转子包括固定角转子和水平转子。转子越齐当

(2)地线要牢:房间的电源的布线要符合要求。我国是三相四线制。三相是工业电中的三相,使用三相电时零线与地线分开,更重要的是不管是三相工业电也好,一般的单相电也好,地线应可靠,以免漏电,地线不能接在暖气管、自来水管上。 (3)地面要平整、牢固:对大型离心机而言,在安装地点搬动地板要牢固,保证离心机的转子正常工作,不陷凹进去,安装固定处地面应平整且牢固。 (4)找好水平:找较准确的小型水平尺,离心机盖子打开,在主轴上找水平,通过调整4个脚轮旁边的调整螺栓的拧动来找好水平,注意其中1脚不能落空。 2　装样找平衡 离心机在设计与制造时,对转子的加工误差带来的不平衡,已作了动平衡试验的补救,但凡是离心机,都有其允许的装样不平衡量。离心机厂商为了在离心机允许的最大不平衡限量这一指标上与其他厂家竞争,尽量给出较大值。在

4 ）锰；能提高钢的强度，能消弱和消除硫的不良影响，并能提高钢的淬透性，含锰量很高的高合金钢（高锰钢）具有良好的耐磨性和其它的物理性能． 　　（ 5 ）硅；它可以提高钢的硬度，但是可塑性和韧性下降，电工用的钢中含有一定量的硅，能改善软磁性能． 　　（ 6 ）钨；能提高钢的红硬性和热强性，并能提高钢的耐磨性． 　　（ 7 ）铬；能提高钢的淬透性和耐磨性，能改善钢的抗腐蚀能力和抗氧化作用．

转严重不平衡。具体方法是正确安装好一个转头，将水平仪平放在转头上，反复调整离心机前面的两个可调螺钉．直到完全水平。 b．正确使用转头 (1)正确安装和拆卸转头，拆下的转头要妥善保养，及时擦拭和涂油；(2)正确选用转头，不能在高速运转时使用低速转头，否则将可能导致转头损坏，发生事故；(3)当转头有严重腐蚀时应停止使用；(4)由于转头的长期运转会引起材料的疲劳损伤．因此有必要作好使用时间记录，当转头的使用时间达到规定的期限后，即使肉眼观察没有发现问题也应停止使用，

1. 加热方式： 气套式加热和水套式加热，两种加热系统都是精确和可靠的，同时它们都有着各自的优点和缺点。水套式加热是通过一个独立的水套层包围内部的箱体来维持温度恒定的，其优点：水是一种很好的绝热物质，当遇到断电的时候，水套式系统就可以比较长时间的保持培养箱内的温度准确性和稳定性（维持温度恒定的时间是气套式系统的3－4倍），有利于实验环境不太稳定（如有用电限制，或者经常停电）并需要保持长时间稳定的培养条件的用户选用。气套式加热是通过遍布

O2后，引起漏出的电阻丝阻值变化，电桥平衡被破坏。根据信号大小的变化，测量CO2浓度 热导传感器简单，成本低，线性较好，用的最多。缺点是反应慢（因此只能慢慢加气），会腐蚀，容易零位漂移，所以一般仪器使用说明书上都要求使用2-6个月要做零点校正。否则会产生极大的误差。

2. 用D-PBS 洗涤细胞一至二次。 3.1.3. 加入trypsin-EDTA 溶液1ml/25cm2, 2ml/75cm2，37 oC 作用数分钟，于倒 立显微镜下观察，当细胞将要分离而呈现圆粒状时，吸掉trypsin-EDTA 溶 液。若不移去trypsin-EDTA，则在trypsin-EDTA 作用后，加入适量含血清 之新鲜培养基终止trypsin 作用，离心后再吸掉上清液。 3.1.4. 轻拍培养瓶使细胞自瓶壁脱落，加入适量之新鲜培养基，以吸管上下吸放数 次以打散细胞团块，混和均匀后，依稀释比例转移至新的培养瓶

3. 瓶装500ml 血清解冻步骤逐步解冻法: -20 oC 或–70 oC 至4 oC 冰箱溶解一天，至室 温下全溶后再分装，一般以50 ml 无菌离心管可分装40～45 ml。在溶解过程中须规则摇 晃均匀小心勿造成气泡，使温度与成分均一，减少沈淀的发生。勿直接由–20 oC 直接 至37 oC 解冻，因温度改变太大，容易造成蛋白质凝结而发生沈淀。 4. heat-inactivation 是指56 oC, 30 分钟加热已完全解冻之血清。加热过程中须规则摇晃均 匀。此热处理之目的是使血清中之补体

ethanol 擦拭无菌操作抬面，并开启无菌操作台风扇运转10 分钟后，才开始实验操作。每 次操作只处理一株细胞株，且即使培养基相同亦不共享培养基，以避免失误混淆或细胞间 污染。实验完毕后，将实验物品带出工作台，以70 % ethanol 擦拭无菌操作抬面。操作间 隔应让无菌操作台运转10 分钟以上后，再进行下一个细胞株之操作。 2. 无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞，必要物品，例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可 以暂时放置，其它实验用品用完即应移出，以利于气流之流通。实验用品以70 % ethanol 擦 拭后才带入无菌操作台内。实验操作应在抬面之中央无菌区域，勿在边缘之非无菌区域操 作。 3. 小心取用无菌之实验物品，避免造成污染。勿碰触吸管尖头部

离心机 centrifuge 利用机件旋转产生的离心力实现悬浮液、乳浊液及其他物料的分离或浓缩的机器。 2 过滤离心机 filtering centrifuge 实现离心过滤的离心机。 3 三足式离心机 three - column centifuge