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荧光成像光谱仪

仪器信息网荧光成像光谱仪专题为您提供2024年最新荧光成像光谱仪价格报价、厂家品牌的相关信息, 包括荧光成像光谱仪参数、型号等,不管是国产,还是进口品牌的荧光成像光谱仪您都可以在这里找到。 除此之外,仪器信息网还免费为您整合荧光成像光谱仪相关的耗材配件、试剂标物,还有荧光成像光谱仪相关的最新资讯、资料,以及荧光成像光谱仪相关的解决方案。

荧光成像光谱仪相关的仪器

  • M4 TORNADOPLUS - 微区X射线荧光成像的新纪元M4 TORNADO微区X射线荧光成像光谱仪PLUS能够检测出C(6)-Am(95)间元素的微区X射线荧光成像光谱仪。作为微区X射线荧光成像光谱仪M4TORNADO系列的新产品,M4 TORNADOPLUS又增添了功能,例如孔径管理系统,高通量脉冲处理器以及快速灵活更换的样品台。更轻、更快、更深M4 TORNADOPLUS采用轻元素窗口的大面积硅漂移探测器(SDD)实现对轻元素碳的检测,高通量脉冲采样,BRUKER孔径管理系统(AMS)可以获取大景深,对表面不平整样品分析具有优势。轻元素检测M4 TORNADOPLUS能够检测分析轻质元素碳的微区X射线荧光成像光谱仪,具备两个具有轻元素窗口的大面积硅漂移探测器和一个优化的Rh靶X射线光管。与普通微区X射线荧光成像光谱仪不同,M4 TORNADOPLUS在不影响较高能量范围内元素灵敏度的前提下,还可以检测原子数小于11的元素(Z<11),例如氟(F)、氧(O)、氮(N)和碳(C)。随着功能性的增强,M4 TORNADOPLUS应用也正在开发和拓展中,例如地质学、矿物学、生物学、聚合物研究或半导体行业等方向。应用实例-萤石和方解石的区分萤石(CaF2)和方解石(CaCO3)都是以钙为主要成分的矿物。它们的区别在于分别存在轻质元素氟(F),氧(O),碳(C);由于普通微区X射线荧光成像光谱仪检测不到Z<11(Na)的元素,无法区分这两种矿物,所以萤石和方解石的光谱图上都只会显示Ca元素谱线。利用轻元素探测器,M4 TORNADOPLUS可以检测氟(F)、氧(O)和碳(C),从而鉴别这两种矿物。图:鉴别萤石与方解石 左:方解石(红)和萤石(蓝)的元素分布图;图像尺寸:20×12mm2;扫描分辨率:800×460pixels 右:萤石(蓝)和方解石(红)的轻质元素光谱图。应用实例-电路板由于AMS的场深度深,如图所示电路板的X射线图像获得更多的细节。此外,由于激发X射线光子的入口和出口角度减小,光束能量依赖性变得不那么明显。图:具备AMS与不具备AMS的电路板元素分布图左图: 标准多导毛细管聚焦在电路板上,元件的高点失焦,显得模糊。右图: AMS系统加载下图像显示高景深,组件聚焦在更大的景深范围内。
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  • ImSpector系列光谱仪是一种以透射光栅为分光元件的成像光谱仪;通过将这种成像光谱仪附加到CCD相机前,可通过空间扫描获得目标物的影像和连续的光谱信息。ImSpector系列成像光谱仪,采用高集成度的机械设计,配合绝对的影像修正光学设计,真正可实现无光学像差的成像,设计中考虑最佳的光通效率,既满足实验室的使用性能,也能够满足工业在线的长期使用的稳定性需求。ImSpector系列成像光谱仪的入射端采用狭缝设计,并采用独创的全密封式设计,可保证在实际使用中不会因为环境的灰尘等影响光谱仪的内部光学元件,确保仪器的长期正常使用;出射端采用标准的C型接口或U型接口,可与各种标准C型或U型CCD相机直接接配。根据ImSpector-成像光谱仪的功能,有标准版成像光谱仪、增强版成像光谱仪及快速版成像光谱仪等多个版本可供选择;根据所覆盖的光谱范围,有如下分类: 适用光谱范围可选型号UV200-400nmUV4EVIS380-800nmV8, V8ERaman530-630nm, 770-980nmR6E, R10EVNIR400-1000nmV10, V10EVNIR350-1000nmV10MNIR900-1700nmN17ESWIR1000-2500nmN25E 标准版成像光谱仪标准版成像光谱仪具有体积小、重量轻的特点,提供接配1/2&rdquo 和2/3&rdquo CCD相机的版本,影像略有失真。(V8/V10)标准版V8 1/2&rdquo V8 2/3&rdquo V10 1/2&rdquo V10 2/3&rdquo 光谱范围380-800nm380-800nm400-1000nm400-1000nm倒线色散93.6nm/mm66nm/mm139nm/mm93.9nm/mm光谱分辨率8nm6nm11.2nm9nm像面尺寸(空间× 光谱)4.3× 6.6mm6.6× 8.8mm4.3× 6.6mm6.6× 8.8mm空间分辨率30&mu m, rms30&mu m, rms40&mu m, rms40&mu m, rms像差略有像散枕形畸变:30&mu m梯形畸变:20&mu m略有像散枕形畸变:45&mu m梯形畸变:40&mu m略有像散枕形畸变:30&mu m梯形畸变:20&mu m略有像散枕形畸变:45&mu m梯形畸变:40&mu m相对孔径F/2.8F/2.8F/2.8F/2.8狭缝宽度50&mu m(25,80,150可选)50&mu m(25,80,150可选)50&mu m(25,80,150可选)50&mu m(25,80,150可选)狭缝长度9.6mm9.6mm9.8mm9.8mm通光效率50%50%50%50%杂散光0.5%0.5%0.5%0.5%镜头接口C型C型C型C型相机接口C型C型C型C型主体材料铝铝铝铝外形尺寸&Phi 35× 139mm&Phi 35× 139mm&Phi 35× 139mm&Phi 35× 139mm重量300g300g300g300g高光谱成像应用:◆ 实验室研究(农产品表面检测、人体表面检测、包装材料表面检测等)◆ 产品在线检测(如显示器、纺织业、药品、酒类、印刷、染料、太阳能电池片)◆ 生医上的研究(如荧光检测、生物芯片穿透率量测)◆ 建筑古迹上的鉴定、真钞假钞辨识、真画假画的辨别、桥梁盐分的检测◆ 环保上的应用(如垃圾分类、海洋上漏油的分析、塑料材料分类)◆ 农业上的检测(可以观测喷洒农药前后的比较)◆ 航空遥感(如地形、地表、地貌)
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  • ChemiDoc Go是Bio-Rad 2024年推出的新款成像系统。该系统具有体积小,功能丰富的优势,在节省实验室空间的前提下,具备了优异的成像性能,并可满足多种实验室成像需求。其功能涵盖:核酸胶成像及条带回收、蛋白胶成像、化学发光成像、Stain-Free免染及双通道荧光成像等。ChemiDoc Go具有超2000万的物理像素分辨率及性能优异的镜头、感光系统,有效提升了您的凝胶及化学发光成像质量。同时,ChemiDoc Go还具备StarBright 520nm及700nm双通道荧光成像功能,满足多重荧光Western Blot实验需求。ChemiDoc Go所具备的光源通道包括: 透射紫外 透射蓝光(选配) 透射白光(选配) 落射紫外 落射绿光ChemiDoc Go所具备的发射滤光片通道包括: 520/260 BP 590/110 BP 695 LP 双通道荧光成像效果 化学发光成像效果声明:1.本产品仅用于科研,不可作临床诊断使用。2. Bio-Rad 是 Bio-Rad Laboratories, Inc. 在特定区域的商标。
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  • 来因科技植物活体成像系统 植物活体成像分析仪PLIS-68植物多光谱荧光成像系统搭载了超高灵敏度深冷背照式相机大光圈镜、RGB激光光源、IR激光光源、温控平台、全自动滤光轮,用于生物发光检测;植物活体荧光素酶检测;荧光检测;化学发光检测等满足客户多种实验需求的一套高性能植物活体成像分析系统。激光光源:相对LED 和卤素光而言,激光有更稳定的光谱以及更小的光衰,光源更纯净,无边缘效益, 在光斑处光都处于均匀的能量,使其成为最佳的荧光成像光源。植物多光谱荧光成像系统背照式高灵敏度深冷相机:PLIS植物活体成像仪采用了660万高分辨深冷背照式相机其QE在峰值最高高达95%,制冷温度 达到-95℃, 配合F0.95大光圈镜头,同时具备的了出色的信噪比和灵敏度。植物多光谱荧光成像系统专用滤镜:深度定制激光专用滤镜,双层镀膜,截止深度更是高达OD6, 杂散光通过率非常低,背景干净。植物活体成像应用:相对普通LED 的可见荧光,激光尤其红外激光因穿透力较强,背景低,激发效率高的特性,可以更好的拍摄活物体内的细胞活动和基因表达,有效地研究观测感染性疾病发生发展过程、植物转基因鉴定,植物突变体筛选,病毒侵染等。植物多光谱荧光成像系统产品参数型号PLIS-68PLIS-95分辨率1200万像素(背照式相机)660万像素(背照式相机)制冷温度-68℃-95℃像素尺寸4.63um×4.63um11um×11um感光效率HighQE:95%像数密度16bit(0-65535)曝光时间1ms-60min像素合并1×1、2×2、4×4…8×8动态范围≥4.8个数量级电动镜头F=0.95/35MM自动聚焦镜头,可选配F0.8镜头RGB光源标配650nm、532nm、473nm(红绿蓝)激光器IR光源标配红外680nm、780nm激光器紫外反射254nm白光光源LED冷光滤光镜轮7位滤光轮滤光镜片标配535nm,570nm、605nm、699nm、720nm、820nm拍摄面积最大拍摄面积32×26cm×10cm(L×W×H),侧位相机选配光照模块选配旋转样品台选配输入气孔预留定时关闭1~60分钟
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  • FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台 FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品,LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上,既可用于叶绿素荧光动态成像分析,又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析,还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量,成像面积35×35cm,是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域:实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析(Phenotyping)植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点:ü 多激发光-多光谱荧光成像技术:通过光学滤波器技术,仅使特定波长的光(激发光)到达样品以激发荧光,同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团(如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等)对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光,根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、滤波轮及相应滤波器,对不同波长荧光(多光谱荧光)进行成像分析。如选配红光和蓝光及相应滤波器,可以对GFP和叶绿素荧光成像分析,还可选配绿色光源及相应滤波器,以对YFP进行荧光成像分析等;ü UV紫外光激发多光谱荧光成像: UV紫外光对植物叶片激发,可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱,4个波峰的波长为蓝光440nm(F440)、绿光520nm(F520)、红光690nm(F690)和远红外740nm(F740),其中F440和F520统称为BGF,由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出,F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态,包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统,成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测,可设置实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序(protocols),测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调,以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收/NDVI成像分析模块,对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等 技术指标: 1) 大型叶绿素荧光成像平台,成像面积达35×35cm2) 高分辨率CCD相机l 图像分辨率:1360×1024像素l 时间分辨率:在最 高图像分辨率下可达每秒20帧l A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)l 像元尺寸:6.45μm×6.45μm l 运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量l 通讯模式:千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源(可选配蓝色或其它波长的LED光源),具备735nm红外光源,LED光源板面积750×750mm4) PAR吸收/NDVI成像模块:680nm红色光源、735nm红外光源板及相应滤波器和功能程序模块(选配)5) 多光谱荧光成像模块:UV紫外光源及相应滤波器和功能程序模块(选配)6) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器7) 成像平台高度可调,调整高度范围350-1350mm8) 测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ,Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,qL,QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数;R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数(选配);包括F440、F520、F690、F740等UV激发多光谱荧光参数(选配);荧光强度Ft等GFP绿色荧光蛋白成像参数(选配)。每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像9) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔,系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名10) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等,可对Protocols进行编辑,实时在线数据分析和二维显示11) 客户定制实验程序协议(protocols),可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序12) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?13) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等14) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI),,成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等15) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线,可进行“选区操作”(参见上条)或“分级操作”(图像阈值分割功能);选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区(ROI),还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区;分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”,通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理,可设置不同的阈值进行图像阈值分割16) 结果展示报告功能:可展示所有选区(ROI)的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等,可对原数据(kinetic)、叶绿素荧光参数等导出到excel表,还可对每个参数成像图存储成位图17) 可自动测量多个样品(无限制)荧光动力学曲线及相应参数,程序软件可自动识别多个植物样品(数量不受限制)或多个区域(数量不受限制),也可手动选区(数量不受限制)18) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 19) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm,分辨率640x512,1-14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C,灵敏度30mK(0.03°C),传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换,标配9mm光学镜头、69°视野, 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol:一根电缆支持18通道;视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用,在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最小峰值温度等f) 32GB内存,可存储80000张图片或200分钟视频,图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片,图片采集间隔1-60s可调,带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等 产地:欧洲
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  • FluorCam开放式多光谱荧光成像系统 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品,既可用于叶绿素荧光动态成像分析,又可用于长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析,还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量。标准配置(标准版)的最大成像面积为13 x 13 cm ,大型版最大成像面积达20 x 20 cm ,广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性、作物育种、Phenotyping、转基因、稳态荧光成像测量等研究。 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统功能特点: ü 多激发光-多光谱荧光成像技术:通过光学滤波器技术,仅使特定波长的光(激发光)到达样品以激发荧光,同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团(如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等)对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光,根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器,对不同波长荧光(多光谱荧光)进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器,可以对GFP和叶绿素荧光成像分析,还可选配绿色光源及相应滤波器,以对YFP进行荧光成像分析等;ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术:长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发,可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱,4个波峰的波长为兰光440nm(F440)、绿光520nm(F520)、红光690nm(F690)和远红外740nm(F740),其中F440和F520统称为BGF,由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出,F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态,包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 成像面积大,标准配置为13x13cm,大型版成像面积达20x20cm,可对整株植物甚至多株植物(如拟兰芥等小型植物)进行实验成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测,可设置两个实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序(protocols),测量分析参数达60多个ü 可选配TetraCam彩色成像模块,最大成像面积20x25cm,用于形态测量分析,结合荧光成像分析参数,可作为植物表型分析(Phenotyping)的有力工具ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统配置规格:1) 标准配置:可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析,成像面积13 x 13cm,系统高度集成、方便使用,具备7位绿波轮及多光谱荧光成像滤波器组、高分辨率CCD镜头、UV紫外光激发多光谱荧光成像功能模块及程序软件等;2) 扩展配置:模块式结构,具备高度可扩展性,不仅可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析,还可进行PAR吸收及NDVI成像分析、GFP绿色荧光蛋白等稳态荧光成像分析(选配),可根据客户需求选配不同的激发光源和滤波器组合,成像面积13 x 13cm;3) 大型配置:具备上述扩展配置的所有功能优势,成像面积达20cm x 20cm,可对整株植物或多株植物进行成像分析。FluorCam开放式多光谱荧光成像系统技术指标: ? 标准版成像面积达13x13cm,大型版成像面积达20x20cm? 标准配置含滤波轮、ChlF.滤波器及高分辨率镜头,测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd,BGF,UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和稳态荧光? 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740? 高分辨率CCD镜头,1392x1040像素,有效像素大小为6.45μm,高速USB 2.0 (480Mbits/sec),可像素叠加(binning)以提高灵敏度(2x2,3x3,4x4) ? 自动测量分析功能(无人值守):可预设1个或2个试验程序,系统可自动测量储存,比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序,夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序? 配置有通用叶绿素荧光成像测量实验程序(protocols)和稳态荧光测量程序(选配),包括Fv/Fm Protocol,Kautsky诱导效应Protocol,荧光淬灭分析 Protocol,稳态荧光测量,客户定制光响应曲线及PAR吸收成像测量等? 4个13x13cmLED光源板(大型版为20x20cm),双色光源(2红橙光+2蓝光),双色光化学光(Actinic light1和Actinic light2)? 标配Actinic1光强300μmol(photons)/m2.s ,Actinic2光强2000μmol(photons)/m2.s,饱和光闪4000μmol(photons)/m2.s ? 光源升级:Actinic1光强2000μmol(photons)/m2.s ,Actinic2光强3000μmol(photons)/m2.s,饱和光闪6000μmol(photons)/m2.s ? 标配测量光为618nm红光,其它波段可选,持续时间10μs - 100μs可调;? 7为滤波轮及滤波器,用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光(GFP荧光需选配相应功能模块)? 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块,用于测量Fo’、PARabs及NDVI? 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等,光强3000μmol(photons)/m2.s,用于气孔功能测量研究? 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG(须选配相应滤波器等)? 如测量其它荧光参数,须选配相应滤波器等(请咨询EcoLab实验室),以下为选配参考: ? FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具Live(实况测试)、Protocol(实验程序选择)、Pre-processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等菜单? Protocol实验程序可自由编辑,也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序? 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI),成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等? 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差? 给光制度:静态或动态(窦式)? A/D 转换分辨率:12 位;Bios:固件可升级? 通讯方式:USB 2.0 ? 供电电压:90 – 240 V 下图为植物接种病毒(PMMoV-I为意大利菌株,PMMoV-S为西班牙菌株)后(dpi为接种后的侵染天数)的紫外光激发多光谱荧光成像,其中Abaxial为叶片背面成像,Adaxial为叶片正面成像(引自Monica Pineda等,2008)产地:欧洲
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  • 产品介绍: 金竟科技推出的Rainbow系列阴极荧光成像及光谱探测系统能够同扫描电子显微镜或聚焦离子束系统配合,实现阴极荧光全谱及单谱扫描成像、光谱采集以及阴极荧光光谱面分布探测。系统配备荧光收集镜及光纤传输接口、信号调理采集系统、电子束扫描发生器、成像光谱仪、多通道及单通道探测器,通过系统控制与采集软件集成控制。 系统采用电子束扫描发生器控制电子显微镜的电子束扫描和触发探测器工作,同时可采集经信号调理采集系统获得的荧光强度信号,实现电子束扫描信号与探测器数据采集的严格同步,获得阴极荧光成像、阴极荧光光谱面分布数据。 Rainbow系列产品可在纳米空间分辨率下提供各类材料的阴极荧光成像和光谱测量,尤其适用于半导体材料研究、光电材料和器件研究研发、纳米光子学科学研究、薄膜和纳米结构、地质氧化物及矿物等。
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  • FluorCam移动式多光谱荧光成像系统是国际知名FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品,可用于叶绿素荧光动态成像分析、多激发光光合效率成像分析、紫外光激发多光谱荧光成像分析、PAR吸收与NDVI(植物光谱反射指数)成像分析、GFP/YFP稳态荧光成像等,全面、非接触、高灵敏度反映植物生理生态、胁迫生理与抗性、光合效率等,广泛应用于植物表型成像分析、植物胁迫与抗性检测、植物病害检测研究、遗传育种高通量筛选、植物生理生态学、植物初级代谢与刺激代谢研究、污染生态学研究检测/生物检测等。 主要功能特点:ü 客户定制四轮移动平台、模块式结构,便于温室内或野外移动使用、原位测量监测、系统扩展等ü 叶绿素荧光成像分析:植物光合效率、荧光淬灭热散失、光响应曲线、植物胁迫与抗性等生理功能测量检测ü 多光谱荧光成像分析:反映多酚与黄酮类等次级代谢产物动态变化、叶绿素动态变化、植物衰老、植物病虫害胁迫及非生物胁迫等ü GFP/YFP稳态荧光成像(选配):遗传育种、基因标记ü NDVI成像分析(选配):N素营养状态、植物胁迫等ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术:长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发,可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱,4个波峰的波长为兰光440nm(F440)、绿光520nm(F520)、红光690nm(F690)和远红外740nm(F740),其中F440和F520统称为BGF,由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出,F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态,包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 多激发光、多光谱荧光成像技术:通过光学滤波器技术,仅使特定波长的光(激发光)到达样品以激发荧光,同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团(如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等)对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光,根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器,对不同波长荧光(多光谱荧光)进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器,可以对GFP和叶绿素荧光成像分析,还可选配绿色光源及相应滤波器,以对YFP进行荧光成像分析等;ü 可选配13x13cm或大型20x20cm不同规格型号LED光源版,以实现不同大小均一的植物多光谱荧光成像面积,可对叶片、植物果实器官包括植物根系或整株植物甚至多株植物进行实验成像分析 ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测,可设置两个实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳),以便于野外长时间(如几个小时)自动监测ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序(protocols),测量分析参数达60多个ü 可选配RGB成像、红外热成像及高光谱成像,以便与叶绿素荧光成像融合分析,全面研究分析形态结构、颜色、气孔导度、植物光谱特征、WUE(水分利用效率)、CWSI(水分胁迫指数)、植物生理生化等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标:1. 多光谱荧光成像1) 标配4+1智能LED光源系统,包括1对红色LED光源板、1对冷白色LED光源板、1个顶部紫外光源,可选配其它波段光源、多光谱光源2) 标准版LED光源板面积13x13cm,大型版LED光源板面积达20x20cm3) 脉冲调制测量光源,波段617nm,持续时间10μs - 100μs可调,可深入叶片栅栏组织,可选配蓝色等其它颜色测量光 4) 双波段持续光化学光:标配617nm橙色光化学光和6500K白色光化学光,300-2,000 μmol(photons)/m2.s光强可调,可选配3000 μmol(photons)/m2.s光强,还可选配蓝色、绿色等其它颜色光化学光5) 6500K白色饱和光脉冲,最大强度4000 μmol(photons)/m2.s,可选配强度达6000 μmol(photons)/m2.s,还可选配蓝色饱和光脉冲或120000μmol(photons)/m2.s单周转光脉冲6) Protocols(实验程序):包括(根据选配配置而定):a) Fv/Fmb) Kautsky 诱导效应c) 荧光淬灭分析d) 光响应曲线分析e) 静态荧光成像分析(选配)f) 多光谱荧光成像分析g) PARabs/NDVI成像分析(选配)7) 测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd,BGF,UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和多光谱荧光参数8) 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740及相应比率成像分析参数(下左图为西葫芦感染软腐病菌(Dickeya dadantii)RGB彩色成像、多光谱荧光成像(引自Maria L. Perez-Bueno等,2016);右图为植物接种病毒(PMMoV-I为意大利菌株,PMMoV-S为西班牙菌株)后(dpi为接种后的侵染天数)的紫外光激发多光谱荧光成像,其中Abaxial为叶片背面成像,Adaxial为叶片正面成像(引自Monica Pineda等,2008) 9) 高分辨率CCD镜头,1392x1040像素,20fps,有效像素大小为6.45μm,高速USB 2.0 (480Mbits/sec),可像素叠加(binning)以提高灵敏度(2x2,3x3,4x4)10) 自动测量分析功能(无人值守):可预设1个或2个试验程序,系统可自动测量储存,比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序,夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序11) 7位滤波轮及滤波器,用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光(GFP荧光需选配相应功能模块),标准配置含7位滤波轮、ChlF.滤波器、MCF多光谱荧光滤波器等12) 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块,用于测量Fo’、PARabs及NDVI13) 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等,光强3000μmol(photons)/m2.s,用于气孔功能测量研究14) 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG(须选配相应滤波器等)15) 如测量其它荧光参数,须选配相应滤波器等(请咨询EcoLab实验室),以下为选配参考: 16) FluorCam多光谱荧光成像分析软件,具Live(实况测试)、Protocol(实验程序选择)、Pre-processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等菜单17) Protocol实验程序可自由编辑,也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序18) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI),成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差20) 给光制度:静态或动态(窦式)21) 通讯方式:USB 2.022) 供电电压:90 – 240 V (野外需另配轻便型发电机)2. 红外热成像单元:1) 非制冷红外焦平面检测器(uncooled VOx microbolometer),已经过欧盟标注校准,可直接测量温度,包括每个像素点的温度等2) 分辨率:640x512像素3) 光谱范围:7.5~13.5μm4) 温度测量范围:-25~150°C?5) 灵敏度:≤0.03℃(30mK)@ 30℃6) 帧频:标配9Hz或30Hz(须提前申请选配)7) 数据传输:USB-3或千兆以太网8) 19mm光学镜头,视野32℃x26℃,可选配13mm镜头或35mm镜头9) 具备视频模式和快照模式10) 具备14种调色板供任意选择,可多样化设置热成像假彩色11) 具备差值功能,可内查图像形成平滑影像以避免像素化12) 可通过软件设置大气温度、湿度、距离等参数13) 具备等温模式功能,包括以上、一下、之间、及以下与以上四种等温模式14) 结果在线报告功能,自动显示热影像、时距图及影像参数如发射率、反射温度、大气温度、湿度、外部光距离、传播等15) 影像处理软件具备ROI选区功能,包括点、线、折线、矩形等,并可进行分区处理,每个ROI即时显示最小温度、最高温度、平均温度等16) 热扫描功能及热剖面功能:可在线可视化显示线型ROI温度值、温度剖面图17) 所有ROI工具的温度值均可显示在时距图中18) 防护级:IP6519) 工作温度:-15°C~+50°C 20) 支持GPS信息,可将位置信息显示在谷歌地图上3. RGB成像分析单元:科研级RGB成像镜头,分辨率2592x1944像素,信噪比54dB,1-40x放大,最小视野6.1x7.9mm(40x),最大视野20.8x25.4 产地:欧洲
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  • FKM(Fluorescence Kinetic Microscope)多光谱荧光动态显微成像系统是目前功能最为强大全面的植物显微荧光研究仪器,是基于FluorCam叶绿素荧光成像技术的显微成像定制系统。它由包含可扩展部件的增强显微镜、高分辨率CCD相机、激发光源组、光谱仪、控温模块以及相应的控制单元和专用的工作站与分析软件组成。它不仅可以进行微藻、单个细胞、单个叶绿体乃至基粒-基质类囊体片段进行Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等各种叶绿素荧光及MCF多光谱荧光(multicolor fluorescence)成像分析;还能通过激发光源组进行进行任意荧光激发和荧光释放波段的测量,从而进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料以及藻青蛋白、藻红蛋白、藻胆素等藻类特有荧光色素的成像分析;更可以利用光谱仪对各种荧光进行光谱分析,区分各发色团(例如PSI和PSII及各种捕光色素复合体等)并进行深入分析。 FKM多光谱荧光动态显微成像系统使荧光成像技术真正成为光合作用机理研究的探针,使科研工作者在藻类和高等植物细胞与亚细胞层次深入理解光合作用过程及该过程中发生的各种变化,为直接研究叶绿体中光合系统的工作机理提供了最为有力的工具。FKM作为藻类/植物表型和基因型显微研究的双重利器,得到了学界的广泛认可并取得了大量的科研成果。功能特点• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序,如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等,可获得70余项参数。• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜,可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光。• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等,通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光,能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图。• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量,提高实验精度,也可以进行高温/低温胁迫研究。 应用领域• 微藻、大型藻类/高等植物的单个细胞、单个叶绿体、基粒-基质类囊体片段等的显微结构植物光合生理研究• 藻类/植物逆境研究• 生物和非生物胁迫的研究• 藻类/植物抗胁迫能力及易感性研究• 突变体筛选及光合机理研究• 藻类长势与产量评估• 藻类特有色素与光合作用关系• 藻类/植物——微生物交互作用研究• 藻类/植物——原生动物交互作用研究• 基因工程与分子生物学研究测量样品• 植物活体切片• 植物表皮• 植物细胞• 绿藻、蓝藻等各种单细胞和多细胞微藻• 叶绿体提取液• 类囊体提取液• 含有叶绿体的原生动物工作原理 FKM分析过程中,通过连接在显微镜上的激发光源组和内置在6位滤波轮中的一系列滤波器、分光镜激发植物样品中各种发色团的动态荧光。样品激发出的荧光经显微镜放大后进行荧光光谱分析和荧光动力学成像分析。SM 9000光谱仪通过光纤与显微镜连接,以进行激发荧光光谱分析。安装在显微镜顶部的高分辨率CCD相机则用于荧光动力学成像分析。全部工作过程通过工作站和控制单元按照预先设定好的程序自动进行。测量过程中,可通过温控模块调控藻类、植物细胞等实验样品的温度。蠕动泵可以实现培养藻类的连续测量。仪器组成1. 增强显微镜 2. 高分辨率CCD相机 3. 激发光源组 4. SM 9000光谱仪 5. 主控制单元 6. 工作站及软件 7. 控温模块的控制单元8. 6位滤波轮技术参数• 测量参数?Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' , Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数,每个参数均可显示2维荧光彩色图像?OJIP快速荧光曲线:测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括:Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N(QA还原周转数量)、Phi???_Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC(单位反应中心的吸收光量子通量)、TRo/RC(单位反应中心初始捕获光量子通量)、ETo/RC(单位反应中心初始电子传递光量子通量)、DIo/RC(单位反应中心能量散失)、ABS/CS(单位样品截面的吸收光量子通量)、TRo/CSo、RC/CSx(反应中心密度)、PIABS(基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数)、PIcs(基于截面的“性能”指数或称生存指数)等(选配)?GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白和荧光染料的成像分析(选配)?QA再氧化动力学曲线(选配)?Spectrum荧光光谱图(选配)• 具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑?Fv/Fm:测量参数包括Fo,Fm,Fv,QY等?Kautsky诱导效应:Fo,Fp,Fv,Ft_Lss,QY,Rfd等荧光参数?荧光淬灭分析:Fo,Fm,Fp,Fs,Fv,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多个参数,2套制式程序?光响应曲线LC:Fo,Fm,QY,QY_Ln,ETR等荧光参数?Dyes & FPs稳态荧光成像测量?OJIP快速荧光动力学分析:Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI等26个参数(选配)?QA再氧化动力学(选配)?Spectrum荧光光谱分析(选配)• 荧光激发光源:红外光、红光、橙光、蓝光、绿光、白光、紫外光等可选,根据客户要求定制光源组• 透射光源(选配):白光、远红光?高分辨率TOMI-2 CCD传感器:?逐行扫描CCD?最高图像分辨率:1360×1024像素?时间分辨率:在最高图像分辨率下可达每秒20帧?A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)?像元尺寸:6.45μm×6.45μm?运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量?通讯模式:千兆以太网• 显微镜:Axio Imager M2,可选配Axio Scope A1简洁版或Axio Imager Z2高级版?物镜转盘:研究级7孔自动物镜转盘?透射光快门?聚光器 Achr Apl 0.9 H?6位反光镜转盘?双目镜筒(100:0/30:70/0:100)?机械载物台:75×50mm,硬膜阳极氧化表面?样品架:76×26mm• 物镜:10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜(可选)• 6位滤波轮:叶绿素荧光、GFP/SYTOX、DAPI/CTC等• SM9000光谱仪?入射狭缝:70μm×1400μm ?光栅:平场型校正?光谱范围:200-980nm?波长绝对精确度:0.5nm?再现性:0.1nm?温度漂移:0.01nm/K• 温度调控模块:温度调节范围 5℃-70℃,精确度0.1℃• 蠕动泵(选配):流速10-5600μl/min,用于藻类连续培养测量• FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单 • 客户定制实验程序协议(protocols):可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),具备专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序• 自动测量分析功能:可设置一个实验程序(Protocol)自动无人值守循环成像测量,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)• 快照(snapshot)模式:通过快照成像模式,可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片• 成像预处理:程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域,也可手动选择区域(Region of interest,ROI)。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数,样品或区域数量不受限制(1000)• 数据分析模式:具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算”模式,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差• 输出结果:高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等叶绿素荧光与光谱分析结果典型应用:产地:捷克参考文献:1.Küpper H, et al. 2019. Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging. Plant Physiology 179: 369-3812.Konert G, et al. 2019. Protein arrangement factor: a new photosynthetic parameter characterizing the organization of thylakoid membrane proteins. Physiologia Plantarum 166: 264-277.3.Exposito-Rodriguez M, et al. 2017. Photosynthesis-dependent H2O2 transfer from chloroplasts to nuclei provides a high-light signalling mechanism. Nature Communications, 8: 494.Higo S, et al. 2017. Application of a pulse-amplitude-modulation (PAM) fluorometer reveals its usefulness and robustness in the prediction of Karenia mikimotoi blooms: A case study in Sasebo Bay, Nagasaki, Japan. Harmful Algae, 61:63-705.Jacobs M, et al. 2016. Photonic multilayer structure of Begonia chloroplasts enhances photosynthetic efficiency. Nature Plants, doi:10.1038/nplants.2016.1626.Andresen E, et al. 2016. Cadmium toxicity investigated at the physiological and biophysical levels under environmentally relevant conditions using the aquatic model plant Ceratophyllum demersum. New Phytol., 210(4):1244-12587.Thomas G, et al. 2016. Deficiency and toxicity of nanomolar copper in low irradiance—A physiological and metalloproteomic study in the aquatic plant Ceratophyllum demersum. Aquatic Toxicology, 177:226-2368.Fujise L, et al. 2014. Moderate Thermal Stress Causes Active and Immediate Expulsion of Photosynthetically Damaged Zooxanthellae (Symbiodinium) from Corals. PLOS ONE, DOI:10.1371/journal.pone.01143219.Gorecka M, et al. 2014. Abscisic acid signalling determines susceptibility of bundle sheath cells to photoinhibition in high light-exposed Arabidopsis leaves. Philosophical Transactions of the Royal Society B, 369(1640), DOI: 10.1098/rstb.2013.023410.Mishra S, et al. 2014. A different sequence of events than previously reported leads to arsenic-induced damage in Ceratophyllum demersum L. Metallomics, 6: 444-45411.Ferimazova N, et al. 2013. Regulation of photosynthesis during heterocyst differentiation in Anabaena sp. strain PCC 7120 investigated in vivo at single-cell level by chlorophyll fluorescence kinetic microscopy. Photosynthesis Research, 116(1): 79-9112.Andresen E, et al. 2013. Effects of Cd & Ni toxicity to Ceratophyllum demersum under environmentally relevant conditions in soft & hard water including a German lake. Aquatic Toxicology. 142–143, 15: 387–402
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  • IMA激光荧光显微高光谱成像系统 IMA荧光(EL/PL)显微高光谱成像仪 高速读取荧光高光谱均化激光不会损伤细胞等样品非逐点扫描高速PL/EL Mapping 基于独特的体布拉格光栅滤波片技术(BTF)和光致发光成像技术,Photon etc公司最新推出的IMA激光荧光显微高光谱成像系统,采取革新的二维成像的方式,激光经过扩束后再经过匀化,将高斯分布的点激光扩展成平面均匀分布面激光,面激光均匀照射在样品上,可以直接获得整个样品的荧光高光谱信息。从而获得分子结构方面的信息。有别于传统的激光荧光显微高光谱系统以逐点扫描的方式,而是一次性的获取整个样品的光谱信息,故而只需要更短的成像时间以及具有更高的空间分辨率。 共焦荧光成像系统,共聚焦荧光成像系统,共焦荧光光谱成像系统,共焦荧光成像光谱仪系统,成像光谱仪,激光荧光成像系统, 荧光显微成像系统 系统参数:VISIR光谱范围400-1000nm900-1700nm光谱分辨率2.5nm(最小可到0.2nm)4nm(最小可到0.4nm)图像分辨率亚微米亚微米成像速度20x20μm in 1s @100X20x20μm in 1s @100X激发光源447 nm, 532, 635 nm(可选其他波长)808,980nm(可选其他波长)CCD科学级CCD,背照式CCD,EMCCD等InGaAs相机显微镜倒置或正置倒置或正置物镜20X,60X,100X20X,60X,100X 应用领域:NANOPARTICLES IN CANCER CELLSDark field illumination is commonly used for the analysis of biological samples containing nanomaterials that significantly scatter light. When combined to hyperspectral imaging, it becomes an exceptional tool to also detect the composition and the location of nanomaterials embedded in cells. IMATM, Photon etc.’s hyperspectral imager, can be equipped with a highly efficient dark field condenser and generate high contrast images of biological samples. The high throughput of Photon etc.’s hyperspectral filter allows the rapid acquisition of spectrally resolved high resolution images. Since the camera captures the whole area in the field of view, it is possible to collect spectral and spatial information in real time, with the possibility of recording spectrally resolved videos to follow the dynamics of cells and luminescent nanoscale components. PHySpecTM, Photon etc software, enables principal component analysis (PCA) in order to identify the smallest variations of single and aggregated nanoparticles. With the purpose of showing the capabilities of IMATM to analyse nanomaterials in biological systems, a sample of MDA-MB-23 human breast cancer cells has been tagged with 60 nm gold nanoparticles (GNPs) and exposed to a dark field illumination on the entire field of view (Figure 1). With a 60×objective, an area of 150×112 μm was imaged, with a step of 2 nm and an exposition time of 2 s per wavelength. The complete analysis took only a few minutes, for more than one million spectra, each of them covering the whole visible spectrum. Cells typically have a flat scattering spectrum, whereas GNPs show a sharp peak around 550 nm. Figure 2 illustrates the 550 nm image extracted from the dark field hyperspectral cube of the breast cancer. The GNPs are marked with a green colouring after PCA software processing. The magnification of a breast cancer cell (Figure 3a) and the spectra of the regions containing GNPs (some examples in Figure 3b) confirmed the presence of single 60 nm NPs (peak at 550 nm) and their aggregates (peaks red-shifted). The hyperspectral camera did not detect any GNPs in the areas between the cells. CHARACTERISATION OF SOLAR CELLS USING HYPERSPECTRAL IMAGER A new characterization method based on hyperspectral imaging recording spectrally resolved images allows the cartography of electroluminescence (EL) and photoluminescence (PL). From the data acquired, spatial variations of cell properties such as open circuit voltage and transport mechanisms were identified and characterized. Furthermore, the system was compared to a classical confocal microscope, showing significant gains in acquisition time. Spectrally resolved images provide considerable advantages such as, absolute calibration of intensity, micrometer scale resolution, and excitation and detection on a surface (no information loss from lateral diffusion and roughness). In luminescence imaging, absolute calibration is a main concern and is here done in two steps: first, an absolute calibration at a determined point (spatially and spectrally) with a laser, and then a relative calibration on the whole space and the whole spectrum, with a calibrated lamp coupled to an integrating sphere.The images rendered by IMATM are spectrally resolved luminescence images from multicrystalline CIS solar cell, offering means of studying its spatial inhomogeneities. On high efficiency GaAs solar cells, we got absolute measurements of EL and successfully investigated reciprocity relations. Our next step is to record quantitative maps of CIGS physical properties from PL and EL images, such as VOC , transport parameters and more. A confocal microscope coupled to a spectrometer provides similar data. The 532nm laser is focused onto the cell front contact, and the cartography of PL spectra is obtained by scanning the sample. The acquisition time with the imager is much faster. 150*150μm2 at 107 W/m2 would take hundreds of hours in confocal, but only 8min with IMA. Moreover, surface excitation and detection allow to get rid of diffusion and roughness troubles for quantitative analysis. MULTIPLEXING OF 17 SWCNTsNIR hyperspectral microscopy covers the detection range of 900-1700 nm and is ideal for the spatial and spectral identification and measurement of fluorophores that emit in the second biological window. For example, single wall nanotubes (SWNTs) emission bands are narrow (~ 20 nm) and each band corresponds to unique (n, m) species (chiralities). With IR hyperspectral microscopy, it is possible to separate these species, with single SWNT spatial resolution on surfaces, in live cells, and in vivo. Images obtained by IR hyperspectral microscopy can be used to study fluorescence and spectral heterogeneity from single SWNTs in complex environments, including live cells and tissues. Locate and identify single SWNTs chiralities Identify SWNTs by their IR spectra Separate single SWNT (emission band ~ 20 nm) Simultaneous imaging of all emitters Multiplexing with one laser source Access to second biological windowAttenuated tissue absorbance Higher depth of penetrationLess scatteringLimited autofluorescence Monitor spectral informationChanges in intensity of single emittersShifts in wavelengthSpectral bandwidth variations In vivo applicationsIn vivo imaging of multiplexed emittersIn vivo long term sensing
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  • PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起,于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统(Heck等,1999;Nedbal等,2000;Govindjee and Nedbal, 2000)。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破,使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 上左图为上世纪90年代Nedbal等设计的FluorCam叶绿素荧光成像技术(Photosynthesis Research, 66: 3-12, 2000),右图为柠檬彩色图及叶绿素荧光成像图(Photosynthetica, 38: 571-579, 2000)FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端植物活体成像技术设备,高灵敏度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内(还可根据需求选配第五个光源板置于顶部),植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上,隔板7级高度可调;光源由高稳定性供电单元提供电源,4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上,成像面积可达13×13 cm;控制系统通过USB与计算机相联,并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等,广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点: 系统集成于暗适应操作箱内,操作简便、便于移动,既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 高灵敏度CCD镜头,时间分辨率达50张每秒,快速捕捉叶绿素荧光瞬变,成像面积达13x13cm 是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备,可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI(Performance Index)等20多个参数 是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备,可运行单周转饱和光闪(STF)叶绿素荧光诱导动态,光强在100μs内可达到120,000 μmol(photons)/m2.s 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序(Protocols),包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、2个叶绿素荧光淬灭分析(NPQ)protocolas(2套定制给光方案)、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析(选配)、OJIP快速荧光动力学分析(选配)及GFP绿色荧光蛋白成像(选配)等 可进行自动重复成像测量分析,预设一个实验程序(Protocols)、测量次数及间隔,系统将自动循环运行成像测量,并自动将数据按时间日期存入计算机(带时间戳);还可预设两个实验程序(Protocols);比如使系统白天自动运行Fv/Fm,夜间自动运行NPQ分析等 具备双色光化学光激发光源,标准配置为红色和白色,可选配红色与蓝色等双波段光化学光,双色光化学光可按不同比例搭配使用,以便实验不同光质对作物/植物的光合效益左图A为100%红色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm,左图B为30%蓝色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm;右上图为光合作用强度随光照强度(不同比例蓝色光)的关系,右下图为气孔导度随光照强度(不同比例蓝色光)的关系 可运行叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、GFP稳态荧光成像 可选配TetraCam彩色成像模块,最大成像面积20x25cm,用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 可选配高光谱成像单元和红外热成像单元,植物性状数字化、可视化,全面测量分析植物形态、光合效率、生化性状、气孔导度、胁迫与抗性等 可选配大型版移动式植物成像分析系统,成像面积35x35cm,可运行叶绿素荧光成像、红外热成像及RGB成像分析 最新应用案例:Hendrik Kupper与Zuzana Benedikty等,在2019年2月出版的《Plant Physiology》,发表了Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging,该研究首次采用超高速成像传感器FluorCam台式植物叶绿素荧光成像系统与FKM多光谱显微荧光成像系统,成像速度可达4000fps@640x512,QA再氧化叶绿素荧光动力学成像测量单脉冲饱和光闪达150,000 μmol/m2.s1。 附:OJIP快速荧光动力学测定分析参数包括: a) Fo:初始荧光或称最小荧光,50μs时的荧光b) Fj:2ms时的荧光c) Fi:60ms时的荧光d) P或Fm:最大荧光e) Vj=(Fj-Fo)/(Fm-Fo):j阶荧光相对变量f) Vi=(Fi-Fo)/(Fm-Fo):i阶荧光相对变量g) Mo=TRo/RC-ETo/RC=4(F300-Fo)/(Fm-Fo):荧光瞬变初始斜率,或称OJIP曲线初始斜率h) Area:OJIP曲线与Fm之间的面积,可称为补偿面积(complementary area)为了对不同样品进行比较,Area需要标准化为:Sm=Area/(Fm-Fo),Sm是对关闭所有光反应中心所需能量的量度i) Fix Area:OJIP固定面积,OJIP曲线40微妙时的F值至1秒时的F值下面的面积j) Sm:标准化OJIP补偿面积,反映QA还原多次周转k) Ss=Vj/Mo:标准化OJ相补偿面积,反映单周转QA还原l) N=Sm/Ss=Sm Mo(1/Vj):OJIP QA还原周转数量(between 0 and tFm)m) Phi_Po=QY=φpo=TRo/ABS=Fv/Fm,最大光量子产量,吸收光量子通量反应中心初始捕获比率n) Psi_o=ψo=ETo/TRo=1-Vj,捕获光量子通量中电子传递光量子通量比率o) Phi_Eo=φEo=ETo/ABS=(1-(Fo/Fm))(1-Vj),吸收光量子通量中电子传递光量子通量比率,或称电子传递光量子产量(quantum yield of electron transport at t=0)p) Phi_Do=φDo=1-φpo=Fo/Fm,能量散失光量子产量(t=0)q) Phi_pav=φpav=φpo(Sm/tFm),平均光量子产量,tFm为达到Fm所需时间(ms)r) ABS/RC=Mo(1/Vj)(1/QY):为单位反应中心的吸收光量子通量,这儿的反应中心仅指the active (QA to QA– reducing) centers(下同)。QY=TRo/ABS=Fv/Fms) TRo/RC=Mo(1/Vj):单位反应中心初始(或称最大)捕获光量子通量(导致QA的还原,也即反应中心关闭比率B的增加)t) ETo/RC=Mo(1/Vj)(1-Vj):单位反应中心初始电子传递光量子通量u) DIo/RC=(ABS/RC)-(TRo/RC):单位反应中心能量散失v) ABS/CS:单位样品截面的吸收光量子通量,CS stands for the excited cross-section of the tested sample(下同)。ABS/CSo=Fo,ABS/CSm=Fm,TRo/CSx=QY(ABS/CSx)——单位截面捕获能量或光量子通量w) TRo/CSo=QY.Fo;ETo/CSo=φEo.Fo =QY.(1-Vj).Fox) RC/CSx:反应中心密度,RC / CS0 (active RCs per excited cross-section)y) PIABS=(RC/ABS)(φpo/φDo)(ψo/Vj):基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数z) PIcs=(RC/CSx)(φpo/φDo)(ψo/Vj):基于截面的“性能”指数或称生存指数
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  • Akoya Biosciences PhenoImager™ Fusion是一款为细胞微环境的定量空间分析所设计、新型超快速成像仪。PhenoImager Fusion集合了快速全片成像和多重免疫荧光检测蛋白或核酸的功能,能够在完整的组织切片中定位生物标志物的表达,以及区分数十种细胞类型和它们的相互作用。当与PhenoCycler™ 集成时,PhenoImager Fusion能够支持超过100个生物标志物发现的工作流程。• 灵活的工作流程,支持高参数生物标志物发现的工作流程(100+生物标志物),也可专注于高通量大样本数量多达6个生物标志物的同时检测。• 18分钟内完成全片7色扫描• 独特的光学系统设计,具有优化的多光谱成像线路,能够精确检测多达6个生物标记物、DAPI和样本自发荧光(AF)• 快速全片多光谱技术,用于快速图像采集和拆分全片信号(多达7种颜色 使用一个或多个专利)• 利用光密度(OD)进行荧光和明场全片多光谱成像• 基于多个落射荧光(epi-fluorescence)滤块采集的发射光谱,自动获取整个载片的多光谱图像• 包含液晶电子可调节的滤波器,其中心波长和带通可在440-780nm范围内调节• 可在10倍,20倍,或40倍下全片成像• 一次可自动拍摄4张载片• 支持全片在明场RGB或常规荧光(非多光谱)下的分析• 正在申请专利的非接触式盖片检测方法可有效阻止灰尘和微粒• 超精确的载物台,位于扫描器的最佳位置,突破显微镜的衍射极限• Phenochart™ viewer/专利的快速全片多光谱技术注释程序• 集成了inForm® 图像分析软件• 兼容组织芯片(TMA)采集和分析• 输出的文件格式(.QPTIFF)可兼容Akoya软件套件(phenoptrReports)或第三方解决方案• 所有图像符合防篡改的21CFRpart11条款要求
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  • FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的最新高级扩展产品。此系统既可用于PAM脉冲调制式叶绿素荧光动态成像分析,又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析,还可选配滤波器组对GFP、RFP、YFP、SYBR Green等荧光蛋白和荧光染料进行稳态荧光成像测量。测量对象包括叶片、果实、花朵、整株拟南芥或其他小型植株、苔藓、微藻、大型藻类乃至特定的动物样品。 应用领域:§ 植物光合生理生态§ 植物逆境胁迫生理与易感性§ 植物初级代谢与次级代谢§ 植物表型组学成像分析(Phenotyping)§ 作物遗传育种与抗性筛选§ 种子萌发与活力监测§ 转基因植株筛选 功能特点:§ 多激发光-多光谱荧光成像技术:通过两种以上不同波长的光源激发植物样品中不同的发色团发出荧光并进行成像检测,即为多激发光多光谱荧光成像技术。植物的多光谱荧光主要包括叶绿素荧光、UV紫外光激发多光谱荧光和荧光蛋白荧光§ FluorCam-Pro无需更换任何配件即可同步实现多激发光-多光谱荧光成像功能:s PAM脉冲调制式叶绿素荧光成像s 紫外激发F440、F520、F690、F740多光谱荧光成像s GFP、RFP、YFP等常用荧光蛋白成像§ 可根据用户需要定制荧光蛋白或荧光染料成像,如BFP、CFP、SYBR Green、DAPI等§ 可对黄酮、花青素含量进行定量测量§ 可进行自动重复成像测量和无人值守监测,可设置实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)§ 测量样品为各种活体植物样品,包括叶片、花卉、果实、整株拟南芥或其他小型植物、微藻(包括液滴、多孔板、固体培养基)及大型藻类等 技术指标:§ 一体式设计,自带暗适应箱体§ 最佳成像面积:20×20cm§ 测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数;紫外激发多光谱荧光成像参数:F440、F520、F690、F740;荧光蛋白荧光强度参数Ft;每项参数均可显示对应二维荧光彩色图像。并可测量计算黄酮醇指数Flavonol Index,、花青素指数Anthocyanin Index。 具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑1) Fv/Fm:测量参数包括Fo,Fm,Fv,QY等叶绿素荧光参数2) Kautsky诱导效应:Fo,Fp,Fv,Ft_Lss,QY,Rfd等叶绿素荧光参数3) Quenching荧光淬灭分析:Fo,Fm,Fp,Fs,Fv,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多个叶绿素荧光参数4) Light Curve光响应曲线:不同光强梯度条件下Fo,Fm,QY,QY_Ln,ETR等叶绿素荧光参数5) MultiColor紫外激发多光谱荧光成像(选配)6) FPs荧光蛋白成像:GFP、YFP、RFP、BFP等(选配) § 荧光激发光源组:全LED光源,包括620nm红光、5700K冷白光、735nm远红光、365nm紫外光,445nm品蓝光,470nm蓝光,505nm青光,530nm绿光,590nm琥珀色光等§ 高分辨率CCD相机1) 图像分辨率:1360×1024像素2) 时间分辨率:在最高图像分辨率下可达每秒20帧§ 具备7位滤波轮,标配叶绿素荧光滤波器,根据用户需要可定制紫外激发多光谱荧光和GFP、RFP、YFP、BFP等荧光蛋白专用滤波器§ FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单§ 自动测量分析功能:可设置一个实验程序(Protocol)自动无人值守循环成像测量,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)§ 成像预处理:程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域,也可手动选择区域(Region of interest,ROI)。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数,样品或区域数量不受限制(1000) § 输出结果:高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等应用案例:1. 抗病毒基因研究:叶绿素荧光成像与GFP成像联合分析法国国家农业科学研究院一直致力于马铃薯y病毒组的抗病基因研究,通过不同基因编辑处理方法,验证抗病毒分子机制。相关研究中,研究人员利用FluorCam多光谱荧光成像系统的GFP荧光蛋白成像功能,定量分析感染面积与病毒积累量,从而直观地反映了不同基因功能对拟南芥病毒抗性的影响。同时,叶绿素荧光成像则反映病毒对光合系统的损伤,同步提供植物的光合表型信息。 参考文献:§ Zafirov D, et al. 2021. When a knockout is an Achilles' heel: Resistance to one potyvirus species triggers hypersusceptibility to another one in Arabidopsis thaliana. Mol Plant Pathol. 22: 334–347§ Bastet A, et al. 2019. Mimicking natural polymorphism in eIF4E by CRISPR‐Cas9 base editing is associated with resistance to potyviruses. Plant Biotechnology Journal 17: 1736–1750§ Bastet A, et al. 2018. Trans-species synthetic gene design allows resistance pyramiding and broad-spectrum engineering of virus resistance in plants. Plant Biotechnology Journal: 1–13 2. 不同颜色凌霄叶片的叶绿素荧光与紫外激发多光谱荧光成像分析(易科泰EcoTech实验室) 产地:欧洲
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  • 激光共焦多维荧光成像系统: FLIM / FCS 时间分辨的空间分辨显微系统: ISS 推出新一代的快速荧光寿命成像系统FLIM/PLIM。成像速度可达 20 fps (@256×256),自由选择1×1到4096×4096像元分辨率;同时获取荧光寿命成像和共焦强度成像数据,保持单分子级的检测灵敏度。 用于化学、纳米、能源、生物等学科方向,单分子、活细胞、微区成像及形貌、能级结构和能量传递特征的机理研究。满足上转换量子点及相关材料的寿命成像测试。。 ISS以整机的荧光寿命成像系统为己任,实现共焦三维扫描模块(针孔,二维振镜、压电台或自动工作台)和时间分辨模块的完美结合,提供<100ps-100ms的全时域荧光寿命检测;同时软件融合Phasor Plots荧光寿命直读半圆规的矢量图技术,可视化、直观的提供荧光寿命分布及数值。 荧光寿命成像数据分析进入直读时代。 ISS 激光共焦扫描荧光寿命成像系统,还可以同时满足以下需要: 1. 双光子的荧光寿命 FLIM/PLIM 成像; 2. 深紫外激发的荧光寿命 FLIM / PLIM 成像;266nm 355nm 3. 红二区荧光寿命 FLIM /PLIM 成像; 4. 激光扫描大视场活体成像 FLIM /PLIM ; 5. 光谱采集及光谱成像; 6. AFM联用--活细胞工作站联用--冷冻及加热工作台联用; 7. 纳米颗粒三维跟踪;(专有技术) 主要功能描述:(单/双光子功能) 激光共焦荧光强度成像LCM;荧光寿命成像FLIM,磷光寿命成像PLIM;上转换荧光(寿命)成像,稀土发光(寿命)成像,延迟荧光(寿命)成像;荧光波动成像FFS(FCS,FCCS, PCH,N&B, RICS, FLCS,scan-FCS), FLIM-FRET成像;荧光定量成像;单量子点发光(寿命)成像,单分子及单分子荧光共振转移成像smFRET,包括交替激发PIE成像;稳态及瞬态偏振成像;微区荧光光谱采集 400-1100nm;反聚束测试(含专业软件);活细胞工作站升级(含多孔板)仪器特点: 实时直读式获得荧光寿命数值及变化趋势,FRET效率分布;选择350nm-1100nm加上900nm-1700nm波长范围检测器,2-4通道检测器,用于成像,FLIM-FRET;可以升级无波长干扰AFM(正置或倒置),实现同区域形貌和FLIM同步测试;紫外-可见-红外激发波长,单波长或超连续激光器;单光子或双光子的激光器; 主要技术指标 1. 荧光寿命测试范围:100ps-100ms;2. 最小时间分辨率≤1ps;3. 数据计数速率:65 MHz/channel4. 检测通道:upto 8 channels;5. 标配xy振镜扫描,5kHz扫描频率,配合xy闭环自动台实现大区域扫描;6. Phasor plots 用于数据分析;7. 光谱采集;400-1100nm8. 扫描透射成像;9. 界面聚焦系统;10. 变温附件;77k-500k;
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  • M4 TORNADOPLUS - 微区X射线荧光成像的新纪元M4 TORNADO微区X射线荧光成像光谱仪PLUS能够检测出C(6)-Am(95)间元素的微区X射线荧光成像光谱仪。作为微区X射线荧光成像光谱仪M4TORNADO系列的新产品,M4 TORNADOPLUS又增添了功能,例如孔径管理系统,高通量脉冲处理器以及快速灵活更换的样品台。更轻、更快、更深 M4 TORNADOPLUS采用轻元素窗口的大面积硅漂移探测器(SDD)实现对轻元素碳的检测,高通量脉冲采样,BRUKER孔径管理系统(AMS)可以获取大景深,对表面不平整样品分析具有优势。轻元素检测M4 TORNADOPLUS能够检测分析轻质元素碳的微区X射线荧光成像光谱仪,具备两个具有轻元素窗口的大面积硅漂移探测器和一个优化的Rh靶X射线光管。与普通微区X射线荧光成像光谱仪不同,M4 TORNADOPLUS在不影响较高能量范围内元素灵敏度的前提下,还可以检测原子数小于11的元素(Z<11),例如氟(F)、氧(O)、氮(N)和碳(C)。随着功能性的增强,M4 TORNADOPLUS应用也正在开发和拓展中,例如地质学、矿物学、生物学、聚合物研究或半导体行业等方向。应用实例-萤石和方解石的区分萤石(CaF2)和方解石(CaCO3)都是以钙为主要成分的矿物。它们的区别在于分别存在轻质元素氟(F),氧(O),碳(C);由于普通微区X射线荧光成像光谱仪检测不到Z<11(Na)的元素,无法区分这两种矿物,所以萤石和方解石的光谱图上都只会显示Ca元素谱线。利用轻元素探测器,M4 TORNADOPLUS可以检测氟(F)、氧(O)和碳(C),从而鉴别这两种矿物。图:鉴别萤石与方解石 左:方解石(红)和萤石(蓝)的元素分布图;图像尺寸:20×12mm2;扫描分辨率:800×460pixels 右:萤石(蓝)和方解石(红)的轻质元素光谱图。应用实例-电路板由于AMS的场深度深,如图所示电路板的X射线图像获得更多的细节。此外,由于激发X射线光子的入口和出口角度减小,光束能量依赖性变得不那么明显。图:具备AMS与不具备AMS的电路板元素分布图左图: 标准多导毛细管聚焦在电路板上,元件的高点失焦,显得模糊。右图: AMS系统加载下图像显示高景深,组件聚焦在更大的景深范围内。
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  • 本设备利用激光、显微镜、精密扫描组件、时间分辨数据采集技术和图像处理技术获得样品不同位置的荧光强度及寿命。利用定点激发技术,可以观测载流子迁移。是一种高性能、高扫描速度、高灵敏度的荧光成像仪器。一、系统主要技术指标1.激光扫描振镜模块1) 激光光纤输入,配电控光阑系统2)激光扫描成像范围∶最高4096x4096像素点3)成像放大倍数(zoom)∶1-32倍4)激光扫描波长范围:400-750nm 2.TCSPC模块1) 时间精度7ps 2) Bin通道数∶40963) 时间窗口50ps-5μs 4) 仪器响应函数(IRF)∶≤:300ps 5) 时间分辨率∶≤50ps 3.高灵敏度单光子检测器模块1) 检测面直径100μm 2) 光谱检测范围400-1000nm 3) 时间分辨率∶50ps(FWHM)4) 量子效率∶45%@550nm 4.稳态光谱检测模块光谱仪(配置可根据客户需求调整)1) 焦长200mm 2) 光谱仪内置两块光栅3) 出口耦合PMT检测器或CCD相机光谱检测模式∶波长扫描采集或CCD采集波长探测范围350-900nm 5.倒置显微镜模块1) 含照明光源、双色片、滤光片等基本配置2) 物镜一套(空气镜)∶100x、60x、20x 3) 最高空间分辨率≤500nm(取决于物镜和激光/荧光波长)6.激光器(可按客户需求选配)1) 单波长皮秒半导体激光器2) 皮秒超连续白光激光器二、应用实例1、荧光强度成像、荧光寿命成像样品:MAPbI3单晶纳米片和MAPbI3纳米线实验条件∶100X objective,pinhole 40μm,Exc∶400 nm,成像模式:共聚焦扫描成像模式样品:二维 SnSe2(微弱荧光材料)实验条件:100X(油镜),激发波长:405nm成像模式:共聚焦激光扫描成像模式 参考文献:Xing Zhou ,et al.,Tianyou Zhai*,Adv. Mater. 2015, 27, 8035–80412、低温舱内的荧光成像样品:MAPbI3 纳米线实验条件:100X,空间分辨率 1μm成像模式:共聚焦激光扫描成像模式 观测到钙钛矿纳米先低温相变过程的空间分布和演化状况3、高压舱内的荧光成像样品:MAPbI3单晶纳米片和MAPbI3纳米线MAPbI3 纳米线不同压力下激光扫描荧光成像 不同压力下荧光动力学曲线 MAPbI3 纳米线不同压力下载流子迁移荧光成像 不同压力下载流子迁移动力学曲线 参考文献:YanfengYin,WenmingTian,*etal.,JimingBian,*andShengyeJin*ACS Energy Lett.2022,7,154&minus 1614、载流子迁移成像实验条件∶100× objective,pinhole 40μm,Exc∶400 nm 样品:钙钛矿纳米片成像模式∶激光定点激发,荧光扫描成像,可获得样品荧光动态演化图5、电致发光成像样品:CdSe量子点LED 6、光电流成像实验条件∶405nm连续激光器,激光强度调至最弱,60x物镜下测量结果2D(ITO/SnO2/QW/Spiro-Au)结构的太阳能电池光电流成像图
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  • Solar-Induced Fluorescence高分辨率叶绿素荧光机载高光谱成像光谱仪特点:全反射同心光学设计,原始全息光栅科研级数据用于O2-A和O2-B用于远距离测量大面积地理区域内的叶绿素荧光发射等科研级应用,可探测在670nm到780nm之间的光谱适用于植被遥感等应用。基本参数:光谱范围(nm)670-780光谱分辨率(FWHM)(nm)0.1-0.2光谱通道2160空间像素1600重量(包括25mm镜头)6.3kg应用案例:G-LiHT 检测系统/森林生物量、外来树种监测等
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  • Kautsky 与 Hirsch 于1931年首次发表论文“CO2同化新实验”,报道了用肉眼发现叶绿素荧光现象,荧光强度的变化与CO2同化速率呈负相关。Ladislav Nedbal教授与Martin Trtilek博士等基于脉冲调制技术(PAM,Pulse Amplitude Modulated technique)与CCD技术,于1996年研制成功FluorCam叶绿素荧光成像技术(Nedbal etc, 2000),使叶绿素荧光得以在二维和显微(细胞与亚细胞水平)水平上进行成像分析。PAM技术基于人工激发光(脉冲调制测量光、光化学光、饱和光脉冲)Protocols诱导成像,如何在自然光(太阳光)条件下对叶绿素荧光进行成像测量,从而实现对植物光合作用成像作图(mapping),成为科学家特别是生态观测、农业遥感等领域科学家的梦想。 AisaIBIS叶绿素荧光高光谱成像仪由芬兰Specim公司与德国Juelich研究中心为欧洲太空局(ESA)地球探测项目(SIFLEX)研制的Hyplant传感器,是世界上第一款商业化高光谱叶绿素荧光成像仪,采用夫琅和费线深度法,可以检测太阳辐射诱导叶绿素荧光(Sun-induced Fluorescence),用于陆空双基植物叶绿素荧光高光谱成像测量分析,可得到NDVI、EVI、F760(植物叶绿素荧光)等参数。 作为一款功能强大的超高光谱分辨率空陆双基成像系统,适用于地面及航空遥感SIF叶绿素荧光高光谱成像测量,AisaIBIS采用“夫琅和费线深度法”,该方法在670 - 780nm的特定光谱区域内,可对两条吸氧谱线底部的微弱荧光信号进行检测和定量。结合高光通量成像光谱仪和先进的sCMOS成像技术,可在飞行条件下以较高的成像速率和优异的光谱采样间隔(0.11nm)采集高质量、低噪声、高动态范围和信噪比的叶绿素荧光高光谱数据,可以安装在易科泰光谱成像与无人机遥感研究中心提供的近地面遥感平台、通量塔或者航空遥感平台,得到不同尺度的NDVI、EVI、F760(植物叶绿素荧光)等参数。适用于农业、林业、草原、湿地生态系统观测,如光合作用与植被胁迫(如病虫害、干旱等)研究、大田作物表型与种质资源检测、生态系统生产力与作物产量评估等。功能特点1.推扫式高光谱成像技术,采用“夫琅和费线深度法”获取SIF叶绿素荧光成像数据,使太阳光诱导叶绿素荧光测量提高到高空间分辨率水平2.科研级超高性能,光谱采样率达到0.11/0.22nm,高透光率F/1.7,高信噪比680:1 3.陆空双基,既可用于航空遥感,也可以安装于近地面遥感平台、通量塔,以获取不同尺度日光诱导叶绿素荧光高光谱成像数据4.结合易科泰生态技术公司提供的便携式叶片水平叶绿素荧光测量设备,可以满足不同尺度水平的观测研究5.可配置易科泰生态技术公司提供的全波段高光谱成像技术、Thermo-RGB红外热成像与RGB融合成像分析技术等 技术指标:1. SIF叶绿素荧光高光谱成像传感器CMOS科研级检测器,快照模式,珀尔贴制冷 波段范围:670-780nm光谱采样:0.11/0.22nm空间分辨率:384/768像素 透光率F/1.7、信噪比680:1、帧频65fps视野:32.3度,0.5m至无穷远 积分时间:在帧像周期内可调 数据接口:CameraLink 16-bit功耗:一般135W,最大200W成像系统重量(含DPU):<25kg支电机械快门,光温稳定功能2. Thermo-RGB红外热成像与RGB真彩成像融合分析技术,可区分阳光照射叶片或冠层、阴影叶片或冠层以及土壤的温度和覆盖度等,以精确反映作物/植物气孔导度动态,使作物冠层温度测量精准区分阳光照射叶片、阴影叶片及土壤背景,并可进行ROI选区分析、频率直方图分析显示及颜色分析等,适宜于高空间解析度冠层温度检测、物候观测、气孔导度观测、高通量作物表型分析等 3. AisaFENIX双镜头全波段高光谱成像:包括VNIR(380-970nm)和SWIR(970-2500nm)双镜头高光谱成像,高信噪比(1000:1)、分辨率,空间分辨率可达1024x像素4. 遥感平台:可选配航空遥感平台、通量塔、或易科泰生态技术公司提供的近地遥感平台5. 光谱成像近地遥感:可选配扫描式或机器人近地遥感光谱成像,包括叶绿素荧光成像(基于PAM技术)、高光谱成像、红外热成像等应用案例1:ESA(欧洲航天局)与NASA(美国国家航空航天局)合作开展生态健康与碳循环动态研究 ESA与NASA合作,采用基于AisaIBIS的HyPlant SIF航空遥感系统、美国NASA研发的基于LiDAR-高光谱-红外热成像航空遥感系统,同步获取森林的太阳光诱导叶绿素荧光成像、冠层结构信息、可见光至短波红外(400-2500nm)光谱反射成像信息、及冠层温度信息,以观测研究生态系统健康与碳循环动态(Middleton etc. The 2013 FLEX-US airborne campaign at the parker tract loblolly pine plantation in North Carolina, USA. Remote Sensing, 2013)应用案例2:AisaIBIS用于监测农作物长势-德国波恩大学农业试验站 德国Julich研究所、西班牙Valencia大学、意大利Milano-Bicocca大学、芬兰Specim公司等科学家,对基予AisaIBIS的HyPlant航空遥感系统(包括AisaIBIS和AisaFENIX)观测冠层(Top-of-Canopy, TOC)光谱反射与SIF叶绿素荧光技术,进行了全面解读,并采用该系统对农田作物进行了遥感作图分析(参见下图),该系统采用AisaIBIS、AisaFENIX全波段空陆双基高光谱成像(400-2500nm)等(Basbian Siegmann etc. The high-performance airborne imaging spectrometer HyPlant-from raw images to Top-of-Canopy reflectance and fluorescence products: Introduction of an Automatized Processing China. Remote Sensing, 2019)应用案例3:AisaIBIS用于估算不同时间作物初级生产力-德国科隆大学 德国科隆大学等科学家采用HyPlant航空遥感系统(基于AisaIBIS SIF叶绿素荧光高光谱成像和AisaFENIX高光谱成像技术),结合地面光合作用(采用Li6400或LCPro T光合仪)和土壤呼吸测量(采用Li8100或SRS2000土壤呼吸测量系统),对植被初级生产力及胁迫进行了观测研究(参见下图),结果表明,F760对现有GPP评估方法可以起到很好的改善和补充,SIF红色叶绿素荧光与远红波段叶绿素荧光比率可以灵敏地反映环境胁迫(S. Wieneke etc. Airborne based spectroscopy of red and far-red sun-induced chlorophyll fluorescence: Implications for improved estimates of gross primary productivity. Remote Sensing of Environment, 2016)其它参考文献:Rascher, U., et al.(2015), Sun-induced fluorescenc – a new probe of photosynthesis: First maps from the imaging spectrometer HyPlant. Global Change Biology.Rossini, M., et al.(2015), Red and far red Sun-induced chlorophyll fluorescence as a measure of plant photosynthesis, Geophys. Res. Lett.Wieneke, S., et al.(2016), Airborne based spectroscopy of red and far-red sun-induced chlorophyll fluorescence: Implications for improved estimates of gross primary productivity. Remote Sensing of Environment.Colombo, R., et al.(2018), Variability of sun-induced chlorophyll fluorescence according to stand age-related processes in a managed loblolly pine forest. Global Change Biology.Gerhards, M., et al.(2018), Analysis of airborne optical and thermal imagery for detection of water stress symptoms. Remote Sensing.Max Gerhards, et al.(2018), Analysis of airborne optical and thermal imagery for detection of water stress symptom. Remote Sensing.Bandopadhyay, S., et al. (2018), Examination of Sun-induced Fluorescence (SIF) Signal on Heterogeneous Ecosystem Platforms using ‘HyPlant’. Geophysical Research Abstracts.Giulia Tagliabue, et al. (2019), Exploring the spatial relationship between airborne-derived red and far-red sun-induced fluorescence and process-based GPP estimates in a forest ecosystem. Remote Sensing of Environment.
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  • ■产品应用 OI系列全自动多功能成像系统具有超高灵敏度深冷CCD相机及大光圈镜头的一台多功能成像分析系统,搭载了RGB荧光光源、IR红外光源、紫外光源、白光光源,可检测化学发光、荧光、紫外、白光等样品,可选配温控平台及麻醉系统可满足客户多种实验需求 。 ■产品应用印迹膜:Chemiluminescent、 ECL、ECL plus、CDP Star、SuperSignal、CSPD、 LumiGlo、Cy2、Cy3、Cy5、Cy5.5、Cy7、FITC、Alexa Dyes、DyLight Dyes、ProQ Diamond、ProQ Emerald 300、ProQ Emerald 488、IR Dye 680、IR Dye 780等。核酸检测:EB,SYBRGold, SYBRGreen, SYBRSafe, GelRed, GelGreen,Fluorescein, 等标记的DNA/RNA检测各种染料。蛋白检测:考马斯亮蓝胶,银染胶,以及各种可见染标记胶/膜等;其他应用:各种杂交膜、蛋白转印膜、培养皿菌落计数、酶标板、点杂交、蛋白芯片、TLC板 ■产品参数 型号参数OI 600MFOI 900MFOI 900MF Plus相机参数深冷科研级900万像素相机 (背照式)深冷科研级1200万像素相机(背照式)镜头参数电动镜头:F=0.95电动镜头,可选配F=0.8滤光轮5-12位全自动滤光轮可选荧光光源Ex:多组荧光光源可选,标配三组滤光片Em:多组滤光片可选,标配三组样品台档位式化学发光样品台紫外透射样品台,紫外面积:21×21cm选配:25x26cm,选配蓝光台白光透射样品台LED冷光源自动聚焦是自动曝光是图像合并样品与marker自动合并,可手动调整三色合并RGB光谱与marker合并
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  • 叶绿素荧光光谱包含了植物丰富的光合作用的信息,一直是光合生理研究的热点课题,且被成为研究植物光合作用快速无损的敏感探针。结合荧光光谱的特征和叶绿素等生化生理参数的测定,可为不同水、肥、病胁迫下荧光光谱指标与其他生化参数间的关系,为精准农业和林业研究等提供优化调控和精准管理的理论依据和技术支持。 由于仪器硬件的限制,长久以来,对植物叶绿素荧光的限制光谱的研究大都限制在实验室研究或者卫星高光谱数据的分析,而无法通过有人机载平台进行大面积高精度的高光谱成像遥感探测。作为全球高光谱成像仪领军的制造商之一,Headwall公司推出的 Hyperspec® Fluorescence叶绿素高光谱成像仪,专门针对日光诱导叶绿素荧光(Solar-Induced chlorophyll Fluorescence, SIF)的光谱范围(670-780nm),以0.1~0.2nm的光谱分辨率为用户提供叶绿素a和叶绿素b科研级的高光谱立方体数据。 Hyperspec® Fluorescence基于Headwall公司独占的像差校正型凸面全息反射光栅专利技术,并选用TE制冷型sCMOS感光器件,以峰值120:1的信噪比(SNR,unbinned),为用户提供高质量的荧光高光谱数据基础。 Hyperspec® Fluorescence结构紧凑,尺寸 30 x 30 x 20cm,重量仅为6.3kg左右,可满足众多有人机平台的挂载要求。主要特点:亚纳米级分辨率,具有分辨日光诱导叶绿素荧光的能力制冷型科学级CMOS探测器,在弱光下也有极高的灵敏度在670-780nm范围内,具有2160个光谱通道,光谱采样率约为0.05nm可选配Trimble APX-15 高精度IMU/GNSS模块和紧凑型高速数据处理单元组成机载高光谱系统无人机最大飞行速度:20米/秒悬停精度:启用RTK定位时,水平±10cm,垂直±10cm内置降落伞,在极端情况下弹出,保证设备安全
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  • 激光共焦多维成像系统: FLIM / FCS 时间分辨的空间分辨显微系统: ISS 推出新一代的快速荧光寿命成像系统FLIM/PLIM。成像速度可达 20 fps (@256×256),自由选择1×1到4096×4096像元分辨率;同时获取荧光寿命成像和共焦强度成像数据,保持单分子级的检测灵敏度。 用于化学、纳米、能源、生物等学科方向,单分子、活细胞、微区成像及形貌、能级结构和能量传递特征的机理研究。满足上转换量子点及相关材料的寿命成像测试。。 ISS以整机的荧光寿命成像系统为己任,实现共焦三维扫描模块(针孔,二维振镜、压电台或自动工作台)和时间分辨模块的完美结合,提供<100ps-100ms的全时域荧光寿命检测;同时软件融合Phasor Plots荧光寿命直读半圆规的矢量图技术,可视化、直观的提供荧光寿命分布及数值。 荧光寿命成像数据分析进入直读时代。 ISS 激光共焦扫描荧光寿命成像系统,还可以同时满足以下特殊需要: 1. 双光子的荧光寿命 FLIM/PLIM 成像; 2. 深紫外激发的荧光寿命 FLIM / PLIM 成像; 3. 红二区荧光寿命 FLIM /PLIM 成像; 4. 激光扫描大视场活体成像 FLIM /PLIM ; 5. 光谱采集及光谱成像; 6. AFM联用--活细胞工作站联用--冷冻及加热工作台联用; 7. 纳米颗粒三维跟踪;(专有技术) 主要功能描述:(可以选择双光子功能)激光共焦荧光强度成像LCM;荧光寿命成像FLIM,磷光寿命成像PLIM;上转换荧光(寿命)成像,稀土发光(寿命)成像,延迟荧光(寿命)成像;荧光波动成像FFS(FCS,FCCS, PCH,N&B, RICS, FLCS,scan-FCS),FLIM-FRET成像;荧光定量成像;单量子点发光(寿命)成像,单分子及单分子荧光共振转移成像smFRET,包括交替激发PIE成像;稳态及瞬态偏振成像;微区荧光光谱采集 400-1100nm;反聚束测试(含专业软件);活细胞工作站升级(含多孔板)仪器特点: 实时直读式获得荧光寿命数值及变化趋势,FRET效率分布;选择350nm-1100nm加上900nm-1700nm波长范围检测器,2-4通道检测器,用于成像,FLIM-FRET;可以升级无波长干扰AFM(正置或倒置),实现同区域形貌和FLIM同步测试;紫外-可见-红外激发波长,单波长或超连续激光器;单光子或双光子的激光器; 主要技术指标 1. 荧光寿命测试范围:100ps-100ms;2. 最小时间分辨率≤1ps;3. 数据计数速率:65 MHz/channel4. 检测通道:upto 8 channels;5. 标配xy振镜扫描,5kHz扫描频率,配合xy闭环自动台实现大区域扫描;6. Phasor plots 用于数据分析;7. 光谱采集;400-1100nm8. 扫描透射成像;9. 界面聚焦系统;10. 变温附件;77k-500k;
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  • PhenoCheck便携式表型成像光谱仪用途:PhenoCheck便携式表型成像光谱仪是一款集成反射光谱成像和荧光光谱成像的仪器,能以视频速率获取并显示植被指数和光谱图图像,同时显示光谱和彩色图像。它集成了LED阵列光源,满足各种环境下对植物、果实等组织的测量,可检测并绘制水分、营养、病害等胁迫的光谱曲线及图像,为评估植物健康状况、果实成熟度、预测收获时期等提供科学、客观的数据支撑。 PhenoCheack植物表型成像光谱仪基于快照、视频、高清光谱成像采集的六个光谱带而设计的,波段覆盖400-1000nm光谱范围,工作光谱带和成像模式经过科学实验选择。采用低功耗设计,光谱成像操作均通过触摸屏图形用户界面控制,软件平台继承了光谱α分类算法,可计算并实时显示植被指数、光谱分类、漫反射和荧光成像模式下的光谱和彩色图像。特点: 便携设计:手持光谱成像仪搭配平板电脑,适应多种实验环境 稳定测量:集成照明光源,隔离环境光,确保成像测量稳定 功能强大:集成光谱测量、光谱成像、荧光成像功能,图、谱、植被指数均可获取 智能好用:一键式测量,图形化界面,直观易读技术参数:相机光谱范围 400-1000nm工作模式反射、荧光成像RGB,HSV,Lab光谱绘图无监督分类绘图和植被指数绘图空间分辨率6M照明LED阵列光源通讯端口USB3.0视场角23*15mm放大倍数30和50(带窗口放大功能)通讯端口USB3.0重量800g
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  • 产品介绍AniView Phoenix全光谱动物活体成像系统是一款高灵敏度、全光谱动物活体成像系统。系统采用科学级制冷CCD相机和低温InGaAs相机,分别用于可见光波长的成像与近红外二区波长的成像,实现 400-1700nm 波长范围内的全光谱成像。且配备制冷循环系统,通过对相机进行低温制冷,进一步提升在可见光区域和近红外二区的检测灵敏度。系统最多可同时配备LED光源、激光光源和X光光源,分别用于可见光荧光、近红外一区荧光和近红外二区荧光的激发。高强度LED光源具有更长的使用寿命以及更强的稳定性,激光光源则更适合对于近红外二区等深层次样品的激发。 产品特点● 全光谱成像AniView Phoenix 全光谱动物活体成像系统采用双相机设计,科学级制冷CCD相机用于可见光波长的成像,而低温InGaAs相机可用于近红外二区波长的成像,因此可实现400-1700nm波长范围内的全光谱成像。● 极高的检测灵敏度AniView Phoenix 全光谱动物活体成像系统配备制冷循环系统,可对CCD相机和InGaAs相机进行低温制冷,极大地减少了暗电流的产生,同时其均具有超高的量子效率,进一步提升在可见光区域和近红外二区的检测灵敏度。● 多种激发光源AniView Phoenix 全光谱动物活体成像系统最多可同时配备LED光源、激光光源和X光光源,分别用于可见光荧光、近红外一区荧光和近红外二区荧光的激发。 高强度LED光源具有更长的使用寿命以及更强的稳定性,激光光源则更适合对于近红外二区等深层次样品的激发。● 出色的成像视野AniView Phoenix 全光谱动物活体成像系统配备水平、垂直双向移动载物台,可见光成像可满足 5 只小鼠同时成像,近红外二区成像可满足 3 只小鼠同时成像。 智能软件1、支持单张拍摄/多张拍摄/序列拍摄模式,清晰地显示叠加影像、明场图像、发光图像、荧光图像或X-ray图像,自动将X-ray图像与发光或荧光图像进行叠加;2、支持单次拍摄、延时拍摄以及视频拍摄,所有拍摄方式均可自主调节帧率,对于视频文件还可显示帧列表,方便拖动到指定位置;3、软件自动存储以拍摄时间加自定义命名内容为后缀的原始数据,即拍即存,无需繁琐的存储操作及担心数据丢失;4、量化分析功能,以动物体表每秒离开一平方厘米组织并辐射成一个立体角的光子数(p/s/cm2/sr)或发射光子(p/s/cm2/sr)/激发强度(uw/cm2)进行定量,可自动或手动获取荧光及发光信号强度;5、丰富的像素合并功能,≥8种像素合并功能,适合于低信号的检测实验,能有效地提高检测灵敏度;6、强大的多图分析功能,可对多张图片一键同时处理分析及组合导出,实现纵向实验结果快速处理,确保成像结果分析条件一致。 应用举例AniView Phoenix 可用于干细胞研究、基因药物开发、肿瘤学研究、核酸疫苗开发、新药筛选评价、基因体功能分析、基因表达调控研究、疾病模型研究、中草药筛选、菌种抗药性测试、病毒感染模式、荧光标记分子载体追踪、可视化微脉管系统、监测血流和代谢成像、识别肿瘤组织,指导实时手术、无接触监测心率和呼吸频率、监测细胞环境(脂质,pH和mRNA)、干细胞示踪及其再生医学研究等。 ▶ 应用案例
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  • IsoPlane 成像型光谱仪 400-860-5168转2255
    美国PI 公司作为科学级CCD 相机和光谱仪的领先者,经过数十载技术创新,推出首台全焦面零像差成像光谱仪Fergie。它采用内置高灵敏度科学级CCD 芯片的全集成式紧凑设计,最简化光谱实验硬件设置。零像差不仅最大化提高了光谱分辨率,也让成像和光谱的切换轻松自如。辅以Fergie CUBEs 模块化设计,无论是吸收、透射光谱,或是荧光、拉曼光谱,光路搭建都变得易如反掌。IsoPlane成像型光谱仪行业高级的成像光谱仪 IsoPlane 成像光谱仪重新定义了高性能与多功能的标准。 这款专利设计,屡获嘉奖的IsoPlane是成像光谱仪中非常好的产品。 f/4.6的光路在提供非常好的成像质量的同时,还保证了非常大的光通量和信噪比。独特的光学设计完全消除了焦平面上的像差,具有无以伦比的多通道成像能力,是一款独特的产品。 IsoPlane-160是一款小巧的200mm焦距成像光谱仪,拥有f/3.88光路,独特的像差纠正设计,成像质量高,成像分辨率可以媲美1/3米焦距的传统C-T型光谱仪(Czerny-Turner)。 IsoPlane-160小巧而性能强大。IsoPlane系列具有以下优点: * 高分辨率成谱* 非常好的成像能力* 出色的信噪比* 专利光学设计(IsoPlane-320)* 三重光栅塔轮,自动化操作,具有光栅识别能力产品综述无与伦比的全面性! 普林斯顿仪器不断创新的传统在这款屡获嘉奖的IsoPlane-320上再次得到展现,它独特的零像差光学设计让图像和光谱的分辨率大幅度提高,同时还拥有更强的光通量。其分辨率可以媲美1/2米焦长的光谱仪,却是其光通量的两倍,使得IsoPlane成为高要求低光实验中理想的选择。IsoPlane-160用非常小巧的设计达到了1/3米焦长光谱仪才能达到的分辨率。 它 f/3.88的光学设计几乎完全消除了像差,也保证了高分辨率。 不仅是光谱应用,也是显微光谱仪的理想选择。 IsoPlane的常用领域包括: * 显微光谱仪:拉曼,荧光和光致发光* 多通道光谱仪* 拉曼光谱* 荧光和光致发光光谱* 激光诱导击穿谱仪(LIBS)* 生物医学成像* 傅里叶频谱产品特点IsoPlane-320 专利设计,零像散设计全波长,全部焦平面零像散,高分辨率避免信号串扰,同时采集100光纤输入信号可充分利用大尺寸CCD的成像空间,芯片高度可达达22mm其他任何反射型光谱仪难以匹配的性能 高光通量每个像素可收集更多的光子,提升光谱分辨率和对比度更高的信号强度提高实验的灵敏度 (C6H6 1460 cm-1 image). 三光栅塔轮,全软件控制探测范围从UV到mid-IR,软件选择中心波长,全面的实验灵活性优于棱镜型光谱仪优化的色散效率和分辨率,只需一键实现光栅塔轮可快速更换,系统可支持高达9块光栅 精准的千分尺调整可调整光谱与相机的聚焦效果提升光谱和相机的分辨率 高效率光学镀膜Acton#1900 增强型铝膜反射镜提供从193nm到mid-IR的非常高反射率. 保护性银膜提供平均98%的反射率.近红外可以选择金膜. 兼容普林斯顿仪器各类相机PIXIS CCD camerasProEM EMCCD camerasPI-MAX4 ICCDs and emICCD camerasNIRvana InGaAs NIR/SWIR cameras 全面的附件光纤束,滤波转轮,光源,光栅等等.IntelliCal 波长校准和强度校准系统点击查看其他各种附件 LightField的64-位操作平台与LabVIEW,MATLAB,EPICS等第三方软件无缝对接.直观易上手的用户界面设计.内置数学引擎,实时获得图像与光谱的数据分析.型号规格IsoPlane成像光谱仪产品参数与手册ModelFocal LengthAperture RatioPMT Resolution*CCD ResolutionIsoPlane SCT-320 320 mmf/4.60.05 nm0.08 nmIsoPlane 160 203 mmf/3.880.10 nm0.15 nmSpecifications determined with 1200 gr/mm grating at 435 nm with 26.8 mm width CCD camera with 20 μm pixels*10 μm slit widths, 4 mm height产品应用Tip-Enhanced Raman SpectroscopyTERS - Tip-Enhanced Raman spectroscopy Laser-Induced Breakdown SpectroscopyLIBS is considered one of the most convenient and efficient analytical techniques for trace elemental analysis in gases, solids, and liquids. LIBS spectra obtained by the Mars Curiosity Rover have confirmed that our sister planet could have harbored life Fluorescence, Phosphorescence, and Photoluminescence SpectroscopyFluorescence, phosphorescence and photoluminescence occur when a sample is excited by absorbing photons and then emits them with a decay time that is characteristic of the sample environment. General RamanThe most common application of Raman spectroscopy involves the vibrational energy levels of a molecule. Incident laser light in the UV, visible or NIR, is scattered from molecular vibrational modes. Surface-Enhanced Raman SpectroscopySERS - Surface-enhanced Raman spectroscopy Coherent Anti-Stokes Raman SpectroscopyCoherent Anti-Stokes Raman spectroscopy (CARS) a type of non-linear Raman spectroscopy. Instead of the traditional single laser, two very strong collinear lasers irradiate a sample. Singlet Oxygen ImagingSinglet oxygen, the first excited state of molecular oxygen, is a highly reactive species that plays an important role in a wide range of biological processes, including cell signaling, immune response, macromolecule degradation, and elimination of neoplastic tissue during photodynamic therapy. CombustionCombustion researchers rely on laser-based optical diagnostic techniques as essential tools in understanding and improving the combustion process. Plasma Emission SpectroscopyThe different types of plasma emission spectroscopy can be categorized by how the plasma is generated. Spectra of nuclear fusion plasmas are used to ascertain the chemical species present and other properties. Resonance Raman SpectroscopyInstead of fluorescence, some types of colored molecules produce strong Raman scattering at certain conditions. This effect was called Resonance Raman. Stimulated Raman ScatteringStimulated Raman scattering takes place when an excess of Stokes photons that were previously generated by normal Raman scattering are present or are deliberately added to the excitation beam.
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  • LabRAM XploRA INV是一款倒置显微拉曼光谱仪,专门为分析生物医学或生物样品而设计,其开放性结构适合于特殊的生物样品处理和样品测试。XploRA INV 继承了XploRA结构紧凑的优势,将强大的功能集成到小的空间里。它具有全自动功能,包括自动聚焦、自动曝光、自动自检和自动校准功能,以方便用户使用。 LabRAM XploRA INV 的开放性结构确保了倒置显微镜的所有附件或其它附加装置,如微型操控器、光镊以及细胞研究所需要的特定附件都能自由添加以及使用。 LabRAM XploRA INV系统还可以选择性集成一些特有的模块和技术,例如DuoScan技术进行超快速光谱成像,快速共焦成像(FCI)用于超快速激光扫描成像以快速定位感兴趣样品区域。 产品特点: 1、研究级倒置显微镜 2、全自动切换激发波长 3、自动校准、自检、曝光、聚焦 4、共焦测试 5、超快速拉曼、荧光、PL成像 6、AFM及其他联用可选件和附件: 1、DuoScan:激光扫描系统用于共焦拉曼成像以及CLSO(共焦激光扫描)成像 2、落射荧光:可实现拉曼光谱和落射荧光同区域成像 3、偏振附件 4、高精度三维平台 5、SWIFT 6、冷/热台或细菌培养器 7、光纤探头技术参数: 1、激光器:可内置3个激光器 — 532nm、638nm和785nm(其它波长的激光器可根据需要提供) 2、光栅:4块光栅全自动切换 — 如600gr/mm、1200gr/mm、1800gr/mm、2400gr/mm 3、光谱范围:2500px-1到100000px-1*,范围根据所选激光/光栅不同会有差别 4、激光功率控制:多级激光功率衰减片 5、QC/21CFR:自动校准/自检,GO一键式软件助手
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  • 应用展示:波长范围 400-900 nm 成像效果展示波长范围 900-1700 nm 成像效果展示 一区二区融合成像效果展示恒光智影自主研发的全光谱动物活体成像系统,是一款多色成像系统,可实现全波段(400-1700 nm)荧光,X射线,CT多模态成像。这款产品突破了传统荧光活体成像系统的局限,具有从微观到宏观,由细胞至活体的全视野成像能力,可以实现更深,更快,更清晰的成像效果。在肿瘤研究,动物模型成像,血管成像,纳米药物开发,药物制剂,靶向治疗,及脑科学研究等方向提供新的影像解决方案。 可实现小鼠颅内血管成像,皮下肿瘤成像,大鼠褐色脂肪及血管成像,小鼠肝肺成像,淋巴管与淋巴结成像,肠道系统成像的应用案例。您也可以在恒光智影的网站上找到更多的应用案例和视频:上海恒光智影医疗科技有限公司为您提供恒光智影全光谱动物活体成像系统的参数、价格、型号、原理等信息,恒光智影全光谱动物活体成像系统产地为上海、品牌为恒光智影,型号为MARS,价格为面议,更多相关信息可来电咨询,公司客服电话7*24小时为您服务。
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  • ImSpector系列光谱仪是一种以透射光栅为分光元件的成像光谱仪;通过将这种成像光谱仪附加到CCD相机前,可通过空间扫描获得目标物的影像和连续的光谱信息。ImSpector系列成像光谱仪,采用高集成度的机械设计,配合绝对的影像修正光学设计,真正可实现无光学像差的成像,设计中考虑最佳的光通效率,既满足实验室的使用性能,也能够满足工业在线的长期使用的稳定性需求。ImSpector系列成像光谱仪的入射端采用狭缝设计,并采用独创的全密封式设计,可保证在实际使用中不会因为环境的灰尘等影响光谱仪的内部光学元件,确保仪器的长期正常使用;出射端采用标准的C型接口或U型接口,可与各种标准C型或U型CCD相机直接接配。根据ImSpector-成像光谱仪的功能,有标准版成像光谱仪、增强版成像光谱仪及快速版成像光谱仪等多个版本可供选择;根据所覆盖的光谱范围,有如下分类: 适用光谱范围可选型号UV200-400nmUV4EVIS380-800nmV8, V8ERaman530-630nm, 770-980nmR6E, R10EVNIR400-1000nmV10, V10EVNIR350-1000nmV10MNIR900-1700nmN17ESWIR1000-2500nmN25E 标准版成像光谱仪标准版成像光谱仪具有体积小、重量轻的特点,提供接配1/2&rdquo 和2/3&rdquo CCD相机的版本,影像略有失真。(V8/V10)标准版V8 1/2&rdquo V8 2/3&rdquo V10 1/2&rdquo V10 2/3&rdquo 光谱范围380-800nm380-800nm400-1000nm400-1000nm倒线色散93.6nm/mm66nm/mm139nm/mm93.9nm/mm光谱分辨率8nm6nm11.2nm9nm像面尺寸(空间× 光谱)4.3× 6.6mm6.6× 8.8mm4.3× 6.6mm6.6× 8.8mm空间分辨率30&mu m, rms30&mu m, rms40&mu m, rms40&mu m, rms像差略有像散枕形畸变:30&mu m梯形畸变:20&mu m略有像散枕形畸变:45&mu m梯形畸变:40&mu m略有像散枕形畸变:30&mu m梯形畸变:20&mu m略有像散枕形畸变:45&mu m梯形畸变:40&mu m相对孔径F/2.8F/2.8F/2.8F/2.8狭缝宽度50&mu m(25,80,150可选)50&mu m(25,80,150可选)50&mu m(25,80,150可选)50&mu m(25,80,150可选)狭缝长度9.6mm9.6mm9.8mm9.8mm通光效率50%50%50%50%杂散光0.5%0.5%0.5%0.5%镜头接口C型C型C型C型相机接口C型C型C型C型主体材料铝铝铝铝外形尺寸&Phi 35× 139mm&Phi 35× 139mm&Phi 35× 139mm&Phi 35× 139mm重量300g300g300g300g高光谱成像应用:◆ 实验室研究(农产品表面检测、人体表面检测、包装材料表面检测等)◆ 产品在线检测(如显示器、纺织业、药品、酒类、印刷、染料、太阳能电池片)◆ 生医上的研究(如荧光检测、生物芯片穿透率量测)◆ 建筑古迹上的鉴定、真钞假钞辨识、真画假画的辨别、桥梁盐分的检测◆ 环保上的应用(如垃圾分类、海洋上漏油的分析、塑料材料分类)◆ 农业上的检测(可以观测喷洒农药前后的比较)◆ 航空遥感(如地形、地表、地貌)
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  • ——alpha300 RI 倒置共聚焦拉曼成像光谱仪,从一个新的角度来体验拉曼成像alpha300 Ri将3D化学特性颠倒过来。它的反向光束路径保留了WITec标准的alpha300共焦拉曼成像显微镜的所有功能,同时在通道和操作杆处的引入一个新角度。在使用水溶液和超大样本时,从下面观察和研究样品的特征是一个很大的优势。当使用水溶液和超大样本时,从下面观察和研究样品的能力是一个很大的优势。在生命科学的研究中,alpha300 Ri结构设计所提供的一致性和灵活性特别有利于生物医学和地球科学的研究。产品特点:* 倒置的光束路径允许液体样品放置在样品台的固定平面上,有利于用来快速和可重复的测量* 电动样品台有利于环保的附件和其他附件的安装* 笨重的样品可以放置在alpha300 RI的样品台上,在常规显微镜物镜的转动架进行研究观察* 与其他显微技术兼容,包括:荧光、差分干涉对比度和相位对比度* 具有WITec alpha300 R系列的所有独特特征和已投入使用成熟的成像和光谱功能* 无损成像技术:无需对样品进行固定染色。应用实例:DAPI 标记真核细胞核的拉曼荧光显微图像拉曼荧光显微镜:荧光DAPI染色和拉曼成像香蕉压榨浆的3D拉曼图像挤压香蕉浆样品:淀粉粒(绿色)和细胞壁成分(红色)alpha300 Ri将数据采集的优势与3D共焦拉曼成像的优点结合在一起,获得了一种功能强大且用途广泛的技术,可以在不破坏样品的情况下进行化学性质的鉴定,且无需标记或其他专门样品前制备。技术参数:拉曼常规操作模式:* 拉曼光谱成像:在连续扫描时获得完整的高光谱拉曼成像数据组。* 平面(x-方向)和深度扫描(z方向)和电机定位平台* 图像:三维共聚焦拉曼光谱成像* 单点激光拉曼光谱采集和深度剖析* 光纤耦合 UHTS 光谱仪专为拉曼显微镜和低光强度应用而设计。* 共焦荧光显微镜 显微镜的基本特性:* 带6x物镜回转头研究级倒置光学显微镜* 视频系统:视频CCD摄像机和/或荧光照相机* 为科勒照明提供白光光源* 双筒望远镜* 冷凝器为7个对比(如:brightfield、DIC、相位对比、NAMC等)。* 品架可容纳各种标准样本格式(如显微镜幻灯片,terasakiplates,35/65毫米的圆盘,计数板)* 内滤块旋转式装置* 电动定位平台在X和Y方向移动,移动范围:110毫米x 70毫米拉曼可选/升级操作模式* 适合的激光器和波长(从紫外到IR)范围广泛* 可增加UHTS-光谱仪 (UV, 可见光, 近红外)附件* 超快拉曼成像(每秒1300个光谱)可选* 可升级单光子计数/荧光寿命成像(FLIM)的时间* 自动聚焦WITec 超高光通量UHTS 光谱仪* 基于不同的镜头,激发优化光谱(紫外、可见光或近红外),所有专为拉曼显微镜和应用低光照强度而设计* 光纤耦合超高通量光学仪器(高达70%的传输)* 峰形守恒计算机接口:* 用于仪表和测量控制、数据评估和处理的WITec软件
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  • FluorTron植物叶绿素荧光光谱成像分析系统基于高灵敏度视频光谱成像传感器技术、多通道调制智能LED光源技术及机器视觉叶绿素荧光成像技术,通过叶绿素荧光光谱成像和RedNIR光谱成像,对植物表型特别是光合生理表型进行非接触、非损伤、数字化、可视化成像分析(可客户定制高通量表型分析),用于植物表型分析、植物光合生理研究检测、胁迫与抗性检测与筛选等。主要技术特点:1) 高灵敏度叶绿素荧光动态及光谱成像分析,同时兼备time-resolved和spectral-resolved叶绿素荧光分析功能,全面解析叶绿素荧光动态及其光谱特性,每一个参数都具备光谱指纹2) RedEdge-NIR光谱(红边-近红外反射光)成像分析3) 可同时进行植物形态分析,如长度、宽度、投影面积(相对生物量)、凸包面积、圆度等主要技术指标:1) 叶绿素荧光光谱成像:包括红色波段和远红波段如F668、F740、F686(红色波段峰值)、F704、F720、F727、F739(远红波段峰值)、F760、F772等十几个光谱波段叶绿素荧光 2) 叶绿素荧光动态成像分析参数:Fo、Fm、Fp、Ft、Fs、Fm’、Fv/Fm(QYmax)、∆ F/Fm’(YPSII)、Fv/Fo、NPQ、Rfd、Y(NPQ)、Y(NO)、EXC、Fred/Ffr及其它光谱比值指数等3) 红边-近红外光谱成像:665-960nm,24波段,波段宽(FWHM)10-15nm4) 反射光光谱成像分析参数:NDVI、RDVI、OSAVI、MSAVI、ZTM(红边指数)、NIRv、SR、MSR、EVI、GM、CI、R(红度指数)等5) 成像面积:客户定制6) AMS CMV2000 CMOS成像传感器,分辨率2048x1088像素7) 数据抓取速度:≥100光谱立方/秒8) 形态参数:投影面积(相对生物量)、长度、宽度、长宽比、凸包面积、ROI面积、圆度等常见形态参数9) 像元大小:5.5µ m10) 光学镜头:C口(C-mount)11) 光谱成像功耗:15W12) 激发光:蓝色LED激发光源,可选配多激发光13) 模块式结构,具备可扩展性,可扩展选配高光谱成像、Thermo-RGB红外热成像等14) 侧面多功能高光谱成像(选配):a) 高光谱成像:光谱范围400-1000nm,光谱通道448,帧频330fps,FOV 38度,信噪比600:1,具备MROI功能b) 多光谱成像:可自由选择感兴趣光谱波段,进行高灵敏度多光谱成像c) 空间分辨率:1024 x像素,具体依据植物高度范围而定d) 可成像分析作物生化、生理指标、光利用效率、健康指数、覆盖度、胁迫等近百种参数e) UV-MCF成像分析:可对植物紫外光激发荧光进行成像和光谱分析,包括叶绿素荧光成像及光谱分析、BGF蓝绿荧光成像及光谱分析、相应光谱比值参数、荧光光谱分析、ROI分析等f) SpectrAPP高光谱成像分析软件及FluorVision高光谱荧光成像分析软件,可进行光谱融合、ROI选区分析、面积校准、频率直方图、自动识别不同波段峰值并分析其比值等,近百种参数一键分析 g) 叶面积指数参数/结构指数:NDVI、RDVI、MSR、SAVI、MSAVI、TVI、MCARI、MTVI、EVI等h) 色素指数(包括叶绿素指数、胡萝卜素指数、花青素指数等):VOG1、VOG2、VOG3、GM1、GM2、TCARI、CI、CCCI、TCARI/OSAVI、SRPI、NPQI、NPCI、CTRI、CAR、CRI550、CRI700、CRI550_515、CRI700_515、DCabCxc、DNIRCabCxc、SIPI、PSSRa、PSSRb、PSSRc、PSNDc、ARI等i) 叶黄素循环色素指数:PRI570、PRI515、PRIm1、PRIm2、PRIm3、PRIm4、PRIn、PRI.CI等j) 颜色指数:包括红度指数、绿度指数、兰度指数、比值指数等,可区分100多种颜色波段k) 生理生态指数:包括健康指数HI、衰老指数PSRI、叶绿素荧光指数CUR等l) 光合物候指数:CCI、NIRv、∆ PRI等m) N素指数:DCNI、TCARI1510、MCARI1510、GnyLi、NDNI、NRI1510、N870,1450、N850,1510等(除DCNI外,其它需要选配900-1700nm高光谱)n) 水分指数o) 一阶导数、二阶导数p) 高光谱荧光指数:Fb、Fg、F685、F740、F685/F740(反应植物胁迫)、F735/F700(反应叶绿素含量)、Fb/F685、Fb/F740、Fg/F685、Fg/F740、频率直方图、截面分析等 应用案例——番茄DCMU实验:
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  • 长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发,可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱(Multi-color Fluorescence,MCF),4个波峰的波长为兰光440nm(F440)、绿光520nm(F520)、红光690nm(F690)和远红外740nm(F740)(C.Buschmann等,1998),其中F440和F520统称为BGF(蓝绿荧光),由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出(指示次级代谢产物等),F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光(UV-MCF)可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态如干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等(H.K.Lichtenthaler, 2021)。欧洲PSI公司采用光学滤波器技术,通过紫外线激发并仅使特定波长的激发荧光到达检测器,研制生产了FluorCam多光谱叶绿素荧光成像系列仪器设备,可以对F440、F520、F690、F740四个波长荧光(多光谱荧光)进行二维成像分析,成为目前广泛应用于植物表型分析、植物胁迫检测等领域的重要仪器技术。基于近二十年叶绿素荧光测量与成像技术、UV-MCF多光谱荧光成像分析技术服务与实验研究,值此公司成立二十周年之际,易科泰生态技术公司隆重推出UV-MCF生物荧光高光谱成像系统,其主要技术和功能特点为:1.基于高光谱成像技术的紫外光激发生物荧光光谱成像分析,可同时获得蓝色、绿色、红色及远红波段的荧光光谱成像,不仅可对生物荧光在二维尺度上进行成像分析,还可以获得荧光光谱特征(光谱指纹)并在高光谱维度上(多达几百个)进行荧光光谱分析。下图为银杏叶高光谱荧光成像(自左至右依次为:彩色成像、绿色荧光F533成像、UV-MCF荧光光谱。易科泰Ecolab实验室提供)2.不仅可进行叶绿素荧光及BGF成像分析,还可以得到其高光谱数据立方并进而分析其光谱特性,使生物荧光二维成像分析提升到高光谱成像分析(达几百个光谱纬度)水平3.可对GFP(绿色荧光蛋白)等进行成像分析4.可选配多激发光(绿色及红色激发光)植物荧光光谱成像分析,并进一步测量分析花青素、叶绿素、多酚等指数及氮素指数5.FluorVision高光谱荧光成像分析软件,可进行光谱融合、ROI选区分析、样品剖面荧光分析、频率直方图、自动识别不同波段峰值并分析其比值等6.可同时获取反射光光谱和荧光光谱,并进行高光谱成像分析和高光谱荧光成像分析(下图为花椰菜高光谱成像分析——光谱反射指数,和荧光成像分析)7.可对植物叶片或整株植物)、根系、果实、种子等不同组织部位进行荧光成像分析和反射光高光谱成像分析8.应用于植物表型成像分析、遗传育种、植物胁迫与抗性分析检测、种质资源分析检测、中草药检测鉴定、采后生物学研究、光生物学研究等。UV-MCF不仅适于活体植物成像分析,也适应于干燥后的茎叶、根系等荧光成像分析,如茶叶及中草药品质检测等分析参数:1.BGF蓝绿荧光Fb(或F440)和Fg(或F520)2.叶绿素荧光Fr(或F690)和Ffr(或F740)3.荧光比值,如Fb/Fg、Fb/Fr、Fb/Ffr、Fr/Ffr等,及F730-740/F680-690(反应叶绿素含量及植物长期胁迫等)、F735/F700(可精确反映叶绿素含量)。下表为UV-MCF部分比值参数与植物表型关系(参考H.K.Lichtenthaler, 2021。++指显著提高,+指提高,--指显著降低,-指降低,0为无明显变化)植物表型Fb/FrFb/FfrFr/FfrFb/FgF735/F700杂色叶片/绿色叶片++++++0背面/正面叶片+++++0-黄绿/绿色叶片++++++--第二片/第一片冒芽叶片----++-+干旱胁迫++++00N胁迫+++++0--暴晒+++++--虫害++++0+-敌草隆处理----+0光抑制++++--0野外/大棚植物++++-04.花青素指数(log(Ffr_R/Ffr_R))、黄酮指数(log(Ffr_R/Ffr_UV)及氮素平衡指数NBI——需选配红绿多激发光模块5.高光谱成像分析,可自动分析计算NDVI、NDVI705红边归一化植被指数(对衰老敏感)、VOG1红边指数(对叶绿素浓度、物候变化等敏感)、PRI光化学植被指数、PSRI 植被衰减指数(用于指示冠层胁迫、植物衰老、果实成熟等)、SIPI结构不敏感色素指数(反映冠层胁迫程度、生理胁迫检测等)、CRI1 类胡萝卜素反射指数、ARI1/ ARI2 花青素反射指数、CI 叶绿素指数(红边指数)、WBIR水波段指数(反映水分含量分布)、HI健康指数等植物色素指数和胁迫敏感指数、NPQI归一化脱镁指数(用于早期胁迫检测)、PSSRa(R800/R680)指数等应用案例:植物对敌草隆的荧光响应参考文献:Claus Buschmann and Hartmut K. Lichtenthaler. Principles and characteristics of multi-colour fluorescence imaging of plants. Journal of Plant Physiology, 1998.H.K.Lichtenthaler. Multi-colour fluorescence imaging of photosynthetic activity and plant stress. Photosynthetica, 2021.
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