叶酸盐类似物样品

国家药监总局（CFDA）南方医药经济所副所长陶剑虹在第四届生物类似物发展论坛上表示，目前，CFDA正式启动了生物类似物药物监管准则的编制，预计年内将向企业发布技术指南。“将按照欧盟和WHO的相关规定，分别针对创新型和非创新型品种建立不同的监管审批原则”。　　在国内生物类似物法规一片空白的背景下，该指南对生物制品行业的意义巨大。一位接近国家药品审评中心（CDE）的与会专家也透漏，CFDA正在研究制定生物类似物的相关审评监管政策，CDE专门对生物类似物企业指南进行开会讨论。“会前第一版内部已经有了，会后第一版据说年底就会有。不过，与此前业内期望国家出台符合中国国情的生物类似物政策不同的是，该指南更趋向于是一个国际标准，可能在执行操作方面才会有中国特色”。　　据陶剑虹介绍，从明年起到2018年，全球进入专利药物到期密集期，而面对生物类似物巨大的机遇，我国却在政策层面上面临阻碍，没有明确的生物类似物研发指导原则和相关法规。为此，国内38位院士联名上书，呼吁尽快出台适合国情的生物类似物审批政策，缩短审批流程，为生物类似物创造良好环境，建言报告也得到了积极回应。　　据了解，我国《药品管理法》2001年颁布，最新的配套细则也有7年历史，且未对生物类似物发布明确的技术指南。国内涉足生物类似物的药企只能按照创新药的开发流程来报批，开发过程繁琐冗长，消耗了大量的时间和资金。2011年-2013年，我国企业每年申请审批的生物制品超过1000种，但能获批上市的只有70余种。　　相较之下，世界各国针对生物类似物已出台了相应的监管政策。欧洲早在2006年就建立了初具规模的生物类似物审批途径；美国FDA的监管态度也日趋明朗，今年9月出台的生物类似药紫皮书为该类药物的研发和推进奠定了基石；日本、韩国、澳大利亚均发布了生物类似物审批的指导原则；巴西、墨西哥、委内瑞拉、哥伦比亚和印度也已经发布了生物类似物审批的草案。

最近看了文献，发现有些检测样品，三聚氰胺很少，但是其类似物含量确很高，因此仅检测三聚氰胺是不够的（从专业技术上讲，管理部门仅三聚氰胺已经够头疼的),除了植物蛋白中--那个标准方法外,大家有好的方法同时检测三聚氰胺4种类似物.特别是样品前处理有好办法吗?

【中文名称】蛋氨酸羟基类似物；液体羟基蛋氨酸；2-羟基-4-甲硫基-丁酸；MHB【英文名称】methionine hydroxy-analog; Alimet;MHB【结构或分子式】 【密度】1.23（20℃）【粘度 mPa·s（20℃）】0.105 ；0.035（38℃） ；0.5（0℃）【性状】 外观为深褐色粘液。有硫化物特殊气味。【用途】 用作饲料添加剂时可作为蛋氨酸营养补充剂，促进动物生长发育。【制备或来源】 以丙烯醛为原料，在催化剂作用下同甲硫醇反应，生成的甲硫基丙醛与氢氰酸给催化剂作用合成2-羟基-4甲硫基丁腈，在硫酸存在下水解，经精制得成品。【其他】 凝固点-40℃。是单体、二聚体和三聚体组成的平衡混合物，含量分别为65%、20%、3%。 在使用该产品后，需用水冲净皮肤，若眼睛粘上该产品，亦需用清水冲洗。【包装及贮运】 用250kg塑料桶运载。【生产单位】 美国孟山都公司

分享标准，均自网络收集，上传者不保证资料完整性以及版权。下载仅供研究，请勿用于其他用途。研究完毕请及时删除，若有正版需求，请联系出版单位。GB 5413.16-2010 婴幼儿食品和乳品中叶酸(叶酸盐活

我在做谱的时候发现,一些盐酸盐类化合物氢谱和碳谱都挺好的,化合物纯度挺好,量也够,但做HSQC(或HMQC)和HMBC的时候,就很弱,有的相关点很难出来,想知道是何原因.

二恶英及其类似物Ⅲ食品测定方法【http://www.china-pops.net】中国食品卫生杂志ZHONGGUO SHIPIN WEISHENG ZAZHI1999年第11卷第5期Vol.11No.5　1999二恶英及其类似物Ⅲ食品测定方法吴永宁　赵云峰关键词：二恶英 食品 检验方法　　食品中PCDD/Fs分析属超痕量(pg-fg)、多组分(同系物、异构体的分离)和复杂前处理技术，对特异性、选择性和灵敏度的要求极高，成为当今食品和环境分析领域的难点。目前仅在发达国家的少数实验室能够开展。WHO指出仅有约100个实验室具备检测能力。〔1〕超痕量分析是因二恶英在环境样品中水平极低，WHO规定的TDI为1～4pg/kgBW；〔2〕相应要求食品中PCDD/Fs测定方法的检测限以脂肪计低于1pg/g(甚至为fg/g水平的测定)，不到其它污染物含量的1/1000。所谓多组分是指PCDD/Fs中各同系物、异构体的毒性相差很大，具毒性的17种2,3,7,8-取代PCDD/Fs具有毒性，进行危险性评价时需选择性测定。而PCDD/Fs共有210个同系物、异构体，加上209个PCBs，共有419个二恶英及其类似物。另外，试样在进行仪器分析前要浓缩至1/1000、1/10000，提取液中的PCDD/Fs比其共提取物和基质中同系物及其它氯代化合物等干扰组分低得多，使得这一超痕量分析极为困难。只有良好的净化技术及特异性的分离手段才能满足要求。〔3～5〕为保证分析质量，国际组织及有关国家建立了官方分析方法与指南，如国际癌症研究中心（IARC）〔4〕、欧盟的公共标准局〔6〕、美国环境保护局(EPA)〔7，8〕和美国食品药品管理局(FDA)。〔9〕　　FAO/WHO食品法典委员会正在着手建立食品二恶英限量标准和相应检验方法，起草人认为高分辨[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]与高分辨质谱联用技术（HRGC-HRMS）是目前唯一适用的的化学方法。而用DNA重组技术建立的生物学方法在二恶英总TEQ水平测定可达到特异性、选择性和灵敏度的要求，且所测结果与HRGC-HRMS方法相当，可作为大量样品筛选手段。〔10〕1[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]与质谱联用的化学分析方法　　PCDD/Fs的化学分析有两种不同的方案，一为分析所有PCDD/Fs，目的在于了解各化合物的分布形式，鉴定其可能的来源；另一为仅测定2,3,7,8-取代的17种PCDD/Fs。后一方法较完善，以美国EPA1613方法为代表的HRGC-HRMS方法已成为各国公认的仲裁方法。本文主要以此为基础对这一领域的进展作简要综述。　　环境及生物材料中PCDD/Fs的分析主要包括5个方面，即：样品采集、提取、净化、分离及定量测定。〔4，6〕1.1样品采集〔4，6〕　与有机氯农药残留检测方法相似，但PCDD/Fs应更注意安全操作和避免试验过程中的污染。PCDD/Fs具有光解作用，尤其在溶液中低氯代化合物光解作用更为迅速。故样品应避光、低温保存。样品的取样量依样品类型、污染水平、潜在干扰物质与方法的检测限而定。一般样品为1～50g，对于含脂低、污染轻的样品必要时可增加到100～1000g。1.2提取〔4～10〕　提取前，加入13C或37Cl标记的内标，用以测定提取净化效率与矫正分析丢失。PCDD/Fs的提取方法与有机氯农药残留检测方法相似，包括溶解、振摇、混匀、超声或索氏提取。提取步骤和溶剂选择取决于样品类型和净化方法。如脂肪和油可采用二氯甲烷+已烷（1+1）直接提取；其它食品可使用不同比例的提取溶剂，采用包括索氏提取在内的各种提取方法。许多实验室对比试验已经表明鱼、猪脂肪、牛奶、母乳、人血和脂肪组织所用各种提取方法回收率的可接受性。〔11～15〕作为新技术使用CO2为流体的超临界流体提取方法，也用于生物样品中PCDD/Fs的提取。〔16〕

[b]LIB-V2010-010_三聚氰胺及其类似物的检测(2010)-20100210[/b][url]http://ishare.iask.sina.com.cn/f/6767398.html[/url]LIB-V2010-010_三聚氰胺及其类似物的检测(2010)-20100210.rar说明：扉页 - 1 - 目录 - 1 - 1 三聚氰胺的资料 3 1.1 三聚氰胺事件 3 1.2 亲水色谱检测三聚氰胺的策略 3 1.3 有关科技论文 4 1.4 三聚氰胺及同系物的风险评估 4 1.5 FDA有关消息（FDA News） 5 1.6 更多信息（More information） 6 2 三聚氰胺及类似物的检测 6

建立一种简单、快速、准确同时测定大米蛋白粉中三聚氰胺及其类似物三聚氰酸、三聚氰胺一酰胺、三聚氰胺二酰胺的方法。样品经二乙胺- 水- 乙腈(1:4:5，V/V)超声提取30min 后，提取液于70℃条件下氮气吹干，在吡啶介质中经甲基硅烷化衍生后采用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]- 质谱仪测定(内标法定量)。此方法检测限为0.5mg/kg、线性相关系数(20～1000μg/L 范围内)不小于0.9989；当加标量为1.0～5.0mg/kg 时，平均回收率为72.01%～96.45%、相对标准偏差不大于6.3%。此方法可用于大米蛋白粉中三聚氰酸及其类似物的检测。

磷酸盐类化合物，用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]液质联用[/color][/url]定量，用的C18柱子，质谱条件可以优化，但是[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]液质[/color][/url]却没有峰。在普通HPLC中可以出峰，也是C18柱，是为什么呢？

[font=微软雅黑][color=#444444]我在使用Q-tof，ESI源使用甲酸钠进行质量轴的矫正，现在遇到些想不清楚的问题。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#444444] 1. 质谱是解析有机化合物的吗，易挥发组份的吗？[/color][/font][font=微软雅黑][color=#444444] 2. 对于醋酸盐类的物质可以进行解析吗？我在做醋酸镍时发现它也会像甲酸钠一样形成簇离子，溶液中存在多种化合物。但醋酸盐是无机物。质谱适用于分析醋酸盐类样品吗？[/color][/font][font=微软雅黑][color=#444444] 3.什么样的物质适用于质谱分析？有机物，有机化合物，无机盐，还是易挥发的物质？[/color][/font][color=#444444] 4.[font=微软雅黑][color=#444444]如果能让待测物质带上电荷，即满足质谱测定条件，是一个合理的说法吗？[/color][/font][/color][font=微软雅黑][color=#444444] 最近真的开始不懂质谱了，需要各位大侠的帮助，谢谢。[/color][/font]

各省、自治区、直辖市和新疆生产建设兵团市场监管局（厅、委）：近年来，宣称功能食品非法添加药品、药品衍生物或类似物的违法案件时有发生，危害人民群众身体健康。近期，总局组织内蒙古、江苏、安徽、福建、广东等（省、区）市场监管部门查办了宣称“减肥”功能食品非法添加药品、药品衍生物或类似物系列案件，认定了检验方法，并出具了专家有毒有害认定意见。现将《酚汀（酚丁）、酚酞及其酯类衍生物或类似物有毒有害专家认定意见》（附件）发给你们，可作为案件查办中甄别有毒有害物质成分、实施定罪量刑的参考。市场监管部门应当从速从严查处此类案件，依法吊销许可并处罚相关责任人；涉嫌犯罪的，要及时移送公安机关处理。附件：酚汀（酚丁）、酚酞及其酯类衍生物或类似物有毒有害专家认定意见[align=right]市场监管总局办公厅[/align][align=right]2023年10月8日[/align]（此件公开发布）附件[align=center][font=方正小标宋简体][color=black]酚汀（酚丁）、酚酞及其酯类衍生物或类似物[/color][/font][/align][align=center][font=方正小标宋简体][color=black]有毒有害专家认定意见[/color][/font][/align]双丙酚汀是双醋酚汀的类似物，双醋酚汀曾为地方标准批准的药品，但后未获得国家药品监督管理部门批准作为药品或原料药品生产或进口；其类似物双丙酚汀也从未获得国家药品监督管理部门批准作为药品或原料药品生产或进口；双醋酚汀类似物酚酞虽曾为国家获批的药物，但由于其存在严重不良反应，国家药监局于2021年发布了《关于注销酚酞片和酚酞含片药品注册证书的公告（2021年第6号）》。根据《食品安全法》，食品不得添加药物，而该类原料也从未获得批准作为食品添加剂或新食品原料，以及保健食品原料，因此，在食品中检出酚汀（酚丁）、酚酞及其酯类衍生物或类似物（如4-氯双醋酚丁），均属于非法添加。由于酚汀（酚丁）、酚酞及其酯类衍生物或类似物与酚酞具有相同/相似的核心药效团和临床功效，具有类似属性和危害性，因此，添加有上述物质的食品有对人体产生毒副作用的风险，影响人体健康，甚至可危害生命。

对于盐酸盐类的样品流动相是否选碱性的？选择碱性流动相走出的峰拖尾很严重，是不是色谱柱选择有要求？

近日，单位购进一台离子色谱（戴安ICS-1100）从中看到相关资料，可以测定食品中的硝酸盐和亚硝酸盐，常用 的食品检测食品中的硝酸盐和亚硝酸盐的方法费时，且涉及到使用蛋白沉淀剂或固相萃取等一系列的样品前处理步骤，当处理应急事故时，显得很滞后.按照GB/T5009.33-2003 要求，处理、提取、上机。 问题：　　　一、请问如何考虑亚硝酸盐类型的食物中毒事件？　　　　　　二、处理亚硝酸盐类的食物中毒的步骤又是什么呢？　　　三、用离子色谱测定亚硝酸盐样品时注意什么？（往往含量很高）　　　　　四、对于亚硝酸盐检测的分离柱有什么要求？　 很希望有经验的版友，不吝赐教！感谢！！

我想问下各位大神，溶解性总固体一定大于总硬度和硫酸盐、氯化物等盐类的和吗，实际做的水样溶解性总固体的数值并没有它们大，但是之前有专家质疑过我们的数据，我在网上也找不到理论支撑，有没有相关文献探讨过这个问题呢？

新浪下载地址[url=http://ishare.iask.sina.com.cn/f/6767398.html][color=#0365bf]http://ishare.iask.sina.com.cn/f/6767398.html[/color][/url]LIB-V2010-010_三聚氰胺及其类似物的检测(2010)-20100210.rar说明：扉页 - 1 - 目录 - 1 - 1 三聚氰胺的资料 3 1.1 三聚氰胺事件 3 1.2 亲水色谱检测三聚氰胺的策略 3 1.3 有关科技论文 4 1.4 三聚氰胺及同系物的风险评估 4 1.5 FDA有关消息（FDA News） 5 1.6 更多信息（More information） 6 2 三聚氰胺及类似物的检测 6本论坛下载地址：[url=http://bbs.instrument.com.cn/shtml/20100210/2395991/]http://bbs.instrument.com.cn/shtml/20100210/2395991/[/url][url]http://bbs.instrument.com.cn/download.asp?ID=201073[/url]

理论上所有氮含量比蛋白质高的物质都可能被非法添加用以提高蛋白质的检测含量，不过按照违法者的思路，违法添加物应当氮含量高、无异味、颜色与乳制品类似、能溶于水，08年爆出的三聚氰胺即具有以上特点。按GB 5009.5-2010 《食品安全国家标准 食品中蛋白质的测定》检测乳制品中的蛋白质，其中的测定误差也会包括一些含氮的非蛋白质物质，（见GB/T 21704-2008 《乳与乳制品中非蛋白氮的测定》）。本文即针对乳制品中的某种含氮的非蛋白质物质进行方法学研究和测定。学习心得：本文建立了气质联用测定乳制品中三聚氰胺类似物的方法。在日常检验时发现部分数据异常，就对问题进行深入研究，发现其实是一种含氮的非蛋白质物质。再对这种物质进行检索，其实也是符合可能被用来非法添加的理想性能。因为目前尚无该物质的检测方法，因此我们认为很有必要对其检测方法进行研究。 由于性质与三聚氰胺类似，故前处理的思路类似，但毕竟结构不同，又对条件进行了分析优化：样品经萃取，固相萃取净化，提取液氮气吹干后衍生化试剂，于一定温度下衍生一段时间，采用气相色谱-质谱仪选择离子模式外标法测定。采用气质法定量先需找到特征离子：（1）通过对标准物质采用全扫描模式分析会产生哪些离子碎片；（2）在其中选择四个丰度较高且不是背景流失或干扰的离子最为定量离子（这里尤其要注意在全扫描模式下不要选择了柱流失离子，我是采用HP-5MS柱，差点选了背景流失的m/z=73）。另外，如果想了解物质在质谱中以何种基质裂解的，可以使用NIST的质谱分析功能：先在NIST中搜寻到要分析的物质质谱图，再右键单击选择“MS Interpreter”。试试看，效率很高的。 方法定量限为0.05mg/kg；线性相关系数（0.2~50mg/L）大于0.99；在实际样品中加标10、40mg/L，回收率为81.6~ 119.2%，相对标准偏差不大于9.1%。此方法能有效除去干扰、灵敏度高，回收率较好。P.S:不是三聚氰酸，实际上是检测过程中发现数据异常才对该物质进行研究的，具体是什么先卖个关子，感兴趣的朋友不妨回去翻翻自己过去的数据，或许也会有发现^_^

多巴胺，1,2,3,4-tetrahydro-1-methylisoquinoline-6,7-diol和异丙基肾上腺素极性较大，应用C18柱，苯基柱，氨基柱和腈基柱在反相条件下均无保留，采用五氟苯基柱有较好的保留行为，能有效的将多巴胺及其类似物分离。同时我们发现五氟苯基柱对单苯环的分类化合物有较好的分离效果。[img]http://www.instrument.com.cn/bbs/images/affix.gif[/img][url=http://www.instrument.com.cn/bbs/download.asp?ID=22315]多巴胺类药物的分离[/url]

最近在做磷酸盐类项目（焦磷酸盐，三偏磷酸盐，六偏磷酸盐，三聚磷酸盐）想要鉴定他们每一个的纯度，我看国标关于偏磷酸盐的纯度是用P2O5计的，为什么采用这种计算方法呢，那在测三偏磷酸盐纯度时，若试剂里面含有六偏磷酸盐不就会对结果产生干扰吗，那要如何准确对他们进行定值呢，谢谢

食品中PCDD/Fs分析属超痕量(pg-fg)、多组分(同系物、异构体的分离)和复杂前处理技术，对特异性、选择性和灵敏度的要求极高，成为当今食品和环境分析领域的难点。目前仅在发达国家的少数实验室能够开展。WHO指出仅有约100个实验室具备检测能力。〔1〕超痕量分析是因二恶英在环境样品中水平极低，WHO规定的TDI为1～4pg/kgBW；〔2〕相应要求食品中PCDD/Fs测定方法的检测限以脂肪计低于1pg/g(甚至为fg/g水平的测定)，不到其它污染物含量的1/1000。所谓多组分是指PCDD/Fs中各同系物、异构体的毒性相差很大，具毒性的17种2,3,7,8-取代PCDD/Fs具有毒性，进行危险性评价时需选择性测定。而PCDD/Fs共有210个同系物、异构体，加上209个PCBs，共有419个二恶英及其类似物。另外，试样在进行仪器分析前要浓缩至1/1000、1/10000，提取液中的PCDD/Fs比其共提取物和基质中同系物及其它氯代化合物等干扰组分低得多，使得这一超痕量分析极为困难。只有良好的净化技术及特异性的分离手段才能满足要求。〔3～5〕为保证分析质量，国际组织及有关国家建立了官方分析方法与指南，如国际癌症研究中心（IARC）〔4〕、欧盟的公共标准局〔6〕、美国环境保护局(EPA)〔7，8〕和美国食品药品管理局(FDA)。〔9〕 　　FAO/WHO食品法典委员会正在着手建立食品二恶英限量标准和相应检验方法，起草人认为高分辨[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]与高分辨质谱联用技术（HRGC-HRMS）是目前唯一适用的的化学方法。而用DNA重组技术建立的生物学方法在二恶英总TEQ水平测定可达到特异性、选择性和灵敏度的要求，且所测结果与HRGC-HRMS方法相当，可作为大量样品筛选手段。〔10〕

分享一个金属螯合物二丁基二硫代氨基甲酸锌的残留量测定[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]方法。样品经四氢呋喃-乙腈（体积比为10∶90）超声提取制得供试品溶液。流动相：四氢呋喃-乙腈（体积比为35∶65），供试品溶液经SunFire C18色谱柱分离后，用254 nm检测波长进行HPLC测试。本方法检出限和定量限分别为20和30 ng，加标回收率为98. 84～102. 58%，供试品溶液在6 h内稳定。本方法简便、准确、灵敏、稳定。由于二丁基二硫代氨基甲酸锌与二硫代氨基甲酸盐类化合物是类似物，该研究也能为二硫代氨基甲酸盐类物质的分析提供有益借鉴。详见谢兰桂等， 橡胶工业. 2022,69(07)。

【序号】：1【作者】：金利群； 李晓庆； 李宗通； 柳志强； 郑裕国； 沈寅初； 【题名】：蛋氨酸羟基类似物的生产工艺及其在动物营养中的应用【期刊】：综述 【年、卷、期、起止页码】： 2013年07期【全文链接】：http://www.cnki.net/KCMS/detail/detail.aspx?QueryID=1&CurRec=1&recid=&filename=DWYX201307008&dbname=CJFD2013&dbcode=CJFQ&pr=&urlid=&yx=&uid=WEEvREcwSlJHSldTTEYzU3EyU1k0YS84eTUzU2ZlVGJya3ZQc2NsNXNBMD0=$9A4hF_YAuvQ5obgVAqNKPCYcEjKensW4IQMovwHtwkF4VYPoHbKxJw!!&v=MTYxMThNMUZyQ1VSTHlmYitabUZ5emhWTHJLSVRyU2RyRzRIOUxNcUk5RmJJUjhlWDFMdXhZUzdEaDFUM3FUclc=

根据试验经验和结果，二硫代氨基甲酸盐类物质在分析前注意样品的制备方法，这对检测结果的真实性有很大影响。田间样品和实验室样品决不能切碎，更不能匀浆成均质，否则会导致二硫代氨基甲酸盐类物质大量损失掉。制样要在冷冻的条件下进行，决不允许冷冻样品化冻后再制样。对于小的样品，像谷类、豆类、小水果，混合均匀后，称取分析所需的量。对于大的样品，就必须切碎，如果可能的话，要在冷冻的状态下进行，混匀后，称取分析所需的量。对于软的多汁的农产品，像西红柿，桃子，要预先冷冻，保证样品制备过程中没有汁液流出。

实验室买了套waters 的仪器跟柱后衍生系统，想做氨基甲酸盐类农药，请教各位老师们，有没有柱后衍生试剂包的，买那个牌子的比较好

[align=center][b]HPLC法测定果冻类样品中叶酸含量的方法学建立[/b][/align][align=center]顾琛 [/align][align=left][b]摘要：目的：[/b]本文采用反相高效液相色谱法建立测定果冻类食品叶酸（folic acid）含量的分析的方法。[b]方法：[/b]使用C[sub]18[/sub]柱作为分析柱，磷酸缓冲液和甲醇作为流动相，紫外检测器作为检测器，叶酸（Pteroylmonoglutamic acid）作为对照品，果冻食品作为样品。[b]结论：[/b]该法在50ng/mL-1000ng/mL之间呈良好的线性，重现性好RSD＜2%，回收率在107±2%，稳定性良好，最小检测限20ng/mL。样品测试结果与微生物检测结果相符。本法可以作为测定食品中叶酸含量的一个方法。[/align][b]关键词：[/b]叶酸，HPLC， 果冻样品[b]Abstracts ：Aim:[/b] A simple method for the determination offolic acid in gel sample by high-performance liquid chromatography withUV-detection is reported. [b]Methods: [/b]The method was simple by using RP-column (C[sub]18[/sub])with phosphorate -methanol as mobile phase and UV as a detector. [b]Conclusion: [/b]The calibration graph was linear from 50 to1000ng/mL for folic acid with a correlation coefficient of 0.999(n=5). Thedetection limit is 20ng/mL. The method was successfully applied fordetermination of folic acid in the gel sample. The recovery was 107±1.5% and the reletive standard deviation was no morethan 2%. Compared with microbiology method, the results of the samples are same.This method can be used for content determination of the folic acid in gelsample.[b]Key Words:[/b] folic acid, HPLC, gel sample [b]1.前言与文献综述1.1叶酸的理化性质，生物学功能[/b] 叶酸(folic acid)是一组含有碟酰谷氨酸结构的一类化合物统称。食物中的叶酸绝大多数是以喋酰多谷氨酸(或称多谷氨酸叶酸)的形式存在的。叶酸为淡黄色结晶粉末，微溶于水，不溶于乙醇、乙醚及其它有机溶剂；叶酸的钠盐易溶于水，但在水溶液中易被光解破坏，分解成碟啶和氨基苯甲酰谷氨酸盐。在酸性溶液中对热不稳定，而在中性和碱性溶液中却十分稳定。食品中叶酸经受热易损失。 食物叶酸经小肠粘膜细胞内特异叶酰多谷氨酸水解酶的作用，水解为喋酰单谷氨酸(或称单谷氨酸叶酸，PteGlu①)后吸收。吸收后的单谷氨酸叶酸一部分又转变为多谷氨酸叶酸，在肝脏、红细胞及其他组织细胞内贮存，其余部分则以单谷氨酸叶酸的形式分布于血浆、组织液、胆汁及尿液中。肝脏的叶酸浓度是血浆的几百倍，但其单谷氨酸叶酸浓度与血浆相近。叶酸以8种辅酶形式存在于生物体内，为一碳单位的载体参与嘌呤、嘧啶等重要物质的合成。[sup] [/sup]因此叶酸在DNA、RNA、核酸和蛋白质的生物合成中起着重要作用，是细胞增殖和机体发育的物质基础。叶酸在体内的含量直接影响到多种物质如核苷酸的代谢，进而影响血细胞的形成。[b]1.2目前测定叶酸的一些主要方法以及对各个方法的评价1.2.1微生物法[/b] 微生物法是检测生物体内叶酸的经典方法。[color=black]它最根本的原理在于利用了微生物对于某些营养物质的特异性。大量的研究发现，某种微生物会对某种维生素具有极强的特异性，是其正常生长所必需的维生素，并且在一定条件下，其生长与繁殖速度与溶液中该维生素的含量成一定的对应关系，含量高则生长快，反之则慢，微生物法便利用了这种对应关系间接地测定出样品中该维生素的含量。[/color]通常所用的微生物有干酪样乳酸杆菌（L.casei）、粪链球菌和啤酒小球菌属。此3种微生物对不同形式叶酸的敏感度不同。粪链球菌只对非甲基化叶酸敏感，如PteGlu、二氢叶酸(DHF)和四氢叶酸(THF)。 微生物分析叶酸[color=black]具有极高的灵敏度准确度高、先期投入少，见效快、测定结果反映了样品中具有生物活性的被测物含量等优点。许多国际标准方法机构仍旧将微生物法作为叶酸分析的标准方法或第一方法。[/color] 但是微生物法也有许多局限性，如整个实验周期长，批间检测结果重复性差，检测结果受样品中所含抗叶酸药物或抗生素成分的影响，[color=black]只能反映维生素的总含量，不能测定维生素各种异构体的组成和含量[/color]等。[b]1.2.2同位素放射免疫法[/b] 同位素放射免疫法检测血清叶酸始于70年代初。该方法具有快速、简便的特点，同时由于叶酸放射免疫试剂盒的出现，很快得到普及，尤其广泛应用于临床实验室。放射免疫法与微生物法检测叶酸，除原理不同外，检测结果的意义也有所不同。对大量标本总体而言，两种方法结果相关性较好，但对个体标本，两种方法结果的差异较大。微生物法对多谷氨酸叶酸响应值低，不能直接用于检测叶酸含量。但微生物法对所有单谷氨酸叶酸及其衍生物的反应灵敏度相同，故在用叶酸水解酶处理样品使所有叶酸形式转变为单谷氨酸叶酸后进行检测，可得到准确的叶酸值。同位素放射免疫法对多谷氨酸叶酸反应的相对灵敏度有较大的差别，随着叶酸浓度增加，反应的相对灵敏度增加，但多谷氨酸叶酸的反应曲线不可能与单谷氨酸叶酸的反应曲线重合；另一方面，多谷氨酸叶酸与结合蛋白的亲合性与单谷氨酸叶酸相比较高，不同的单谷氨酸叶酸衍生物反应灵敏度不同，放射免疫法也不适用于检测单谷氨酸叶酸衍生混合物。由于上述原因，尽管放射免疫法可用于检测和评价叶酸的营养状况，但从定量检测的角度来讲，难以得到准确的叶酸含量值。[b]1.2.3离子捕获法[/b] Wilson等提出离子 捕获法检测叶酸，该技术可谓叶酸检测技术中的最新方法，即在实验中，样品加入变性剂后叶酸与内源性结合蛋白分离，释放后的叶酸再与带有大量阴离子的亲合试剂结合，合成产物经过离子捕获池而与阳离子纤维结合，最后通过碱性磷酸酶与喋酸(叶酸的类似物)结合物对叶酸结合蛋白上游离结合位点的探查，定量分析样品的叶酸含量。该研究证实，离子捕获法测定血清或红细胞叶酸，其结果与同位素放射免疫法的结果具有良好的相关性，相关系数分别为0.96 和0.93。[b]1.3色谱法和HPLC法在测定食品中叶酸含量的现状[/b][align=left] 色谱法也称层析法，是一种分配平衡为基础的分离分析技术。色谱分离体系包含两相：固定相和流动相。由流动相带领的[color=black]物质分子在固定相间分配达到“平衡”的过程。通过不同物质分配平衡性质的差异达到彼此分离。[/color][/align][align=left][color=black] 20[/color][color=black]世纪[/color][color=black]70[/color][color=black]年代初发展起来的高效液相色谱（[/color][color=black]High performance liquidchromatography, HPLC[/color][color=black]）吸收了普通液相层析和[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]的优点，经过适当改进发展起来的。它既有普通液相层析的功能（可在常温下分离制备水溶性物质），又有[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]诸多优点（高速、高分辨率和高灵敏度）。适用于很多不易挥发、受热易分解的物质定性定量分析。[/color][sup][/sup][color=black][/color][/align][align=left] 运用高效液相色谱（HPLC）方法来定量食品中叶酸含量在近年来得到了普及。借助于色谱柱的高分离效果和灵敏的检测器，有能力来分离检测不同形式叶酸。中国药典方法使用高效液相色谱－紫外检测器检测叶酸。由于有些叶酸具有荧光特性，D.MP.Johan等[sup][/sup]使用高效液相色谱－荧光－紫外检测器的串连（HPLC-FD-UV）分析面包酵母中叶酸含量。R.Stefania[sup][/sup]等同样使用HPLC-FD-UV分析意大利食品中叶酸含量。由于食品中的干扰物质多，且叶酸含量较少，E.J.M.Konings[sup][/sup] 使用固相萃取法（SPE）对样品进行纯化和富集，然后使用HPLC-FD-UV检测牛奶，肝脏，蔬菜，面粉中的叶酸。L.H Douglas[sup][/sup] 等用HPLC-柱前衍生和HPLC-电化学检测器分别检测牛奶和其它食品中叶酸含量。随着技术的进步，高效液相色谱和质谱联用（HP[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]LC-MS[/color][/url]）提供了专一性好，灵敏的方法。A.Freisleben[sup][/sup]使用LC-FD-MS联用检测食品中叶酸含量。[/align][align=center][b]表一：几种液相色谱联用的检测器方法的比较：[/b][/align][align=center][b]Table 1. Comparison of some detectors of HPLC [/b][/align] [table=649][tr][td=1,1,61] [align=center]检测器[/align] [/td][td=1,1,192] [align=center]原理[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]灵敏度[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]专一性[/align] [/td][td=1,1,108] [align=center]检测限②[/align] [/td][td=1,1,132] [align=center]评注[/align] [/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,2,61] [align=center]紫外[/align] [align=center](UV)[/align] [/td][td=1,2,192] 物质在紫外光谱有吸收[/td][td=1,2,72] [align=center]较高[/align] [/td][td=1,2,84] [align=center]稍强[/align] [/td][td=1,2,108] [align=center]2μg/100mL[/align] [/td][td=1,2,132] 受到食品中其它物质干扰较大。[/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,2,61] [align=center]荧光[/align] [align=center](FD)[/align] [/td][td=1,2,192] 共轭结构在激发光下电子激发到高能态，退激回基态时能量以荧光形式释放，根据荧光强度得待测物浓度。[/td][td=1,2,72] [align=center]高[/align] [/td][td=1,2,84] [align=center]强[/align] [/td][td=1,2,108] [align=center]不能检测[/align] [/td][td=1,2,132] 能检测四氢叶酸和5－甲基四氢叶酸。而叶酸（Pt-Glu）③无荧光性质。[/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,2,61] [align=center]电化学(ECD)[/align] [/td][td=1,2,192] 外加电压使特征物质失去电子，根据失去电子形成电流大小得出待测物质的浓度。[/td][td=1,2,72] [align=center]高[/align] [/td][td=1,2,84] [align=center]强[/align] [/td][td=1,2,108] [align=center]0.32pmol[/align] [/td][td=1,2,132] 灵敏度高，专一性强。但是装备复杂。[/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,2,61] [align=center]质谱[/align] [align=center](MS)[/align] [/td][td=1,2,192] 特征碎片离子检测[/td][td=1,2,72] [align=center]较高[/align] [/td][td=1,2,84] [align=center]强[/align] [/td][td=1,2,108] [align=center]0.1μg/100mL[/align] [/td][td=1,2,132] 不普及，价格高。但是发展方向。[/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,1,0] [/td][/tr][/table][b]1.4方法学建立的目的和意义以及技术路线1.4.1方法学建立的目的和意义[/b] 由于人体内的叶酸几乎完全依赖于食物的摄入，因此当摄入量不足或利用率低时，体内便会出现叶酸缺乏的状况。近年来的研究表明，叶酸缺乏会导致贫血、慢性下痢、食欲不振、发育迟缓等疾病，孕妇补充叶酸可防止因神经系统发育不全而形成的畸胎，儿童服用叶酸可提高智商，促进智力发展。所以，叶酸强化食品的摄取对人类健康具有重要意义。而叶酸强化食品的含量的科学性显得十分重要。 确实食品添加剂的质和量决定着加工类食品的营养和安全性。国外对于食品营养和安全十分关注，通过在加工食品的包装上注明的添加成分、营养物质的含量、适宜人群在产品包装，以利于不同需求的消费者选择。随着国内外交流的加强和HACCP认证的推进以及质量意识的增强，食品安全，食品营养受到了消费者和食品生产企业的关注。随着分析测试仪器的先进化和自动化给食品中各个成分的测定提供了强有力的“武器”，尤其是高效液相色谱的普及，它的高效性、准确性、方便、微量等优点是食品分析的一场“革命”。国内外HPLC法测定食品营养成份和食品添加剂方法发展得很快，相关报道较多。但是由于叶酸在食品中添加量甚微，食品中干扰物质较多，所以相应的文章报道相对较少。基于以上考虑设立本项目，具体目的有以下四点：[list=1][*]建立高效液相色谱方法分离分析果冻类样品中叶酸含量的方法学；[*]通过色谱条件的摸索和优化，获得叶酸分离的最佳条件；[*]对样品前处理条件的摸索和调整，得到简便、快速、有效的样品前处理方法；[*]通过对本套方法学的验证包括线性、精密度、回收率、稳定性等实验，建立可靠、完善、准确的测定果冻类样品中叶酸含量的方法学。本方法的建立，可为检测果冻类样品中叶酸含量提供可靠和准确的手段，也为检测其他食品中叶酸含量提供参考资料，所以本研究具有社会效益和经济价值。[/list][b]1.4.2技术路线[/b] 色谱条件的建立（流动相配比、色谱柱选取、检测波长、流速、柱温） [img=,51,13]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710139504_8563_1626663_3.png[/img] 积分条件的建立 [img=,51,14]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710137869_6909_1626663_3.png[/img] 确立标准品、样品配制方法 [img=,51,13]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710142106_9538_1626663_3.png[/img] 方法学验证（线性回归、精密度、回收率、稳定性、样品含量测定）[img=,40,14]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710143330_4024_1626663_3.png[/img] 方法学的改进 [b]2.实验部分2.1实验样品的描述2.1.1样品性质[/b] 无色或淡黄色果胶类样品。常温下为胶态和液态混合物。样品名称（AminoVital Supersports；AminoVital-1；AminoVital-2）。[b]2.1.2样品中添加的主要物质[/b] 添加氨基酸，维生素类，甜味剂，食用香精，食用色素，有机酸。[b]2.1.3可能的干扰因素[/b] 根据配料表信息，氨基酸、甜味剂、色素等物质在样品中较维生素几十倍量添加，而维生素中又以维生素C添加量最大，叶酸添加量相当少。所以上述物质对叶酸分析造成较大的干扰。[b] 2.1.4标准品和样品保存条件[/b] 标准品避光保存于冰箱冷冻柜中。样品置于-18℃冷藏库中保存。[b]2.2实验条件2.2.1仪器和试剂及标准品[/b]仪器配置：岛津LC-10A系列 泵：LC-10ADVP真空脱气机：DGU-12A控制器：SCL-10AVP紫外检测器：SPD-10AVP自动进样器：SIL-10ADVP柱温箱：CTO-10ASVP积分仪：CR-8A和LC-Solution积分工作站试剂：磷酸二氢钾（GR），氢氧化钾（GR），甲醇（HPLC），氨水（GR），纯水（HPLC）标准品：叶酸标准品（Pteroylglutamic Acid），纯度：98.0～102.0％ 和光特级[b]2.2.2HPLC方法条件建立[/b]2.2.2.1流动相配制 0.05mol/L磷酸二氢钾（pH=6.33）：甲醇＝92：8（体积比），作为流动相。 称取7.0g KH[sub]2[/sub]PO[sub]4[/sub]置于1000mL烧杯，加入800mL纯水，溶解。通过滴加0.1mol/L KOH溶液，调节缓冲液pH值为6.33，转移至1000mL容量瓶中，加入80mL甲醇，再用纯水定容至刻度，摇匀。用0.45μm微孔滤膜过滤。装瓶。2.2.2.2检测器和检测波长 使用紫外检测器。使用λ＝285nm作为检测波长。2.2.2.3色谱柱 ODS柱作为本次实验的分离分析柱。2.2.2.4流速和柱温选 流速设0.6mL/min；柱温选定为35.0℃2.2.2.5色谱条件： 色谱柱：Shim-pack VP-ODS 4.6mm×150mm 粒度：5μm (P/N 228-34937-91) 流速：0.6mL/min 检测器：紫外检测器 波长：λ＝285nm 进样量：100μL 分析时间：100分钟（对于标准品测试仅需40分钟） 柱温：35.0 ℃ [b]2.3标准品配制（线性浓度配制）[/b] 标准品在使用前先放置于五氧化二磷干燥器至室温，并且避光保存。称取5.1mg叶酸（Pteroylglutamic Acid, 纯度：98.0～102.0％ 和光特级）标准品，置于50mL棕色容量瓶中，用0.5％氨水溶液稀释，定容，摇匀。作为贮备液。用移液管吸取叶酸贮备液1mL，移入100mL棕色容量瓶中，用0.5％氨水溶液稀释，定容，摇匀。浓度为1020ng/mL.（STD 5）。分别吸取STD 5溶液1mL, 1mL, 5mL, 5mL, 置于20mL, 10mL, 25mL, 10mL容量瓶中，用0.5％氨水溶液稀释，定容，摇匀。浓度分别为 51ng/mL.（STD 1）；102ng/mL.（STD 2）；204ng/mL.（STD 3）；510ng/mL.（STD 4）。[align=center][b]表二：标准品及对应的浓度[/b][/align][align=center][b]Table 2．Standard and their concentrations[/b][/align][align=center] [table=307][tr][td=1,1,72] [align=center]标准品[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]　[/align] [/td][td=1,1,72] [/td][td=1,1,91] 浓度(ng/mL)[/td][/tr][tr][td] [align=center]STD1[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]51[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]STD2[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]102[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]STD3[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]204[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]STD4[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]510[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]STD5[/align] [/td][td] [align=center]　[/align] [/td][td] [align=center]　[/align] [/td][td] [align=center]1020[/align] [/td][/tr][/table][/align][b]2.4精密度重复性[/b] 5个标准均连续进样6次，测试标准品相对标准偏差。[b]2.5标准品稳定性[/b] 5℃保存的半个月的叶酸标准品贮备液，放至室温。用移液管吸取1mL移入100mL棕色容量瓶中，用0.5％氨水定容，摇匀。再用移液管吸取上述溶液，移入10mL棕色容量瓶中。用0.5％氨水定容，摇匀。连同新试验配制的同浓度标准品一起测试。观察叶酸标准品在0.5％氨水溶液中的稳定性。 [b]2.6样品前处理步骤[/b] 精密称取样品5.00g置于25mL棕色容量瓶中，用0.5%氨水溶解，定容，摇匀。超声波超声10分钟。10000rpm离心10分钟。取上清液，用0.45μm微孔滤膜过滤。作为检液。[b]2.7样品配制[/b] 每个样品测试3次，样品分析后，在各样品中添加1mL STD5标准品，来确定样品溶液中叶酸的保留时间。样品分析时间100分钟。[b]2.8样品回收率[/b] 样品名称：Amino Vital ATP 19582 精密称取样品5.00g，置于25mL棕色容量瓶中，用0.5％氨水溶解，定容，摇匀。10000rpm离心10分钟。吸取上清液，用0.45μm微孔滤膜过滤。作为空白检液。 精密称取10.00g样品，置于50mL棕色容量瓶中，用移液管吸取5mLSTD 5 溶液，移入同一容量瓶中， 用0.5％氨水溶解，定容，摇匀。10000rpm离心10分钟。吸取上清液，用0.45μm微孔滤膜过滤。作为回收率试验检液。[b]2.9确定最小检测浓度[/b] 用移液管吸取STD3标准品1mL置于10mL棕色容量瓶中，用0.5％氨水溶解，定容，摇匀。浓度为20ng/mL.[b]3.结论3.1标准曲线[/b][align=center][b]表三：标准品浓度和峰面积[/b][/align][align=center][b]Table 3.Standard concentration with their peak area[/b][/align][align=center] [table=288][tr][td=1,1,72] [align=center]C(ng/mL)[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]　[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]　[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]平均面积[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]51[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]16661[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]102[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]33061[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]204[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]66948[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]510[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]168852[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]1020[/align] [/td][td] [align=center]　[/align] [/td][td] [align=center]　[/align] [/td][td] [align=center]331618[/align] [/td][/tr][/table][/align][align=center][img=,547,246]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710144650_39_1626663_3.png[/img][/align][align=center][b]图一：叶酸标准品浓度和面积线性关系图[/b][/align][align=center][b]Fig1.Linearity of HPLC method[/b][/align]叶酸标准品线性回归方程： Y＝325.58x+555.10 R=0.9999 式中Y是面积；x是浓度；R是相关系数。[img=,553,174]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710143198_4423_1626663_3.png[/img][align=center][b]图二：204ng/mL叶酸标准品色谱图[/b][/align][align=center][b]Fig 2.Chromatogram of folic acid standard (204g/mL)[/b][/align][b]3.2精密度[/b]每个标准品重复测试6次，各相对标准偏差见表四：[align=center][b] [/b][/align][align=center][b]表四：叶酸标准品精密度测试数据[/b][/align][align=center][b]Table4.Percise of standards[/b][/align][align=center] [table=288][tr][td=1,1,72] [align=center]C(ng/mL)[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]　[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]　[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]RSD%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]51[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]1.13%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]102[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]1.20%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]204[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]1.53%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]510[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]0.22%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]1020[/align] [/td][td] [align=center]　[/align] [/td][td] [align=center]　[/align] [/td][td] [align=center]0.34%[/align] [/td][/tr][/table][/align][b]3.3样品测试结果表五：HPLC方法测定的果冻类样品中叶酸含量Table 5. Folic acid content in gel samples(μg/100g) by HPLC[/b] [table][tr][td=1,1,516] 样品名 HPLC测定量(μg/100g)[/td][/tr][/table]1.Amino Vital 31.7Supersports 2. Amino Vital-1 17.63.Amino Vital-2　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 17.9 [table][tr][td=1,1,516] [/td][/tr][/table][b]3.4 回收率[/b]样品名：Amino Vital 　ATP 19582[b] 表六：添加回收率测定Table 6. Recoveries of folic acid to sample[/b] [table][tr][td=1,1,504] Amino Vital 回收率[/td][/tr][/table]1． 106％2 107%3． 109％ [table][tr][td=1,1,504] 平均回收率为107±1.5％[/td][/tr][/table][b] [/b][img=,528,162]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710147516_2748_1626663_3.png[/img][align=center][b]图三：回收率测试空白图谱（Amino Vital ATP 19582）[/b][/align][align=center][b]Fig 3.Recovery test chromatogram Blank(Amino Vital )[/b][/align][img=,528,164]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710146335_2905_1626663_3.png[/img][align=center][b]图四：回收率测试添加叶酸标准溶液图谱（Amino Vital ）[/b][/align][align=center][b]Fig 4.Recovery test chromatogram by adding folic acid standardsolution(Amino Vital )[/b][/align][b] 3.5 HPLC法与微生物法测试结果比较[/b]日本的国家标准是使用微生物方法测定叶酸的含量。微生物方法测定的是食品中总的叶酸含量，应该比HPLC方法测的的值要大些。为了比较HPLC方法的准确性，通过对应样品比较得知。[b]表七：微生物测定值与HPLC测定值比较Table 7. Comparison of the result of mircobiology method and HPLC method[/b] [table][tr][td=1,1,516] 样品名 微生物测定值(μg/100g) HPLC测定值(μg/100g)[/td][/tr][/table]1.Amino Vital 44 31.7Super sports 2. Amino Vital 18 17.6 3.Amino Vital　　　　　　　　　20　　　　　　　　 　17.9 [table][tr][td=1,1,516] [/td][/tr][/table][b]3.6总体评价及方法适应性[/b] 通过以上实验以及对实验数据的分析和比较，得出本方法线性拟合良好， 精密度高，最小检测限低。样品添加回收率在107±2％内，并且样品测试结果与微生物方法测试结果作比较，两者数据相近。本方法简便，前处理相对简便，可以为检测果冻类样品中叶酸含量提供可靠和准确的分析手段，同时也为其它食品中叶酸含量的检测提供参考。[b]4.讨论4.1分析条件选取 4.1.1流动相 [/b]流动相在HPLC分离分析中起着至关重要的作用。 过实验确定了本次实验的流动相。原因如下：[list=1][*]叶酸在碱性水溶液中溶解且稳定性较好，而大多数ODS柱在pH=2.0～7.0范围内使用，所以本文使用的流动相pH值在6.3比较适合[*]通过实验发现水相和甲醇的配比为92：8（v/v）分离效果最好。样品中叶酸和前面的杂质完全分离。[*]使用磷酸二氢钾和氢氧化钾来调节离子浓度和pH值。这时色谱峰形呈正态曲线，柱效最高。[/list][b]4.1.2检测器和检测波长[/b] 叶酸中有苯环和碟酰结构，图五。所以可以用紫外检测器来检测。虽然叶酸中有共轭结构，但是通过实验发现Pteroylglutamic Acid 无荧光吸收。所以不能使用荧光检测器。 由于条件限制，无全波长扫描的紫外光度计和二极管阵列检测器。所以通过文献和实验来找最佳波长。根据报道[sup][/sup]，叶酸在265nm，285nm至290nm以及365nm处有极大吸收。在265nm，285nm，290nm，365nm分析同一叶酸标准品，发现λ＝285nm处峰形最高。[b] [/b][align=center][img=,363,124]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710151110_6182_1626663_3.png[/img][/align][align=center][b]图五：叶酸的分子结构[/b][/align][align=center][b]Fig 5. Molecular structure of folicacid (Pteroylglutamic Acid)[/b][/align][b]4.1.3 进样量[/b] 所以根据本实验室条件，100μL的进样量适合并且满足实验要求。[b] 4.1.4分析时间[/b] 由于标准品在30分钟内就已出来，所以标准品采集时间仅需30分钟。但是样品中成分复杂，一定把样品中组分全部出尽才能进下一个样品。通过实验样品的采集时间为100分钟。[b]4.2试样标准的配制讨论 4.2.1样品试液选取[/b] 原则：确保叶酸在溶液中溶解且不被破坏。 实验证明：叶酸不溶解于纯水中，在酸性溶液中不稳定。而使用0.5％氨水溶液较好地溶解叶酸，而且通过稳定性实验，叶酸在该试液中稳定，峰面积无显著变化。[b] 4.2.2标准品浓度选取[/b] 本实验样品的浓度恰好在线性范围内，而且标准品浓度与响应值呈一元线性关系。[b] 4.2.3样品前处理[/b] 样品使用0.5％氨水溶液溶解。由于样品呈液胶状，超声波超声可以击碎胶状物质，使其分散。通过实验发现10分钟超声可以使之形成均一、稳定的溶液。[b]5.后续工作及前景[/b] 由于条件的限制和目的要求的局限，本文只对一种叶酸化合物进行分析测试，而食品中的叶酸形式有五种之多。通过流动相摸索和梯度洗脱完全能够使不同形式的叶酸得到分离，以此扩大分析的范围。同时叶酸分析也可以通过色谱条件的摸索与其它物质（尤其是水溶性维生素）一起分析，达到提高效率的目的。为了使灵敏度提高，高效能的检测器的选择有着可观的前景。现在困扰我们分析叶酸含量的主要问题是样品中叶酸含量甚微，仅仅是ng级。紫外检测器最小检测限也就是这个级别。本文也指出：一味地扩大样品称样量或增加样品进样量会导致噪音增大，同样不能提高灵敏度。所以象一些专属性较强的检测器如荧光检测器，电化学检测器是考虑的一个方向。荧光检测器的灵敏度可以达到pg级。对于荧光检测器不能检测Pteroylglutamic Acid，是由于该物质没有荧光发色基团。我们可以通过柱前或柱后衍生的方法让其接上荧光发色基团，或者是柱前分离柱后通过反应液改变它的结构，提高检测的灵敏度。而使用电化学检测器需要摸索诸如电离电压，流动相等等条件。由于电化学检测器它的专属性很高，不容易受到干扰物质的影响。它应该是一个发展方向。从样品前处理的角度考虑，前处理步骤越少，分析时间更短，目标物在处理时损失越少，相对实验成本越低是改进原有实验方法的目标。一般对于含有复杂成分且目标分析物含量甚微的样品要去除干扰物质然后富集待测组分。固相萃取技术（solidphase extraction, SPE）应当是一个比较好的样品前处理方法。但是固相萃取技术的一个弱点是样品容易损失，回收率不高引起准确性不高。荷兰的Knoing教授使用亲和层析（affinity chromatography）的方法来提高待测物富集和纯化的效率。可见食品中叶酸分析应该还是一个难点，同时又是一个热点。快速高效准确的方法会随着仪器性能的进步和方法的进一步完善成熟而成熟。[b]6.参考文献[/b][list=1][*]中国药典编委会．中国药典（2000）二部，北京：化学工业出版社，2000.[*]Johan D.M. P. Jelena A. J. Sofia B.H., Development of aSimplified Method for the Determination of Folates in Baker’s Yeast by HPLCwith Ultraviolet and Fluorescence Detection. J.Agric. Food Chem. 2005,53:2406-2411.[*]Douglas L.H. RandyL.W. Michael G.Z., Determination ofnative folates in milk and other dairy products by high-performance liquidchromatography. J.Chrom. 1988, 449 : 271-279.[*]Stefania R. Liisa T.V. AlteroA., Determination of folate vitamersin food and in Italian reference diet by high-performance liquidchromatography.J.Chrom A . 1999, 855: 237-245.[*]Konings EJM，A validated LC method for the determinationof folates in vegetables, milk powder, liver and flour.J AOAC Int. 1999, 82: 119-127.[*]Eduward Chu. James C.Drake. Donna Boarman, Mechanism of Thymidylate Synthase Inhibition by Methotrexate inHuman Neoplastic Cell Lines and Normal Human Myeloid Progenitor, J. Biochem.1990,265: 8470-8473.[*]Pamela J.Bagley Jacob selhub,Analysis of Folate Form Distribution by Affinity Followed by Reversed-PhaseChromatography with Electrochemical Detection, Clin. Chem. 2000, 46: 404.[*] FreislebenA. Schieberle P. Rychlik M., Comparison of folate quantification in foods byhight-performance liquid chromatography-fluorescence detection to that bystable isotope dilution assays using high-performance liquid chromatography-tandemmass spectrometry. Anal. Biochem. 2003, 315: 247-255.[*] 赵永芳.生物化学技术原理及应用(第三版)．北京：科学出版社，2003.10[*] 吴坤等.营养与食品卫生学（第五版）．北京：人民卫生出版社，2005.[/list][hr/] ①PteroylglutamicAcid②检测限是以叶酸（Pt-Glu）来计算。③微生物测定值是日本食品研究所用微生物法测定。

一直听说磺酸盐类的对C18柱的伤害挺大的。想问下各位遇到测这类物质时如何维护C18柱的？ 是不是做完后，用甲醇多冲冲？

[color=#444444]今日做合成反应检测时发现季铵盐类的样品在阴阳离子扫描模式下扫描所得的物质分子量相同，均为539，为什么啊？是不是季铵盐类本身带有一个正电荷，就不在通过争夺或是丢失质子来带电呢？还是有其他的原因？[/color]