多荧光动态显微成像系统

荧光和荧光寿命分子包含多个单能态S0、S1、S2… 和三重态T1… ，每个能态都包含多个精细的能级。正常情况下，大部分电子处在*低能态即基态S0 的*低能级上，当分子被光束照射，会吸收光子能量，电子被激发到更高的能态S1 或S2 上，在S2 能态上的电子只能存在很短暂的时间，便会通过内转换过程跃迁到S1 上，而S1 能态上的电子亦会在极短时间内跃迁到S1 的*低能级上，而这些电子会存在一段时间后通过震荡弛豫辐射跃迁到基态，这个过程会释放一个光子，即荧光。此外，亦会有电子跃迁至三重态T1 上，再由T1 跃迁至基态，我们称之为磷光。荧光特性研究荧光特性时，主要在以下几方面进行分析：激发光谱，发射光谱、荧光强度、偏振荧光、荧光发光量子产率、荧光寿命等。其中荧光寿命（Fluorescence Lifetime）是指荧光分子在激发态上存在的平均时间（纳秒量级）。荧光寿命测试荧光寿命一般在几纳秒至几百纳秒之间，如今主要有两类测试方法：时域测量和频域测量时间稳定性实验测试曲线：1 时域测量由一束窄脉冲将荧光分子激发至较高能态S1，接着测量荧光的发射几率随时间的变化。其中目前广泛应用的是时间相关单光子计数，即TCSPC(Time Correlated Single Photon Counting)时间相关单光子计数(TCSPC) 实现了从百ps-ns-us 的瞬态测试，此方法对数据的获取完全依赖快速探测器和高速电路。用统计的方法计算样品受激后发出的第一个( 也是*一的一个) 光子与激发光之间的时间差，也就是下图的START( 激发时刻) 与STOP( 发光时刻) 的时间差。由于对于Stop 信号的要求，所以TCSPC 一般需要高重复频率的光源作为激发源，其重复至少要在100KHz 以上，多数的光源都会达到MHz 量级；同时，在一般情况下还要对Stop 信号做数量上的控制，做到尽量满足在一个激发周期内，样品产生且只产生一个光子的有效荧光信号，避免光子对的出现。2 频域测量对连续激发光进行振幅调制后，分子发出的荧光强度也会受到振幅调制，两个调制信号之间存在与荧光寿命相关的相位差，因此可以测量该相位差计算荧光寿命。 左图为正弦调制激发光（绿色）频域显示，发射光信号（红色）相应的相位变化频域显示。右图为对应不同寿命的调制和相位的频域显示。TM- 调制寿命，TP- 相位寿命。[1]显微荧光寿命成像技术（FLIM）显微荧光寿命成像技术（Fluorescence Lifetime ImagingMicroscopy，FLIM）是一种在显微尺度下展现荧光寿命空间分布的技术，由于其不受样品浓度影响，具有其他荧光成像技术无法代替的优异性能，目前在生物医学工程、光电半导体材料等领域是一种重要的表征测量手段。FLIM 一般分为宽场FLIM 和激光扫描FLIM。宽场FLIM（Wide Field FLIM,WFM）该技术是用平行光照明并由物镜聚焦样品获得荧光信号，再由一宽场相机采集荧光成像。宽场FLIM 常用于快速获取大面积样品成像。时域或是频域寿命采集都可以应用在宽场成像FLIM 上。宽场FLIM 有更高帧率和低损伤的优势。2 激光扫描FLIM（Laser Scanning FLIM,LSM）激光扫描FLIM 是针对选定区域内的样品逐点获取其荧光衰减曲线，再经过拟合最终合成荧光寿命图像。相比宽场FLIM，其在空间分辨率、信噪比方面有更大的优势。扫描方式有两种：一种是固定样品，移动激光进行扫描，一种是固定激光，电动位移台带动样品移动进行扫描。显微荧光寿命成像系统RTS2-FLIM应用材料科学领域宽禁带半导体如GaN、SiC 等体系的少子寿命mapping 测量量子点如CdSe@ZnS 等用作荧光寿命成像显微镜探针钙钛矿电池/LED 薄膜的组分分析、缺陷检测铜铟镓硒CIGS，铜锌锡硫CZTS 薄膜太阳能电池的组分、缺陷检测镧系上转换纳米颗粒GaAs 或GaAsP 量子阱的载流子扩散研究生命科学领域细胞体自身荧光寿命分析自身荧光相对荧光标记的有效区分活细胞内水介质的PH 值测量局部氧气浓度测量具有相同频谱性质的不同荧光标记的区分活细胞内钙浓度测量时间分辨共振能量转移（FRET）：纳米级尺度上的远差测量，环境敏感的FRET 探针定量测量代谢成像：NAD(P)H 和FAD 胞质体的荧光寿命成像显微荧光寿命成像系统RTS2-FLIM应用案例1 用荧光分子对海拉细胞进行染色用荧光分子转子Bodipy-C12 对海拉细胞（宫颈癌细胞的一种） 进行染色。(a) 显微荧光寿命成像图，寿命范围1ns（蓝色）到2.5ns（红色）；(b) 荧光寿命直方图，脂肪滴的短寿命约在1.6ns 附近，细胞中其他位置寿命较长，在1.8ns 附近。用荧光分子转子的时间分辨测量*大的好处在于荧光寿命具备足够清晰的标签特性，且与荧光团的浓度无关。[2]2 金属修饰荧光金属修饰荧光：(a) 荧光寿命是荧光团到金表面距离的函数；(b) 用绿色荧光蛋白（GFP）标记乳腺腺癌细胞的细胞膜的共聚焦xz 横截面，垂直比例尺：5m；(c) b 图的FLIM 图，金表面附近的GFP 荧光寿命缩短。[2]3 钙钛矿太阳能电池下图研究中，展示了一种动态热风（DHA）制备工艺来控制全无机PSC 的薄膜形态和稳定性，该工艺不含有常规的有害反溶剂，可以在大气环境中制备。同时，钙钛矿掺有钡（Ba2+） 碱金属离子（BaI2:CsPbI2Br）。这种DHA 方法有助于形成均匀的晶粒并控制结晶，从而形成稳定的全无机PSC。从而在环境条件下形成完整的黑色相。经过DHA处理的钙钛矿光伏器件，在0.09cm小面积下，效率为14.85%，在1x1cm的大面积下，具有13.78%的*高效率。DHA方法制备的器件在300h后仍然保持初始效率的92%。4 MQWs 多量子阱研究在(a) 蓝宝石和(b) GaN 上生长的MQWs 的共焦PL mapping 图像。具有较小尺寸的发光团的最高密度是观察到在GaN 上生长的MQWs。在(c) 蓝宝石和(d)GaN 上生长的MQWs 的共焦TRPL mapping 图。仅对于在GaN 上生长的MQWs，强的PL 强度区域与较长PL 衰减时间的区域很好地匹配。在(e) 蓝宝石和(f)GaN 上生长的MQWs 在A 点和B 点测量的局部PL 衰减曲线，均标记在图中。对于在GaN 上生长的MQWs，点A 和B 之间的PL 衰减时间差更高。显微荧光寿命成像系统FLIM参数配置北京卓立汉光仪器有限公司提供的显微荧光寿命成像系统是基于显微和时间相关单光子计数技术，配合高精度位移台得到微观样品表面各空间分布点的荧光衰减曲线，再经过用数据拟合，得到样品表面发光寿命表征的影像。是光电半导体材料、荧光标记常用荧光分子等类似荧光寿命大多分布在纳秒、几十、几百纳秒尺度的物质的选择。参数指标：系统性能指标光谱扫描范围200-900nm最小时间分辨率16ps荧光寿命测量范围500ps-1μs@ 皮秒脉冲激光器空间分辨率≤1μm@100X 物镜@405nm 皮秒脉冲激光器荧光寿命检测IRF≤2ns配置参数激发源及匹配光谱范围（光源参数基于50MHz 重复频率）375nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：30ps，平均功率1.5mW，荧光波段：400-850nm405nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：25ps，平均功率2.5mW，荧光波段：430-920nm450nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：50ps，平均功率1.9mW，荧光波段：485-950nm488nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：70ps，平均功率1.3mW，荧光波段：500-950nm510nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：75ps，平均功率1.1mW，荧光波段：535-950nm635nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：65ps，平均功率4.3mW，荧光波段：670-950nm660nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：60ps，平均功率1.9mW，荧光波段：690-950nm670nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：40ps，平均功率0.8mW，荧光波段：700-950nm科研级正置显微镜落射明暗场卤素灯照明，12V，100W5 孔物镜转盘，标配明场用物镜：10×，50×，100×监视CCD：高清彩色CMOS 摄像头，像元尺寸：3.6μm*3.6μm，有效像素：1280H*1024V，扫描方式：逐行，快门方式：电子快门电动位移台高精度电动XY 样品台，行程：75*50mm（120*80mm 可选），最小步进：50nm，重复定位精度：＜ 1μm光谱仪320mm 焦距影像校正单色仪，双入口、狭缝出口、CCD 出口，配置三块68×68mm 大面积光栅，波长准确度：±0.1nm，波长重复性：±0.01nm，扫描步距：0.0025nm，焦面尺寸：30mm(w)×14mm(h)，狭缝缝宽：0.01-3mm 连续电动可调探测器：制冷型紫外可见光电倍增管，光谱范围：185-900nm（标配，可扩展）光谱CCD（可扩展PLmapping）低噪音科学级光谱CCD（LDC-DD），芯片格式：2000x256，像元尺寸：15μm*15μm, 探测面：30mm*3.8mm，背照式深耗尽芯片，低暗电流，*低制冷温度-60℃ @25℃环境温度，风冷，最高量子效率值95%时间相关单光子计数器（TCSPC）时间分辨率：16/32/64/128/256/512/1024ps… … 33.55μs，死时间＜ 10ns，*高65535 个直方图时间窗口，瞬时饱和计数率：100Mcps，支持稳态光谱测试；OmniFluo-FM 荧光寿命成像专用软件控制功能：控制样品平移台移动，通过显微镜的明场光学像定位到合适区域，框选扫描区域进行扫描，逐点获得荧光衰减曲线，实时生成荧光图像等数据处理功能：自动对扫描获得的FLIM 数据，逐点进行多组分荧光寿命拟合（组分数小于等于4），对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示图像处理功能：直方图、色表、等高线、截线分析、3D 显示等操作电脑品牌操作电脑，Windows 10 操作系统软件界面控制测试界面测试软件的界面遵循“All In One”的简洁设计思路，用户可在下图所示的控制界面中完成采集数据的所有步骤：包括控制样品平移台移动，通过显微镜的明场光学像定位到合适区域，框选扫描区域进行扫描，逐点获得荧光衰减曲线，实时生成荧光图像等。数据处理界面功能丰富的荧光寿命数据处理软件，充分挖掘用户数据中的宝贵信息。可自动对扫描获得的FLIM 数据，逐点进行多组分荧光寿命拟合（组分数小于等于4），对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示。自主开发的一套时间相关单光子计数（TCSPC）荧光寿命的拟合算法，可对荧光衰减曲线中最多包含4 个时间组分的荧光过程进行拟合，获得每个组分的荧光寿命，光子数比例，计算评价函数和残差。TCSPC 荧光寿命通常并非简单的指数衰减过程，而是与光源及探测器相关的仪器响应函数（IRF）与荧光衰减过程相互卷积的结果，因此适当的拟合方法和参数选择对获得正确可靠的荧光寿命非常重要。该软件可导入实际测量的IRF 对衰减曲线进行卷积计算和拟合。但是大多数情况下， IRF 很难正确的从实验获得，针对这种情况，软件提供了两种无需实验获取IRF 的拟合方法：1.通过算法对数据上升沿进行拟合，获得时间响应函数IRF，然后对整条衰减曲线进行卷积计算和拟合得到荧光寿命。2.对于衰减时间远长于仪器响应时间的，可对衰减曲线下降沿进行直接的指数拟合。该软件经过大量测试，可以很好的满足各种场合的用户需求。MicroLED 微盘的荧光强度像（3D 显示）：

荧光和荧光寿命分子包含多个单能态S0、S1、S2…和三重态T1…，每个能态都包含多个精细的能级。正常情况下，大部分电子处在*低能态即基态S0 的*低能级上，当分子被光束照射，会吸收光子能量，电子被激发到更高的能态S1 或S2 上，在S2 能态上的电子只能存在很短暂的时间，便会通过内转换过程跃迁到S1 上，而S1 能态上的电子亦会在极短时间内跃迁到S1 的*低能级上，而这些电子会存在一段时间后通过震荡弛豫辐射跃迁到基态，这个过程会释放一个光子，即荧光。此外，亦会有电子跃迁至三重态T1 上，再由T1 跃迁至基态，我们称之为磷光。荧光特性研究荧光特性时，主要在以下几方面进行分析：激发光谱，发射光谱、荧光强度、偏振荧光、荧光发光量子产率、荧光寿命等。其中荧光寿命（Fluorescence Lifetime）是指荧光分子在激发态上存在的平均时间（纳秒量级）。荧光寿命测试荧光寿命一般在几纳秒至几百纳秒之间，如今主要有两类测试方法：时域测量和频域测量时间稳定性实验测试曲线：1 时域测量由一束窄脉冲将荧光分子激发至较高能态S1，接着测量荧光的发射几率随时间的变化。其中目前广泛应用的是时间相关单光子计数，即TCSPC(Time Correlated Single Photon Counting)时间相关单光子计数(TCSPC) 实现了从百ps-ns-us 的瞬态测试，此方法对数据的获取完全依赖快速探测器和高速电路。用统计的方法计算样品受激后发出的*一个( 也是唯一的一个) 光子与激发光之间的时间差，也就是下图的START( 激发时刻) 与STOP( 发光时刻) 的时间差。由于对于Stop 信号的要求，所以TCSPC 一般需要高重复频率的光源作为激发源，其重复至少要在100KHz 以上，多数的光源都会达到MHz 量级；同时，在一般情况下还要对Stop 信号做数量上的控制，做到尽量满足在一个激发周期内，样品产生且只产生一个光子的有效荧光信号，避免光子对的出现。2 频域测量对连续激发光进行振幅调制后，分子发出的荧光强度也会受到振幅调制，两个调制信号之间存在与荧光寿命相关的相位差，因此可以测量该相位差计算荧光寿命。 左图为正弦调制激发光（绿色）频域显示，发射光信号（红色）相应的相位变化频域显示。右图为对应不同寿命的调制和相位的频域显示。TM- 调制寿命，TP- 相位寿命。[1]显微荧光寿命成像技术（FLIM）显微荧光寿命成像技术（Fluorescence Lifetime ImagingMicroscopy，FLIM）是一种在显微尺度下展现荧光寿命空间分布的技术，由于其不受样品浓度影响，具有其他荧光成像技术无法代替的优异性能，目前在生物医学工程、光电半导体材料等领域是一种重要的表征测量手段。FLIM 一般分为宽场FLIM 和激光扫描FLIM。宽场FLIM（Wide Field FLIM,WFM）该技术是用平行光照明并由物镜聚焦样品获得荧光信号，再由一宽场相机采集荧光成像。宽场FLIM 常用于快速获取大面积样品成像。时域或是频域寿命采集都可以应用在宽场成像FLIM 上。宽场FLIM 有更高帧率和低损伤的优势。2 激光扫描FLIM（Laser Scanning FLIM,LSM）激光扫描FLIM 是针对选定区域内的样品逐点获取其荧光衰减曲线，再经过拟合*终合成荧光寿命图像。相比宽场FLIM，其在空间分辨率、信噪比方面有更大的优势。扫描方式有两种：一种是固定样品，移动激光进行扫描，一种是固定激光，电动位移台带动样品移动进行扫描。FLIM 应用材料科学领域宽禁带半导体如GaN、SiC 等体系的少子寿命mapping 测量量子点如CdSe@ZnS 等用作荧光寿命成像显微镜探针钙钛矿电池/LED 薄膜的组分分析、缺陷检测铜铟镓硒CIGS，铜锌锡硫CZTS 薄膜太阳能电池的组分、缺陷检测镧系上转换纳米颗粒GaAs 或GaAsP 量子阱的载流子扩散研究生命科学领域细胞体自身荧光寿命分析自身荧光相对荧光标记的有效区分活细胞内水介质的PH 值测量局部氧气浓度测量具有相同频谱性质的不同荧光标记的区分活细胞内钙浓度测量时间分辨共振能量转移（FRET）：纳米级尺度上的远差测量，环境敏感的FRET 探针定量测量代谢成像：NAD(P)H 和FAD 胞质体的荧光寿命成像OmniFluo-FLIM系列显微荧光寿命成像系统应用案例1 用荧光分子对海拉细胞进行染色用荧光分子转子Bodipy-C12 对海拉细胞（宫颈癌细胞的一种） 进行染色。(a) 显微荧光寿命成像图，寿命范围1ns（蓝色）到2.5ns（红色）；(b) 荧光寿命直方图，脂肪滴的短寿命约在1.6ns 附近，细胞中其他位置寿命较长，在1.8ns 附近。用荧光分子转子的时间分辨测量*大的好处在于荧光寿命具备足够清晰的标签特性，且与荧光团的浓度无关。[2]2 金属修饰荧光金属修饰荧光：(a) 荧光寿命是荧光团到金表面距离的函数；(b) 用绿色荧光蛋白（GFP）标记乳腺腺癌细胞的细胞膜的共聚焦xz 横截面，垂直比例尺：5 m；(c) b 图的FLIM 图，金表面附近的GFP 荧光寿命缩短。[2]3 钙钛矿太阳能电池下图研究中，展示了一种动态热风（DHA）制备工艺来控制全无机PSC 的薄膜形态和稳定性，该工艺不含有常规的有害反溶剂，可以在大气环境中制备。同时，钙钛矿掺有钡（Ba2+） 碱金属离子（BaI2:CsPbI2Br）。这种DHA 方法有助于形成均匀的晶粒并控制结晶，从而形成稳定的全无机PSC。从而在环境条件下形成完整的黑色相。经过DHA处理的钙钛矿光伏器件，在0.09cm小面积下，效率为14.85%，在1x1cm的大面积下，具有13.78%的*高效率。DHA方法制备的器件在300h后仍然保持初始效率的92%。4 MQWs 多量子阱研究在(a) 蓝宝石和(b) GaN 上生长的MQWs 的共焦PL mapping 图像。具有较小尺寸的发光团的*高密度是观察到在GaN 上生长的MQWs。在(c) 蓝宝石和(d)GaN 上生长的MQWs 的共焦TRPL mapping 图。仅对于在GaN 上生长的MQWs，强的PL 强度区域与较长PL 衰减时间的区域很好地匹配。在(e) 蓝宝石和(f)GaN 上生长的MQWs 在A 点和B 点测量的局部PL 衰减曲线，均标记在图中。对于在GaN 上生长的MQWs，点A 和B 之间的PL 衰减时间差更高。OmniFluo-FLIM系列显微荧光寿命成像系统参数配置北京卓立汉光仪器有限公司提供的显微荧光寿命成像系统是基于显微和时间相关单光子计数技术，配合高精度位移台得到微观样品表面各空间分布点的荧光衰减曲线，再经过用数据拟合，得到样品表面发光寿命表征的影像。是光电半导体材料、荧光标记常用荧光分子等类似荧光寿命大多分布在纳秒、几十、几百纳秒尺度的物质的不二选择。参数指标：系统性能指标光谱扫描范围200-900nm*小时间分辨率16ps荧光寿命测量范围500ps-1μs@ 皮秒脉冲激光器空间分辨率≤1μm@100X 物镜@405nm 皮秒脉冲激光器荧光寿命检测IRF≤2ns配置参数激发源及匹配光谱范围（光源参数基于50MHz 重复频率）375nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：30ps，平均功率1.5mW，荧光波段：400-850nm405nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：25ps，平均功率2.5mW，荧光波段：430-920nm450nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：50ps，平均功率1.9mW，荧光波段：485-950nm488nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：70ps，平均功率1.3mW，荧光波段：500-950nm510nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：75ps，平均功率1.1mW，荧光波段：535-950nm635nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：65ps，平均功率4.3mW，荧光波段：670-950nm660nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：60ps，平均功率1.9mW，荧光波段：690-950nm670nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：40ps，平均功率0.8mW，荧光波段：700-950nm科研级正置显微镜落射明暗场卤素灯照明，12V，100W5 孔物镜转盘，标配明场用物镜：10×，50×，100×监视CCD：高清彩色CMOS 摄像头，像元尺寸：3.6μm*3.6μm，有效像素：1280H*1024V，扫描方式：逐行，快门方式：电子快门电动位移台高精度电动XY 样品台，行程：75*50mm（120*80mm 可选），*小步进：50nm，重复定位精度：＜ 1μm光谱仪320mm 焦距影像校正单色仪，双入口、狭缝出口、CCD 出口，配置三块68×68mm 大面积光栅，波长准确度：±0.1nm，波长重复性：±0.01nm，扫描步距：0.0025nm，焦面尺寸：30mm(w)×14mm(h)，狭缝缝宽：0.01-3mm 连续电动可调探测器：制冷型紫外可见光电倍增管，光谱范围：185-900nm（标配，可扩展）光谱CCD（可扩展PLmapping）低噪音科学级光谱CCD（LDC-DD），芯片格式：2000x256，像元尺寸：15μm*15μm, 探测面：30mm*3.8mm，背照式深耗尽芯片，低暗电流，*低制冷温度-60℃ @25℃环境温度，风冷，*高量子效率值95%时间相关单光子计数器（TCSPC）时间分辨率：16/32/64/128/256/512/1024ps……33.55μs，死时间＜ 10ns，*高65535 个直方图时间窗口，瞬时饱和计数率：100Mcps，支持稳态光谱测试；OmniFluo-FM 荧光寿命成像专用软件控制功能：控制样品平移台移动，通过显微镜的明场光学像定位到合适区域，框选扫描区域进行扫描，逐点获得荧光衰减曲线，实时生成荧光图像等数据处理功能：自动对扫描获得的FLIM 数据，逐点进行多组分荧光寿命拟合（组分数小于等于4），对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示图像处理功能：直方图、色表、等高线、截线分析、3D 显示等操作电脑品牌操作电脑，Windows 10 操作系统 FLIM 软件界面控制测试界面测试软件的界面遵循“All In One”的简洁设计思路，用户可在下图所示的控制界面中完成采集数据的所有步骤：包括控制样品平移台移动，通过显微镜的明场光学像定位到合适区域，框选扫描区域进行扫描，逐点获得荧光衰减曲线，实时生成荧光图像等。数据处理界面功能丰富的荧光寿命数据处理软件，充分挖掘用户数据中的宝贵信息。可自动对扫描获得的FLIM 数据，逐点进行多组分荧光寿命拟合（组分数小于等于4），对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示。自主开发的一套时间相关单光子计数（TCSPC）荧光寿命的拟合算法，可对荧光衰减曲线中*多包含4 个时间组分的荧光过程进行拟合，获得每个组分的荧光寿命，光子数比例，计算评价函数和残差。TCSPC 荧光寿命通常并非简单的指数衰减过程，而是与光源及探测器相关的仪器响应函数（IRF）与荧光衰减过程相互卷积的结果，因此适当的拟合方法和参数选择对获得正确可靠的荧光寿命非常重要。该软件可导入实际测量的IRF 对衰减曲线进行卷积计算和拟合。但是大多数情况下， IRF 很难正确的从实验获得，针对这种情况，软件提供了两种无需实验获取IRF 的拟合方法：NO.1 通过算法对数据上升沿进行拟合，获得时间响应函数IRF，然后对整条衰减曲线进行卷积计算和拟合得到荧光寿命。NO.2对于衰减时间远长于仪器响应时间的，可对衰减曲线下降沿进行直接的指数拟合。该软件经过大量测试，可以很好的满足各种场合的用户需求。MicroLED 微盘的荧光强度像（3D 显示）：测试案例

FKM（Fluorescence Kinetic Microscope）多光谱荧光动态显微成像系统是目前功能最为强大全面的植物显微荧光研究仪器，是基于FluorCam叶绿素荧光成像技术的显微成像定制系统。它由包含可扩展部件的增强显微镜、高分辨率CCD相机、激发光源组、光谱仪、控温模块以及相应的控制单元和专用的工作站与分析软件组成。它不仅可以进行微藻、单个细胞、单个叶绿体乃至基粒-基质类囊体片段进行Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等各种叶绿素荧光及MCF多光谱荧光（multicolor fluorescence）成像分析；还能通过激发光源组进行进行任意荧光激发和荧光释放波段的测量，从而进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料以及藻青蛋白、藻红蛋白、藻胆素等藻类特有荧光色素的成像分析；更可以利用光谱仪对各种荧光进行光谱分析，区分各发色团（例如PSI和PSII及各种捕光色素复合体等）并进行深入分析。 FKM多光谱荧光动态显微成像系统使荧光成像技术真正成为光合作用机理研究的探针，使科研工作者在藻类和高等植物细胞与亚细胞层次深入理解光合作用过程及该过程中发生的各种变化，为直接研究叶绿体中光合系统的工作机理提供了最为有力的工具。FKM作为藻类/植物表型和基因型显微研究的双重利器，得到了学界的广泛认可并取得了大量的科研成果。功能特点• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序，如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等，可获得70余项参数。• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜，可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光。• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等，通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光，能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图。• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量，提高实验精度，也可以进行高温/低温胁迫研究。 应用领域• 微藻、大型藻类/高等植物的单个细胞、单个叶绿体、基粒-基质类囊体片段等的显微结构植物光合生理研究• 藻类/植物逆境研究• 生物和非生物胁迫的研究• 藻类/植物抗胁迫能力及易感性研究• 突变体筛选及光合机理研究• 藻类长势与产量评估• 藻类特有色素与光合作用关系• 藻类/植物——微生物交互作用研究• 藻类/植物——原生动物交互作用研究• 基因工程与分子生物学研究测量样品• 植物活体切片• 植物表皮• 植物细胞• 绿藻、蓝藻等各种单细胞和多细胞微藻• 叶绿体提取液• 类囊体提取液• 含有叶绿体的原生动物工作原理 FKM分析过程中，通过连接在显微镜上的激发光源组和内置在6位滤波轮中的一系列滤波器、分光镜激发植物样品中各种发色团的动态荧光。样品激发出的荧光经显微镜放大后进行荧光光谱分析和荧光动力学成像分析。SM 9000光谱仪通过光纤与显微镜连接，以进行激发荧光光谱分析。安装在显微镜顶部的高分辨率CCD相机则用于荧光动力学成像分析。全部工作过程通过工作站和控制单元按照预先设定好的程序自动进行。测量过程中，可通过温控模块调控藻类、植物细胞等实验样品的温度。蠕动泵可以实现培养藻类的连续测量。仪器组成1. 增强显微镜 2. 高分辨率CCD相机 3. 激发光源组 4. SM 9000光谱仪 5. 主控制单元 6. 工作站及软件 7. 控温模块的控制单元8. 6位滤波轮技术参数• 测量参数?Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' , Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像?OJIP快速荧光曲线：测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi???_Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）等（选配）?GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白和荧光染料的成像分析（选配）?QA再氧化动力学曲线（选配）?Spectrum荧光光谱图（选配）• 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑?Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等?Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数?荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数，2套制式程序?光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数?Dyes & FPs稳态荧光成像测量?OJIP快速荧光动力学分析：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数（选配）?QA再氧化动力学（选配）?Spectrum荧光光谱分析（选配）• 荧光激发光源：红外光、红光、橙光、蓝光、绿光、白光、紫外光等可选，根据客户要求定制光源组• 透射光源（选配）：白光、远红光?高分辨率TOMI-2 CCD传感器：?逐行扫描CCD?最高图像分辨率：1360×1024像素?时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧?A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）?像元尺寸：6.45μm×6.45μm?运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量?通讯模式：千兆以太网• 显微镜：Axio Imager M2，可选配Axio Scope A1简洁版或Axio Imager Z2高级版?物镜转盘：研究级7孔自动物镜转盘?透射光快门?聚光器 Achr Apl 0.9 H?6位反光镜转盘?双目镜筒(100:0/30:70/0:100)?机械载物台：75×50mm，硬膜阳极氧化表面?样品架：76×26mm• 物镜：10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜（可选）• 6位滤波轮：叶绿素荧光、GFP/SYTOX、DAPI/CTC等• SM9000光谱仪?入射狭缝：70μm×1400μm ?光栅：平场型校正?光谱范围：200-980nm?波长绝对精确度：0.5nm?再现性：0.1nm?温度漂移：0.01nm/K• 温度调控模块：温度调节范围 5℃-70℃，精确度0.1℃• 蠕动泵（选配）：流速10-5600μl/min，用于藻类连续培养测量• FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单 • 客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序• 自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）• 快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片• 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）• 数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差• 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等叶绿素荧光与光谱分析结果典型应用：产地：捷克参考文献：1.Küpper H, et al. 2019. Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging. Plant Physiology 179: 369-3812.Konert G, et al. 2019. Protein arrangement factor: a new photosynthetic parameter characterizing the organization of thylakoid membrane proteins. Physiologia Plantarum 166: 264-277.3.Exposito-Rodriguez M, et al. 2017. Photosynthesis-dependent H2O2 transfer from chloroplasts to nuclei provides a high-light signalling mechanism. Nature Communications, 8: 494.Higo S, et al. 2017. Application of a pulse-amplitude-modulation (PAM) fluorometer reveals its usefulness and robustness in the prediction of Karenia mikimotoi blooms: A case study in Sasebo Bay, Nagasaki, Japan. Harmful Algae, 61:63-705.Jacobs M, et al. 2016. Photonic multilayer structure of Begonia chloroplasts enhances photosynthetic efficiency. Nature Plants, doi:10.1038/nplants.2016.1626.Andresen E, et al. 2016. Cadmium toxicity investigated at the physiological and biophysical levels under environmentally relevant conditions using the aquatic model plant Ceratophyllum demersum. New Phytol., 210(4):1244-12587.Thomas G, et al. 2016. Deficiency and toxicity of nanomolar copper in low irradiance—A physiological and metalloproteomic study in the aquatic plant Ceratophyllum demersum. Aquatic Toxicology, 177:226-2368.Fujise L, et al. 2014. Moderate Thermal Stress Causes Active and Immediate Expulsion of Photosynthetically Damaged Zooxanthellae (Symbiodinium) from Corals. PLOS ONE, DOI:10.1371/journal.pone.01143219.Gorecka M, et al. 2014. Abscisic acid signalling determines susceptibility of bundle sheath cells to photoinhibition in high light-exposed Arabidopsis leaves. Philosophical Transactions of the Royal Society B, 369(1640), DOI: 10.1098/rstb.2013.023410.Mishra S, et al. 2014. A different sequence of events than previously reported leads to arsenic-induced damage in Ceratophyllum demersum L. Metallomics, 6: 444-45411.Ferimazova N, et al. 2013. Regulation of photosynthesis during heterocyst differentiation in Anabaena sp. strain PCC 7120 investigated in vivo at single-cell level by chlorophyll fluorescence kinetic microscopy. Photosynthesis Research, 116(1): 79-9112.Andresen E, et al. 2013. Effects of Cd & Ni toxicity to Ceratophyllum demersum under environmentally relevant conditions in soft & hard water including a German lake. Aquatic Toxicology. 142–143, 15: 387–402

显微拉曼荧光寿命成像系统 德国S&I GmbH成立于1995年，是一家专门从事科研级拉曼光谱分析设备的制造公司，也是美国普林斯顿仪器（Princeton Instruments）在欧洲的OEM客户,其设备以优异的灵活性，高灵敏及易操作性著称。 显微拉曼荧光寿命成像系统，型号：MonoVista CRS+系列产品定位：服务于科学研究的强大“光谱成像综合分析平台”。lS&I公司擅长于提供各种科研级定制化的解决方案；l根据用户的应用需求，适用并可拓展不同的配置；l在保证系统自动控制与高可靠性情况下，适合各种光学测试；l显微拉曼光谱 /显微荧光 / 荧光寿命TCSPC成像/l变温红外光谱 / 时间分辨光谱 / 暗场光谱/l适用高压科学研究要求的开放式测试环境，如大样品系统，低温，强磁，高温等。 lMonovista CRS+系统是基于共聚焦显微镜设计的多功能光谱成像分析系统；应用领域：高压科学材料,半导体材料特性,碳纳米材料，钙钛矿材料，生物细胞研究等。 低波数性能： Stokes/Anti-Stokes spectrum from L-Cystine显微拉曼荧光寿命成像系统特点：l深紫外到近红外波长范围l多达 4 个集成多线激光器，可选配外接大型激光器端口l紫外和可见光/近红外双光束路径l自动控制激光选择l自动对准，聚焦和校准功能l超高拉曼光谱分辨率，例如 FWHM＜25px -1 @ 633 nml利用低波数拉曼附件，低波数可测试到 +/- 10 cm-1 l高波数范围可达 225000px-1（@ 532nm），适用于光致发光l热电制冷和液氮制冷探测器l正置/倒置/双显微镜l步进电机和压电驱动 XYZ 位移台l快速拉曼 mappingl集成控制加热/冷却台，液氦温度低温恒温器l可结合拉曼成像和原子力显微镜成像l自动控制的偏振光谱功能 硬件与激光选择软件自动切换 荧光扣减与背景抑制功能 同一样品不同成分的拉曼成像图显微拉曼荧光寿命成像系统定制应用案例 Monovista显微光路+宏光路拉曼+AFM Monovista与低温，强磁测试条件(HPSTAR)

用途： FC 2000-Z荧光动态显微镜是基于实验室研究设计的通用研究工具，在FC 2000的基础上扩展多种功能，如叶绿素动态或多色荧光成像单个细胞或亚细胞结构。常规荧光参数都可以精确到微米，可以对植物个体甚至叶绿素颗粒进行观测。该产品可以发射高频光谱探测波进行高分辨率荧光成像，将荧光成像与吸收动态相结合。FC 2000-Z荧光动态显微镜可以用来进行光谱测量，即可以通过搭配SM 9000光谱仪来同步测量。 整体光学系统包含：1、测量摄像头；2、三端口视频适配器；3、两端口手动开关适配器；4、光学适配器用于分光光度计；5、分光光度计；6、C型照相机适配器；7、电动滤光块(8立方)；8、滤光轮用于开关激发（当保护发射过滤器）；9、FKM控制单元；10、蠕动泵用于液体媒介；11、气泵；12、温度控制单元；13、流通恒温器。 特点：曝光时间间隔每帧10µ s~20ms；十三个光源用于产生测量用光和光化光(光谱可调)；多重荧光成像；量子输出峰值达70%，噪声4电子；软件自动化操作；分光和快速测量荧光和吸收动态(可选)； 软件：自动实验方案设置向导，软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序；多重（自动重复）实验；自动或主动图像分割-植物个体；对视野内所有样品进行动态分析；可导出文本文件； 大量图像处理工具；操作系统支持Windows 2000，XP，Vista，Win7； 可选配件：SM 9000光谱分析仪；光学开关-双适配器P&C；T2-2x60N；PSI温度调节组件；其他(根据客户需求和要求添加)； 应用： 测量叶绿素荧光动态及成像；对植物进行不同波长、不同部位的研究测量；用光谱分析仪进行光化学和非光化学淬灭的分析；分析非叶绿素荧光动态检测进行比较，相同细胞不同光合作用性能；调整不同曝光速度进行QA氧化测量； 产地：捷克

仪器简介：植物叶绿素荧光成像一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取，提供2维图像，计算常规的荧光参数。F0， FM， FV， F0&rsquo ， FM&rsquo ， FV&rsquo ， NPQ， &Phi PSII， FV/FM， FV&rsquo /FM&rsquo ， RFd， qN， qP，及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广，既可是单个叶绿体或单个细胞（用显微植物荧光成像系统），也可是小的冠层（用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统）。此外，除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外，该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统（植物荧光蛋白成像系统）。还有一种多功能荧光动态显微检测系统，它除具备显微叶绿素荧光成像系统的功能外，还集成了分光光度计SM－9000、PAM荧光测量技术及FL3500双调制荧光测量仪，用于高分辨率快速荧光动态测量和成像。多种激发光源可以激发不同的天线色素，从而分析出那些色素蛋白复合体对光化学荧光淬灭或非光化学荧光淬灭贡献更大。同时还可以对非叶绿素荧光（自发荧光及荧光染料等）动态进行测量分析，超高灵敏度镜头可以在很低的光线下（从而不干扰正常细胞代谢）成像，并且还可以对目前市场上其它镜头捕捉不到的快速过程如QA再氧化、天线联通性及天线大小等进行测量分析。技术参数：1）图象分辨率：12bit， 512x512像素 2）图象抓取速度：每秒50幅 3）数据传输:USB2.0 口 4）该系统的软件功能： 设置和修改实验要求，如控制时间，实验周期，光强和摄象机操作 智能分割图像，显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来，如FV， FV/FM， qP， qN， NPQ， Rfd等，作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5）分辨率： mm主要特点：植物叶绿素荧光成像采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。显微植物荧光成像系统可成像单个细胞和亚细胞的荧光。所有的常规荧光参数都可成像，分辨率达mm，可用于研究单个的叶绿体或是类囊体。该系统和配置多种显微镜。

产品介绍Videometer Mic是一款新型、功能强大且性价比较高的将显测量技术与多光谱技术结合的成像测量系统。通过控制系统就可进行高分辨率显微多光谱成像。基础模块包括标配10个散射波段，波长范围为280-1050nm。可固定摄像头或移动摄像头。Videometer Mic显微多光谱成像系统是一款自动多光谱显微成像系统，集成了多光谱相机传感器，安装在xyz平台上，可实现达30mmX30mm的样品自聚焦和扫描，可以测量较小的样品，比如拟南芥种子等小植株、用多孔板培养的植物、多孔板里的叶圆片、以及植物的种子等，分析软件功能强大。Videometer Mic显微多光谱测量系统通过测量样品在10种不同波长的LED频闪光下的成像来获取有用的信息。这些图像可以独立分析使用，也可以叠加起来合成高分辨率的彩色图像。Videometer备选模块包括滤波轮，用于荧光相关研究测量。Videometer Mic也可用于食品样品成像分析测量领域如海鲜品质评估、肉类品质评估、肌肉、脂肪和肉色测量、肌肉和脂肪分布、果品和蔬菜品质检测、琼脂平板菌落计数、质构分析、颗粒涂层分析、孔隙结构分析等；可专用于寄生虫检测。Videometer已经有成熟的针对颗粒例如种子的研究方案，这些形态、表型成像技术，完全可在显微镜下使用，尤其是显微镜下的多光谱特征，是一个全新的探索领域，例如多光谱显微分析法还可用于植物组织、颗粒研究，如小麦、水稻。产品特点5-10秒钟内实现光谱成像和定量分析10种不同波长/光源1.4百万像素图片标准设备包括使用设备校准与传统RGB技术相比具有先进的彩色测量功能根据应用需求可自动切换动态范围光源寿命长、可达10万小时少有LED光源技术稳定性增强研究用强大探索软件易用常规应用配方构建模型（建模）多光谱荧光备选应用领域肌肉、脂肪和肉色测量菌落鉴别寄生虫分析海鲜品质评估肌肉和脂肪分布植物病害肉类品质评估果品和蔬菜品质检测质构分析孔隙结构分析测量参数细微尺寸细微形状细微颜色细微形态纹理光谱质构与细微表面化学相关的光谱成分计数应用案例水稻雄性不育是水稻杂种优势利用的基础。长期以来，显微镜下的细胞学证据是判别水稻雄性不育系花粉细胞败育程度和区分不同雄性不育细胞质的较主要依据之一。法碘化钾染色是较简单的方之一。该方法是基于水稻在花粉发育过程中，正常发育的花粉积累大量淀粉，能被碘—碘化钾染色且着色深而均匀；败育花粉不能正常积累淀粉、不能被染色或染色较浅。但是，在发育过程中有些水稻雄性不育系的花粉也能积累少量淀粉。花粉败育过程中的复杂性，降低了碘—碘化钾染色法鉴别水稻花粉育性的可靠性，有时其结果很可能反映不出花粉生活力的真实情况。另外也有用醋酸洋红等其它染色方法进行的各种研究报道。这些传统的常规方法存在植物雄性不育是水稻等农作物利用杂种优势的理论基础。在农作物遗传育种的研究领域中，一个基础性的研究课题就与水稻的雄性不育的有关。研究可利用Videometer Mic多光谱显微成像系统，比较观察水稻花药发育的全过程以及两水稻不育系花粉败育的不同特征。技术参数标准：5-10秒钟内实现光谱成像和定量分析光源寿命长：可达10万小时光源：具有10个高功率LED 灯源，波段范围从280 nm-1050 nm图像尺寸： 图1.4M 分辨率：1~5 μm /像素 样品尺寸：3 x 3cm分析时间：每个样品5-10秒室温：操作: 5 - 40℃，储存；-5 – 50℃环境湿度：20-90 % RH相对湿度，非冷凝电源：100-240V AC，50/60HZPC 要求：较低配置: Intel i7或较高，16GB RAM，USB2端口，USB3高速端口，千兆以太网软件：Microsoft Windows 7 Professional, 64 bit, 全新windows版本硬件备选：滤波轮（用于荧光）可选软件：图像处理工具盒（IPT）、光谱成像工具盒（MSI）、斑点工具盒

显微拉曼荧光寿命成像系统 德国S&I GmbH成立于1995年，是一家专门从事科研级拉曼光谱分析设备的制造公司，也是美国普林斯顿仪器（Princeton Instruments）在欧洲的OEM客户,其设备以优异的灵活性，高灵敏及易操作性著称。MonoVista CRS+系列产品定位：服务于科学研究的强大“光谱成像综合分析平台”。l S&I公司擅长于提供各种科研级定制化的解决方案；l 根据用户的应用需求，适用并可拓展不同的配置；l 在保证系统自动控制与高可靠性情况下，适合各种光学测试；l 显微拉曼光谱 /显微荧光 / 荧光寿命TCSPC成像/ l 变温红外光谱 / 时间分辨光谱 / 暗场光谱/ l 适用高压科学研究要求的开放式测试环境，如大样品系统，低温，强磁，高温等。l Monovista CRS+系统是基于共聚焦显微镜设计的多功能光谱成像分析系统；l 应用领域：高压科学材料,半导体材料特性,碳纳米材料，钙钛矿材料，生物细胞研究等MonoVista CRS+ 特点：激光器深紫外到近红外波长范围多达内置4个波长激光器，外置外接大型激光器紫外和可见光/近红外双光束路径自动控制激光选择自动对准，聚焦和校准功能超高拉曼光谱分辨率 ＜0.9cm-1 @ 633 nm低波数拉曼,可测试到 +/- 10 cm-1高波数范围: 9000cm-1（@ 532nm）热电制冷和液氮制冷探测器正置/倒置/双显微镜空间分辨率：XY 1um Z 2um步进电机和压电驱动XYZ位移台快速3D拉曼Mapping荧光寿命成像Mapping功能集成控制液氮温度冷热台集成液氦温度低温恒温器可结合拉曼成像和原子力显微镜成像自动控制的偏振光谱功能L-Crystine的超低波数拉曼（正反斯托克斯）CCL4的超高拉曼分辨率TCSPC荧光寿命测试功能2 激光波长从375纳米到810纳米2 时间通道数：65536 ,分辨精度：4ps 2 各通道采集延时调节范围 ：± 100 ns，2 寿命时间抖动误差：12ps2 最大计数率：10MHz 最大同步率：84 MHz2 多种探测器选项，探测器通道：2个2 二维寿命成像，XY扫描压电位移台2 扫描台，范围可达几厘米，XY扫描精度优于500nm 2 固有响应时间：95ns2 仪器响应函数（IRF）200ps荧光寿命测试曲线荧光寿命MappingVistaControl硬件控制界面拉曼Mapping与显微图像对比MonoVista CRS+ 定制系统应用案例Monovista显微光路+宏光路拉曼+AFM Monovista与低温，强磁测试条件(HPSTAR)

强大功能快速—96孔板三荧光通道整板扫描，只需不到5分钟灵活—提供20多种用户可更换的LED光立方、1.25X至100X的各种物镜和多种容器适配器，可根据实验自定义系统延时活细胞成像—含氧或缺氧状态下精确的温度、湿度和气体控制，利用载物台式培养箱，可在生理学条件下实现各种生物学应用研究视野—可在低倍镜单视野和高倍镜扫描模式之间快速、无缝切换，轻松定义并采集目的区域自动化—节省时间 (如自动聚焦、快速机械载物台和自动化常规操作) 可缩短实验时间，实现高通量、高数据质量和更佳的实验可重复性数据分析—可选的高级软件包，实现定量和统计学分析荧光功能多样性您的成像需求会因您要解决的生物学问题的不同而不同。您可从20多种可更换、即插即用的LED光立方中进行选择，自定义您的系统，灵活用于多种荧光研究应用。系统可同时安装5个光立方，4个荧光光立方和1个明场光立方。自动监控，帮助改善仪器运行远程监控和诊断服务系统监控仪器的主要工作参数，帮助您实现可靠的自动化操作，使您的装置可以运转正常。智能启动安装和培训专业安装和培训项目可以帮助您在一天内完成仪器准备和运行。我们的应用专家将现场为您提供操作培训，确保您的实验室能够快速利用功能强大的仪器特性，使工作效率最大化。订购信息Catalog #Name单价(CNY)AMAFD2000EVOS™ FL Auto 2 Imaging System联系我们AMEP4816Celleste™ Image Analysis Software联系我们EVOS FL Auto 2成像 Click to enlargeBPAE细胞，EVOS FL Auto 2成像系统40X物镜成像 Click to enlarge使用Invitrogen™ Click-iT™ EdU比色法IHC检测试剂盒和Movat的五色套染染色液标记大鼠肠道组织FFPE切片，显示增殖细胞。在EVOS FL Auto 2成像系统上使用彩色照相机和20x物镜采集图像。活细胞成像EVOS FL Auto 2成像系统配置全新的台式细胞培养室，适用于细胞培养的条件下的高分辨率的连续监控摄像。EVOS台式细胞培养室是能够精确控制温度、湿度和三种气体浓度的恒温恒湿箱，可在生理和非生理条件下对活细胞进行连续动态成像。活细胞成像环境设置和图像采集参数均无缝整合至操作软件界面，打造出高性能的倒置成像系统，灵活性极佳，使用简单，且光学性能能够满足条件要求严苛的动态成像实验，如干细胞分化。小鼠成纤维细胞3T3向脂肪细胞分化，绿色荧光为脂滴HeLa活细胞成像，60X 成像，GFP标记线粒体，RFP标记高尔基体 缺氧实验细胞缺氧与很多疾病相关，包括肿瘤发生、动脉硬化、炎症和非正常的血管生成。准确模拟缺氧环境对相关研究至关重要，但也非常困难。EVOS FL Auto 2可配置Onstage Incubator活细胞培养室，控制温度、湿度和气体（O2和CO2）条件，精确调节氧浓度，营造长期缺氧环境，并实时拍摄细胞状态。 用Image-iT Hypoxia缺氧指示剂和NucBlue活细胞核染料染A549细胞，暴露于不同氧浓度。左图20% O2条件下，仅呈现蓝色细胞核；右图1% O2条件下，观察到明显红色Hypoxia试剂信号，表明细胞缺氧。连续动态成像可预先设置拍摄区域和间隔时间，软件自动完成时间序列图像采集，完成拍摄后，能够以视频模式无缝创建并导出荧光或明场图像。 小鼠胚胎细胞分裂，清晰地观察到分裂过程：原核期、2细胞期和4细胞期图像拼接EVOS FL Auto 2成像系统可以采集多个图像并进行无缝拼接，获得高分辨率的大面积图像。适用于组织切片或干细胞集落分析，以及查看96孔板中的每个细胞。采集高放大倍数的图像，拼接后实现高分辨率定位一键式批量导出多孔板的扫描图明场、相差或荧光模式扫描可保存单个图像及合成图像小鼠肾脏，10X荧光成像，9X7视野拼接图像Z-Stack成像EVOS FL Auto 2成像系统可以生成平面聚焦Z-Stack图像。利用Z-Stack平面聚焦特性可以采集一系列图像，从每张图像中提取聚焦效果最佳的像素，即便样本非常厚，亦可得到一张聚焦清晰的图像。图像可以制成视频、蒙太奇、三维重构或Maximum Projection图像Z-层叠可以在荧光成像模式下自动进行Z-层叠可以显示标准宽场显微镜下无法观察到的细胞形态变化图像定量分析应用强大的Celleste™ 图像分析软件，智能化展示细胞、组织和模式生物图片，定量分析，并提供多种智能方案，轻松实现复杂生物样本图像分析，可自动导出数据结果。只需点击鼠标标出需分割的细胞或组织，Smart功能即可识别每个对象的轮廓，自动进行计数，统计长、宽、平均荧光强度、圆度或不同组织面积百分比。同时，您也可以根据自己的需要，设定适合的分析方案和参数，比如分析细胞活性、细胞迁移、共定位、细胞自噬等。左上：活死细胞分析；中上：组织切片定量分析；右上：共定位分析左下：伤口愈合分析；中下：细胞骨架分析；右下：细胞自噬

仪器简介：HORIBA Scientific（Jobin Yvon光谱技术）荧光光谱仪器可提供全套稳态、瞬态和稳-瞬态以及各种偶联技术的解决方案。在细胞科学、生物物理和材料科学领域，重要变化经常会发生在时间和空间的微小尺度里。时间分辨荧光显微镜是研究细胞结构和纳米材料领域中动态事件的有效工具。与传统的荧光强度成像（由荧光显微镜获得）不同，荧光寿命是荧光基团的一个内在特性，因此它的测量不受非均匀负载，光漂白，激发光不稳定和光散射的影响。更重要地是时间分辨测试通过辨别显微点在样品中的位置获得更多关于分子运动、尺寸、所处环境、相互作用和键合的信息。借助于共聚焦显微镜的力量，可以得到清晰的样品成像、测定细胞内的局部作用和细胞结构的动力学。HORIBA科学仪器部推出的DynaMyc是基于滤光片式，全自动共焦显微镜系统，可在微观尺寸下测试荧光寿命和强度。DynaMyc采用高灵敏度的时间相关单光子计数（TCSPC）技术，荧光寿命范围100ps~100&mu s。整机包括：模块光学部件和Olympus BX51显微镜。它的成像部分包含X,Y,Z自动快速扫描平台，以及共聚焦设计，可在微米级的空间分辨率条件下实现荧光寿命成像。DynaMyc是一款灵活的研究工具，针对您的不同应用需求，可选多种波长的皮秒脉冲激光二极管光源，涵盖较宽的光谱范围（270~980nm），宽重复频率可调（CW~100MHz），多种滤光片以及不同检测器可选。可配置高动态范围、低噪声、制冷型照相机和高强度荧光照明，获得宽场荧光成像。DynaMyc由DataStation软件交互控制的一款全自动系统。基于去卷积分析后，可以生成各种参数的成像图，例如，寿命，相对振幅，平均寿命和荧光强度。DynaMyc是研究蛋白动态结合或解离及FRET的理想工具。可选附件：l 物镜（60/100X可选）l 皮秒脉冲激光二极管光源（多种波长可选）l 制冷型荧光相机技术参数：l 样平台：分辨率0.5µ m，行程范围75 x 50 mml 时间相关单光子计数（TCSPC）技术，寿命范围100ps~10&mu sl 光谱检测范围：185-650 nm/300-850 nm（TBX快速检测器）l 可配置DeltaDiode 100MHz高频率激光器，连续输出CW可选l 单点、多点和荧光寿命成像三种数据采集模式l 专业DAS6寿命分析软件能够快速数据分析l 可实现宽场荧光成像（制冷型荧光相机可选） 主要特点：l 时间相关单光子计数（TCSPC）技术，寿命范围100ps~10&mu sl 全自动紧凑光学寿命模块，可自动切换滤光片，二向色滤光片和针孔l 光纤耦合不同激光二极管（370~980nm）l 共焦头单元可自动切换针孔（100~1000&mu m）l 激光二极管（DeltaDiode），高重复频率可调（~100MHz），CW或脉冲模式可调l 直观的数据采集和分析软件l 宽场荧光成像（制冷型荧光照相机可选）

紧凑型多光子显微成像系统2PM 基于近红外飞秒激光技术，具有亚细胞空间分辨率的光学层切成像测量系统，可应用于:? 细胞和组织的高分辨率成像? 组织工程学? 在线药品检测? 动物研究? 干细胞研究? 检测荧光发光蛋白? 神经生物学 关于紧凑型多光子显微成像系统2PM的详细信息介绍，请访问下面网址：http://www.dpiv.cn/data/upload/publications/Jenlab/2PM_Microscope_JenLab.pdf

产品介绍S3000采用先进的三条纹转盘共聚焦成像技术,配合电动Z轴快速扫描,极大提高成像速度,满足活细胞动态观察研究需求。采用LED面光源激发时间更短,光毒性、光漂白性大大降低,适合连续观测。紧凑的新型共聚焦光路设计,既可灵活耦合在多品牌显微镜上,也可整机搭建,满足不同实验室需求。产品特点超快共聚焦成像采用结构光转盘技术，光通量比针孔式转盘提高数倍，允许LED激发光源共聚焦成像；根据相机配置、成像度可达20-40帧/秒；三种切片模式自由切换，实现快速成像和高质量成像的结合。全谱段探测一个LED光源可应对全普段检测应用，激发光：370-700nm，发射光：410-750nm；覆盖常见荧光染料的光谱范围；4位滤光块转轮,通道切换时间小于0.2s,滤光块免工具更换,可实现4+N多通道荧光拍摄。 模块化设计采用紧凑的共聚焦光路设计，仪器外形更小巧；无需庞大空间也可安装，共聚焦模块可灵活耦合在正置、倒置、体式等各种显微镜上，适应不同应用场景。高可靠性及可扩展性，兼容已有成像设备，让科学工作者从仪器维护中释放出来，把更多时间投入到科学研究本身。共聚焦动态成像模块超长时间观测采用安全的非激光光源（Laser-free confocol），超低光毒性及光漂白性，结合智能图像动态识别与分析算法，适用于生物活体样品的实时、动态、长时间观测。对跳动的斑马鱼胚胎心脏进行长时间连续成像（图示分别为共聚焦模式和宽场模式的观测效果）产品应用S3000为细胞生物学、微生物学、发育生物学、神经生物学及植物学等领域研究提供快速三维荧光成像的有力工具。3day幼虫三维动态成像髓母细胞癌细胞巨噬细胞与假丝酵母细胞中的纳米药物百合花芽

烛龙TM系列多模态光电显微镜基于光电流扫描(PhotonCurrent Scanning imaging)技术，广泛应用于材料或器件分析。通过测量器件表面上的光电流信号来研究器件表面的电荷分布情况。在半导体器件中，当光照射到表面时，光子能量被吸收并激发电子，从而产生电子-空穴对。这些电子-空穴对可能会在外加电场或表面电场的影响下分离，导致产生光电流。因此，通过测量光电流信号的强度和空间分布，可以推断出器件表面的电荷分布情况。光电流成像技术可以用于研究半导体器件的表面电荷分布、载流子分布、表面电势等信息，对于了解器件的性能和特性具有重要意义。【应用案例】1、太阳能电池/光电流测试2、材料微加工和激光改性3、发光材料/荧光寿命测试和Mapping4、二维材料/PL Mapping and Raman Mapping

设备名：一体化全电动荧光显微成像系统产品简介：• 无需暗室、节省空间• 批量分析大量图像• 操作简单，新手也能拍摄出清晰的图像• 集观察分析于一身，在超短的时间内实现高精细的观察和精确的分析• All-in-One无需暗室的一体化全电动荧光显微成像系统 产品特性1、无需暗室、节省空间在明亮的房间里也能实现鲜明的荧光观察。可以安装在实验室的各个位置。 2、电动型，操作便捷标配先进的全电动控制系统。通过优化的界面，可快速掌握操作方法。只需一键点击，即可拍摄出没有“荧光模糊”的高精细图像。不需要特殊技术和大规模系统。 使用载物台视图可瞬间抵达观察位置 仅需点击各种载物台所对应的映射图像 载物台连动，瞬间移动至点击位置 不会“淬灭”的电动快门 无荧光淬灭减轻模式 有荧光淬灭减轻模式 3、超过一般荧光显微镜的高拓展性超越荧光显微镜的范畴，可满足共聚焦显微镜、切片扫描仪、活细胞工作站、高内涵等需求。 4、“光学切片”技术以轻松操作获得没有荧光模糊的清晰图像，直逼共聚焦显微镜的高清图像 5、活细胞成像可以搭载适用于多孔培养板的温度及CO2控制培养室，用于维持细胞活性，进行长时间的延时拍摄。以预先设定的时间间隔，按时间顺序拍摄明场、荧光、相差图像。 6、图像拼接只需简单的操作，即可高速连续拍摄大量图像。最大可拼接 50000×50000 pixel 的图像。“想用一张图像包含整体，但是又需要高倍率的高分辨率图像。”通过使用超高分辨率图像拼接，可以同时实现这两个相悖的需求。 7、图像细胞分析全自动孔板拍摄，既可以只扫描选择的视野、微孔，也可以随机确定拍摄位置。与拍摄时相同，根据图像设定分析条件，即可自动分析数量庞大的图像。 应用事例心脏 切片拍摄图像 人 iPS 细胞衍生的神经细胞All-in-One无需暗室一体化全电动荧光显微成像系统，功能强大，在医学与生命科学等领域应用广泛。斑马鱼（北京）科技有限公司，为您提供仪器的参数、价格、选型、技术原理等信息，更多信息可留言或电话咨询，我们将竭诚为您服务。

显微拉曼荧光成像综合测试系统功能： 显微荧光，显微拉曼，显微荧光寿命； 荧光寿命成像FLIM/PLIM，快速拉曼成像； 微区透射吸收；微区反射吸收； 上转换光谱及寿命，成像； 超高压附件耦合；技术参数： 空间分辨率＜1μm 光谱分辨率 ≤1cm-1 光谱及寿命测试波长范围：250-1650nm； 荧光寿命：100ps-10ms全时域测试； 可扩展低温到4k-550k, 高压GPa MPa； 最多耦合拉曼激光4个波长；荧光寿命激光4个； 最短激励波长：266nm；

fMOST荧光显微光学切片断层三维成像系统BioMapping5000是基于fMOST技术的荧光三维成像仪器亚微米级分辨率多通道同时探测多重荧光标记样本能精准定位神经环路，构筑全脑单细胞精细结构成像模式高速线性扫描荧光成像适用标记技术Dylight594，mCherry，PI，GFP，YFP，DAPI等体素分辨率0.35 μm x 0.35 μm x 1 μm连续切削厚度1 - 4 μm最大样本体积5 cm x 5 cm x 3 cm应用案例1-全脑神经投射▲小鼠内侧前额叶皮层γ-氨基丁酸（GABA）能神经元长程输入环路的全脑图谱[1]应用案例2-全脑单神经元形态学分析▲单神经元树突棘展示[2]应用案例3-全器官脉管系统三维重构▲全肝血管、胆管、淋巴管三维重构[3]文献列表[1] A whole-brain map of long-range inputs to GABAergic interneurons in the mouse medial prefrontal cortex.,Nat Neurosci.(2019)[2] Chemical sectioning fluorescence tomography: high-throughput, high-contrast, multicolor, whole-brain imaging at subcellular resolution. Cell Rep. (2021)[3] Multiscale reconstruction of various vessels in the intact murine liver lobe Commun Biol. (2022)

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 上左图为上世纪90年代Nedbal等设计的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Photosynthesis Research, 66: 3-12, 2000），右图为柠檬彩色图及叶绿素荧光成像图（Photosynthetica, 38: 571-579, 2000）FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端植物活体成像技术设备，高灵敏度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内（还可根据需求选配第五个光源板置于顶部），植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过USB与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点: 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，成像面积达13x13cm 是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等20多个参数 是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100μs内可达到120,000 μmol(photons)/m2.s 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、2个叶绿素荧光淬灭分析（NPQ）protocolas（2套定制给光方案）、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析（选配）、OJIP快速荧光动力学分析（选配）及GFP绿色荧光蛋白成像（选配）等 可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）；还可预设两个实验程序（Protocols）；比如使系统白天自动运行Fv/Fm，夜间自动运行NPQ分析等 具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益左图A为100％红色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm，左图B为30%蓝色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm；右上图为光合作用强度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系，右下图为气孔导度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系 可运行叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、GFP稳态荧光成像 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 可选配高光谱成像单元和红外热成像单元，植物性状数字化、可视化，全面测量分析植物形态、光合效率、生化性状、气孔导度、胁迫与抗性等 可选配大型版移动式植物成像分析系统，成像面积35x35cm，可运行叶绿素荧光成像、红外热成像及RGB成像分析 最新应用案例：Hendrik Kupper与Zuzana Benedikty等，在2019年2月出版的《Plant Physiology》，发表了Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging，该研究首次采用超高速成像传感器FluorCam台式植物叶绿素荧光成像系统与FKM多光谱显微荧光成像系统，成像速度可达4000fps@640x512，QA再氧化叶绿素荧光动力学成像测量单脉冲饱和光闪达150,000 μmol/m2.s1。 附：OJIP快速荧光动力学测定分析参数包括： a) Fo：初始荧光或称最小荧光，50μs时的荧光b) Fj：2ms时的荧光c) Fi：60ms时的荧光d) P或Fm：最大荧光e) Vj＝(Fj-Fo)/(Fm-Fo):j阶荧光相对变量f) Vi＝(Fi-Fo)/(Fm-Fo)：i阶荧光相对变量g) Mo＝TRo/RC-ETo/RC=4(F300-Fo)/(Fm-Fo)：荧光瞬变初始斜率，或称OJIP曲线初始斜率h) Area：OJIP曲线与Fm之间的面积，可称为补偿面积（complementary area）为了对不同样品进行比较，Area需要标准化为：Sm＝Area/(Fm-Fo)，Sm是对关闭所有光反应中心所需能量的量度i) Fix Area：OJIP固定面积，OJIP曲线40微妙时的F值至1秒时的F值下面的面积j) Sm：标准化OJIP补偿面积，反映QA还原多次周转k) Ss＝Vj/Mo：标准化OJ相补偿面积，反映单周转QA还原l) N=Sm/Ss=Sm Mo(1/Vj)：OJIP QA还原周转数量（between 0 and tFm）m) Phi_Po＝QY＝φpo＝TRo/ABS＝Fv/Fm，最大光量子产量，吸收光量子通量反应中心初始捕获比率n) Psi_o＝ψo＝ETo/TRo＝1-Vj，捕获光量子通量中电子传递光量子通量比率o) Phi_Eo＝φEo=ETo/ABS=(1-(Fo/Fm))(1-Vj)，吸收光量子通量中电子传递光量子通量比率，或称电子传递光量子产量（quantum yield of electron transport at t=0）p) Phi_Do＝φDo＝1-φpo＝Fo/Fm，能量散失光量子产量（t＝0）q) Phi_pav＝φpav＝φpo（Sm/tFm），平均光量子产量，tFm为达到Fm所需时间（ms）r) ABS/RC＝Mo(1/Vj)(1/QY)：为单位反应中心的吸收光量子通量，这儿的反应中心仅指the active (QA to QA– reducing) centers（下同）。QY=TRo/ABS=Fv/Fms) TRo/RC＝Mo(1/Vj)：单位反应中心初始（或称最大）捕获光量子通量（导致QA的还原，也即反应中心关闭比率B的增加）t) ETo/RC＝Mo(1/Vj)（1-Vj）：单位反应中心初始电子传递光量子通量u) DIo/RC＝（ABS/RC）－（TRo/RC）：单位反应中心能量散失v) ABS/CS：单位样品截面的吸收光量子通量，CS stands for the excited cross-section of the tested sample（下同）。ABS/CSo＝Fo，ABS/CSm＝Fm，TRo/CSx＝QY(ABS/CSx)——单位截面捕获能量或光量子通量w) TRo/CSo＝QY.Fo；ETo/CSo＝φEo.Fo ＝QY.(1-Vj).Fox) RC/CSx：反应中心密度，RC / CS0 (active RCs per excited cross-section)y) PIABS＝(RC/ABS)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数z) PIcs＝(RC/CSx)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于截面的“性能”指数或称生存指数

荧光和荧光寿命分子包含多个单能态S0、S1、S2…和三重态T1…，每个能态都包含多个精细的能级。正常情况下，大部分电子处在*低能态即基态S0 的*低能级上，当分子被光束照射，会吸收光子能量，电子被激发到更高的能态S1 或S2 上，在S2 能态上的电子只能存在很短暂的时间，便会通过内转换过程跃迁到S1 上，而S1 能态上的电子亦会在极短时间内跃迁到S1 的*低能级上，而这些电子会存在一段时间后通过震荡弛豫辐射跃迁到基态，这个过程会释放一个光子，即荧光。此外，亦会有电子跃迁至三重态T1 上，再由T1 跃迁至基态，我们称之为磷光。荧光特性研究荧光特性时，主要在以下几方面进行分析：激发光谱，发射光谱、荧光强度、偏振荧光、荧光发光量子产率、荧光寿命等。其中荧光寿命（Fluorescence Lifetime）是指荧光分子在激发态上存在的平均时间（纳秒量级）。荧光寿命测试荧光寿命一般在几纳秒至几百纳秒之间，如今主要有两类测试方法：时域测量和频域测量时间稳定性实验测试曲线：1 时域测量由一束窄脉冲将荧光分子激发至较高能态S1，接着测量荧光的发射几率随时间的变化。其中目前广泛应用的是时间相关单光子计数，即TCSPC(Time Correlated Single Photon Counting)时间相关单光子计数(TCSPC) 实现了从百ps-ns-us 的瞬态测试，此方法对数据的获取完全依赖快速探测器和高速电路。用统计的方法计算样品受激后发出的*一个( 也是唯一的一个) 光子与激发光之间的时间差，也就是下图的START( 激发时刻) 与STOP( 发光时刻) 的时间差。由于对于Stop 信号的要求，所以TCSPC 一般需要高重复频率的光源作为激发源，其重复至少要在100KHz 以上，多数的光源都会达到MHz 量级；同时，在一般情况下还要对Stop 信号做数量上的控制，做到尽量满足在一个激发周期内，样品产生且只产生一个光子的有效荧光信号，避免光子对的出现。2 频域测量对连续激发光进行振幅调制后，分子发出的荧光强度也会受到振幅调制，两个调制信号之间存在与荧光寿命相关的相位差，因此可以测量该相位差计算荧光寿命。 左图为正弦调制激发光（绿色）频域显示，发射光信号（红色）相应的相位变化频域显示。右图为对应不同寿命的调制和相位的频域显示。TM- 调制寿命，TP- 相位寿命。[1]显微荧光寿命成像技术（FLIM）显微荧光寿命成像技术（Fluorescence Lifetime ImagingMicroscopy，FLIM）是一种在显微尺度下展现荧光寿命空间分布的技术，由于其不受样品浓度影响，具有其他荧光成像技术无法代替的优异性能，目前在生物医学工程、光电半导体材料等领域是一种重要的表征测量手段。FLIM 一般分为宽场FLIM 和激光扫描FLIM。宽场FLIM（Wide Field FLIM,WFM）该技术是用平行光照明并由物镜聚焦样品获得荧光信号，再由一宽场相机采集荧光成像。宽场FLIM 常用于快速获取大面积样品成像。时域或是频域寿命采集都可以应用在宽场成像FLIM 上。宽场FLIM 有更高帧率和低损伤的优势。2 激光扫描FLIM（Laser Scanning FLIM,LSM）激光扫描FLIM 是针对选定区域内的样品逐点获取其荧光衰减曲线，再经过拟合*终合成荧光寿命图像。相比宽场FLIM，其在空间分辨率、信噪比方面有更大的优势。扫描方式有两种：一种是固定样品，移动激光进行扫描，一种是固定激光，电动位移台带动样品移动进行扫描。FLIM 应用材料科学领域宽禁带半导体如GaN、SiC 等体系的少子寿命mapping 测量量子点如CdSe@ZnS 等用作荧光寿命成像显微镜探针钙钛矿电池/LED 薄膜的组分分析、缺陷检测铜铟镓硒CIGS，铜锌锡硫CZTS 薄膜太阳能电池的组分、缺陷检测镧系上转换纳米颗粒GaAs 或GaAsP 量子阱的载流子扩散研究生命科学领域细胞体自身荧光寿命分析自身荧光相对荧光标记的有效区分活细胞内水介质的PH 值测量局部氧气浓度测量具有相同频谱性质的不同荧光标记的区分活细胞内钙浓度测量时间分辨共振能量转移（FRET）：纳米级尺度上的远差测量，环境敏感的FRET 探针定量测量代谢成像：NAD(P)H 和FAD 胞质体的荧光寿命成像OmniFluo-FLIM系列显微荧光寿命成像系统应用案例1 用荧光分子对海拉细胞进行染色用荧光分子转子Bodipy-C12 对海拉细胞（宫颈癌细胞的一种） 进行染色。(a) 显微荧光寿命成像图，寿命范围1ns（蓝色）到2.5ns（红色）；(b) 荧光寿命直方图，脂肪滴的短寿命约在1.6ns 附近，细胞中其他位置寿命较长，在1.8ns 附近。用荧光分子转子的时间分辨测量*大的好处在于荧光寿命具备足够清晰的标签特性，且与荧光团的浓度无关。[2]2 金属修饰荧光金属修饰荧光：(a) 荧光寿命是荧光团到金表面距离的函数；(b) 用绿色荧光蛋白（GFP）标记乳腺腺癌细胞的细胞膜的共聚焦xz 横截面，垂直比例尺：5 m；(c) b 图的FLIM 图，金表面附近的GFP 荧光寿命缩短。[2]3 钙钛矿太阳能电池下图研究中，展示了一种动态热风（DHA）制备工艺来控制全无机PSC 的薄膜形态和稳定性，该工艺不含有常规的有害反溶剂，可以在大气环境中制备。同时，钙钛矿掺有钡（Ba2+） 碱金属离子（BaI2:CsPbI2Br）。这种DHA 方法有助于形成均匀的晶粒并控制结晶，从而形成稳定的全无机PSC。从而在环境条件下形成完整的黑色相。经过DHA处理的钙钛矿光伏器件，在0.09cm小面积下，效率为14.85%，在1x1cm的大面积下，具有13.78%的*高效率。DHA方法制备的器件在300h后仍然保持初始效率的92%。4 MQWs 多量子阱研究在(a) 蓝宝石和(b) GaN 上生长的MQWs 的共焦PL mapping 图像。具有较小尺寸的发光团的*高密度是观察到在GaN 上生长的MQWs。在(c) 蓝宝石和(d)GaN 上生长的MQWs 的共焦TRPL mapping 图。仅对于在GaN 上生长的MQWs，强的PL 强度区域与较长PL 衰减时间的区域很好地匹配。在(e) 蓝宝石和(f)GaN 上生长的MQWs 在A 点和B 点测量的局部PL 衰减曲线，均标记在图中。对于在GaN 上生长的MQWs，点A 和B 之间的PL 衰减时间差更高。OmniFluo-FLIM系列显微荧光寿命成像系统参数配置北京卓立汉光仪器有限公司提供的显微荧光寿命成像系统是基于显微和时间相关单光子计数技术，配合高精度位移台得到微观样品表面各空间分布点的荧光衰减曲线，再经过用数据拟合，得到样品表面发光寿命表征的影像。是光电半导体材料、荧光标记常用荧光分子等类似荧光寿命大多分布在纳秒、几十、几百纳秒尺度的物质的不二选择。参数指标：系统性能指标光谱扫描范围200-900nm*小时间分辨率16ps荧光寿命测量范围500ps-1μs@ 皮秒脉冲激光器空间分辨率≤1μm@100X 物镜@405nm 皮秒脉冲激光器荧光寿命检测IRF≤2ns配置参数激发源及匹配光谱范围（光源参数基于50MHz 重复频率）375nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：30ps，平均功率1.5mW，荧光波段：400-850nm405nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：25ps，平均功率2.5mW，荧光波段：430-920nm450nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：50ps，平均功率1.9mW，荧光波段：485-950nm488nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：70ps，平均功率1.3mW，荧光波段：500-950nm510nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：75ps，平均功率1.1mW，荧光波段：535-950nm635nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：65ps，平均功率4.3mW，荧光波段：670-950nm660nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：60ps，平均功率1.9mW，荧光波段：690-950nm670nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：40ps，平均功率0.8mW，荧光波段：700-950nm科研级正置显微镜落射明暗场卤素灯照明，12V，100W5 孔物镜转盘，标配明场用物镜：10×，50×，100×监视CCD：高清彩色CMOS 摄像头，像元尺寸：3.6μm*3.6μm，有效像素：1280H*1024V，扫描方式：逐行，快门方式：电子快门电动位移台高精度电动XY 样品台，行程：75*50mm（120*80mm 可选），*小步进：50nm，重复定位精度：＜ 1μm光谱仪320mm 焦距影像校正单色仪，双入口、狭缝出口、CCD 出口，配置三块68×68mm 大面积光栅，波长准确度：±0.1nm，波长重复性：±0.01nm，扫描步距：0.0025nm，焦面尺寸：30mm(w)×14mm(h)，狭缝缝宽：0.01-3mm 连续电动可调探测器：制冷型紫外可见光电倍增管，光谱范围：185-900nm（标配，可扩展）光谱CCD（可扩展PLmapping）低噪音科学级光谱CCD（LDC-DD），芯片格式：2000x256，像元尺寸：15μm*15μm, 探测面：30mm*3.8mm，背照式深耗尽芯片，低暗电流，*低制冷温度-60℃ @25℃环境温度，风冷，*高量子效率值95%时间相关单光子计数器（TCSPC）时间分辨率：16/32/64/128/256/512/1024ps……33.55μs，死时间＜ 10ns，*高65535 个直方图时间窗口，瞬时饱和计数率：100Mcps，支持稳态光谱测试；OmniFluo-FM 荧光寿命成像专用软件控制功能：控制样品平移台移动，通过显微镜的明场光学像定位到合适区域，框选扫描区域进行扫描，逐点获得荧光衰减曲线，实时生成荧光图像等数据处理功能：自动对扫描获得的FLIM 数据，逐点进行多组分荧光寿命拟合（组分数小于等于4），对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示图像处理功能：直方图、色表、等高线、截线分析、3D 显示等操作电脑品牌操作电脑，Windows 10 操作系统 FLIM 软件界面控制测试界面测试软件的界面遵循“All In One”的简洁设计思路，用户可在下图所示的控制界面中完成采集数据的所有步骤：包括控制样品平移台移动，通过显微镜的明场光学像定位到合适区域，框选扫描区域进行扫描，逐点获得荧光衰减曲线，实时生成荧光图像等。数据处理界面功能丰富的荧光寿命数据处理软件，充分挖掘用户数据中的宝贵信息。可自动对扫描获得的FLIM 数据，逐点进行多组分荧光寿命拟合（组分数小于等于4），对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示。自主开发的一套时间相关单光子计数（TCSPC）荧光寿命的拟合算法，可对荧光衰减曲线中*多包含4 个时间组分的荧光过程进行拟合，获得每个组分的荧光寿命，光子数比例，计算评价函数和残差。TCSPC 荧光寿命通常并非简单的指数衰减过程，而是与光源及探测器相关的仪器响应函数（IRF）与荧光衰减过程相互卷积的结果，因此适当的拟合方法和参数选择对获得正确可靠的荧光寿命非常重要。该软件可导入实际测量的IRF 对衰减曲线进行卷积计算和拟合。但是大多数情况下， IRF 很难正确的从实验获得，针对这种情况，软件提供了两种无需实验获取IRF 的拟合方法：NO.1 通过算法对数据上升沿进行拟合，获得时间响应函数IRF，然后对整条衰减曲线进行卷积计算和拟合得到荧光寿命。NO.2对于衰减时间远长于仪器响应时间的，可对衰减曲线下降沿进行直接的指数拟合。该软件经过大量测试，可以很好的满足各种场合的用户需求。MicroLED 微盘的荧光强度像（3D 显示）：测试案例

电动荧光显微成像系统NIB950-FL NIB950-FL是工作明慧公司的一款科研级别电动显微成像系统显微镜。该型号具备卓越的性能和功能，适用于多种应用场景。无论您是从事生物学研究、医学诊断还是材料科学等领域，NIB950-FL都能为您提供精准且清晰的显微观察结果。NIB950-FL还支持荧光显微镜技术，使您能够观察和记录细胞、组织及其它生物样本的荧光信号。电动荧光显微成像系统NIB950-FL 配置介绍：NIB900作为一台能够满足先进生命科学研究而设计的科研级倒置显微镜，能够满足您的各种需求。它是一台全能的显微镜，它能实现明场、暗场、相衬、偏光、DIC、荧光等观察方式。甚至dingjian生命科学研究所需的共聚焦、超分辨等都可以在这台显微镜上实现。充分考虑使用者的操作习惯，采用人体工程学设计，大大减少长时间观察工作导致的机械性疲劳。NIB950更是采用高速电动控制，将复杂的操作简单化，可视化，操作更加轻松简易。国产NIB950-FL是我们中国自主研发和制造的产品，凭借着中国制造的优势和强大的技术实力，我们可以为客户提供高质量的产品，并保证及时的售后服务支持。与国外品牌相比，我们的产品不仅具有竞争力的价格，还能够满足客户对质量和性能的高要求。NIB950FL在NIB910FL基础上增加的电动功能部分：1、转换器：电动六孔转换器（扩展插槽），M25×0.75，转动时有物镜保护功能（Z轴会下调后再转物镜，然后Z轴再回到原来位置）。2、载物台：电动三层机械移动平台（带光栅尺），台面尺寸325 mm x 144mm ，行程范围130 mm x 100 mm ；大速度：10mm/s；分辨率：0.1μm - 重复精度：±0.5um,，可以配套多孔板、35mm培养皿和切片三种专用样品夹适配器。3、调焦机构：同轴粗微动升降机构，行程：焦点上7下2；小分辨率0.02μm（光栅型），运动重复定位精度：±0.1um，具有防止平台机械下滑功能。4、电动聚光镜：6孔位电动控制，NA0.55，WD26；相衬(10X/20X、40X，60X选配），DIC（10X，20X/40X）选配，空孔。5、荧光装置：采用电动多功能转盘式结构，6工位转盘（电动），可从主机取出，方便更换各模块；根据需求荧光激发模块可随意拆卸、安装。6、电源控制盒：用于提供整机电源，控制平台，摇杆功能，连接电脑。注：所有电动均可按钮和软件控制。附：LED荧光光源参数：四波段LED灯室，使用寿命在5万小时以上（无需预热，即开即用）LED光源控制器，LED灯技术参数：序号 波长 颜色 波长范围 大电流① 365nm UV 363-370nm 700mA② 485nm Blue 470-480nm 700mA③ 535nm Green 525-535nm1000mA④ 660nm Deep red 655-670nm1000mA电动荧光显微镜NIB950-FL应用领域：随着科研方向的多元化和交叉学科研究的不断深入，单一的观察方式已经不能满足日常的科研需求。NIB900系列表现出强大的扩展能力，不仅仅局限于明场、相衬和荧光的观察方式，还可选配暗场、DIC、简易偏光等观察模块。一台显微镜即可满足实验室显微观察需求。在许多延时或多维实验中，细胞操作是后续分析的起点。向贴壁细胞显微注射DNA、RNA或探针，可以让您更好了解信号通路和细胞内通路。向卵母细胞或囊胚显微注射DNA、干细胞或者精子，可以此获得转基因或克隆生物，或利用辅助生殖技术(ART) (例如，体外受精 (IVF))，让卵母细胞受精。

FluorCam开放式多光谱荧光成像系统 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，既可用于叶绿素荧光动态成像分析，又可用于长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量。标准配置（标准版）的最大成像面积为13 x 13 cm ，大型版最大成像面积达20 x 20 cm ，广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性、作物育种、Phenotyping、转基因、稳态荧光成像测量等研究。 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统功能特点： ü 多激发光－多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 成像面积大，标准配置为13x13cm，大型版成像面积达20x20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟兰芥等小型植物）进行实验成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于形态测量分析，结合荧光成像分析参数，可作为植物表型分析（Phenotyping）的有力工具ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统配置规格：1) 标准配置：可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析，成像面积13 x 13cm，系统高度集成、方便使用，具备7位绿波轮及多光谱荧光成像滤波器组、高分辨率CCD镜头、UV紫外光激发多光谱荧光成像功能模块及程序软件等；2) 扩展配置：模块式结构，具备高度可扩展性，不仅可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析，还可进行PAR吸收及NDVI成像分析、GFP绿色荧光蛋白等稳态荧光成像分析（选配），可根据客户需求选配不同的激发光源和滤波器组合，成像面积13 x 13cm；3) 大型配置：具备上述扩展配置的所有功能优势，成像面积达20cm x 20cm，可对整株植物或多株植物进行成像分析。FluorCam开放式多光谱荧光成像系统技术指标： ? 标准版成像面积达13x13cm，大型版成像面积达20x20cm? 标准配置含滤波轮、ChlF.滤波器及高分辨率镜头，测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd，BGF，UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和稳态荧光? 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740? 高分辨率CCD镜头，1392x1040像素，有效像素大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加（binning）以提高灵敏度（2x2，3x3，4x4） ? 自动测量分析功能（无人值守）：可预设1个或2个试验程序，系统可自动测量储存，比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序，夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序? 配置有通用叶绿素荧光成像测量实验程序（protocols）和稳态荧光测量程序（选配），包括Fv/Fm Protocol，Kautsky诱导效应Protocol，荧光淬灭分析 Protocol，稳态荧光测量，客户定制光响应曲线及PAR吸收成像测量等? 4个13x13cmLED光源板（大型版为20x20cm），双色光源（2红橙光＋2蓝光），双色光化学光（Actinic light1和Actinic light2）? 标配Actinic1光强300μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强2000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪4000μmol(photons)/m2.s ? 光源升级：Actinic1光强2000μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强3000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪6000μmol(photons)/m2.s ? 标配测量光为618nm红光，其它波段可选，持续时间10μs - 100μs可调；? 7为滤波轮及滤波器，用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光（GFP荧光需选配相应功能模块）? 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块，用于测量Fo’、PARabs及NDVI? 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等，光强3000μmol(photons)/m2.s，用于气孔功能测量研究? 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG（须选配相应滤波器等）? 如测量其它荧光参数，须选配相应滤波器等（请咨询EcoLab实验室），以下为选配参考： ? FluorCam叶绿素荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre-processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单? Protocol实验程序可自由编辑，也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序? 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等? 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差? 给光制度：静态或动态（窦式）? A/D 转换分辨率：12 位；Bios：固件可升级? 通讯方式：USB 2.0 ? 供电电压：90 – 240 V 下图为植物接种病毒（PMMoV-I为意大利菌株，PMMoV-S为西班牙菌株）后（dpi为接种后的侵染天数）的紫外光激发多光谱荧光成像，其中Abaxial为叶片背面成像，Adaxial为叶片正面成像（引自Monica Pineda等，2008）产地：欧洲

微型化双光子显微镜成像系统自主研制的快速微型化双光子显微成像系统FIRM-TPM，实现了自由运动小鼠单个树突棘水平神经元功能活动的高速高分辨实时成像。这款头戴式双光子显微镜可实时记录自由行为动物的大脑神经元和树突棘活动，支持钙成像，并可在同一视野长时程反复成像。系统能够配置移动的轴向扫描模块，实现三维成像和多平面快速切换实时成像，用于脑神经回路观察；还可配置光遗传模块，对神经元和大脑神经回路活动进行精确控制。目前该产品已在小动物活体光学成像，尤其是神经科学领域已经得到了广泛应用，并在皮肤成像，疾病诊疗，干细胞研究等领域开展了项目研究。FIRM-TPM微型化双光子显微镜大视场型1.FIRM-TPM微型化双光子显微镜大视场型探头重量约为2.8g, 可佩戴在动物头部2.成像视野400 μm×400 μm, 通过颅窗可记录数十个神经元、上千个神经突触的动态信号3.可传播920nm飞秒脉冲激光，对神经生物学常用探针GCaMp进行成像4.探头可拔插设计，简化实验并避免动物长时间运动而造成的光纤和电缆的缠绕5.可配置轴向扫描模块，进行三维成像和多平面切换成像，用于神经元网络结构研究6.可配置红色通道和绿色通道的荧光采集模块，实现双通道成像探头重量~2.8 g探头体积：10 mm×16 mm×21 mm分辨率 1.3 μm成像速度9Hz@512×512，18 Hz@256×256成像视野400 μm×400 μm工作距离~ 1 mm三维变焦模块变焦范围：0~100 μm；平面间切换速度： 4Hz飞秒脉冲激光器激发波长：920 nm/ 1030 nm；平均功率： 400 mW；脉冲宽度： 200 fs荧光采集模块接收范围：300~720 nm； 绿色通道：520/50 nm；红色通道：605/50 nm成像控制模块zui大采样率：≥ 120 MS/s；模拟输入分辨率：≥ 16- bit；模拟输入带宽：≥ 110 MHz成像处理模块系统: win 10操作系统 CPU内存: 32G 硬盘: 256固态硬盘和2T机械硬盘 显卡: 2GB DDR5专业显卡 成像分析系统: GINKGO-MTPM系统尺寸成像系统：955 mm×1380 mm×825 mm；行为学箱：1380 mm×1380 mm×2179 mm系统环境温度：24 ± 2 ℃；湿度： 60% FIRM-TPM微型化双光子显微镜高分辨型1. FIRM-TPM微型化双光子显微镜大视场型探头重量约为2.2g，可佩戴在小动物在头部2.分辨率850 nm, 能够清晰地看到小鼠树突棘结构，实现亚微米级别分辨率成像3.无失真传导920飞秒脉冲激光，对神经生物学常用的探针GCaMp、GFP进行成像4.探头整体可拔插，简化实验操作并避免动物长时间运动而造成的光纤和电缆的缠绕5.可配置轴向扫描模块进行三维成像和多平面切换成像，用于神经元网络结构的研究6.可配置红色通道和绿色通道的荧光采集模块，实现双通道成像成像视野180 μm×180 μm探头重量2.2 g成像速度9Hz @ 512×512, 18Hz @ 256×256分辨率 850 nm探头体积9.5 mm×15.5 mm×17 mm工作距离390 μm三维变焦模块变焦范围: 0~30 μm 平面间切换速度: 4Hz飞秒脉冲激光器激发波长: 920 nm/ 1030 nm 平均功率: 400 mW 脉冲宽度: 200 fs荧光采集模块接收范围: 300~720 nm 绿色通道: 520/50 nm 红色通道: 605/50 nm成像控制模块蕞大采样率: ≥ 120 MS/s 模拟输入分辨率: ≥ 16-bit 模拟输入带宽: ≥ 110MHz成像处理模块系统: win 10操作系统 CPU内存: 32G 硬盘: 256固态硬盘和2T机械硬盘 显卡: 2GB DDR5专业显卡 成像分析系统: GINKGO-MTPM系统环境温度：24 ± 2 ℃；湿度： 60%系统尺寸成像系统：955 mm×1380 mm×825 mm；行为学箱：1380 mm×1380 mm×2179 mm更多详情请联系昊量光电/欢迎直接联系昊量光电关于昊量光电：上海昊量光电设备有限公司是光电产品专业代理商，产品包括各类激光器、光电调制器、光学测量设备、光学元件等，涉及应用涵盖了材料加工、光通讯、生物医疗、科学研究、国防、量子光学、生物显微、物联传感、激光制造等；可为客户提供完整的设备安装，培训，硬件开发，软件开发，系统集成等服务。您可以通过我们昊量光电的官方网站www.auniontech.com了解更多的产品信息，或直接来电咨询4006-888-532。

IMA激光荧光显微高光谱成像系统 IMA荧光（EL/PL）显微高光谱成像仪 高速读取荧光高光谱均化激光不会损伤细胞等样品非逐点扫描高速PL/EL Mapping 基于独特的体布拉格光栅滤波片技术（BTF）和光致发光成像技术，Photon etc公司最新推出的IMA激光荧光显微高光谱成像系统，采取革新的二维成像的方式，激光经过扩束后再经过匀化，将高斯分布的点激光扩展成平面均匀分布面激光，面激光均匀照射在样品上，可以直接获得整个样品的荧光高光谱信息。从而获得分子结构方面的信息。有别于传统的激光荧光显微高光谱系统以逐点扫描的方式，而是一次性的获取整个样品的光谱信息，故而只需要更短的成像时间以及具有更高的空间分辨率。 共焦荧光成像系统，共聚焦荧光成像系统，共焦荧光光谱成像系统，共焦荧光成像光谱仪系统，成像光谱仪，激光荧光成像系统， 荧光显微成像系统 系统参数：VISIR光谱范围400-1000nm900-1700nm光谱分辨率2.5nm(最小可到0.2nm)4nm（最小可到0.4nm）图像分辨率亚微米亚微米成像速度20x20μm in 1s @100X20x20μm in 1s @100X激发光源447 nm, 532, 635 nm（可选其他波长）808，980nm（可选其他波长）CCD科学级CCD，背照式CCD，EMCCD等InGaAs相机显微镜倒置或正置倒置或正置物镜20X，60X，100X20X，60X，100X 应用领域：NANOPARTICLES IN CANCER CELLSDark field illumination is commonly used for the analysis of biological samples containing nanomaterials that significantly scatter light. When combined to hyperspectral imaging, it becomes an exceptional tool to also detect the composition and the location of nanomaterials embedded in cells. IMATM, Photon etc.’s hyperspectral imager, can be equipped with a highly efficient dark field condenser and generate high contrast images of biological samples. The high throughput of Photon etc.’s hyperspectral filter allows the rapid acquisition of spectrally resolved high resolution images. Since the camera captures the whole area in the field of view, it is possible to collect spectral and spatial information in real time, with the possibility of recording spectrally resolved videos to follow the dynamics of cells and luminescent nanoscale components. PHySpecTM, Photon etc software, enables principal component analysis (PCA) in order to identify the smallest variations of single and aggregated nanoparticles. With the purpose of showing the capabilities of IMATM to analyse nanomaterials in biological systems, a sample of MDA-MB-23 human breast cancer cells has been tagged with 60 nm gold nanoparticles (GNPs) and exposed to a dark field illumination on the entire field of view (Figure 1). With a 60×objective, an area of 150×112 μm was imaged, with a step of 2 nm and an exposition time of 2 s per wavelength. The complete analysis took only a few minutes, for more than one million spectra, each of them covering the whole visible spectrum. Cells typically have a flat scattering spectrum, whereas GNPs show a sharp peak around 550 nm. Figure 2 illustrates the 550 nm image extracted from the dark field hyperspectral cube of the breast cancer. The GNPs are marked with a green colouring after PCA software processing. The magnification of a breast cancer cell (Figure 3a) and the spectra of the regions containing GNPs (some examples in Figure 3b) confirmed the presence of single 60 nm NPs (peak at 550 nm) and their aggregates (peaks red-shifted). The hyperspectral camera did not detect any GNPs in the areas between the cells. CHARACTERISATION OF SOLAR CELLS USING HYPERSPECTRAL IMAGER A new characterization method based on hyperspectral imaging recording spectrally resolved images allows the cartography of electroluminescence (EL) and photoluminescence (PL). From the data acquired, spatial variations of cell properties such as open circuit voltage and transport mechanisms were identified and characterized. Furthermore, the system was compared to a classical confocal microscope, showing significant gains in acquisition time. Spectrally resolved images provide considerable advantages such as, absolute calibration of intensity, micrometer scale resolution, and excitation and detection on a surface (no information loss from lateral diffusion and roughness). In luminescence imaging, absolute calibration is a main concern and is here done in two steps: first, an absolute calibration at a determined point (spatially and spectrally) with a laser, and then a relative calibration on the whole space and the whole spectrum, with a calibrated lamp coupled to an integrating sphere.The images rendered by IMATM are spectrally resolved luminescence images from multicrystalline CIS solar cell, offering means of studying its spatial inhomogeneities. On high efficiency GaAs solar cells, we got absolute measurements of EL and successfully investigated reciprocity relations. Our next step is to record quantitative maps of CIGS physical properties from PL and EL images, such as VOC , transport parameters and more. A confocal microscope coupled to a spectrometer provides similar data. The 532nm laser is focused onto the cell front contact, and the cartography of PL spectra is obtained by scanning the sample. The acquisition time with the imager is much faster. 150*150μm2 at 107 W/m2 would take hundreds of hours in confocal, but only 8min with IMA. Moreover, surface excitation and detection allow to get rid of diffusion and roughness troubles for quantitative analysis. MULTIPLEXING OF 17 SWCNTsNIR hyperspectral microscopy covers the detection range of 900-1700 nm and is ideal for the spatial and spectral identification and measurement of fluorophores that emit in the second biological window. For example, single wall nanotubes (SWNTs) emission bands are narrow (~ 20 nm) and each band corresponds to unique (n, m) species (chiralities). With IR hyperspectral microscopy, it is possible to separate these species, with single SWNT spatial resolution on surfaces, in live cells, and in vivo. Images obtained by IR hyperspectral microscopy can be used to study fluorescence and spectral heterogeneity from single SWNTs in complex environments, including live cells and tissues. Locate and identify single SWNTs chiralities Identify SWNTs by their IR spectra Separate single SWNT (emission band ~ 20 nm) Simultaneous imaging of all emitters Multiplexing with one laser source Access to second biological windowAttenuated tissue absorbance Higher depth of penetrationLess scatteringLimited autofluorescence Monitor spectral informationChanges in intensity of single emittersShifts in wavelengthSpectral bandwidth variations In vivo applicationsIn vivo imaging of multiplexed emittersIn vivo long term sensing

总览：. 1000万像素显微成像系统,支持苹果MAC OS系统. 科学级无损格式图像输出和存储. 自然色彩矩阵技术高保真色彩还原. 全局白平衡和区域白平衡功能. 专利的抗电磁干扰结构设计. 方便快捷的一键式设备软件安装，一键式图像获取和储存功能. 丰富的摄影接口配件可选，适用于绝大多数显微镜 1000万像素显微镜相机的应用：ISH1000数字相机可直接与带有标准C接口的三目显微镜、体视显微镜、金相显微镜搭配，成为能够拍摄数字图像的显微摄影系统。 由于普通显微物镜的理论分辨率极限接近1000万像素，因此在1000万像素分辨率下，图像细节能够得到最大的呈现。 IS1000能够为您带来照片级的图像效果。1000万像素CMOS科学级相机技术参数：　传感器厂商镁光（美国）传感器类型MT9J001传感器尺寸1/2.3英寸像素点1.67微米 X 1.67微米分辨率3856H x 2764V滤光片RGB Bayer镜头接口C/CS接口最大帧率3帧每秒(3856*2764)　25帧每秒(1280*1024)RGB位数8 位曝光控制自动/手动曝光时间1毫秒-0.3秒白平衡自动/手动扫描模式逐行快门电子滚动快门灵敏度0.44V/Lux秒(550nm)信噪比40.5dB动态范围63dB控制图像尺寸，亮度，增益，曝光时间，色彩数据接口USB2.0/480Mb/sUSB线缆1.8米供电USB2.0尺寸65毫米*86毫米*37毫米(HXBXT)重量220克操作温度0-60℃操作湿度45%-85%储存温度-20-70℃ 　1000万像素CMOS科学级相机包含：　IS1000数字相机1（标准C接口、1.8米USB线缆）　TCN-0.5 摄影接筒，23，30，30.5毫米直插接口10.01毫米测微尺1驱动、软件光盘1合格证 1纸盒包装1广泛应用与细胞学，病理学，组织学，血液学，荧光成像以及明、暗场显微成像等等更多关公司的产品，请点击： 公 司：福州鑫图光电有限公司地址：福州市仓山区盖山镇齐安路756号财茂城主楼6F邮编：350008电话: 传真: 邮箱: 中文网站：国际网站：

主要用途宽场荧光显微镜是进行神经元活动光学成像的重要手段。配合相应荧光探针，宽场荧光显微镜可以进行单色、多色（例如双层、三色）神经元活动荧光成像。自动对焦超微型显微成像系统为包含了微型光学器件、微型成像元件和微型镜体结构的微型化宽场荧光显微镜，可精确定位目标区域，极大的提高成像质量，是自由活动动物进行在体神经活动光学成像的理想方案。目前已经开始应用于国内外的神经科学研究中。 工作流程及原理◆前期通过注射病毒表达GCaMP6或其它钙离子荧光指示剂，植入GRIN透镜并等待病毒表达。◆神经细胞的活动导致胞内钙离子浓度的升高，从而提高GCMP6等荧光探针的荧光强度，荧光通过埋植的透镜收集后，被CMOS转换为图像信号，并被高速图像采集卡采集。◆图像处理软件进一步分析神经细胞活动和行为的相关性。 系统功能特点及优势◆系统组件包括显微镜镜体、固定板、GRN透镜、CMOS、图像采集卡及采集软件等。◆在单细胞分辨水平，记录一群神经元的钙信号；◆适用于自由活动动物的在体实验；◆通过植入GRIN透镜，可以实现深脑成像；◆系统体积小，重量轻，不影响小鼠自由运动和行为实验。 超微型显微成像系统&光遗传系统联用◆采集软件更新升级，体验感更佳；◆采用外置光源减轻了镜体重量，对实验动物的活动影响较小；◆基于全新的光学系统设计，进一步减轻镜体重量，减小了镜体体积，提高了照明光的质量；全新的照明光路设计，可实现更好的荧光激发光和光遗传刺激光的光斑质量，从而取得更好的成像效果；◆外置的光源端可以自由组合，根据不同的情况分别耦合不同的光源，可分别实现多色荧光成像、原位光遗传成像；◆可配视频同步行为学软件。

用途：FC 800-O开放式动态荧光成像系统是采用高集成设备有灵活的几何结构设计，LED板和光源发出饱和闪光能从不同的角度和距离对样品进行照射，摄像机的位置也是可以进行调节的，提高了测量的精度。标准的成像面积为13×13厘米，可选20×20厘米成像面积，成像大小主要依赖于光源。最大成像面积可达到200×100厘米。LED板可自由在测量框架中安装和移动。用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程（瞬变）都可被摄取，从而提供2维荧光图像，测量计算常规的50多个荧光参数如Fo, FM, FV, Fo', FM', FV', NPQ, ΦPSII, FV/FM, FV'/FM', RFd, qN, qP等，这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。 特点：采用用户自行设置的光照和测量时间，测量、记录叶绿素荧光成像。4个装有超强LED板提供测量光源、持续性光化学光或强饱和脉冲（饱和光闪），以驱动光化学反应。荧光成像由高端CCD摄像机抓取，时间解析度达每秒50张，是目前世界上图象抓取速度较高的荧光成像系统。 应用：筛选用于光合作用效能；胁迫抗性或敏感性；新陈代谢扰动；生长和产量。 可测量的样品：树叶、培养植物、果实、蔬菜；蓝藻、绿藻；样品大小，最大可达13×13 厘米，可选20×20 厘米；成像滤光片可用于384多孔板，96多孔板，有盖培养皿中的样品；可选暗适应盒用于对样品进行暗适应测量。 小麦成像叶片实验和标准参数：淬灭Kautsky诱导效应QA再氧化（需要选购附件）OJIP（需要选购附件）1µ s分辨率的快速荧光诱导（需要选购附件）PAR吸收率（需要选购附件）标准参数：Fo、FM、FV、Fo’、FM’、FV’、QY(II)50多种计算的参数：NPQ、FV/FM、FV’/FM’、Rfd、qN、qP、光合作用电子传递速率（ETR）和其他 一次测量过程计算的50多种参数 各种波段：可选7位滤光轮；叶绿素荧光（高通695nm，低通780nm）、GFP（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm）、PAR、YFP、CY3、CY5等其他一些荧光颜色。 光源：光化光强度最大可达到3000 µ mol(photons)/m² .s.；超脉冲光强度标准版本最大可达到3000 µ mol(photons)/m² .s.，定制产品最大可达到5000 µ mol(photons)/m² .s.，配备QA再氧化测量附件最大可达到7000 µ mol(photons)/m² .s；STF-单代谢回转光IR 735nm（FAR）本系统包含4块高亮度的LED板2块LED板提供测量光和光化光1（红色，618nm）。另外2块LED板提供光化光2和饱和脉冲，这2块LED板用户可以定制为蓝光（455nm）、红光（618nm）或白光；其他波段可以选择：390nm、470nm、505 nm、570 nm、605 nm、630 nm、735 nm和其他；可变激发颜色。 标准成像规格：512×512像素A/D：12位（4096灰阶）8.2µ m × 8.4µ m像素尺寸每秒50幅画面便于测量快速过程 可选成像格式：分别可选640 × 480像素和1392 × 040像素A/D：12位（4096灰阶）6.45µ m × 6.45µ m像素尺寸分别为每秒30和15幅画面主要用于测量相对较慢的过程和应用于一些要求高空间分辨率的重要实验 暗适应箱FluorCam 7.0软件功能：自动实验方案设置向导； |多重（自动重复）实验；对单独植物或样品，视野内的，可自动标记，用于区分；对视野内的单个植物或样品进行动态分析；批量画面操作工具；支持读取条形码；可输出为Excel；操作系统支持Windows 2000、XP、Vista、Win7。 FluorCam软件界面 技术规格：荧光参数测量的参数：Fo、FM、FV、Fo'、FM'、FV'、FT；计算的约50种参数：FV/ FM、FV'/ FM'、ΦPSII、NPQ、qN、qP、Rfd、PAR吸收率、光合电子传递速率（ETR）和其他光源455 nm、470nm、505 nm、570 nm、605 nm、618 nm、630 nm、白光和其他饱和脉冲光强度4000 µ mol(photons)/m² .s.（标准版本），6000 µ mol(photons)/m² .s.（升级光源版本）；光化光强度最大2000 µ mol(photons)/m² .s.（标准版本），最大3000 µ mol(photons)/m² .s.（升级光源版本）；滤光轮7位光状态静态或动态定制协议可控制时间，专用语言和脚本CCD探测器波段范围400~1000 nmCCD格式512×512像素；可选1024×768像素或1392×1040像素像素尺寸8.2 µ m×8.4 µ m；可选6.45 µ m×6.45 µ mA/D分辨率12位光谱响应QE最大在540 nm（~70%），50%滚降在400 nm和650 nm读取噪音小于12电子RMS，典型只有10电子全部容量包括70000电子成像频率50帧/秒BIOS可升级固件通讯端口USB 2.0尺寸710×710×430毫米重量约40公斤功率约1100 W供电90~240V 产地：捷克 参考文献：CASTILLO-LIZARDO M. G., ARAGÓ N I. M., CARVAJAL V., ET AL. (2015). Contribution of the non-effector members of the HrpL regulon, iaaL and matE, to the virulence of Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 in tomato plants. BMC MICROBIOLOGY Volume 15.DOI:10.1186/s12866-015-0503-8

fMOST多功能荧光显微光学切片断层三维成像系统BioMapping9500是基于fMOST技术的多功能荧光三维成像仪器具备高精度或高通量两种成像模式搭载切片回收系统，便于后续实验一站式高效成像平台，适用于多种应用场景成像模式线性扫描荧光成像适用标记技术Dylight594，mCherry，PI，GFP，YFP等体素分辨率0.35 μm x 0.35 μm x 1μm连续切削厚度1 - 200 μm最大样本体积5 cm x 5 cm x 3 cm应用案例▲Thy1-eYFP H line小鼠全脑三维成像以及回收切片展示[1]文献列表[1]A platform for efficient identification of molecular phenotypes of brain-wide neural circuits. Sci Rep. (2017)

EVOS可观察从植物、细胞到细菌范围的生物样本；供医疗卫生单位、高等院校、研究所用于微生物、细胞、细菌、组织培养、悬浮体、沉淀物等的观察。 EVOS荧光细胞成像系统均采用长时间保持稳定的LED光源，可以在较短的过程中提供更强的亮度，实现高效的荧光基团激发，即开即用，简短荧光淬灭时间，无需预热和降温，超长工作寿命，50000个小时，配件式设计，可自由更换。现有20多种光立方可现场一键更换升级，覆盖从紫外到远红外全波段，可根据客户需求订制光源。EVOS 标配高质量硬质滤光片，透光率比软质滤光片高25%，“透过”更多荧光信号，LED 整合设计：光路更短，仅10 cm，减少荧光信号传递过程中的损失，因此EVOS可捕捉微弱的荧光信号， EVOS M7000特点：可容纳5个物镜 (1.25x to 100x)容纳5个光通道（4个光立方和1个明场光源）优化的双检测器，支持荧光成像和彩色明场成像双重应用一次性可对1536个视野完成时间序列的自动采集和/或无缝大图拼接采集通量高，速度也够快软件设计人性化，两分钟内完成高级成像应用的模板设置高级的软件特性，可选配专业的图形分析软件Celleste兼容组化样本的大图拼接成像 EVOS M7000应用举例：药学相关，如药理，药效和毒性研究植物、昆虫和模式动物等组织样本的大图扫描立体样本的全景成像，如3D微组织和血管样本肿瘤生长微环境的模拟和细胞相互作用的动态研究… …

基恩士 一体化荧光显微成像系统 BZ-X系列 产品外观 产品特性1、以轻松操作获得没有荧光模糊的清晰图像光学切片只需一键点击，即可拍摄出没有“荧光模糊”的高精细图像。不需要特殊技术和大规模系统。BZ-X800LE 特有的光学切片技术使用基于“电气投影元件”的结构化照明（Structured Illumination），向各用户提供极其清晰的图像。 2、高速拍摄超高分辨率的大视野图像图像拼接通过轻松的操作，以基恩士以往机型7倍*的拍摄速度连续拍摄大量图像。可拼接 50000×50000 pixel 的图像。“想以 1 张图像包含整体，但是又需要高倍率的高分辨率图像。”通过使用超高分辨率图像拼接，能让这两个相反的需求得以实现。*与本公司BZ-9000 系列产品的比较3、图像细胞分析使拍摄和分析的吞吐量得到大幅提升在选择1 点设定拍摄条件后，瞬间即可应用到孔内的整个视野。并将范围扩大到培养板内的其他微孔，以同一条件扫描全孔。既可以只扫描各种视野、微孔，也可以随机确定拍摄位置。因为条件统一，不仅拍摄的重复精度高，而且只需 3 步即可完成各种设定，不用从头至尾守在显微镜旁。 4、图像细胞分析功能以高精细图像准确地进行大量的分析与拍摄时相同，只需给 1 张图像设定分析条件，即可自动分析数量庞大的图像。不仅能缩短操作时间；而且以相同的分析条件，加之一体化显微成像系统高分辨率图像，从而实现更准确的观察分析。 BZ 系列应用事例 心脏 切片拍摄图像 人 iPS 细胞衍生的神经细胞 基恩士 一体化荧光显微成像系统 BZ-X系列，在医学与生命科学等领域应用广泛。如果想了解更多信息可留言或电话咨询，我们将竭诚为您服务。

定量病理学-组织多靶点成像及显微切割CyteFinder ⅡCyteFinder II 全景扫描成像系统进行多靶点（明场、荧光）成像；CyteHub图像数据管理系统进行数据的智能管理；CytePicker采用物理方法提取组织微区域/单细胞，保证提取样本的DNA/RNA的完整性，提供了Pick-Seq一种基于图像的DNA/RNA驱动的新的生物标志物发现的方法。更加详细的资料请查询北京普华量宇科技有限公司官网。CyteFinder II 全景扫描成像系统特点： 1）组织细胞形态和组织微环境的全景成像 2） 快速全自动的明场和荧光成像 3）可实现多达7色荧光成像 4）物理方法提取组织微区域/单细胞，保证提取样本的DNA/RNA的完整性 5）支持血液涂片、组织切片和细胞病理学样本的IF、H&E、DAB等IHC成像 定量病理学-组织多靶点成像及显微切割应用： RareCyte平台可以进行组织多靶点全景成像，提取感兴趣的组织微区域/单细胞，进行多种蛋白原位检测和生物信息学研究。在研究肿瘤细胞与免疫微环境之间的关系、肿瘤免疫治疗和生物标记物的发现等方面具有巨大的应用空间。研究领域：免疫学研究、肿瘤学研究、病理学研究、肿瘤免疫研究研究方向：肿瘤浸润、T细胞激活、免疫细胞耗竭、专职抗原呈递细胞 CyteFinder Ⅱ能够提供：组织细胞多靶点全景成像组织微区域/单细胞物理方法提取石蜡组织切片(FFPE)NGS样本提取冰冻组织切片(OCT)RNA-Sep样本提取组织细胞全景成像到免疫分型一体化解决方案

KOSTER FISH UMC-900TFL 定制荧光原位杂交显微镜荧光原位杂交（fluorescent in situ hybridization，FISH） 是一种细胞遗传学技术，可以用来对核酸进行检测和定位。荧光标记的核酸探针只和具有高度相似性的核酸杂交，可用于染色体上基因的定位，或在分子生态学中用来标记不同分类细菌或古菌中的核糖体RNA。在医院的妇产科或相关检验所中，会利用荧光原位杂交技术来判别胎儿的染色体是否正常。对于利用rRNA的荧光原位杂交来说，如下原因可导致较低的荧光信号强度：较低的细胞核糖体含量较低的细胞周边的通透性较低的目标序列可接触性（由于rRNA的折叠产生的构象，有些位置与rRNA分子内其他链或其他rRNA或蛋白紧密接触，从而使探针无法和目标序列杂交）为检验细胞中的目标序列是否容易被探针杂交，及测试最佳杂交温度，可利用“克隆荧光原位杂交”(clone-FISH)进行试验：将rRNA基因结合入质粒，转化至大肠杆菌中表达，构成核糖体，再用荧光标记的探针杂交。此定制荧光显微镜是专门针对各种常用mFISH探针试剂盒设计的荧光成像系统，专用的进口滤片组可以完全匹配各种试剂盒的探针，获得高特异性和高灵敏度的荧光成像效果。可以提供的方案包括：Vysis mFISH探针试剂盒（FITC,CY5，TxR, DEAC,SP-Gold）, Abbott-FISH探针试剂盒(Spectrum Blue,Spectrum Aqua,Spectrum Green,Spectrum Gold,Spectrum Orange),Zytovision FISH (ZyBlue,DAPI,ZyGreen), Cytocell FISH探针试剂盒等，可定制，价格优惠。采用进口显微镜主机架，研究级别荧光光路设计，保证良好的荧光效果。采用8孔位荧光照明器以其可方便更换的激发镜组为使用多种荧光标本提供了更大的灵活性。更换多彩mFISH或FISH用激发镜组的需求，进一步加速了观察操作。采用直接连接的长寿命金属氯化物高效荧光光源，保证良好的FISH成像效果，无需校准，荧光灯泡寿命1500小时以上，使用寿命是传统高压汞灯荧光光源的7倍以上，使用更方便；宽光谱输出范围达到300nm-800nm，更加适合各种FISH染料激发。标配高性能荧光物镜保证良好的荧光效果10X/0.3, 40X/0.75,100X/1.3，可以选配高分辨率物镜10X/0.42, 40X/0.95， 100X/1.45 针对不同FISH探针试剂盒的进口荧光滤片组保证良好的荧光特异性和成像质量。KOSTER品牌高灵敏度摄像头及专业的图像处理软件KOSTER MAS图像软件。KOSTER MAS显微图像处理软件介绍 KOSTER相机专业配置软件MAS（Microscopy Application Software）简介 MAS支持所有KOSTER品牌的相机 5个独创的侧边栏，界面友好，上手快 支持多层式测量，确保测量与图像独立性 超精细颜色引擎 语言支持不受限 多种实用处理功能 兼容Windows XP, Vista, 2008, 7/8/10(32/64位)/Mac OSX/Linux，免驱安装KOSTER MAS软件主要包含了什么？KOSTER MAS系广州科适特科学仪器有限公司的相机控制软件. 主要提供全面控制相机功能并通过Ultra FineTM 颜色引擎泵出高速视频流给计算机的USB接口，Ultra FineTM颜色引擎包含精致的处理RAW数据的流水线以实现传感器探测数据到景色的转换. 更进一步的， MAS还提供图像灰度校正，图像2D测量，图像拚接，景深延拓,视频水印、颜色合成，图像分割与计数以及图像处理等众多高级视频或图像处理功能. MAS的多语言机制可以支持任意语言，目前包含但不限于英文，简体中文，繁体中文， 德语, 日语, 俄语, 法语, 意大利语, 波兰语, 土尔其语等. MAS完全兼容KOSTER全系列相机，所有的相机仅需一个驱动. 更进一步, 可以使用第三方支持有Twain或DirectShow接口的任何第三方相机.强大的 多合一版本Windows/Linux/Mac OS SDKs供用户进一步开发. MAS广泛应用于医学显微成像,工业探测,机器视觉,天文观测等领域并且已经成为相机工业,最佳软件,并且受到美国教育部 强力推荐软件.UI界面精致直观菜单与工具条设置合理确保快速操作 专业集成了5个侧边栏 -- 相机, 文件夹, 撤消/重做, 层, 测量； 舒适的操作方法(双击或右键上下文菜单) 详尽的帮助手册 专业的相机控制面板曝光与增益自动曝光(预设曝光目标值)，手动曝光(曝光时间可以手动输入与滑动条设置) 增益高达5倍 白平衡高级单击智能白平衡设置、更可通过手动设置色温与色彩调整白平衡 颜色调整色彩,饱和度,亮度,对比度, 伽马值初始高速调整功能 帧速率控制针对不同的电脑与USB性能，可通过调整帧速率实现相机超强的兼容 光源频率控制(防闪烁)自然光/DC, AC 50 HZ, AC60 HZ选择按钮彻底消除视频闪烁 镜像选择“水平l”或“垂直选择”可调节样品方向确保同目视系统方向一致 抽样提取与邻域平均以及其他功能邻域平均可以提高视频流的信噪比 而抽样提取模式可以保证视频流的锐度. 支持视频流的直方图扩展, 图像负片与正片切换, 灰度校准, 清晰度因子计算以方便视频对焦.参数保存装载, 保存, 覆盖,载入,导出自定义相机面板控制(包括校准信息,曝光参数与颜色设置信息等) 处理功能专业、处理结果实用视频功能各种视频专业处理功能: 视频广播 定时捕获 视频录像 视频水印 水印移动对准 水印旋转对准 视频网格叠加 视频测量 视频定标, 灰度定标校准 视频高动态(HDR) 视频景深扩展 视频图像拚接 视频比例尺、日期等叠加 图像处理与增强图像对比度控制与调整、图像去噪, 各种图像滤波算法，图像数学形态学算法，图像旋转，图像缩放以及图像打印等 2D测量方便实用的视频与图像尺寸校准，各种视频与图像二维几何量测量如长度、面积、周长以及角度等等.测量结果可以根据图像特性或首选项进行控制 图像拚接图像拚接可以自动将序列图像拚接成大幅面图像. 拚接过程对图像排列次序任何要求；支持视频窗口, 图像窗口,浏览窗口拚接操作.EDF(景深延拓)景深扩展可以通过聚焦不同层的图像，得到超越常规景深的超清晰图像。MAS支持在三种窗口的EDF景深扩展：即视频窗口、图像窗口以及浏览窗口.针对不同的图像，MAS还提供了最大对比度、加权平均以及FFDSSD等三种不同的景深扩展算法. 另外不考虑了不同聚焦图像之间存在的平移、旋转以及比例变化图像之间的自动景深扩展以确保EDF的精度与快速性；专业分割与计数MAS的分割与计数提供了6种图像分割方法供用户根据不同的图像特性调用，这6种分割方法是：分水岭，暗OTSU，亮OTSU，RGB直方图，HSV直方图，颜色分块等。用户可以选择这6种分割方法中的任意一种方法进行分割，但是在选择任意一种分割方法以后，其他分割方法会被禁用. 在分割完成以后，可能存在计数对象的粘连情况，可通过手动分割对粘连对象进行人工分割； 在确认达到预期的结果以后，可通过选择计数结果菜单，实现对分割对象进行计数结果统计与分析.图像叠加去噪MAS图像叠加去噪功能引入先进的图像匹配技术，用户只需录制自己待叠加图像的一小段视频，就能够在视频多帧图像之间存在位移、旋转及放大率改变的情况下叠加输出高保真的图像，简单易用.颜色合成彩色合成可使用黑色和白色荧光源图像来创建和配置彩色合成图像。荧光探针与颜色可以直接从预定义的数据中选取。特殊探针的染料数据库也可以由用户自己建库.图像拼接图像分割与计数，图像叠加去噪荧光彩色合成，显微景深层次融合超强的兼容性 相机视频接口提供Twain, DirectShow, Labview, SDK安装包(原生C++、C#）支持操作系统兼容Microsoft Windows XP / Vista / 7 / 8 (32 & 64位), Mac OSX, Linux语言支持语言支持可手动添加，目前支持英文，简体中文，繁体中文， 德语, 日语, 俄语, 法语, 意大利语, 波兰语, 土尔其语硬件需求基本PC基本配置要求CPU: Intel Core 2 2.8GHz 或更高内存:2GB or moreUSB 接口:USB2.0或USB3.0接口显 示 器:17”或更高CD-ROM