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  • 等电聚焦(最后))

    等电聚焦电泳法测定蛋白质的等电点 一、实验目的 了解等电聚焦的原理。通过蛋白质等电点的测定,掌握聚丙烯酰胺凝胶垂直管式等电聚焦电泳技术。二、实验原理 等电聚焦(Isoelectric focusing,简称IEF)是六十年代中期出现的新技术。近年来等电聚焦技术有了新的进展,已迅速发展成为一门成熟的近代生化实验技术。目前等电聚焦技术已可以分辨等电点(pI)只差0.001pH单位的生物分子。由于其分辨力高,重复性好,样品容量大,操作简便迅速,在生物化学、分子生物学及临床医学研究中得到广泛的应用。 蛋白质分子是典型的两性电解质分子。它在大于其等电点的pH环境中解离成带负电荷的阴离子,向电场的正极泳动,在小于其等电点的pH环境中解离成带正由荷的阳离子,向电场的负极泳动。这种泳动只有在等于其等电点的pH环境中,即蛋白质所带的净电荷为零时才能停止。如果在一个有pH梯度的环境中,对各种不同等电点的蛋白质混合样品进行电泳,则在电场作用下,不管这些蛋白质分子的原始分布如何,各种蛋白质分子将按照它们各自的等电点大小在pH梯度中相对应的位置处进行聚焦,经过一定时间的电泳以后,不同等电点的蛋白质分子便分别聚焦于不同的位置 。这种按等电点的大小,生物分子在pH梯度的某一相应位置上进行聚焦的行为就称为“等电聚焦”。等电聚焦的特点就在于它利用了一种称为两性电解质载体的物质在电场中构成连续的pH梯度,使蛋白质或其他具有两性电解质性质的样品进行聚焦,从而达到分离、测定和鉴定的目的。 两性电解质载体,实际上是许多异构和同系物的混合物,它们是一系列多羧基多氨基脂肪族化合物,分子量在300~1000之间。常用的进口两性电解质为瑞典Pharmacia-LKB公司生产的Ampholine 和Pharmalyte,价格昂贵。国产的有中国军事医学科学院放射医学研究所和上海生化所生产的两性电解质,价格便宜,质量尚佳。两性电解质在直流电场的作用下,能形成一个从正极到负极的pH值逐渐升高的平滑连续的pH梯度。若不同的pH值的两性电解质的含量与pI值的分布越均匀,则pH梯度的线性就越好。对Ampholine两性电解质的要求是缓冲能力强,有良好的导电性,分子量要小,不干扰被分析的样品等。 在聚焦过程中和聚焦结束取消了外加电场后,如保持pH梯度的稳定是极为重要的。为了防止扩散,稳定pH梯度,就必须加入一种抗对流和扩散的支持介质,最常用的这种支持介质就是聚丙烯酰胺凝胶。当进行聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳时,凝胶柱内即产生pH梯度,当蛋白质样品电泳到凝胶柱内某一部位,而此部位的pH值正好等于该蛋白质的等电点时,该蛋白质即聚焦形成一条区带,只要测出此区带所处部位的pH值,即为其等电点。电泳时间越长,蛋白质聚焦的区带就越集中,越狭窄,因而提高了分辨率。这是等电聚焦的一大优点,不像一般的其他电泳,电泳时间过长则区带扩散。所以等电聚焦电泳法不仅可以测定等电点,而且能将不同等电点的混合的生物大分子进行分离和鉴定。 早期的等电聚焦电泳是垂直管式的,其特点是体系是封闭的,不与空气接触,可防止样品氧化。近年来,又发展了超薄层水平板式等电聚焦电泳。此法的优点是加样数量多,节省两性电解质,电泳后固定、染色、干燥都十分迅速简便,其最大优点是防止了电极液的电渗作用而引起正负两极pH梯度的漂变。 测定pH梯度的方法有四种: 1. 将胶条切成小块,用水浸泡后,用精密pH试纸或进口的细长pH复合电极测定pH值,然后作图。 2. 用表面pH微电极直接测定胶条各部分的pH值,然后作图。3. 用一套已知不同的pI值的蛋白质作为

  • 热聚焦,溶剂聚焦、固定相聚焦

    热聚焦、固定相聚焦、容剂聚焦在什么时候可以发生,在[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]方法及应用中,溶剂聚焦是指样品在柱头部分或全部冷凝以后,溶剂开始挥发,与溶剂挥发性接近的组分就会浓缩在为挥发的溶剂中,从而产生很窄的初始谱带。热聚焦是指样品在进入柱头冷凝的过程中,由于溶剂先进入色谱柱而导致溶质发生浓缩。看过以后感觉这两个概念好像是一样的,不知道到底有什么区别,请各位老师指点一下。

  • 【资料】-聚焦微波消解

    [b]聚焦微波消解[/b]密封增压微波消解的优点是明.显的。但是,高压消解带来的是复杂的防爆安全装置和可能存在的安全隐患。高压消解的另一个缺点就是取样量不能太大,一般在0.5g以内。针对这些同题,产生了聚焦微波消解技术。该技术将微波聚焦直接瞄准样品进行高效辐射.在常压下对样品进行消解,对安全没有后顾之忧,而且可以一次消解处理多达l0g的有机质样品。专业聚焦微波消解在设计上是通过回流系统来解决在消解过程中元素的挥发损失的。可以选用高沸点的酸来提高消解能力。 从应用上比较,聚焦微波稍解系统相对于密封式微波消解系统有如下优点: ①安全。聚焦微波消解系统在整个操作过程中都不涉及密封式微波消解系统中的压力问题,因此避免了由于压力造成的许多安全隐患。 ⑧非脉冲聚焦微波。各个样品槽通过闭环阀门或门式控制微波的输出,避免了密封式微波消解系统中为解决微波场不均匀的各种措施。非脉冲聚焦。其特征是微波输出功率变化均为持续输出,无脉冲刺激。这更易于控制微波辅助反应,提高消解反应的稳定性和安全性,且有机萃取反应回收率和稳定性也得到改善。 ③白动化操作。密封微波消解中,手工操作试剂较多,当处理不同样品时,同一批次中密封消解只能采用一种方法,会造成样品条件的不一致。而聚焦微波技术实现自动化操作,可以同时实现多达六个样品四种试剂的白动计量添加、自动冷凝回收、自动蒸发浓缩,还可以实现,一机同时多种样品独立程序控制,同时使用六个不同的程序,处理六个不同的样品。 ④石英材料反应容器。密封式微波消解系统中由于采用受温度限制的聚合物材料容器,对不同的溶剂有不间的限制温度,一般不能高于300℃,而聚焦微彼系统采用无高温限制的石英材料反应容器,温度可达450℃ 。因此可根据传统方法选用各种试剂。 ⑤时间。密封式微波消解系统的消解时间略短于聚焦微波系统,但考虑到人工的酸试剂操作时间等因素,加上密封式微波消解系统中的冷却时间,聚焦微波系统整个工作效率并不亚于密封式微波消解系统。另外,聚焦微波系统还有能够随时观察反应情况、冷却快等一系列优点。 聚焦微波消解系统完全自动化的操作,免去了反应前的试剂添加和反应后的蒸发、浓缩、定容步骤。从整体上提高了反应效率,降低了劳动量。聚焦微波消解系统在使用上更安全、灵活,具有广泛的应用前景。当然:在消解极难溶物质时,密封微波系统比聚焦微波系统更胜一筹,其作用是不可能完全被聚焦微波系统所取代的。

  • 软件去模糊与激光共聚焦

    工业用激光共聚焦相对比荧光共聚焦简单得多,因为是单反射, 不涉及波长问题,且是单个通道的信号处理. 因此用软件计算的计算量相对荧光要小几个数量级, 在共聚焦价格居高不下的情况下, 软件去模糊成为了一个卖点. 特点是成本相对要低得多,通常只要在显微镜的Focus机构改成精度高的电动部件与CCD就能满足要求,如果象Leica高级的配了CCD的电动调焦显微镜则不必添加其它硬件,免去了共聚焦的维护与激光高使用成本,并能达到甚至高于激光共聚焦的分辨率水平.唯一付出的是在可以忍受范围的时间等待,越几分钟时间.相关产品有Autodeblur等.

  • 【网络讲座】共聚焦光片成像技术(举行时间:2016-11-17 14:00)

    【网络讲座】共聚焦光片成像技术(举行时间:2016-11-17 14:00)

    讲座名称:共聚焦光片成像技术——让荧光成像速度更快,光毒性更低,光操作更容易  主讲老师:易海英  徕卡显微系统生命科学产品应用专家,2014年毕业于华中科技大学生命科学与技术学院,研究生期间的主要研究方向为力学微环境对肿瘤干细胞及其转移的影响,以及力学信号对胚胎干细胞分化及发育的影响,在激光共聚焦和超高分辨率成像领域积累了丰富经验,参与的文章发表在Nature Communications等杂志期刊上。  主要内容:2014年,光片荧光显微技术(light-sheet fluorescence microscopy)被《Nature Methods》评选为年度技术(Method of the Year 2014)。光片(light sheet)技术简单来说即使用一薄层光束从侧面激发荧光样品,随后从样本的上部或下部检测所产生的荧光信号,即检测方向与照射方向相垂直。该技术能够以很高的三维分辨率对不同大小的固定样品或活样品进行三维成像,快速地捕捉细胞或亚细胞水平上的动态变化。其高速、低毒性、低漂白等优势使得光片技术在生命科学领域开始流行起来。光片荧光显微技术的概念其实早在一百多年前就已经被提出来了,但此后很长时间都没有什么进展,直到近年来才活跃起来,其中徕卡创造性地以其成熟的激光扫描共聚焦系统为平台,直接搭载上光片系统,得到既可以实现光片成像,又可以进行常规单光子成像,还可以将光片与单光子、多光子联合使用以实现和开创更为丰富多样的可能性的系统——Leica TCS SP8 DLS!光片荧光显微技术在细胞生物学、发育生物学、微生物学、植物学等多个领域都有广泛的应用,本次Webinar将着重介绍徕卡共聚焦光片系统DLS在生物学研究领域的应用。 举行时间:2016-11-17 14:00    报名链接:http://www.instrument.com.cn/webinar/meeting/meetingInsidePage/2178http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/01/201701191701_669464_2507958_3.jpg手机扫描二维码,报名参会http://exmail.qq.com/cgi-bin/viewfile?type=signature&picid=ZX0717-9QlCeoL%7EVb5UZDdhPeiRO6f&uin=1407973628

  • 【网络讲座】共聚焦光片成像技术(举行时间:2016-11-17 14:00)

    【网络讲座】共聚焦光片成像技术(举行时间:2016-11-17 14:00)

    讲座名称:共聚焦光片成像技术——让荧光成像速度更快,光毒性更低,光操作更容易  主讲老师:易海英  徕卡显微系统生命科学产品应用专家,2014年毕业于华中科技大学生命科学与技术学院,研究生期间的主要研究方向为力学微环境对肿瘤干细胞及其转移的影响,以及力学信号对胚胎干细胞分化及发育的影响,在激光共聚焦和超高分辨率成像领域积累了丰富经验,参与的文章发表在Nature Communications等杂志期刊上。  主要内容:2014年,光片荧光显微技术(light-sheet fluorescence microscopy)被《Nature Methods》评选为年度技术(Method of the Year 2014)。光片(light sheet)技术简单来说即使用一薄层光束从侧面激发荧光样品,随后从样本的上部或下部检测所产生的荧光信号,即检测方向与照射方向相垂直。该技术能够以很高的三维分辨率对不同大小的固定样品或活样品进行三维成像,快速地捕捉细胞或亚细胞水平上的动态变化。其高速、低毒性、低漂白等优势使得光片技术在生命科学领域开始流行起来。光片荧光显微技术的概念其实早在一百多年前就已经被提出来了,但此后很长时间都没有什么进展,直到近年来才活跃起来,其中徕卡创造性地以其成熟的激光扫描共聚焦系统为平台,直接搭载上光片系统,得到既可以实现光片成像,又可以进行常规单光子成像,还可以将光片与单光子、多光子联合使用以实现和开创更为丰富多样的可能性的系统——Leica TCS SP8 DLS!光片荧光显微技术在细胞生物学、发育生物学、微生物学、植物学等多个领域都有广泛的应用,本次Webinar将着重介绍徕卡共聚焦光片系统DLS在生物学研究领域的应用。 举行时间:2016-11-17 14:00    报名链接:http://www.instrument.com.cn/webinar/meeting/meetingInsidePage/2178http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/01/201701191701_669468_2507958_3.jpg手机扫描二维码,报名参会http://exmail.qq.com/cgi-bin/viewfile?type=signature&picid=ZX0717-9QlCeoL%7EVb5UZDdhPeiRO6f&uin=1407973628

  • 【网络讲座】共聚焦光片成像技术(举行时间:2016-11-17 14:00)

    【网络讲座】共聚焦光片成像技术(举行时间:2016-11-17 14:00)

    讲座名称:共聚焦光片成像技术——让荧光成像速度更快,光毒性更低,光操作更容易  主讲老师:易海英  徕卡显微系统生命科学产品应用专家,2014年毕业于华中科技大学生命科学与技术学院,研究生期间的主要研究方向为力学微环境对肿瘤干细胞及其转移的影响,以及力学信号对胚胎干细胞分化及发育的影响,在激光共聚焦和超高分辨率成像领域积累了丰富经验,参与的文章发表在Nature Communications等杂志期刊上。  主要内容:2014年,光片荧光显微技术(light-sheet fluorescence microscopy)被《Nature Methods》评选为年度技术(Method of the Year 2014)。光片(light sheet)技术简单来说即使用一薄层光束从侧面激发荧光样品,随后从样本的上部或下部检测所产生的荧光信号,即检测方向与照射方向相垂直。该技术能够以很高的三维分辨率对不同大小的固定样品或活样品进行三维成像,快速地捕捉细胞或亚细胞水平上的动态变化。其高速、低毒性、低漂白等优势使得光片技术在生命科学领域开始流行起来。光片荧光显微技术的概念其实早在一百多年前就已经被提出来了,但此后很长时间都没有什么进展,直到近年来才活跃起来,其中徕卡创造性地以其成熟的激光扫描共聚焦系统为平台,直接搭载上光片系统,得到既可以实现光片成像,又可以进行常规单光子成像,还可以将光片与单光子、多光子联合使用以实现和开创更为丰富多样的可能性的系统——Leica TCS SP8 DLS!光片荧光显微技术在细胞生物学、发育生物学、微生物学、植物学等多个领域都有广泛的应用,本次Webinar将着重介绍徕卡共聚焦光片系统DLS在生物学研究领域的应用。 举行时间:2016-11-17 14:00    报名链接:http://www.instrument.com.cn/webinar/meeting/meetingInsidePage/2178http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/01/201701191701_669462_2507958_3.jpg手机扫描二维码,报名参会http://exmail.qq.com/cgi-bin/viewfile?type=signature&picid=ZX0717-9QlCeoL%7EVb5UZDdhPeiRO6f&uin=1407973628

  • 【讨论】关于激光共聚焦显微镜版

    最近观察了一段时间激光共聚焦显微镜版,人气不是很旺。当初是我提出来要将激光共聚焦显微镜单独开版,主要是考虑到国内激光共聚焦显微镜的用户日益增多,而且激光共聚焦显微镜的应用领域与光学显微镜有一定差异,所以作为一个新的设备,应该有很多可以讨论和交流的。但是目前讨论交流确实存在一些问题。激光共聚焦显微镜的用户大头在生物医学研究所和大型医院,似乎这些用户群体不太愿意在论坛上交流,另一个应用领域在材料上,但是国内材料研究领域拥有激光共聚焦显微镜还是少数,所以真正活跃的用户不多。有感于此,建议将激光共聚焦显微镜版划到我的光学显微镜版作为一个子版,我来管理。

  • 等电聚焦电泳法测定蛋白质的等电点

    一、实验目的了解等电聚焦的原理。通过蛋白质等电点的测定,掌握聚丙烯酰胺凝胶垂直管式等电聚焦电泳技术。二、实验原理等电聚焦(Isoelectric focusing,简称IEF)是六十年代中期出现的新技术。近年来等电聚焦技术有了新的进展,已迅速发展成为一门成熟的近代生化实验技术。目前等电聚焦技术已可以分辨等电点(pI)只差0.001pH单位的生物分子。由于其分辨力高,重复性好,样品容量大,操作简便迅速,在生物化学、分子生物学及临床医学研究中得到广泛的应用。蛋白质分子是典型的两性电解质分子。它在大于其等电点的pH环境中解离成带负电荷的阴离子,向电场的正极泳动,在小于其等电点的pH环境中解离成带正由荷的阳离子,向电场的负极泳动。这种泳动只有在等于其等电点的pH环境中,即蛋白质所带的净电荷为零时才能停止。如果在一个有pH梯度的环境中,对各种不同等电点的蛋白质混合样品进行电泳,则在电场作用下,不管这些蛋白质分子的原始分布如何,各种蛋白质分子将按照它们各自的等电点大小在pH梯度中相对应的位置处进行聚焦,经过一定时间的电泳以后,不同等电点的蛋白质分子便分别聚焦于不同的位置 。这种按等电点的大小,生物分子在pH梯度的某一相应位置上进行聚焦的行为就称为“等电聚焦”。等电聚焦的特点就在于它利用了一种称为两性电解质载体的物质在电场中构成连续的pH梯度,使蛋白质或其他具有两性电解质性质的样品进行聚焦,从而达到分离、测定和鉴定的目的。两性电解质载体,实际上是许多异构和同系物的混合物,它们是一系列多羧基多氨基脂肪族化合物,分子量在300~1000之间。常用的进口两性电解质为瑞典Pharmacia-LKB公司生产的Ampholine 和Pharmalyte,价格昂贵。国产的有中国军事医学科学院放射医学研究所和上海生化所生产的两性电解质,价格便宜,质量尚佳。两性电解质在直流电场的作用下,能形成一个从正极到负极的pH值逐渐升高的平滑连续的pH梯度。若不同的pH值的两性电解质的含量与pI值的分布越均匀,则pH梯度的线性就越好。对Ampholine两性电解质的要求是缓冲能力强,有良好的导电性,分子量要小,不干扰被分析的样品等。在聚焦过程中和聚焦结束取消了外加电场后,如保持pH梯度的稳定是极为重要的。为了防止扩散,稳定pH梯度,就必须加入一种抗对流和扩散的支持介质,最常用的这种支持介质就是聚丙烯酰胺凝胶。当进行聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳时,凝胶柱内即产生pH梯度,当蛋白质样品电泳到凝胶柱内某一部位,而此部位的pH值正好等于该蛋白质的等电点时,该蛋白质即聚焦形成一条区带,只要测出此区带所处部位的pH值,即为其等电点。电泳时间越长,蛋白质聚焦的区带就越集中,越狭窄,因而提高了分辨率。这是等电聚焦的一大优点,不像一般的其他电泳,电泳时间过长则区带扩散。所以等电聚焦电泳法不仅可以测定等电点,而且能将不同等电点的混合的生物大分子进行分离和鉴定。早期的等电聚焦电泳是垂直管式的,其特点是体系是封闭的,不与空气接触,可防止样品氧化。近年来,又发展了超薄层水平板式等电聚焦电泳。此法的优点是加样数量多,节省两性电解质,电泳后固定、染色、干燥都十分迅速简便,其最大优点是防止了电极液的电渗作用而引起正负两极pH梯度的漂变。测定pH梯度的方法有四种:1.将胶条切成小块,用水浸泡后,用精密pH试纸或进口的细长pH复合电极测定pH值,然后作图。2.用表面pH微电极直接测定胶条各部分的pH值,然后作图。3.用一套已知不同的pI值的蛋白质作为标准,测定pH梯度的标准曲线。4.将胶条于-70℃冰冻后切成1mm的薄片,加入0.5ml 0.01M KCl,用微电极测其pH。三、仪器和用具1.电泳仪2.垂直管式园盘电泳槽一套3.注射器与针头4.移液管:10ml、5ml、2ml、1ml、0.1ml5.小烧杯若干6.培养皿一套7.直尺8.小刀9.精密pH试纸和带细长复合pH电极的pH计10.塑料薄膜和橡皮筋

  • 【网络讲座】共聚焦光片成像技术(举行时间:2016-11-17 14:00)

    【网络讲座】共聚焦光片成像技术(举行时间:2016-11-17 14:00)

    讲座名称:共聚焦光片成像技术——让荧光成像速度更快,光毒性更低,光操作更容易  主讲老师:易海英  徕卡显微系统生命科学产品应用专家,2014年毕业于华中科技大学生命科学与技术学院,研究生期间的主要研究方向为力学微环境对肿瘤干细胞及其转移的影响,以及力学信号对胚胎干细胞分化及发育的影响,在激光共聚焦和超高分辨率成像领域积累了丰富经验,参与的文章发表在Nature Communications等杂志期刊上。  主要内容:2014年,光片荧光显微技术(light-sheet fluorescence microscopy)被《Nature Methods》评选为年度技术(Method of the Year 2014)。光片(light sheet)技术简单来说即使用一薄层光束从侧面激发荧光样品,随后从样本的上部或下部检测所产生的荧光信号,即检测方向与照射方向相垂直。该技术能够以很高的三维分辨率对不同大小的固定样品或活样品进行三维成像,快速地捕捉细胞或亚细胞水平上的动态变化。其高速、低毒性、低漂白等优势使得光片技术在生命科学领域开始流行起来。光片荧光显微技术的概念其实早在一百多年前就已经被提出来了,但此后很长时间都没有什么进展,直到近年来才活跃起来,其中徕卡创造性地以其成熟的激光扫描共聚焦系统为平台,直接搭载上光片系统,得到既可以实现光片成像,又可以进行常规单光子成像,还可以将光片与单光子、多光子联合使用以实现和开创更为丰富多样的可能性的系统——Leica TCS SP8 DLS!光片荧光显微技术在细胞生物学、发育生物学、微生物学、植物学等多个领域都有广泛的应用,本次Webinar将着重介绍徕卡共聚焦光片系统DLS在生物学研究领域的应用。 举行时间:2016-11-17 14:00    报名链接:http://www.instrument.com.cn/webinar/meeting/meetingInsidePage/2178http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2016/10/201610281713_615330_0_3.jpg手机扫描二维码,报名参会http://exmail.qq.com/cgi-bin/viewfile?type=signature&picid=ZX0717-9QlCeoL%7EVb5UZDdhPeiRO6f&uin=1407973628

  • 固定相聚焦、溶剂聚焦这段怎么理解?如何利用?

    固定相聚焦、溶剂聚焦这段怎么理解?如何利用?

    [img=,660,349]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2020/03/202003032129567332_1486_2561261_3.jpg!w660x349.jpg[/img]我看很多方法的温度条件,温箱初始温度都比进样口温度低,是否就是在利用这个聚焦?固定相聚焦,我的理解是样品在衬管里汽化后进入毛细柱,由于柱子初始温度略低,汽化的样品移动速度就慢,方便固定相不停的吸附-释放汽化的样品。如此,前头的样品就好像被“阻拦”了速度变更慢,后边的样品“撞”入前边的样品里,相当于被“浓缩"了,最后到达检测器就成为一个尖锐的峰。不知道我的理解是否正确。溶剂聚焦,看不太懂。怎么还冷凝?那不就成液体了吗?

  • 【原创大赛】固定相聚焦的讨论

    【原创大赛】固定相聚焦的讨论

    固定相聚焦问题的讨论  我们大概学过范德蒙特方程,知道样品在色谱柱内运行的时候,存在扩展的因素,造成的结果就是色谱峰展宽。  其实在普通的分析情况下,样品运行过程中同时存在聚焦(或者浓缩)过程,即色谱峰宽变窄的现象。如图1.1所示。 http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/201211262222_407376_1604036_3.jpg  图 1.1 聚焦现象图示    样品进入色谱柱后,在A点的分布宽度较宽,样品随着载气运行的时候,分布宽度逐渐减小,到达B点时,如图中所示,分布宽度比A点要大为缩短。  为什么会出现这个现象呢?我们放大一下这个图看看。 http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/201211262223_407378_1604036_3.jpg  图中黄色的样品前沿部分接触到的是固定相,后沿部分接触到的是包含有一定样品的固定相(或者说接触到更少的固定相,那么后沿部分的保留会弱一点),造成后沿部分相对而言运行的更加快速。那么样品在色谱柱中的分布会逐渐变窄。同时,很明显的,样品在不断变窄的分布空间内也逐渐被“浓缩”。(最好也关注一下溶剂的位置。)    尤其是气相色谱使用程序升温的时候,这个现象就会很明显。  我们看一个液相色谱的例子。在使用制备色谱的时候,一般进样量会比较大,如果样品浓度较高,进样的时候,会伴随着系统压力的上升,而且这个压力会逐渐下降的,显然并非系统发生了永久的堵塞。我们可以用上面的两个图来说明一下。    由于进样后,溶剂很快运行,样品被保留和浓缩,可能会造成样品在短时间内不能完全溶解在流动相中,造成样品析出,致使系统压力上升。  常见的程序升温分析,一般会设定较低的柱温,是在利用聚焦作用(其实主要是溶剂聚焦,限于篇幅,还是改日讨论吧)。  我们在进样气体样品的时候,比如顶空、吹扫捕集进样,一般会设定比较低的柱箱起始温度,对于保留时间较短的组分会得到比较好的色谱峰,其实也是在利用聚焦现象。

  • 毛细管等电聚焦

    最近实验室有人做毛细管等电聚焦,有些问题不解。毛细管等电聚焦中使用的毛细管填充两性电解质,两端插入不同的pH的磷酸和NaOH中,过程是否类似于等速电泳pH梯度形成的过程?在毛细管两端是否需要添加封堵剂?毛细管等电聚焦的过程分为:进样、聚焦和分离三个步骤。不知道大家在进样的时候目标蛋白是如何进样的:是混在两性电解质中进样还是单独气压进样?聚焦过程中marker与样品分别移动到等电点的位置,这个聚焦的程度是如何把握的?还有最后观察到的结果——推出的过程是电压推出还是气压推出的,这个过程有什么不同?

  • 【原创大赛】溶剂聚焦和保留间隙管

    【原创大赛】溶剂聚焦和保留间隙管

    保留间隙管在溶剂聚焦过程中的作用在使用不分流进样的时候,由于进样口内载气流速较低,样品气化之后进入色谱柱的时间较长,或者说样品起始谱带较宽。较宽的起始谱带不利于获得较窄的组分色谱峰,对分离而言是不利的。所以在不分流进样中,经常需要使用聚焦技术。溶剂聚焦是比较常用的方法,其中经常会用到保留间隙管。下面图示样品中的容易气化组分和不易气化组分在保留间隙管内的聚焦过程。沸点较低的组分聚焦的过程:程序升温分析的时候,起始柱温一般低于溶剂沸点的20-40度,样品进入色谱柱之后,在色谱柱入口(保留间隙管)凝结下来,形成一个较宽的溶剂分布带。由于载气的不断推动,溶剂液膜向前移动,低沸点的组分逐渐重新溶解在液膜之中。在载气的推动之下,随着溶剂的不断气化,溶剂的分布宽度逐渐减小。(这是聚焦的主要原因)同时,如果液膜运行到色谱柱头,液膜由于分配系数的变化,液膜分布宽度变窄。液膜的前沿受固定相作用而运行变慢,后延运行速度不变,那么液膜总体的长度也会变短。(聚焦的次要因素)重新溶解在液膜中的组分也同时得到了聚焦。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/12/201212220912_414412_1604036_3.jpg不易气化组分的情况:当保留间隙管中的溶剂带气化,高沸点组分在管中也形成了不太规则的分布带。随着载气的推动,高沸点组分运行进入到色谱柱头,也发生了类似的聚焦现象。分布带的前延部分运行速度降低,后延部分速度不变,于是在色谱柱头,完成聚焦。 http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/12/201212220912_414413_1604036_3.jpg

  • 有用过激光共聚焦的吗?

    有用过激光共聚焦的吗?

    一般先BF用目镜聚焦,再上电脑软件点预览,这个时候因为光源不同,所以焦平面不同,必须还得再次调整焦距聚焦! 不知道最近为什么,再次聚焦的时候电脑图片刷新很慢(以前也慢,但还在可忍受的范围之内),导致长时间开激光以至荧光猝灭。 1、用目镜明场观察的时候太亮了,就算灯泡打到最小还是很亮,(很伤眼睛)是不是光路上的减光片少了。我就看见一个D片 ND片 。2、为什么图片刷新比以前慢了。特别是刚开机那会,猜测是不是激光不稳定?机器的cpu 内存都还有很多剩余,电脑的反应也很快,是不是显存不够?应该不会呀,以前还蛮好的。 显微镜是A1:http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2014/02/201402140857_490148_2535415_3.jpghttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2014/02/201402140857_490149_2535415_3.jpg

  • 欢迎Insm_e83b611d担任事件聚焦正式版主

    欢迎[url=https://www.instrument.com.cn/bbs/user.asp?username=Insm_e83b611d]Insm_e83b611d[/url]担任事件聚焦正式版主!我们希望有更多的热心用户能加入到版主队伍中来,也希望在职的版主能在版面中发现有能力的热心用户推荐给我们。论坛正在招募版主,有兴趣的用户请到此页面申请:[url=https://bbs.instrument.com.cn/resume/]https://bbs.instrument.com.cn/resume/[/url]

  • 【喜讯】新版开张——《聚焦2009》

    【喜讯】新版开张——《聚焦2009》

    [color=#dc143c]转眼间,2009年已经过去了,回首2009年,“重金属污染”、“大型仪器企业并购”、“资本运作上市”、“实验室安全”等方面的事件给我们留下了深刻的印象,也给我们留下了太多的思考。因此,仪器信息网以“特别聚焦”的方式,对2009年中国科学仪器及分析测试行业内发生的或有很大影响的一些大事件进行了回顾、梳理,希望能够“见微知著”,对大家有所启示。也欢迎各位坛友对2009行业内的事件进行点评~[/color][url=http://www.instrument.com.cn/news/subject/index.asp?SubjectID=66][img]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2010/01/201001081406_195245_1622715_3.jpg[/img][/url]

  • 购:等电聚焦

    我司欲购等电聚焦电流仪一套,请有意者回复至:ljhcyy@163.com

  • 谈谈扫描电镜聚焦[zt]

    谈谈扫描电镜聚焦[zt]

    驰奔扫描电镜操作,最简单,但最重要的操作就是聚焦-Focus. 正确聚焦是调节其他相关参数的基础。很多情况下,不能正确的聚焦,造成图像不清。自动聚焦可以解决不能正确聚焦问题,实际上是错误的理解,有时也被某些人用来引导暗示客户,这往往成为忽悠人的一种策略。扫描电镜自动聚焦很多情况下是粗聚焦。总之手动聚焦不清楚,自动一定不会清楚。下面主要介绍手动聚焦, 当然也是最精细的聚焦。首先,扫描电镜是齐焦系统,即高倍正确聚焦,降低放大倍数,焦点不会改变。因此使用尽可能可识别的高倍聚焦操作是快速的正确聚焦方法。因为,高倍情况下焦深变小,对聚焦的正确与否,反应更灵敏。其次,要消除象散。象散的存在,往往会干扰正确聚焦。判断象散,需要较为丰富的图像细节,而象散现象又不被图像干扰,才是好的聚焦点。如果把象散在拉伸时的位置看做正确聚焦点,再进行象散矫正,图像会更模糊。再次,高倍高分辨成像,往往受限于信噪比差。反差小的细节,将被噪音覆盖,这时候要找到小反差基本等高的大反差部位作为聚焦点。也可以加大束斑尺寸,使用较高的SPOT值,获得比较良好的信噪比,在低分辨条件下对小反差样品进行聚焦消除象散操作,最后获得正确聚焦,然后再把SPOT值降低,获得高分辨的正确聚焦。改变SPOT值,如果无WD补偿机制,图像将不再正确聚焦,最后,在高倍正确聚焦情况下,将放大倍数降低到想要的放大倍数,自然可以看清同一个高斯焦面上下一定景深的所有的形貌。如下图低倍图像。需要说明,扫描电镜成像有多重缺陷,其中荷电严重部位,有边缘效应严重部位,不适合作为正确聚焦调节点。

  • 气质中的溶剂聚焦问题

    对于一本书中关于溶剂聚焦不是特别理解,希望各位能帮忙解释一下!!!样品在柱头部分或全部冷凝以后,溶剂开始挥发,与溶剂挥发性接近的组分就会浓缩在未挥发的溶剂中,从而产生很窄的初始谱带,这就叫做溶剂聚焦。这句话中为什么与组分挥发性接近的溶剂聚焦效应就越好呢?求解……

  • 衍射聚焦问题!

    各位大侠,我是新手,请教一个问题:我在做衍射的时候总是不能很好的聚焦,拍衍射斑点总是有拖影或者斑点有点模糊,不明锐。当投射斑点最明锐的时候,衍射斑点就会出现拖影、或者是一个变两个,或者是椭圆形的(投射斑点是圆的),如果经过聚焦,使衍射斑点变得明锐、形状也会变为圆形、重现重影的斑点也会变为一个衍射斑点,这时候透射斑点就变的很大,不是最明锐。请各位大侠,指点一下!

  • TEM 的聚焦

    我眼神不好,不喜欢用荧光屏。我喜欢在ccd上聚焦,然后用film照相请问这跟在荧光屏上对好焦,再用film一样么?我觉得是一样的条件。有人却说用film必须用荧光屏和眼睛看。拍digital照片才用ccd和电脑屏幕对焦。请问谁对呀? 谢谢

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