封闭式叶绿素荧光成像系统

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封闭式叶绿素荧光成像系统相关的厂商

  • 北京博普特科技有限公司 金牌4年
    400-860-5168转4713
    北京博普特科技有限公司成立于2008年，公司主要为植物、食品、生态、土壤、环境、气象、遥感行业提供科研仪器以及系统解决方案。涵盖田间表型成像系统、室内表型成像系统、种子表型成像系统、根系表型成像系统、显微表型成像系统等各个领域。公司主营产品有：WIWAM植物表型成像系统（RGB成像模块、多光谱激光雷达模块、叶绿素荧光成像模块、高光谱成像模块、近红外成像模块、计算机断层扫描模块、红外成像模块、3D激光雷达模块等）；Videometer植物、种子多光谱表型成像系统、根系多光谱表型成像系统、VideometerLiq液体稳定多光谱成像系统、VideometerMic显微多光谱成像系统、Videometer Minilab 便携式多光谱成像系统、Videometer LabUV紫外光多光谱成像系统、VideometerLab XY高通量种子表型成像系统；Plant-Ditech公司的Plantarray高通量植物生理表型研究平台、植物逆境生物学生理研究平台、植物种质资源精准评价与鉴定平台以及SPAC分析系统；Fraunhofer研究院的便携式植物种子断层扫描系统、台式计算机断层扫描系统、全自动种子断层扫描系统、大型落地式根系表型成像系统；Hiphen 公司Airphen多光谱表型成像系统、Hiphen LITERAL手持植物表型冠层成像系统、Hiphen推车多光谱成像系统、Phenomobile全自动全植株智能表型成像车；HAIP 公司的BlackBird科研级高光谱成像系统、Blackbullet科研级高光谱成像系统、Blackbox科研级高光谱成像系统、BlackIndustry 工业级高光谱成像系统、Black mobile便携式高光谱成像系统；SeQso高通量种子表型与播种一体化系统、CF叶绿素种子成熟度测量仪、自动种子分拣系统（X光、多光谱、高光谱、叶绿素荧光）；STEPS公司的植物生理生态监测系统、在线光合生理监测系统、土壤养分测量系统、植物养分测量系统、土壤5合1多参数测量仪、土壤直测PH计、盐度/活度检测仪；Pessl公司的植物生态环境智能传感器平台、植物物候远程监测系统；Inno-concept公司的植物活力胁迫测量系统、植物抗逆研究测量系统、气相离子迁移谱仪；Aquation水陆两用叶绿素荧光检测系统、经典和手持叶绿素荧光仪、Aquation公司的水下光合呼吸测量系统；EMS公司的便携式物联网乙烯气体分析仪、温室气体物联网监测系统；Cleangrow多参数离子测定仪、植物工厂自动8离子测定仪；Schaller全谷物湿度仪；EGC植物生长培养箱和生长室等等。
    主营产品： 植物表型测量   土壤测定仪   土壤酸度计   根系监测系统  
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  • 北京易科泰生态技术有限公司 金牌15年
    400-860-5168转1895
    北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年，为中关村高新技术企业，致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务，特别是在光谱成像技术（高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等）、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面，与国际领先企业PSI、Specim、Sable等合作，致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域先进仪器技术的引进推广和技术研发集成，为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80％以上具备硕士或硕士以上学位，并与中国科学院研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了长期的技术合作交流关系。 公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoTech实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心（与陕西师范大学合作建立）、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem全自动化学分析仪、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro+光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备，可以进行实验研究分析、实验培训等，欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。 易科泰公司与欧洲PSI公司（叶绿素荧光技术与表型分析技术）、美国SABLE公司（动物能量代谢技术）、欧洲SPECIM公司（高光谱成像技术）、欧洲WORKSWELL公司（红外热成像技术）、欧洲ATOMTRACE公司（LIBS元素分析技术）、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司（样芯密度扫描与元素分析）、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等国际著名生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系，在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生理生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验，成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究技术支持力量。由公司研制生产的EcoDrone无人机遥感平台、SoilTron多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox土壤呼吸测量技术、PhenoPlot轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2／O2梯度监测系统、植物生理生态监测技术、动物能量代谢测量技术等，在中科院修购项目、农业部学科群项目、CERN网络（生态系统监测网络）等项目中发挥重要作用。 “工欲善其事，必先利其器”，易科泰公司将秉承“利其器，善其事”的经营理念，为国内生态-农业-健康研究与发展提供最优的技术方案和服务。欢迎关注易科泰公众号：
    主营产品： 植物荧光成像   植物表型测量   叶绿素藻类   动物代谢检测  
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  • 温州市允诺阀门厂
    温州市允诺阀门厂温州允诺阀门厂位于泵阀之乡-浙江温州滨海经济开发区，占地15000平方米全封闭式生产厂房，现有员工300人，中高职称25人，技术410工程师10人，年生产5000余吨，是一家集科研、制造、销售、服务于一体的创新型生产企业。主要生产材料有：铸钢、铸铁、不锈钢、铬钼钢等，广泛适用于：制药、食品、啤酒、纺织、造纸、建筑、环保、污水处理、电厂、园林等行业。所有产品出厂前均经过严格的检测，确保了产品质量的可靠性。近年来为了允诺在市场占有率的稳固提升，不惜巨资引进了一批高精度专用设备，和卧式加工中心，并对产品进行了技术改造，从而使产品及外观得到稳固提升。产品畅销全国各地，远销俄罗斯、乌克兰、马来西亚等国，且赢得市场终端工程一致好评。为使广大终端客户得到实实在在的实惠，我们省略了中间代理环节，避免产品选型错误产生的事故，采用工厂直销模式，大大节约了销售成本和时间成本。允诺人一直坚持以质量求生存，以科技为指导，以诚信为原则，是公司创立的服务宗旨。允诺真诚携手每一位事业伙伴，共创美好明天。
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封闭式叶绿素荧光成像系统相关的仪器

  • FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统 400-860-5168转1895
    PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端叶绿素荧光技术设备，高分辨度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内，植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过千兆以太网与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点:1.系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析2.是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等26个参数3.是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100µ s内可达到120,000 µ mol(photons)/m² .s4.备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析（quenching）protocols、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等5.可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）6.具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益 7.可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 技术参数： 1.测量光为617nm可调制红光，持续时间10µ s–100µ s可调； 2.双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合， Actinic1光强300µ mol(photons)/m² .s，Actinic2光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s。双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益3.饱和光光强可达4000µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s，QA再氧化分析单周转饱和光闪STF可达120000µ mol(photons)/m² .s4.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，每个光源板由36颗LED阵列组成，光源板有效面积与成像面积相同13×13cm，另外还具备一个顶部双色光源（735nm红外光源和650nm红色光源）用于PAR吸收和NDVI成像测量；高强度高稳定性LED提供持续、稳定、均一的光源，不会因为用大量光强弱的LEDs（比如几百个）造成光源不稳定、寿命短等问题（使用大量弱光LED用于弥补每个LED的不足，会造成系统出错率的提高，任何一个LED出现问题都会造成系统的不稳定甚至不能使用）5.测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数及PAR吸收和NDVI植物光谱反射指数（选配），每个参数均可显示2维荧光彩色图像6.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI（选配）f) QA再氧化动力学（选配）g) GFP等静态荧光成像测量（选配）h) OJIP快速荧光动力学分析（选配）：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数7.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网8.成像面积：13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析9.7位滤波轮及叶绿素荧光滤波器、PAR吸收与NDVI成像测量滤波器（选配），可根据需要选配其它滤波器（选配）10.QA再氧化动力学成像分析（选配）：可进行STF荧光动力学分析测量，单周转光闪（STF）光强达120000 µ mol(photons)/m² .s in 100µ s11.OJIP快速荧光动力学模块（选配）：时间分辨率达1µ s，可测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi   _Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）12.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单13.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序14.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）15.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片16.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）17.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差18.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19.暗适应操作箱，内置光源、CCD镜头、滤波轮及滤波器、控制单元、散热装置等，方便暗适应操作，样品平台36x30cm，高度7级可调，样品（整株植物）最大高度可达12cm 20.给光制式：静态或动态21.Bios：固件可升级22.尺寸：471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 23.重量：Appr. 40 kg 24.电源输入：Appr. 1100 W 25.供电电压：90–240 V 配置组成：1.主机系统，包括暗适应操作箱，内置LEDs光源、滤波轮及滤波器、CCD镜头、控制单元、高度可调样品隔板、散热装置等2.高稳定性电源转换器3.FluorCam系统控制与数据分析软件4.笔记本电脑 产地：欧洲 附：其它FluorCam叶绿素荧光成像系统1.FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统：可与LCProSD光合仪、Licor光合仪等联用2.FluorCam便携式叶绿素荧光成像系统：成像面积3.5x3.5cm，具暗适应叶夹及多功能轻便三脚架，可用于实验室或野外测量和监测3.FluorCam便携式Chl/GFP荧光成像系统：为便携式荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析4.FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统：LED光源、CCD荧光监测镜头、控制单元等集成于暗适应操作箱内形成一个完整的主机系统，是世界上唯一可进行QA再氧化动力学和OJIP测量分析的叶绿素荧光成像系统，成像面积13x13cm5.FluorCam封闭式Chl/GFP荧光成像系统：为封闭式叶绿素荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析6.FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统：模块式，具备高度可扩展性，可自由选配不同的激发光源及相应滤波器以对叶绿素荧光动态及稳态荧光等进行成像分析，镜头高度可调，成像面积13x13cm7.FluorCam开放式大型版叶绿素荧光成像系统：成像面积可达20x20cm8.FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统：多激发光、多光谱荧光成像与光谱分析，可对叶绿素荧光动态、QA再氧化、OJIP快速荧光动力学进行显微成像分析和光谱分析，还可对GFP荧光、细胞荧光染色等进行显微成像分析9.Fluorcam移动式大型叶绿素荧光成像系统：大型叶绿素荧光成像平台安装在具轮子的支架上，方便移动，成像平台可上下移动，成像面积达35x35cm10.FluorCam样带扫瞄式叶绿素荧光成像系统：大型成像平台可在100－500cm的支架上对样带进行扫瞄成像，标配扫瞄区域长度为400cm，成像平台可沿样带精确定位自动扫瞄，可选配RGB真彩扫瞄成像，从而实现叶绿素荧光成像和真彩成像分析11.FluorCam多光谱荧光成像系统：属多激发光、多光谱荧光成像系统，不仅可对叶绿素荧光进行成像分析，还可对UV紫外光激发F440（蓝色荧光）、F520（绿色荧光）、F690（红色荧光）和F740（红外荧光）进行成像分析用于全方位研究检测植物胁迫与抗性，有标准配置、扩展配置和大型配置3种型号12.PlantScreen叶绿素荧光与RGB真彩自动扫描成像系统：是PlantScreen系列高通量植物表型成像分析系统的基础版，可对叶绿素荧光和植物RGB真彩进行成像分析，以分析检测植物的功能表型和形态表型，自动扫瞄范围为60x129cm，定位定时并得到4维（XYZ三维位置信息和时间信息）测量数据
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    厂商： 北京易科泰生态技术有限公司
    品牌： 捷克PSI
    型号： FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统
    价格： 面议
  • AZ-800M-C封闭式植物叶绿素荧光成像系统 400-860-5168转1895
    仪器简介：植物荧光成像系统一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取，提供2维图像，计算常规的荧光参数。F0， FM， FV， F0&rsquo ， FM&rsquo ， FV&rsquo ， NPQ， &Phi PSII， FV/FM， FV&rsquo /FM&rsquo ， RFd， qN， qP，及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广，既可是单个叶绿体或单个细胞（用显微植物荧光成像系统），也可是小的冠层（用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统）。此外，除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外，该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统（植物荧光蛋白成像系统）。用途： 1. 基本型：用于一般叶绿素荧光成像及荧光参数测量研究、Kautsky 诱导效应、 OJIP等 2. 标准型：除上述基本用途外还可以对Abs、F0&rsquo 、PAR吸收率等成像测量 3. GFP＋型：基本型加GFP成像测量（或其它颜色荧光） 4. 光合仪配套型：除上述基本用途外还可以接光合仪配合使用 5. 加强型：可用于QA再氧化动力学、荧光快速诱导等 6. 全能型：除上述基本用途外，还可以对Abs、F0&rsquo 、PAR吸收率、GFP等进行成像测量，此外可以与光合仪配合使用技术参数：1）图象分辨率：12bit， 512x512像素 2）图象抓取速度：每秒50幅 3）数据传输:USB2.0 口 4）该系统的软件功能： 设置和修改实验要求，如控制时间，实验周期，光强和摄象机操作 智能分割图像，显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来，如FV， FV/FM， qP， qN， NPQ， Rfd等，作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5）测量区域：直径8cm的圆形 6）光源：持续时间可调，最大到2秒，最大光强可达2000 mmol photons m-1 s-1主要特点：植物荧光成像系统采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。荧光成像原理：卤素灯提供饱和光脉冲，两个发光二极管板提供测量光和持续性光化学光。 封闭式植物荧光成像系统其核心是CCD摄象机，在测量样品的周围装有两个发光二极管板，带快门的卤素灯。 摄象机的焦距为F1.2/2.8-6 mm，每秒抓取50幅分辨率为12bit 或14bit的512x512像素的图象。图像与测量光一起存储，通过USB2.0接口传输。两个发光二极管板激发10-33ms的闪烁光，每个板都有345个橙色发光二极，lmax = 620 nm，也可提供其它颜色。发光二极管板产生连续光，均匀照射在直径8cm的圆形测量区域。250w的卤素灯产生饱和光脉冲，其持续时间可调，最大到2秒，最大光强可达2000 mmol photons m-1 s-1。该系统用PC或笔记本电脑控制。其技术原理在Nedbal L. et al. 2000， Photosynth.Res. 66: 3-12， Nedbal L. and Whitmarsh J. 2002， Chlorophyll fluorescence imaging of leaves. In: Chlorophyll fluorescence: A signature of photosynthesis， eds. Govindjee and Papageorgiou， G.， Kluwer Academic Publishers， in press 有详细介绍。
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    厂商： 北京易科泰生态技术有限公司
    品牌： 未知
    型号： AZ-800M-C
    价格： 面议
  • FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统 400-860-5168转1895
    FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统 FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统可以为一系列应用到绿色荧光蛋白的分子和细胞生物学研究提供服务。在封闭式荧光成像系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮，以及一系列的滤光片组，可以对GFP、EGFP、wtGFP、YFP、BFP或者其它波段荧光蛋白和荧光素进行检测和成像。 FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统也可用于检测植物发出叶绿素荧光的动态变化和空间分布，测量Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程（瞬变）并提供2维荧光图像。专门设计的硬件配置使得本系统能够自动转换成荧光蛋白、荧光素成像或叶绿素荧光检测成像。该系统高度集成，并且可以进行样品的暗适应。 应用领域： 荧光蛋白与荧光素的荧光检测 基因转移和生物传感器技术 转基因植物研究 不同基因型抗性筛选 植物——微生物交互作用研究 植物——原生动物交互作用研究 植物光合特性和代谢紊乱筛选 生物和非生物胁迫的检测 植物抗胁迫能力或者易感性研究 气孔非均一性研究 代谢混乱研究 长势与产量评估 功能特点: 操作简便，测量样品高度可调，集成了专用暗适应箱，方便被测植物的暗适应处理、操作等 高分辨率CCD，分辨率高达1392×1040像素，快速精确捕捉叶绿素荧光和GFP 可进行自动重复成像测量，可设置一个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳） 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达50多个 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×625px，用于叶片或植物形态测量分析 典型样品： 叶片，茎，种子，根，整株小植物愈伤组织，培养皿中的小苗果实和花朵蓝细菌，绿藻，细菌转基因动物技术参数： 荧光参数：F0，Fm，Fv，F0’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项参数 高分辨率CCD：1392×1040像素，15幅每秒；30幅每秒时分辨率为640×480像素；积分时间可从毫秒到秒。可以很好地测量叶绿素荧光和长积分时间的弱稳态荧光或者用于对空间分辨率要求更高的测量，用于GFP等荧光蛋白成像 2个红色（627nm）或蓝色（470nm）LED光源板用于提供测量光和光化学光1，2个蓝色（470nm）LEDs光源板用于提供饱和光闪和光化学光2 标配Actinic1光强300μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强2000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪4000μmol(photons)/m2.s 光源升级：Actinic1光强2000μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强3000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪6000μmol(photons)/m2.s 成像面积：13×13 cm 7位滤波轮：叶绿素荧光（高通695nm，低通780nm），GFP荧光（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm），PAR，YFP，CY3，CY5，以及其它荧光波段QA在氧化动力学模块（可选）：内置单周转光闪（STF），光强达120000 μmol(photons)/m2.s in 100μsOJIP快速荧光动力学模块（可选）：可测定OJIP曲线与二十几项相关参数F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC，时间分辨率达1μsPAR吸收测量模块（可选）：包括7位滤波轮和红外／红色光源板置于顶部，用于测定PAR吸收FluorCam叶绿素荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单Protocol实验程序可自由编辑，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差可进行自动重复成像测量（可选），可设置一个实验程序（Protocol）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）CCD检测器带宽：40–1000nm 给光制度：静态或动态（窦式） A/D 转换分辨率：12位 光谱响应：540nm处量子效率最高（70 %），400nm和650nm处转降50% 读出噪音：低于12eRMS，典型10e 满阱容量：大于70,000 e (unbinned) Bios：固件可升级 通讯方式：USB 2.0 尺寸：471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 重量：Appr.40 kg 电源输入：Appr. 1100 W 供电电压：90–240 V 典型应用： 产地：捷克 请致电索取参考文献列表
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    厂商： 北京易科泰生态技术有限公司
    品牌： 捷克PSI
    型号： FluorCam
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封闭式叶绿素荧光成像系统相关的资讯

  • FluorCam叶绿素荧光成像技术应用案例——上海生命科学研究院
    近日，易科泰生态技术有限公司为上海生命科学研究院调试安装一套FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统，该系统具备叶绿素荧光成像分析、GFP绿色荧光蛋白成像分析、PAR吸收与NDVI成像测量分析、实验程序自动运行监测等多项功能模块。上海生命科学研究院青年研究组长、博士生导师Chanhong Kim在苏黎世联邦理工学院（ETH-Zurich）、康奈尔大学博伊斯汤普森研究所（Boyce Thompson Institute at Cornell University）工作期间就已经使用FluorCam叶绿素荧光成像技术进行了大量的研究工作，并先后发表了“1O2-mediated retrograde signaling during late embryogenesis predetermines plastid differentiation in seedlings by recruiting abscisic acid”（PNAS（美国科学院院报），2009）、“Chloroplasts of Arabidopsis are the source and a primary target of a plant-speci?c programmed cell death signaling pathway”（The Plant Cell，2012）等学术论文。2014年，Chanhong Kim博士到上海生命科学研究院工作后，立刻就联系我公司购买了FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统，计划率领他的青年科学家团队运用FluorCam叶绿素荧光成像技术结合特定胁迫因子来筛选拟南芥突变体，并通过Quenching实验程序进一步研究这些突变体光系统中的具体表型变化（Phenotyping）和生理机制，对植物光合作用和抗逆机理进行深入的探索；同时利用该系统绿色荧光蛋白成像分析功能，来定量鉴别检测分析转基因表达。图1. FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统在实验室的工作状态图2. 拟南芥叶绿素荧光Fm（左图）、Fv/Fm（右图）成像分析，图中上半部分为拟南芥野生型，下半部分为突变株，上部选择了3个植株Area 1、2、3，下部选择了3个植株Area 4、5、6，野生型的Fv/Fm远高于突变株图3. GFP成像图，图中发出明亮颜色的植株即为表达了GFP的植株，其颜色越偏向红色，则表明其表达的GFP更多图4：PAR absorptivity／NDVI成像分析（由Ecolab实验室提供）FluorCam叶绿素荧光成像技术由全球知名叶绿素荧光技术专业公司PSI生产，PSI公司最先研制成功并生产叶绿素荧光成像仪器。PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，研制成功了叶绿素荧光成像技术（Nedbal等，2000），并于1997年为美国华盛顿大学提供了第一台商业FluorCam系统。Nedbal教授也是权威著作《Chlorophyll a Fluorescence, a Signature of Photosynthesis》(Springer, 2009)叶绿素荧光成像技术的作者。Fluorcam叶绿素荧光成像系统是世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像仪器，目前易科泰生态技术公司Ecolab实验室有近400篇参考文献供参考查阅。易科泰生态技术公司作为PSI在中国区域的独家代理和技术咨询服务中心，致力于FluorCam叶绿素荧光成像技术的引进推广，以助力于我国植物生理生态与胁迫生理生态研究、植物育种与优良品种筛选、植物表型分析（Phenotyping）、藻类生理生态学研究、污染生态学及生态毒理学研究等，先后引进了FluorCam便携式荧光成像、封闭式荧光成像、开放式荧光成像、移动式大型叶绿素荧光成像系统、FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统、多光谱荧光成像技术、PlantScreen高通量植物表型成像分析系统等；Ecolab生态实验室配备了便携式叶绿素荧光成像系统、FL3500多功能叶绿素荧光仪、FluorPen手持式叶绿素荧光仪、AquaPen手持式水体藻类荧光仪等，并与中科院植物所、中科院海洋所、中科院微生物所、中国农业大学、中国林科院林木遗传育种国家重点实验室等科研单位进行了一系列合作研究实验。欢迎合作研究或来我公司Ecolab实验室做实验。Ecolab实验室联系方式：电话：62615899；邮箱：info@eco-lab.cn, eco-lab@eco-tech.com.cn.
    时间： 2014-12-15
    作者： 易科泰
  • FluorCam 叶绿素荧光成像技术讲座及操作培训班邀请函
    为了进一步促进FluorCam叶绿素荧光成像技术在光合作用、植物发育生物学、植物抗逆生物学以及作物育种研究领域的应用，北京易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室与中国科学院植物研究所光生物学重点实验室，将于2017年4月中旬在植物所举办FluorCam叶绿素荧光成像技术专题讲座与仪器操作培训，将由相关领域的专家重点介绍FluorCam技术及其操作，详细讲解FluorCam技术在植物相关研究领域的应用。诚邀从事植物表型、光合作用、植物胁迫与抗性以及作物育种等领域的科研工作者参加本次培训班。一、会议组织 主办单位：北京易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室，中国科学院光生物学重点实验室 会议地点：北京市海淀区香山南辛村20号 中国科学院植物研究所 会议时间：2017年4月（具体时间请见后续通知） 二、会议主题 FluorCam叶绿素荧光技术介绍 FluorCam叶绿素荧光技术在植物相关研究领域中的应用 FluorCam叶绿素荧光技术操作与示范 三、报告人（持续更新中） 卢从明研究员（中国科学院植物研究所，中国科学院光生物学重点实验室主任） 彭连伟教授（上海师范大学生命与环境学院） 李川技术总监（易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室）四、仪器操作培训与会者将在植物所光生物学重点实验室和ECOLAB实验室实地参观并操作FluorCam仪器设备。16年培训班-FluorCam野外移动式叶绿素荧光成像系统16年培训班-FluorCam封闭式荧光成像系统农科院购置FluorCam大型叶绿素荧光成像平台FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统有意参加者可直接回复联系人邮件，后续会有专人跟您联系联系人：曹洋 邮箱：info@eco-tech.com.cn 电话：010-82611269/1572
    时间： 2017-02-23
    作者： 易科泰
  • 2010年北京易科泰上海叶绿素荧光技术及应用研讨会通知
    20世纪80年代，Quick等(1984)发明了脉冲调制技术(PAM)测量叶绿素荧光，从而催生了美国Optics及德国Walz等的脉冲调制荧光仪产品。进入90年代，双调制荧光仪(Trtilek等，1997)的研制成功，使荧光测量时间解析度(采样频率)达到100ns，从而可以进行精细的OJIP测量分析及天线色素的大小和异质性等研究分析。90年代后期，随着PSI公司(Photon Systems Instruments)率先生产出叶绿素荧光成像测量系统，叶绿素荧光成像技术开始应用并日趋成熟和迅速发展。　　易科泰生态技术有限公司Ecolab实验室与中科院上海植物生理生态研究所合作，特邀请双调制叶绿素荧光仪发明者、PSI科学研究与研发总监Martin Trtilek博士，在上海植物生理生态研究所举办“叶绿素荧光技术及应用”专题讲座，并示范叶绿素荧光测量仪、叶绿素荧光成像等部分仪器。讲座内容包括：　　 叶绿素荧光测量技术，包括快速叶绿素荧光测量仪、高灵敏度和超高灵敏度叶绿素荧光测量仪、藻类荧光在线监测等仪器技术及其应用　　 叶绿素荧光成像技术，包括开放式叶绿素荧光成像、封闭式叶绿素荧光成像、多广谱荧光成像、显微叶绿素荧光成像、FMT多功能荧光动态显微监测系统、叶绿素荧光三维成像系统、样带叶绿素荧光成像系统等　　 光养生物反应器技术，利用叶绿素荧光技术在线监测生理状态及生物量　　 LEDs植物/藻类培养与在线监测技术　　 叶绿素热释光测量技术　　欢迎各单位的研究人员、各高校的老师和同学参与和交流。在此之前PSI公司与易科泰生态技术有限公司将在第15届国际光合作用大会期间(北京，2010年8月22-27日)携样品仪器展出，欢迎大家光临。　　讲座时间：2010年8月30日(周一) 9：30　　地点：上海市枫林路300号 中国科学院植物生理生态研究所 新大楼一楼报告厅　　内容：1报告：叶绿素荧光技术及应用 主讲人：Martin Trtilek博士　　2 PSI仪器展示　　联系人信息：Ecolab生态实验室 张谧、李欢　　电话：010-82611269转810 Email：info@eco-lab.cn　　易科泰生态技术有限公司　　Ecolab生态实验室　　8月13日
    时间： 2010-08-16
    作者： rjzhou
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  • 叶绿素荧光显微成像技术在光合作用研究中的应用

    [align=center][size=16px][/size][/align][size=16px] 光合作用是地球上最重要的化学反应，植物、藻类及光合细菌等吸收光能、将[/size][size=16px]CO[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]和水转化为有机物并释放[/size][size=16px]O[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]。获得光能的叶绿素分子从基态跃迁到激发态，激发态的叶绿素分子可通过三种途径释放能量回到基态：推动光化学反应、以热的形式耗散、释放光子产生荧光。这三种途径的总和是一定的，因此叶绿素荧光的变化反映了光化学效率和热耗散能力的变化。叶绿素荧光成像是[/size][size=16px]广泛应用[/size][size=16px]的[/size][size=16px]光合生理研究的重要探针[/size][size=16px]，[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像又将研究尺度进一步拓展到细胞、亚细胞水平。叶绿素荧光技术发展出了很多不同的测量程序，以慢诱导荧光动力学曲线为例，通过测量光（[/size][size=16px]ML[/size][size=16px]）、作用光（[/size][size=16px]AL[/size][size=16px]）、饱和脉冲光（[/size][size=16px]SP[/size][size=16px]）激发样品，记录动力学曲线并计算叶绿素荧光参数[/size][size=16px]，[/size][size=16px]可以用于反映植物光合作用机理和光合生理状况（[/size][size=16px]朱新广[/size][size=16px]，[/size][size=16px]2021[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光成像技术能记录整个叶片、植株等样品不同区域的荧光动力学分布变化，实现从宏观到微观的光合机理研究。叶绿素荧光成像由于其无损、高通量的技术特征，在光合作用相关突变体筛选领域成为了广泛应用的重要技术，为光合作用机理及抗[/size][size=16px]逆研究[/size][size=16px]提供了强大的技术支持。叶绿素荧光显微成像技术最早出现于[/size][size=16px]2000[/size][size=16px]年，[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px]等人将叶绿素荧光脉冲调制式激发光源与显微镜结合，首次获得了显微尺度的叶绿素荧光图像（[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2000[/size][size=16px]）。叶绿素荧光显微成像技术在国外已经展开多方面研究应用，[/size][size=16px]目前国内的叶绿素荧光成像显微研究尚处于起步阶段，多个课题组都[/size][size=16px]正[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索[/size][size=16px]这项技术[/size][size=16px]在[/size][size=16px]不同研究领域中[/size][size=16px]的[/size][size=16px]应用。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光技术[/size][size=16px]适用研究样品微观结构上光[/size][size=16px]合功能[/size][size=16px]的空间差异，例如叶片横截面栅栏组织与海绵组织的差异，[/size][size=16px]C[/size][size=16px]4[/size][size=16px]植物花环结构[/size][size=16px]中维管束鞘细胞与叶肉细胞的差异[/size][size=16px]，藻类中有差异的单个细胞、异形胞[/size][size=16px]等。我们多年来与[/size][size=16px]吉林师范大学、四川省农业科学研究院[/size][size=16px]等[/size][size=16px]单位[/size][size=16px]合作[/size][size=16px]，[/size][size=16px]目前已合作发表的[/size][size=16px]3[/size][size=16px]篇相关论文是国内该领域[/size][size=16px]开创性[/size][size=16px]的应用成果，[/size][size=16px]以叶绿素荧光显微成像的特色优势技术[/size][size=16px]为光合作用的微观[/size][size=16px]探究提供有力支撑[/size][size=16px]。[/size][size=16px][/size][size=16px] Yu[/size][size=16px]等[/size][size=16px]发现[/size][size=16px]狗枣猕猴桃[/size][size=16px]（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia [/size][size=16px]kolomikta[/size][size=16px]）[/size][size=16px]的白化[/size][size=16px]叶片[/size][size=16px]通过调整叶片结构及基因表达调控，仍然保持了相对较高的光合能力[/size][size=16px]。[/size][size=16px]应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像技术[/size][size=16px]比较了[/size][size=16px]白化和绿色叶片栅栏组织、海绵组织的叶绿素荧光参数，[/size][size=16px]揭示了白化叶片海绵组织光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强的机理[/size][size=16px]。[/size][size=16px]绿叶中栅栏组织[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（最大光化学效率）[/size][size=16px]更高，而白叶中海绵组织[/size][size=16px]显著增厚，[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更高[/size][size=16px]，[/size][size=16px]光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强，补偿[/size][size=16px]了[/size][size=16px]白化的影响，成为叶片光合作用主力组织[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Yu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）[/size][size=16px]。[/size][size=16px]接下来[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px]等又比较了两种猕猴桃白化叶片的光保护策略差异[/size][size=16px]，狗枣猕猴桃的白叶[/size][size=16px]主要通过反射实现光保护，强光下花青素[/size][size=16px]积累，叶片[/size][size=16px]转变为粉色[/size][size=16px]，更有效地保护叶片[/size][size=16px]；[/size][size=16px]而[/size][size=16px]葛[/size][size=16px]枣猕猴桃（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia[/size][size=16px] [/size][size=16px]polygama[/size][size=16px]）[/size][size=16px]强光下[/size][size=16px]仍为白色[/size][size=16px]，[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有更[/size][size=16px]强[/size][size=16px]的叶绿[/size][size=16px]素荧光参数，说明[/size][size=16px]它[/size][size=16px]具有更高的强光适应能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 202[/size][size=16px]3[/size][size=16px]）。[/size][size=16px]Liu[/size][size=16px]等比较了干旱处理下的玉米叶肉细胞和维管束鞘细胞，发现这两种细胞具有不同的不同光保护策略[/size][size=16px]。对玉米[/size][size=16px]完整叶片的分析显示，[/size][size=16px]随着干旱处理程度增强，[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（实际光化学效率）[/size][size=16px]降低，[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]（非光化学猝灭[/size][size=16px]系数[/size][size=16px]）[/size][size=16px]显著升高[/size][size=16px]。进一步应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像[/size][size=16px]的分析结果[/size][size=16px]与完整叶片[/size][size=16px]相符合，并且发现[/size][size=16px]与叶肉细胞相比，维管束鞘细胞[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更低，干旱胁迫后[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]升高更显著[/size][size=16px]，[/size][size=16px]不同细胞的变化趋势[/size][size=16px]差异[/size][size=16px]表明它们[/size][size=16px]具有不同的光保护策略[/size][size=16px]，[/size][size=16px]维管束鞘细胞中可能具有更强的热耗散能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Liu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿[/size][size=16px]素[/size][size=16px]荧光显微成像技术在光合作用的微观研究领域具有独特的技术优势，在[/size][size=16px]光合作用机理研究、环境及毒理胁迫与抗性筛选、优良品系选育等领域[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有广阔的应用前景。目前多家单位的科研人员[/size][size=16px]都[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索该技术[/size][size=14px][size=16px]的新应用，我们也正在[/size][size=16px]将该技术拓展到[/size][size=16px]多个新的领域，例如对[/size][size=16px]原生质体[/size][size=16px]以及[/size][size=16px]种子、茎秆等非叶片器官的[/size][size=16px]研究[/size][size=16px]。[/size][/size][font='黑体']参考文献：[/font][font='calibri'][size=13px][1] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]朱新广[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]许大全主编[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]光合作用研究技术[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]上海科学技术出版社[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2021[/size][/font][font='calibri'][size=13px][2] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Küpper[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]I[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]?etlík[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Trtílek[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Photosynthetica[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2000, 38, s553-570 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][3] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Yu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]D[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 856732 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][4] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] D[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Q[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Wen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] G[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Shi[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]et al.[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Physiol. Plant.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2023, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]175:[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]e13880[/size][/font][font='calibri'][size=13px][5] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]W[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] J[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Y[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] E[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 885781[/size][/font]

  • 全封闭式加热制冷循环器真空泵如何进行保养维护

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    荧光显微成像系统配件和欧洲进口的显微成像系统,可用于研究细胞形态、荧光探针检测（GFP）、荧光共振能量转移(FRET)和快速分子过程。荧光显微成像系统配件集成方案 使用的现代荧光成像技术极大得帮助科研人员研究细胞形态、荧光探针检测 量转移和快速分子过程。 提供实验所需的曝光时间，根据相机的设置 有效集成并优化同步各种部件 显微成像系统集成方案 已经成为研究活细胞和分子结构比不可少的科研工具 能够以相机的最大速度连续采集一系列图像 可以产生每秒幅的比率图像 在更短的时间内获得更好的实验数据 荧光显微成像系统配件 可编程控制的光源 时成像控制单元 显微成像系统科研型相机 显微镜适配器 成像软件和工作站 价值尽量减少光毒性 显微成像系统特点 时序控制准确： 满幅图像帧频最高可达图像分析灵活： 非常适合单个细胞或一组活细胞的动态过程的研究 荧光显微成像系统配件特点 图像采集和传输的控制达到微秒精度图像采集快速： 软件具有多维图像分析功能和各种应用模块 三维成像要求在轴上能够快速成像，才能获得重建数据 孚光精仪是全球领先的进口科学仪器和实验室仪器领导品牌服务商，产品技术和性能保持全球领先,拥有包括凝胶成像仪在内的全球最为齐全的实验室和科学仪器品类，世界一流的生产工厂和极为苛刻严谨的质量控制体系，确保每个一产品是用户满意的完美产品。 我们海外工厂拥有超过3000种仪器的大型现代化仓库，可在下单后12小时内从国外直接空运发货，我们位于天津保税区的进口公司众邦企业（天津)国际贸易公司为客户提供全球零延误的进口通关服务。 更多关于显微成像系统价格等诸多信息，孚光精仪会在第一时间更新并呈现出来，了解更多内容请关注孚光精仪官方网站方便获取！
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