微生物样品自动重量稀释仪

如题。不知道大家在稀释高浓度的溶液时，用重量稀释还是体积稀释？如果用重量稀释的话，在这个过程中会不会涉及到密度的问题。谢谢

求购设备可以做：微生物样品制备中混合样品和稀释剂，并粉碎样品。主要样本为药品片剂。

[font=SimSun, STSong, &]做微生物试验，例如大肠杆菌和霉菌，检样过程中必须是25g样品+225稀释液吗？可以换成其他等比例稀释吗？[/font]

2.3.1液体样品　　　　2.3.1.1水溶性的液体样品，可量取10ml加到90ml灭菌生理盐水中，如样品不少于10ml.仍按10倍稀释法进行。如为5ml则加45ml灭菌生理盐水，混匀后，制成1：10稀释液。，　　　　2.3.1.2油性液体。取样品10ml，先加5ml来菌液体石蜡混匀，再加10ml灭菌的吐温80，在40~44℃水浴中振荡混合10min，加入灭菌的生理盐水75ml（在44~44℃水浴中预温），在40~44℃水浴中乳化，制成1：10的悬液。　　　　2.3.2膏、霜、乳剂半固体状样品　　　　2.3.2.1亲水性的样品，称取10g，加到灭菌的带玻璃珠加有90ml灭菌生理盐水的锥形瓶中，充分振荡混匀，放32℃水浴静置15min.用其上青液作为1：10的稀释液。　　　　2.3.2.2疏水性的样品，称取10g，放到灭菌的研钵中，加10ml灭菌液体石蜡，研磨成粘稠状，再加10ml灭菌吐温80，研磨待溶解后，加70ml灭菌生理盐水，在40~44℃水浴充分混合，制成1：10稀释液。　　　　2.3.2.3固体样品，称取10g，加到灭菌的生理盐水稀释瓶中，振荡混匀，使其分散混悬后，放30~32℃水浴中，15min后取出，充分振荡混合，再放到30~32℃水浴中静置15min，取上清液作为1：10的稀释液。　　　　如有均质器，上述水溶性膏、霜、粉剂等，可称10g样品加到90ml灭菌生理盐水，均质1~2min；疏水性膏、霜及眉笔、口红等，称10g样品加到90MLSCDLP液体培养基，或1g样品加1ml灭菌液体石蜡、1ml灭菌吐温80、7ml灭菌生理盐水，均质3~5min。 上面是GB7918.1 化妆品微生物标准检验方法总则中样品的稀释方法，太复杂，样品多的时候根本没法做，我相信没人会完全按照上面所述的研磨、均值、恒温去操作的吧。但所有的标准《化妆品规范2007》、GB、SN方法样品稀释都是参照上述标准。请问大家都是用什么方法或仪器？有没有更简便又实用的?例如：JT-C匀浆仪（均质器）有没人用？据说是药典推荐，不会损伤细菌吗？http://www.lhjtyq.com/product/pics/20110514/1305368089.jpg拍击式均质器有没人用？说明中好像没有说化妆品适用.http://www.qqma.com/cpimagenew/2011/06/28-h2009122-64735.jpg漩涡混匀器？小厂用的很多。http://a24399465.myhichina.cn/_m_gw_Hnlh6C5-u1VSNDZRDpdEOKMNq_fkWYWjJ6ICos_7ZHRgG_qe8rnGhDC0izbyKY1cNUYvABeI8Eb8EsNxiTax7ng8WkFToaD2.jpg大家谁用过发表点意见，希望版主支持讨论，谢谢。

各位大虾，谁用的是empower软件？在进样时“样品重量”和“稀释倍数”这两项填写重要不？应该怎么理解？ 例如：做土霉素，样品称5克，经过处理，最后定容至2ml.添加0.1ug/g.标准曲线是0.1，0.2，0.5，1.0，5.0ug/ml，在处理标准曲线时，单位是写ug,还是写ug/ml?如果写ug/ml,在处理添加样品的峰时（“样品重量”和“稀释倍数”这两项填写1），含量一栏会显示多少ug/ml。那如果算添加回收率，该怎么算？ 如果给“样品重量”和“稀释倍数”这两项填写5和2，那积分出来的含量一栏的数应该怎么算，才能计算回收率？我没经过专业培训，半路出家，还请知道的指导一下，谢谢！

一、实验原理稀释平板测数是根据微生物在高度稀释条件下固体培养基上所形成的单个菌落是由一个单细胞繁殖而成这一培养特征设计的计数方法，即一个菌落代表一个单细胞。计数时，首先将待测样品制成均匀的繁殖稀释液，尽量使样品中的微生物细胞分散开，使其成单个细胞存在，否则一个菌落就不只是代表一个细胞，再取一定稀释度、一定量的稀释液接种到平板中，使其均匀分布于平板中的培养基内。经培养后，由单个细胞生长繁殖形成菌落，统计菌落数目，即可计算出样品中的含菌数。此记数方法所计算的菌数是培养基上长出来的菌落数，故又称活菌计数。一般用于某些产品检定，如根瘤菌剂等产品检定，生物制品检验，土壤含菌量测定及食品、水源的污染程度的检验。自然条件下，微生物常以群落状态存在，这种群落往往是不同种类微生物的混合体。为了研究某种微生物的特性或者要大量培养和使用某种微生物，必须从这些混杂的微生物群落中获得纯培养，这种获得纯培养的方法称为微生物的分离与纯化。在自然界中，土壤是微生物生活的良好环境，其中生活的微生物数量和种类都是极其丰富的，因此土壤是人类开发利用微生物资源的重要基地。土壤中的微生物数量、种类与土壤肥力有关，肥沃的土壤中多，贫瘠土壤中少。其生理类群则与土壤的其它理化性质，如通气、pH有关，例如在通气良好的菜园土中，好气性微生物占有绝对优势。本实验以菜园土为材料分离土壤中的好气性细菌，并进行数量测定。分离微生物时，一般是根据该微生物对营养、pH、氧气等要求的不同，供给它们适宜的生活条件，或加入某种抑制剂造成只利于该菌种生长，不利于其它菌种生长的环境，从而淘汰不需要的菌种。分离微生物常用的方法有稀释平板分离法和划线分离法，根据不同的材料，可以采用不同方法，其最终目的是要在培养基上出现欲分离微生物的单个菌落，必要时再对单个菌落进一步分离纯化。在用稀释平板分离微生物时，还可以同时测定待分离的微生物的数量。放线菌与细菌同属原核微生物，是重要的抗生素产生菌，在土壤中的数量仅次于细菌，尤其是在有机质丰富、透气性好的中性到微碱性土壤中的数量较多。本实验采用高氏一号琼脂培养基分离和计数菜园土中的放线菌。真菌在土壤中的数量次于细菌和放线菌，主要在有机质丰富、透气性好的偏酸性土壤中较多。分离土壤中的真菌并不难，但由于其菌落大，容易扩展，计数准确性较低。本实验采用加有氯霉素或庆大霉素和孟加拉红的马丁氏培养基分离及计数菜园土中的真菌。按一般资料介绍为链霉素，但此种抗生素要先配成一定浓度的溶液，且应于倒平板前才加入培养基中。在此培养基上，放线菌和细菌被氯霉素或庆大霉素和孟加拉红所抑制，但大多数真菌能够生存，且其菌落受孟加拉红的抑制而较小，从而避免了某些真菌的扩散蔓延而带来的数量上的误差。

大家讨论下，我在实际工作中，经常要稀释标准，以前都用容量瓶逐级稀释，由于标准放在冰箱中（4度左右），拿出后要放到室温再稀释。后面偶尔想质量是不变的，就在电子天平上按重量逐级稀释标准，这样做和传统做基本一致，大家觉得重量稀释有什么利弊？

[font=宋体, SimSun]涂布平板法是一种常用的微生物学实验技术，主要用于分离、纯化和计数微生物。以下是该方法的详细介绍：[/font] [font=宋体, SimSun][color=#021eaa][b]实验原理[/b][/color][/font] [font=宋体, SimSun]涂布平板法的基本原理是通过[b][color=#ab1942]将微生物悬液进行稀释，然后将稀释后的悬液均匀涂布在固体培养基表面。[/color][/b]这样，微生物在培养基上生长时能够形成单个菌落，从而实现微生物的分离和纯化。[/font] [font=宋体, SimSun][color=#021eaa][b]操作步骤[/b][/color][/font] [list][*] [font=宋体, SimSun]准备培养基：选择适当的固体培养基，如营养琼脂、胰蛋白胨大豆琼脂等，按照说明书或实验要求配制并灭菌。待培养基冷却至适宜温度后，倒入无菌平板中，使培养基在平板底部均匀铺展。[/font] [/list][align=center] [/align][list][*][font=宋体, SimSun]稀释微生物悬液：取一定量的微生物悬液，用无菌生理盐水或其他适当的稀释液进行逐步稀释。通常需要进行10倍系列稀释，以获得不同浓度的微生物悬液。[/font][*][font=宋体, SimSun]涂布平板：取适量稀释后的微生物悬液，用无菌玻璃刮刀或涂布器均匀涂布在固体培养基表面。涂布时要保持手法的稳定性和一致性，以确保微生物在培养基上分布均匀。[/font][*] [font=宋体,SimSun]培养微生物：将涂布好的平板倒置放入恒温培养箱中，设置适当的温度和湿度条件进行培养。[b]培养时间根据微生物的种类和生长特性而定，一般需要24~48小时。[/b][/font] [/list] [font=宋体, SimSun][color=#021eaa][b]注意事项[/b][/color][/font] [list][*][font=宋体, SimSun]无菌操作：实验过程中要使用无菌器具和培养基，并在无菌工作台或超净工作台上进行操作，以避免微生物污染。[/font][*][font=宋体, SimSun]稀释倍数的选择：选择合适的稀释倍数是实现微生物分离和纯化的关键。稀释倍数过高可能导致微生物在培养基上无法形成菌落；稀释倍数过低则可能导致微生物在培养基上过度生长，形成菌落重叠。[/font][*] [font=宋体, SimSun]涂布技巧：[color=#ab1942][b]涂布时要保持手法的稳定性和一致性，涂布速度要适中，避免过快导致微生物分布不均或过慢导致培养基干燥。[/b][/color][/font] [/list] [font=宋体, SimSun][color=#021eaa][b]结果分析[/b][/color][/font] [font=宋体, SimSun]通过对涂布平板法得到的平板进行观察和计数，可以估算出原始微生物悬液中的微生物数量。观察平板上菌落的形态、大小和颜色等特征，可以初步判断微生物的种类和生长状态。[/font] [font=宋体, SimSun][color=#021eaa][b]稀释涂布平板法计数微生物的计算公式[/b][/color][/font] [font=宋体,SimSun]稀释涂布平板法是一种常用的微生物计数方法，通过对样品进行稀释并将稀释液均匀涂布于平板上，再根据平板上生长的菌落数量进行统计计算。在该方法中，每克样品中的菌株数可以通过以下公式计算得出：[color=#ab1942][b]菌株数 = （C ÷ V） × M。[/b][/color][/font] [font=宋体, SimSun]其中，C代表某一稀释度下平板上生长的平均菌落数，V代表涂布平板时所用稀释液的体积，M代表稀释倍数。通过这个公式，我们可以准确地根据实验结果计算出样品中微生物的数量，为微生物学研究和实验提供了重要的定量依据。[/font] [align=center] [/align][font=宋体, SimSun][color=#3daad6][b][size=17px]误区一——对平均菌落数的理解[/size][/b][/color][/font] [font=宋体,SimSun]在微生物实验中，对平均菌落数的理解至关重要，它反映了样品中微生物的数量，并直接影响到实验结果的准确性和可靠性。[b]在实验过程中，如果空白对照显示有菌生长，说明可能存在污染现象，即质控不在控，此时就不能简单地将所有实验得到的菌落数取平均值。[/b]相反，需要分析可能的污染原因并重新进行实验，以确保实验结果的可信度。[/font] [font=宋体, SimSun]另外，重复实验也是确保实验结果准确性的重要手段。通过在同一稀释度下涂布多个平板并统计菌落数的平均值，能够减小实验误差并提高数据可靠性。在重复实验中，如果某个平板的菌落数与其他平板相差较大，说明可能存在操作失误，这时应该舍弃该数据，并找出原因进行修正。[/font] [font=宋体, SimSun]在计算每克样品中某种菌株数量时，应只考虑符合该菌落特征的菌落数的平均值，避免将其他菌种形成的菌落数计入其中，以确保数据的准确性和可比性。深入理解平均菌落数的概念和正确运用相关原则，能够为微生物实验结果的可靠性提供保障。[/font] [font=宋体, SimSun][color=#3daad6][b][size=17px]误区二——对稀释倍数的判定[/size][/b][/color][/font] [font=宋体, SimSun]在微生物计数实验中，稀释倍数的合理设定对于确保有效活菌数的准确测定至关重要。稀释倍数过大会导致菌落数过少，可能引起计数误差过大；而稀释倍数过小会导致菌落数过多，使计数变得困难。因此，在选择稀释倍数时，需要根据待测样品中微生物数量的预估值来合理设定，以求得准确可靠的实验结果。[/font] [font=宋体, SimSun]举例来说，若测定土壤中细菌数量，[color=#ab1942][b]一般选择10[sup]4[/sup]、10[sup]5[/sup]和10[sup]6[/sup]倍稀释，因为土壤样品中细菌数量可能较为丰富；而测定放线菌数量时，一般选用10[sup]3[/sup]、10[sup]4[/sup]和10[sup]5[/sup]倍稀释，因为放线菌的数量相对较少[/b][/color]。对于真菌数量的测定，则一般选用10[sup]2[/sup]、10[sup]3[/sup]和10[sup]4[/sup]倍稀释。对于自来水中大肠杆菌数量的测定，一般不需要进行稀释，可以直接进行涂布培养。[/font] [font=宋体, SimSun]通过合理选择稀释倍数，可以使待测样品中微生物的数量落在适宜计数范围内，既能保证准确性又能提高实验的操作性。因此，对稀释倍数的判定不宜盲目一致，而应根据具体实验需要和待测微生物数量进行科学合理的设定，以确保微生物计数实验结果的可靠性和准确性。[/font] [font=宋体, SimSun][color=#3daad6][b][size=17px]误区三——对体积与质量的单位换算[/size][/b][/color][/font] [font=宋体, SimSun]在微生物计算中，涂布平板时所用的稀释液体积通常表示为V，一般为0.1mL（毫升）。[b]然而，当待测样品中微生物数量较少时，接种0.1mL稀释液到平板上培养后菌落数未达到30，这时可以考虑增大接种量，例如接种1mL稀释液，以增加菌落数的检测灵敏度。[/b][/font] [font=宋体, SimSun]在实验中，可以通过体积和质量的单位换算公式来进行计算，即体积 = 质量 / 密度(V = m / ρ)。水的密度为1g/cm3，因此质量为1g的水的体积为1cm3，也等于1mL。这意味着1cm3等于1000μL，1mL等于0.001L。通过这样的换算公式，可以方便地在体积和质量之间进行转换，确保实验中的计量单位正确无误。[/font] [font=宋体, SimSun]因此，在微生物实验中，正确理解和使用体积与质量的单位换算是确保实验数据准确性和可靠性的重要步骤。合理选择适宜的接种体积，可以提高微生物计数的准确度，从而获得更可靠的实验结果。[/font] [font=宋体, SimSun][color=#3daad6][b][size=17px]误区四——对统计误差的分析[/size][/b][/color][/font] [font=宋体, SimSun]从稀释涂布平板计数的原理来看，该方法统计的菌落数往往会低于活菌的实际数量，这主要是因为样品难以完全分散为单个细胞，当存在两个或多个活细胞连在一起时，在平板上观察到的只会形成一个菌落。[/font] [font=宋体, SimSun][b]在整个稀释涂布平板计数的过程中，稀释倍数的选择是否合适、涂布是否均匀、培养环境是否能够促进微生物正常生长，以及计数过程是否存在漏计或重复计数等情况，都会对实际统计结果产生影响。[/b][/font] [font=宋体, SimSun]除了以上因素外，还需要考虑到培养时间对菌落数的影响。菌落数目应该在一定时间间隔内进行统计，选择菌落数目相对稳定时的记录作为最终结果。这样能够避免因培养时间不足而导致漏计菌落的情况发生。[/font]

请教大家一个低级问题，请问微生物限度检查中，1：10、1：100和1：1000三个不同稀释级中，哪是高稀释级，哪是低稀释级？谢谢！

当前，许多高档仪器在石墨炉分析时其自动进样器均有一个自动稀释功能。 这种稀释功能的优点是：稀释比可随需要临时变换；解放了人工劳动力；尤其是当待测样品不多的时候很划算。 这种稀释功能的缺点是：要想得到理想的测试精度和重现性，受制于许多因素的影响，如下：（一）预设的母液和目标标液的浓度要适度。众所周知，自动稀释原理：主要是改变母液与稀释液的体积比例。举例：进样都是20微升，母液是40ppb（μg/L）；如果要想得到20ppb的标液，则要取10微升母液和10微升的稀释液。如果想要得到10ppb的标液，则要取5微升母液和15微升的稀释液。如果要想得到2ppb的标液，则要取1微升的母液和19微升的稀释液；对于自动进样器而言，也许进样精度很高，但是吸入1微升溶液后能完整无损地再吐出来吗？这是一个未知数。究其原因与进样针的高度、进样针的洁净程度、样品的粘稠度和样品的重力有着很大的关系。如果母液选取得浓度过高的话，再加上使用基改液（等于再进一次样）；这种稀释误差对于2ppb的目标标液的影响程度就可想而知啦！（二）进样针的高度的调整很重要。前面已经说过了，对于不同体积和结构的样品而言，进样针相对于石墨管底部的垂直高度的影响真的很关键。这是因为液珠的滴落的完整与否受制于下面这三个力的因素：（1）液珠的垂直向下的重力。这个重力越大下落的速度越快、也越完整。而这个重力的大小与液体样品的体积和比重有着很大的关系；体积越大、比重越大，滴落的越彻底。这就是前面所说的为何吸吐样品量不能过小，也就是母液不能选择浓度过高的根本原因了。（2）液珠向上的库伦吸引力。由于不同的样品的化学和物理性质不同，再加上进样针头的不洁净，以及过小的样品重力，均会造成施加于样品的吸引力的增加。我们能做到的只有合理地加大吸样量和时时保持进样针的清洁状态，严防挂液。（3）液珠表面的张力。由于不同的样品的密度和粘稠度不同，所以会影响液珠的滴落的完整与否。我们可以做这样一个小实验：用两根筷子分别同时沾上水和食用油，然后将筷子悬在空中，看看水和油谁先滴落下来？我想肯定是水吧？如果油珠悬浮在筷子头而不易滴落的话，此时找一张卡片或薄膜轻轻碰触油珠的底部，油珠立刻就会滴落下来了。所以进样针的针尖与石墨管底部的垂直距离的高低的效果就不言而喻了。（三）我对自动稀释功能应用场合的看法（1）如果本次分析的样品只有一两个，两三个；且是不常分析的元素，为了节省时间，可以使用自动稀释法。因为毕竟只要准备一个母液和一个稀释液即可，既省时又省力。（2）如果是大量的、经常测试的样品最好还是采用传统的人工配制的系列标液为妥，这样可以减少稀释误差。尤其是还要使用基体改进剂的情况下，自动进样器可能要往返吸吐2~3次，如此，无疑地加大了稀释误差。当然了，目前也有的仪器厂家的自动进样器可以做到将：吸吐样品→吸吐稀释液→吸吐基改液这三个步骤一气呵成地完成；这样可以减少上面谈到的“三力”的影响，其目的也就是减少稀释误差。例如：PE有一款机型以及日立的ZA3000就是属于这类的仪器。（3）不要盲目地迷信自动稀释功能。世间万物均有双重性，对于自动稀释功能而言也是如此。我遇到过个别仪器操作初学者，原本操作技术就不甚熟练，也不管分析的样品的数量多少，但却动辄非常喜欢使用稀释功能；结果分析出的结果的重现性参差不齐。当我给他建议后，他却反驳我说：“既然仪器有这个功能为啥不用？”我一时语塞。后经逐步了解才知道，其实他并不是对稀释功能有多么钟爱，而是一个字“懒”，嫌配制标液麻烦。 最后需要说明的是，发此贴并不是抵制使用仪器的自动稀释功能，而是想重点说明：要想正确使用稀释功能，必须首先了解这个功能的适应范围、各种特点以及操作要点。如此，才能得到满意的使用效果。

安捷伦的石墨炉有一些样品浓度超过了曲线，自动稀释了，为什么没有显示DF稀释倍数[img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/03/202203121953347809_3454_3919845_3.png[/img]

今天测镉，通过自动稀释功能进行了重复测定，发现不稀释时读数结果比稀释后读数的结果要低0.2ppb左右，如果换算到样品中，要相差0.02ppm了，相差很大，曲线最高点为1个ppb，不知道什么原因

线性最高到3微克每升，样品超线性了4.4微克每升，仪器自动稀释了一倍后计算出来是5.2微克每升，虽然超线性了，但是不应该差这么多啊，吸光度也就0.2不到，4.4微升每升的时候，标线还没有弯曲

各位专家和版友，我用的是海光AFS-230E的自动进样器，在样品测得的结果超过标准曲线两倍的时候会出现是否要自动稀释的提示，然后选择自动稀释，输入稀释的倍数，自动进样器会根据输入的倍数的大小调节蠕动泵的快慢进行稀释，但是我发现稀释后的结果和我自己去手动稀释测出的结果相差挺大的，大的时候有2倍，都是自动稀释的大于手动稀释的，不知道原因在哪里？希望各位帮助小弟寻找一下原因，谢谢了！

我们单位那台AAS没有自动稀释器,配标液很累,一次好多元素,每个配很多,而且测试时经常样品会OVER,感觉很不方便.请问大家,可以另外装个自动稀释的进样系统嘛,用自动稀释的测试准确度和自己配标液测试比,哪个更准

[color=#444444]现在使用Waters UPLC Class 高效液相色谱，Empower 软件，在样品队列里有一个“稀释倍数”一列，想问一下，是不是我配浓度为1%的样品，稀释倍数选择1，然后进样的时候样品浓度就为0.5%了？[/color]

请教各位大虾：我用的是瓦里安AA240FS+GTA120，用的PDF120的自动进样器，由于样品浓度超过标准曲线的最高点，自动进样器在线自动稀释，第一次显示DF=2，但稀释后的样品上机仍超过标准曲线；则继续稀释上机，又显示DF=5，还是超标则再次稀释上机；显示DF=10，还是超标，且样品进样体积＜1ul，无法再稀释，最终结果显示overed。我的问题是：DF 是什么意思，系统帮助表明为稀释系数，但我还是弄不懂：DF=10D到底是稀释了多少被呢？我的样品进样体积是10ul。

各位大侠：如题，请教样品稀释问题，可以一次稀释一千倍，从1微升稀释到1毫升吗？日常实验中从1毫升稀释成1升问题不大，但我现在想从1微升样品稀释成1毫升可以吗？样品误差会不会很大？

各位大侠：如题，请教样品稀释问题，可以一次稀释一千倍，从1微升稀释到1毫升吗？日常实验中从1毫升稀释成1升问题不大，但我现在想从1微升样品稀释成1毫升可以吗？样品误差会不会很大？

我用的是PE AAS700有时候，样品需要稀释能不能让机器自动稀释啊？

自动进样器自动稀释功能准么？有时候稀释后的数据和未自动稀释的差距很大不知道那个准些？如果不稀释的话，那被测点就超过范围了，超过范围的曲线一般是弯曲了，所以不稀释的化是不准确的吧？那仪器自己稀释后的数据可信么？请赐教！

如题。用空白基质（如血浆、尿液等）稀释样品后测定，在标准曲线范围内，但是在建方法时稀释比怎么做，要怎么考查？

对于样品超出标线范围，需要稀释，大家是稀释后多长时间进行上机测定呢？我今天测试膨润土中的总砷，样品浓度超出标线最高点5倍，我对样品稀释了10倍，然后放置5分钟后上机测定，但是稀释后的结果和不稀释是不成倍数，原先超出标线最高点时测得浓度为100ng/ml，但是稀释10倍后的样品浓度为4.5ng/ml，是放置的时间不够，硫脲没有将砷还原吗？望各位专家和版友给与帮助，解答，十分感谢！！

新手求助：我们实验室稀释一般用重量法稀释，最近比较关注逐级稀释的问题。目前操作的时候，一般直接称重，比如1g样品稀释到10g，算是10%的浓度的，按重量称，不按体积稀释。看大家说稀释超过100倍需要逐级稀释来减小误差，但是我看到的逐级稀释都是称一定重量的样品再用容量瓶加稀释溶剂，比如1g样品用容量瓶加到100ml。现在有个问题，逐级稀释是针对体积稀释还是重量稀释？假如用分析天平，精度为0.00001g，准确称取0.02g左右的样品（这个数字我用天平可以准确读出），再稀释至10g，这样算是2000ppm？这个稀释算1000倍，应该用逐级稀释吗？其实最纠结的点在于:1.天平可以准确的读出这个数字，那么是否还需要逐级稀释，也就是存在的称量的误差是否可以用天平消除2.体积稀释需要用逐级稀释，是否称重法也需要3.如果需要逐级稀释，是否溶质的质量不能太小？比如在天平准确称量的前提下稀释至10%，是1g稀释到10g好还是0.1g稀释到1g好?

讨论一下：微生物限度检查是否都需要取连续2-3个稀释级？

越来越多的仪器上安装自动稀释系统了。可是对于一些低沸点、易挥发的有机溶剂，自动稀释系统怎样保证稀释的精准度呢？

石墨炉原子吸收法测硝酸镉溶液中镉的含量，样品稀释不同的倍数，检测结果相差很大！具体操作如下：取1ml浓度1mg/ml的硝酸镉置100ml容量瓶，以纯净水定容（硝酸用完了，因为是预试验，所以没用2%硝酸定容），再取1ml置100ml容量瓶，以纯净水定容，得测试样品溶液（1）。仪器：AAS ZEENIT700石墨炉条件：（升温速率略）干燥 75度20秒干燥 90度20秒干燥 110度10秒灰化 300度20秒AZ 300度4秒原子化 900度3秒除残 2300度3秒标准曲线浓度系列 0 0.8 2.00 4.00 6.00 8.00校正公式：ABS=（0.006120+0.059021X）/（1+0.039427X）为非线性X表示镉浓度，单位为ng/ml样品溶液（1）初测的浓度为117.2ng/ml,超出标线，故让仪器自动稀释5倍后（应直接稀释10倍看看），再测结果为166.8ng/ml，故进行手动稀释。取1ml样品溶液（1）置25ml容量瓶，以纯净水定容，得测试样品溶液（2）。样品溶液（2）的检测结果为1.679ng/ml。我的样品溶液（1）中的镉浓度是1mg/ml（1上下0.2左右），最初测试还算接近，但稀释5倍后反差更远了，再稀释25更对不上了（117.2/25=4.688或166.8/25=6.672，即使超出标线，也应该不会差得太远吧），请问这是为什么稀释25倍后差这么多？谢谢（我只是送样，管理仪器的老师代测）

我用的933没有自动稀释，每个浓度都差不多值，有些值更低，标准样品的值是减去标准空白的，为什么样品空白也减去了标准空白，标准空白和样品空白是一个东西，标准空白700多，样品空白是负数，为什么？

用原子荧光测定元素As，标准曲线只配置最高浓度，选择“自动稀释”！仪器自动稀释是按照什么规律进行的，标准曲线各浓度之间需要必须是同样的稀释倍数吗？下列的标准曲线浓度输入进去之后仪器可以由最高浓度的60μg/l稀释得到吗：5、10、20、30、40、60μg/l？？？