铆焊平板

给位高手，谁能告诉我分流平板在哪里？最好发段视频，呵呵！！我们现在用的是6890N，分流不分流（毛细柱）进样口，现在感觉进样口好像有点污染，想拆下来清洗一下，拆了好几次，就是没找到分流平板，哪位高手知道！！

一、实验目的了解稀释平板计数的原理，掌握涂抹平板培养法和混合平板培养法，认识细菌、放线菌、霉菌的菌落特征。二、实验原理 稀释平板计数是根据微生物在固体培养基上所形成的单个菌落，即是由一个单细胞繁殖而成这一培养特征设计的计数方法，即一个菌落代表一个单细胞。计数时，首先将待测样品制成均匀的系列稀释液，尽量使样品中的微生物细胞分散开，使成单个细胞存在（否则一个菌落就不只是代表一个细胞），再取一定稀释度、一定量的稀释液接种到平板中，使其均匀分布于平板中的培养基内。经培养后，由单个细胞生长繁殖形成菌落，统计菌落数目，即可计算出样品中的含菌数。此法所计算的菌数是培养基上长出来的菌落数，故又称活菌计数。一般用于某些成品检定（如杀虫菌剂等）、生物制品检验、土壤含菌量测定及食品、水源的污染程度的检验。三、实验器材 1．活材料：苏云金芽孢杆菌（Bacillus thuringiensis）菌剂。2．培养基：牛肉膏蛋白胨琼脂培养基（附录三、1）3．器材：90ml无菌水、9ml无菌水、无菌平皿、lml无菌吸管、天平、称样瓶、记号笔、玻璃刮铲等。四、实验方法 1．样品稀释液的制备 准确称取待测样品l0g，放入装有90ml无菌水并放有小玻璃珠的250ml三角瓶中，用手或置摇床上振荡20 min，使微生物细胞分散，静置20-30s，即成10-1稀释液；再用1ml无菌吸管，吸取10-1稀释液lml，移入装有9ml无菌水的试管中，吹吸3次，让菌液混合均匀，即成10-2稀释液；再换一支无菌吸管吸取10-2稀释液1 ml，移入装有9ml无菌水的试管中，也吹吸三次，即成l0-3稀释液；以此类推，连续稀释，制成10-4、10-5、10-6、10-7、10-8、10-9等一系列稀释菌液（图22-1）。图22-1 平板计数法中样品的稀释和稀释液的取样培养用稀释平板计数时，待测菌稀释度的选择应根据样品确定。样品中所含待测菌的数量多时，稀释度应高，反之则低。通常测定细菌菌剂含菌数时，采用10-7、10-8、10-9稀释度，测定土壤细菌数量时，采用10-4、10-5、10-6稀释度，测定放线菌数量时，采用l0-3、10-4、10-5稀释度，测定真菌数量时，采用10-2、10-3、10-4稀释度。2．平板接种培养 平板接种培养有混合平板培养法和涂抹平板培养法两种方法。 （1）混合平板培养法 将无菌平板编上10-7、10-8、10-9[fo

实验室工作7年了，很多人问我怎要才可以把实验做好，做得漂亮。对于这个问题，我再看看到很多做事毛糙，手忙搅乱的师弟师妹时，只能笑而不语。生物实验不是化学实验，很少会爆炸，真的没必要慌乱，和很多工作一样，需要用“心”去做。 不说废话，回归正传。今天谈谈“含抗生素平板培养基的配制窍门”。当然，对于很多做这个实验做得炉火纯青的同行，实在没必要看下去了。下面写的只是供那些在这个环节不太了解的朋友看。 基本步骤如下： A.琼脂、蛋白粉、无机盐、…..去离子水….等等，混匀，溶解，具体成分看你培养神马菌了； B. 120度，高压灭菌； C. 加抗生素，加神马抗生素，看你要筛选神马菌，氨苄青霉素？链霉素？潮霉素B? D. 倒平板。 别以为这个大家都会。讲一个真实故事给大家听，以前有一个做实验也是蛮拼的同学，要做含青霉素的筛选平板培养基，他一次不成功，就做第二次，但是还是不成功，一直做了2个月还是不成功。。。他的科研热情实在值得学习，只是财力不是很雄厚的老板实在伤不起。我们好奇，怀疑他没加青霉素，就问他加了没，他回答时也很有底气，自信地告诉我们，加了，加了不少------可惜都是在高温灭菌前加的！如此高温，哪家的抗生素不分解啊？ 在这里，我想强调的是，加抗生素，除了要选择时，还要择温度！加抗生素必须在灭菌之后加，加的时候一定要等琼脂培养基凉下来再加。温度降到什么时候为宜呢？就是45~50度的范围。当然，有些牛人，靠手摸，感觉不烫，就刚好是45~50度。作为搞科研的，我不推荐用这种方法。我推荐大家用恒温循环水浴。建议不要用国产的水浴，因为隔壁实验室发生过漏电事件……我用过几个进口品牌,发现德国IKA的恒温水浴最好,安全,精准,好用。可惜当时递交采购单时太草率，就选了一个基本型的ICC恒温水浴。五楼的小黄老师有钱就这么任性，挑了个IKA控制型，可以远远的无线控制~~听说无线控制距离可达10米~~~ 45~50度是一个很合适的温度，一方面可以保持抗生素的活性，另一方面，琼脂在这个时候不凝。轻轻晃动几下培养基，让抗生素混匀，切忌不要使劲，否则起了起泡就很难看了。后续，只要小心的把培养基倒到培养皿上，于是高质量的含抗生素的培养基就做好了~

关于大肠菌群平板计数法还有哪些困惑？1.导读经常用来衡量食品卫生情况的重要指标，绝大部分食品都会要求检测的项目。在食品微生物实验室里，大肠菌群和菌落总数的检测频次应该是最高的，但检测过程中总会有一些小问题困扰着大家，以下来讲解一下大肠菌群平板计数法的注意事项。2.方法选择相比于MPN计数法，平板计数法更适用于大肠菌群含量较高的食品。但大肠菌群多少算是含量较高呢？国标里没有明确规定，但通常认为，产品大肠菌群以100CFU/g(mL)为界，超过这个含量一般认为是含量较高。但具体什么时候选用平板计数法进行大肠菌群的检测，大部分情况还是要看你的产品执行的标准。假如产品标准要求大肠菌群含量的单位为CFU/g(mL)，那必须选用平板计数法。若是/g(mL)或者MPN/100g(mL)，就应选择MPN计数法，MPN法具体选用哪版国标此处不再赘述。因此，根据自己产品的情况选择适当的检测方法。件、酸3.培养基的要求平板计数法使用的培养基为结晶紫中性胆盐琼脂培养基，简称VRBA。无论是国标，还是培养基的使用说明中都明确表示，VRBA是不需要进行灭菌的，煮沸2min即可使用。特地点出这一点是因为很多朋友都在问VRBA的灭菌条件，对不灭菌的培养基不信任，害怕出现检测异常，那是因为这些小伙伴们对其中的原理不清楚。大肠菌群的定义是在一定培养条件下能够在发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌，因此大肠菌群是不能形成芽孢的，在VRBA培养基煮沸的过程中，即使有大肠菌群存在也会被杀灭，所以从培养基带入污染的可能性是没有的。当然盛装培养基的容器是需要进行灭菌的，以免容器引入污染。另外，VRBA是一种选择性的培养基，含有的结晶紫对革兰氏阳性菌有比较强的抑制作用而对革兰氏阴性菌几乎没有作用，而且平板培养产生的菌落还需要进行复发酵的验证，因此VRBA培养基就不需要进行灭菌了。但值得注意的是，VRBA需要现配现用，配制出的培养基应当在3h之内使用完毕。4.稀释度的确定国标中要求选择2-3个适宜的连续稀释度。什么样的稀释度是合适的呢？这要根据计数来决定。计数环节要求选择菌落数在15CFU-150CFU的平板进行计数，因此培养后菌落数在这个范围内的稀释度就是适宜的稀释度。实验室经常检测的产品的大肠菌群的水平检测人员可以预计的，但是对盲样，我们能做的只有根据实际情况多检测几个稀释度了。这里需要提一句，液体样品的检测稀释度可以包括原液。5.证实试验需要从VRBA平板上挑取10个不同类型的典型和可疑菌落，少于10个菌落的挑取全部的典型和可疑菌落进行BGLB肉汤管验证。这里挑取的菌落也是应当有选择的，典型菌落和可疑菌落的比例应当与平板上培养的两种菌落的比例相同或相近，这样能够降低检测过程中的误差。6.计数的报告报告过程是很多朋友存在疑问的地方，因为平板计数法的结果报告需要结合培养基菌落数和复发酵验证两方面进行计算。存在疑问的情况主要有以下几种：6.1、所有稀释度都不在计数范围内怎么办？这种情况一般都是最低稀释度的平板都小于15CFU，这种情况就是以最低稀释度的平板菌落数乘以验证试验的比例来计算。例如10倍稀释的两个平板上菌落数分别为10、8，菌落数为10的平皿挑取10个菌落复发酵中有8个菌落产气，菌落数为8的平皿挑取8个菌落复发酵中有7个菌落产气，则计算过程是这样的：(10*8/10+8*7/8)/2*10=75CFU/g(mL)。6.2、连续两个稀释度的四个平皿的菌落数都在计数范围内怎么办？这个需要参考菌落总数检测国标里7.1.2里的公式计算。我们需要先计算每个平皿的验证后的菌落数，再代入公式计算即可。例如10倍稀释度两个平皿菌落数为120和125,100倍稀释度两个平皿的菌落数为17和16，经过复发酵验证产气的管数分别为7、8、8、8，则我们先计算每个平皿上的菌落数分别为120*7/10=84,125*8/10=100,17*8/10=13.6（我们14）,16*8/10=12.8（我们计13）,然后将84、100、14、13四个数代入公式：（84+100+14+13）/（2+0.2）*10=959，结果应报告960 CFU/g(mL)。6.3、只有一个稀释度的一个平皿的菌落数在计数范围，其他均不在计数范围怎么办？这样我们只需要复发酵验证这一个平皿即可，根据这一个平皿的菌落数进行报告。例如10倍稀释度两个平皿菌落数为160和142,100倍稀释度两个平皿的菌落数为12和13，则我们只需要从菌落数为142CFU的平皿里挑取10个菌落进行复发酵验证即可，假如共有7支发酵管阳性，则应计算142*7/10=99.4，结果报告99CFU/g(mL)。其实只要是平板菌落计数的相关问题，我们都应按照GB 4789.1-2016里要求的结果与报告要求进行计算和报告即可，无论那种情况，都是万变不离其宗的。

我做微生物时间不是很长，这一次实验发现了这么一个问题。我做了两个稀释级1：10和1：100的供试液，各自进行营养琼脂平板的培养。观察结果的时候，我发现，1：10稀释级的两个平板都没有菌落生长，但是1：100稀释级的两个平板各有1个和2个菌落生长，而且菌落的形态也不像平常黄白实心的圆点，而是呈絮状的，有点像霉点一样的。像这种情况的话，是样品本身含有的菌还是样品被污染了呢？结果是要按1：100的稀释级来计数吗？

[font=SimSun, STSong, &]菌落总数测定时，培养基是卵磷脂、吐温80-营养琼脂，200ml培养基加了0.5%TTC 2ml, 平板上细菌围着平板长了一圈，是什么原因？麻烦各位大神帮忙解答下。[/font]

在桌面上铺上一块柔软的不掉毛的布（如清洗质谱离子源用的那种），用无水乙醇将清洗质谱离子源用的氧化铝粉末调匀，先倒上少量，用干净的玻棒将布的孔隙填平，再倒上少量氧化铝，将已经很难用超声等方法洗掉的变了色的分流平板面朝下，轻轻摁住，用画圆圈的方法在氧化铝上摩擦，注意尽量温柔，圈尽量小，否则分流平板将会出现划痕就不好了。效果非常明显，又快又好！你也可以试试哦。

同一批倒的平板，个别菌落总数平板浑浊不清亮是什么原因？涂抹和空气沉降从来不会有这种现象，同一个样品有时两个同时浑浊的比较多，有时偶尔一个

如何清洁分流平板

玻璃衬管和分流平板的清洗从仪器中小心取出玻璃衬管，用镊子或其他小工具小心移去衬管内的玻璃毛和其它杂质，移取过程不要划伤衬管表面。如果条件允许，可将初步清理过的玻璃衬管在有机溶剂中用超声波进行清洗，烘干后使用。也可以用丙酮、甲苯等有机溶剂直接清洗，清洗完成后经过干燥即可使用。分流平板最为理想的清洗方法是在溶剂中超声处理，烘干后使用。也可以选择合适的有机溶剂清洗：从进样口取出分流平板后，首先采用甲苯等惰性溶剂清洗，再用甲醇等醇类溶剂进行清洗，烘干后使用。

玻璃衬管和分流平板的清洗：从仪器中小心取出玻璃衬管，用镊子或其他小工具小心移去衬管内的玻璃毛和其它杂质，移取过程不要划伤衬管表面。如果条件允许，可将初步清理过的玻璃衬管在有机溶剂中用超声波进行清洗，烘干后使用。也可以用丙酮、甲苯等有机溶剂直接清洗，清洗完成后经过干燥即可使用。分流平板最为理想的清洗方法是在溶剂中超声处理，烘干后使用。也可以选择合适的有机溶剂清洗：从进样口取出分流平板后，首先采用甲苯等惰性溶剂清洗，再用甲醇等醇类溶剂进行清洗，烘干后使用。

接种好的平板为什么要倒放，

今天开工对[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/bp][color=#3333ff]气质[/color][/url]做维护，清洗离子源，割柱子，前后进样口都重新整理下，更换泵油等，针对分流平板如下图，这个直接更换了，脏的分流平板还能恢复吗？[img]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/02/201802261551006267_7656_2140715_3.jpeg[/img]

想申购Agilent 7820A的分流平板，可是不知道是什么型号，希望有前人指导一下！

霉菌平板倒置对结果有影响吗？做完实验一时迷糊吧霉菌平板倒置了，对结果有影响吗？

分流平板脏了会出现鬼峰。那是因为脏东西妨碍了分流平板上的载气流通还是因为脏东西进去色谱柱了？

请教下各位：倒完培养基后未凝固的平板能不能放到培养箱里等它凝固再倒置呢？

老师们，这个是分流平板吗？成这样是不是就没法用了？[img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/09/202209141406374447_9515_3227009_3.png[/img][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/09/202209141406366738_8279_3227009_3.png[/img]

维护进样口更换分流平板时是那个变径螺丝是要用扳手拧紧对吧？只有色谱柱不可以拧太紧？

RT：分流平板是否可以超声清洗？看到版内很多老师都说到用丙酮、甲醇超声清洗分流平板，不知结果（效果）如何？期待您的反馈！

[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/bp][color=#3333ff]GC-MS[/color][/url]在选择不分流时，样品会不会通过分流平板，使分流平板更容易变脏

请问大家是如何清洗分流平板和衬管的？

7寸平板，好大个。你买那个，还不如买个笔记本。同样配置的，笔记本肯定比平板便宜吧。要买平板，就买3.5寸的。支持多点触控，就行了。3.5寸的，看个文档，比如pdf,word文档，都没问题的。上网，应该没问题吧。关键这个尺寸正好。你拿个7寸的到处跑....也太扎眼了，呵呵。

UV平板打印机，虽然方便快捷，一次成型，环保，但UV平板打印机来说也比一般的机器来得贵重，这么贵重的机器改如何维护和保养呢，下面富发uv打印机厂家给大家讲解一下：1、确保UV平板打印机周围环境的清洁。工作环境灰尘太多，容易导致小车导轴润滑不良，使打印喷头在打印过程中的移动受阻，引起喷绘位置不准确或撞击机械框架造成损伤及死机。当打印喷头未回到初始位置而重新开机时，UV平板打印机首先会让打印喷头回到初始位置，接着将进行清洗喷头的操作，所以会造成墨水不必要的浪费。解决这个问题的方法是经常将导轴上的灰尘擦掉，并对导轴进行润滑。2、必须确保UV平板打印机有一个稳固的工作平台，不要在UV平板打印机顶端放置任何物品。喷绘机在工作时必须关闭其前盖, 以防止灰尘进入机内或其它坚硬物品阻碍喷绘机小车的运动。禁止带电插拔打印机电缆，这样会损坏喷绘机的喷绘口以及PC的并行口, 严重的甚至会损坏PC的主板。如果打印输出不太清晰，可用喷绘机的自动清洗功能清洗喷头，但要消耗少量墨水。若连续清洗几次之后打印仍不满意，这时可能墨水已用完，需要更换墨盒。3、关机前，让打印喷头回到初始位置(UV平板打印机在暂停状态下，打印喷头自动回到初始位置)。这样做一是避免下次开机时UV平板打印机重新进行清洗喷头操作浪费墨水，二是因为喷头在初始位置可受到保护罩的密封，使喷头不易堵塞。4、墨盒在长期不使用时应置于室温下避免日光直射。因为在这种环境中墨水蒸发得很快，很容易造成喷头堵塞。另外在低温潮湿的环境下，打印喷头电路与墨水都易出问题。5、换墨盒时一定要按照操作手册中的步骤进行，特别注意要在电源打开的状态下进行上述操作。因为更换墨盒后，UV平板打印机将对墨水输送系统进行充墨，而这一过程在关机状态下将无法进行，UV平板打印机也无法检测到重新安装上的墨盒。另外，有些UV平板打印机对墨水容量的计量是使用喷绘机内部的电子计数器来进行的(特别是在彩色墨水使用量的统计上)，当该计数器达到一定数值时，UV平板打印机判断墨水用尽。而在墨盒更换过程中，喷绘机将对其内部的电子计数器进行复位，从而确认安装了新的墨盒。6、此外UV平板打印机的光栅条，也要做好保护，不要用手去摸，不要让它沾染灰尘，以防定位不准。做好了以上几点，可以保证机器在工作和使用中长时间的不出问题，从而开足马力生产，为赚取更我的利润和以后多上机器提供可靠坚实的保障!需要购买或了解UV平板打印机可以直接到我们公司进行实地考察， 现场看机器，现场打印效果

我想请问一下，就是做噬菌体的实验时，为什么要用双层平板啊？这个双层平板有什么作用吗？跟单层的话有什么区别

今天和同事发生了讨论，就是讨论平板式正方还是倒放，能说明原因不？或者这个的出处。

一、实验原理稀释平板测数是根据微生物在高度稀释条件下固体培养基上所形成的单个菌落是由一个单细胞繁殖而成这一培养特征设计的计数方法，即一个菌落代表一个单细胞。计数时，首先将待测样品制成均匀的繁殖稀释液，尽量使样品中的微生物细胞分散开，使其成单个细胞存在，否则一个菌落就不只是代表一个细胞，再取一定稀释度、一定量的稀释液接种到平板中，使其均匀分布于平板中的培养基内。经培养后，由单个细胞生长繁殖形成菌落，统计菌落数目，即可计算出样品中的含菌数。此记数方法所计算的菌数是培养基上长出来的菌落数，故又称活菌计数。一般用于某些产品检定，如根瘤菌剂等产品检定，生物制品检验，土壤含菌量测定及食品、水源的污染程度的检验。自然条件下，微生物常以群落状态存在，这种群落往往是不同种类微生物的混合体。为了研究某种微生物的特性或者要大量培养和使用某种微生物，必须从这些混杂的微生物群落中获得纯培养，这种获得纯培养的方法称为微生物的分离与纯化。在自然界中，土壤是微生物生活的良好环境，其中生活的微生物数量和种类都是极其丰富的，因此土壤是人类开发利用微生物资源的重要基地。土壤中的微生物数量、种类与土壤肥力有关，肥沃的土壤中多，贫瘠土壤中少。其生理类群则与土壤的其它理化性质，如通气、pH有关，例如在通气良好的菜园土中，好气性微生物占有绝对优势。本实验以菜园土为材料分离土壤中的好气性细菌，并进行数量测定。分离微生物时，一般是根据该微生物对营养、pH、氧气等要求的不同，供给它们适宜的生活条件，或加入某种抑制剂造成只利于该菌种生长，不利于其它菌种生长的环境，从而淘汰不需要的菌种。分离微生物常用的方法有稀释平板分离法和划线分离法，根据不同的材料，可以采用不同方法，其最终目的是要在培养基上出现欲分离微生物的单个菌落，必要时再对单个菌落进一步分离纯化。在用稀释平板分离微生物时，还可以同时测定待分离的微生物的数量。放线菌与细菌同属原核微生物，是重要的抗生素产生菌，在土壤中的数量仅次于细菌，尤其是在有机质丰富、透气性好的中性到微碱性土壤中的数量较多。本实验采用高氏一号琼脂培养基分离和计数菜园土中的放线菌。真菌在土壤中的数量次于细菌和放线菌，主要在有机质丰富、透气性好的偏酸性土壤中较多。分离土壤中的真菌并不难，但由于其菌落大，容易扩展，计数准确性较低。本实验采用加有氯霉素或庆大霉素和孟加拉红的马丁氏培养基分离及计数菜园土中的真菌。按一般资料介绍为链霉素，但此种抗生素要先配成一定浓度的溶液，且应于倒平板前才加入培养基中。在此培养基上，放线菌和细菌被氯霉素或庆大霉素和孟加拉红所抑制，但大多数真菌能够生存，且其菌落受孟加拉红的抑制而较小，从而避免了某些真菌的扩散蔓延而带来的数量上的误差。

2011年，平板电脑已经进入到百花齐放的年代，众多品牌的平板电脑群雄奋起，其性能也在翻番。近日，我在采购一款样品前处理设备时看到，厂家紧跟潮流，也配置了iPad。这样一来，远程监测分析仪器，就有了可能。你认为明年起，跟光谱仪器配套的电脑，会改为平板电脑吗？