请问应用液相色谱时，怎么将容量因子（K）显示在报告里？先谢谢了
如题，高效液相色谱柱柱容量是多少？
[img]http://www.instrument.com.cn/bbs/images/affix.gif[/img][url=http://www.instrument.com.cn/bbs/download.asp?ID=95263]高效液相色谱柱柱容量[/url]
请问，为什么我同一个样品的高效液相色谱出峰时间不一样？都是在同一个容量瓶里取的样。色谱图如下。[img]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2006/04/200604131009_16708_1418198_3.jpg[/img]
液相色谱出的峰很多，直上直下，而且用纯甲醇冲洗不起作用，这是色谱柱的问题还是溶液问题或者其他。请大家帮帮我。我是初学液相色谱的，操作可能不对。所测的物质是多环芳烃。浓度为20mg/L
[color=#444444]做液相色谱药物分析时，第一次进样在一个位置出现了一未知杂峰，随后将原进样瓶溶液和原容量瓶溶液又进了一次（原仪器，原色谱柱），结果在那个位置又没峰了，说明配的溶液没问题，这是仪器或色谱柱有什么问题吗？各路大神有没有遇到过类似情况，怎么解决和预防这种情况？[/color]
请问：造成液相色谱峰延后的具体原因有哪些啊？
请问进样浓度过大，出现液相色谱平台峰怎么办？会污染色谱柱吗？
各位大侠们，我的液相色谱不出峰，现将情况描述如下请大家指点。我用waters液相色谱分析EPA规定的16种多环芳烃，二元泵，乙腈和水作为流动相，变梯度，变波长，柱子是多环芳烃专用柱。年前测样是还都正常出峰，年后回来（期间仪器闲置能有1个月左右），走PAHs的标准品时就不出峰了。试了几个浓度的50，100，200，250ppb都没有峰，然后怀疑柱子有脏东西，有甲醇洗了一夜，依然不管用，基线也不稳，敢问大家有可能是什么原因呢？
我们用的是安捷伦1100的高效液相色谱仪，在做一个软膏剂的时候，标准规定的浓度进样10μl，峰形有前延峰，把浓度稀释一半，进样10μl，峰的对称性在1.0左右，如果再把浓度稀释一半，进样20μl的话，峰形又不对称了。大家分析一下是什么原因？液相色谱的进样量与峰形之间的关系怎样？（药品名字是“复方地塞米松乳膏”，内标法测定地塞米松含量，内标物是甲睾酮）
各位大侠们，我用液相色谱做黄曲霉B1，B2，G1，G2的实验，先是做标准曲线，出峰没有任何问题。然后进样品，在保证液相条件不变的情况下，4个峰分不开，成了一个大宽峰，不知道是进样量过大还是样品浓度过高造成的，希望各位能帮我解答一下。
防风药品高效液相色谱检测 防风为伞形科植物，生于草原、干燥山坡等地。主产区位于黑龙江、吉林、内蒙、河北等地。 防风具有解表祛风，胜湿止痉，解热止痛、抗菌消炎等功效。用于治疗感冒头疼、风湿痹痛、四肢拘挛、风疹瘙痒、破伤风等病症。 药物成分及含量是大事，不得马虎。检测很重要，准确的检测更重要。下面我们就看下防风药材高效液相色谱法检测。检测原理 取防风药品适量，加甲醇溶解，恒温水域回流提取，由进样器进入高效液相色谱系统，C18色谱柱分离，紫外检测器检测，保留时间定性，峰面积定量（外标法）计算。对照品溶液的制备 分别精密称取升麻素苷（C22H28011）对照品、5-0-甲基维斯阿米醇苷（C22H28010）对照品3mg于50ml容量瓶中，分别加甲醇至刻度，配制成60μg/ml升麻素苷对照品及5-0-甲基维斯阿米醇苷对照品溶液，备用。供试品溶液的制备[/fon
[color=#444444]我想问一下，液相色谱前沿峰，峰型不好或者不分离，需要调流动相的有机相还是水相，比如甲醇:0.1%甲酸（40:60），怎么调节[/color]
2012 年 4 月 19日，北京——安捷伦科技公司宣布推出 Agilent 1290 Infinity 二维液相色谱解决方案，可实现全二维方式以及中心切割方式的二维分离。该仪器对极为复杂的样品有出色的分离能力，例如生物药品、肽谱、植物提取物、食品基质、聚合物以及其他难以分离的混合物。其采用1290 Infinity二元泵及创新的二维液相色谱阀，配合专用的二维色谱软件，可在短短数分钟内完成二维液相色谱的配置和方法设置。通过组合两个正交的HPLC分离到一个单一的二维液相色谱分析中，色谱峰容量将成倍地增加，与常规的液相色谱相比，分离能力也随之大大增加。因此，对于需要最高分离能力的极其复杂样品而言，二维液相色谱无疑是理想的工具。1. 你了解过二维液相色谱吗？2. 你知道二维液相色谱和普通液相色谱的差异吗？3. 你心目中的二维液相色谱是怎么一回事？
我们的液相色谱突然不出峰了，基线也很不稳，机器用了好几年了，是不是氘灯寿命到了？
我们实验室有台上分的液相色谱,做实验的时候,会出现周期性的倒峰,有知道原因的朋友请留言,谢谢!
液相色谱出峰，拖尾因子在0.95-1.05范围内，但峰型矮胖，峰宽达到2.5左右，减小进样体积至5ul，有所改善，也换过流动相，换了两次色谱柱，峰宽还是很宽，可以再从哪些方面改善？
是针对纳升级、毛细管、窄径分离而设计的，目的在于获得最高效色谱分辨率、灵敏度及重现性。 直接纳升流速在常规纳升流纳升级液相色谱速分离技术的基础上又有了重大改进。用户将看到改进后的峰容量和峰形，每次分离后检测得到的组分数量增加。 纳升级液相色谱可高效分离各种多肽和蛋白质，与质谱联用后是蛋白组学研究的最佳工具，纳升液相色谱采用微流控制系统，可在20 nL/min 的流量水平下实现精确控制和梯度洗脱；微流控技术也极大地提高了质谱检测的灵敏度，可对更多的低丰度多肽进行分离和鉴定。 此外，纳升级液相色谱还可拓展应用至代谢靶分子、致病蛋白分子的鉴定，在纳升级稳定流量下质谱检测器可获得很好的灵敏度、分辨率和重现性。[color=#f10b00][size=6]说说你的认识、见解、或者使用经验吧？[/size][/color]
液相色谱测样，柱子是安捷伦C18柱，前期测样都正常，突然只出水峰，不出样品峰了，压力显示正常，会是哪里出问题了呢??
液相色谱，非酸性条件下转化请高手够指点我在岛津液相色谱制备的两个峰（不是酸性条件下），浓缩后纯度分析时二者相互转化，即A峰变成A和B，而B峰也变成A和B。前提是没有接错峰也没有转移错一类的。
液相色谱总是有杂峰，走空白针也是有杂峰，之前没有这个杂峰，最近才有的。流动相是乙腈和水，用的多环芳烃专用柱子。流动相换过了，装流动相的瓶子也洗过了，用异丙醇洗柱子洗了一宿，但是进空白针还是有杂峰且杂峰没变化，求大神指导！
液相色谱出峰老是裂
[color=#444444]高效液相色谱的分峰原因是什么？主峰分开了，以前测是好的，液相色谱好几个月没用了，是流动相出问题了吗？流动相是甲醇和20%的水，请各位高手指教[/color]
[color=#444444]请教各位一个液相色谱的问题！刚开始做液相，用RP—HPLC，流动相为甲醇和水，想让出峰时间变早，是增加甲醇的量还是增加水的量？为什么？另外，色谱柱保留的分子机理是什么？[/color]
[color=#444444]求助大神多肽液相色谱分析中峰纯度的检测相关影响因素，用DAD检测器检测时，纯度角必须小于纯度阈值，纯度角小于1么[/color]
液相色谱峰出现了这么多乱码七糟的东西，请问各位大神是什么情况？？？http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/01/201701191656_647156_2894805_3.jpg
第一次用液相色谱，用峰面积做标准曲线线性关系很好，但是峰宽很宽（1分钟），用的0.1M乙酸铵和乙腈做流动相，不知道通过什么手段可以减小峰宽，另外液相色谱开始测试之前和之后还需要做那些工作，谢谢各位
[color=#444444]请各位液相色谱方面的前辈指教下，本人刚学会用液相色谱，现在测环糊精标准品的外标曲线，流动相甲醇水8：92，流速0.6ml/min ，室温条件，示差检测器。出的目标峰为啥有一侧该下来的反而又上去了呢，接着基线也上移了。好几个样品进样都是这种情况，请大家帮我分析下，非常感谢[/color][color=#444444][img=,674,900]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/05/201905151048201918_7379_1676638_3.jpg!w674x900.jpg[/img][/color]
用碳水化合物液相色谱柱检测蜂蜜中果糖、葡萄糖、蔗糖、麦芽糖，每次都是同样的测试条件，流动相是乙腈水：77:1，但在用了不到2个月，果糖和葡萄糖分不开，换另一根色谱柱，同样的测试条件，果糖和葡萄糖能分开。请问如何冲洗分不开的色谱柱。
[color=#444444]使用液相色谱，流动相是20mmol磷酸二氢钠，流速0.5，进样流动相，或者样品，标准品，在5.1min左右都有一个杂峰，大小不定，没有规律，并且 只切换阀，不进样峰就会变小，这个是什么原因呀，是仪器问题，还是样品问题？[/color]
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