多荧光成像系统

[ 产品简介 ]多光子成像与全息光刺激系统 DeepVision是神经科学、肿瘤免疫和药物代谢等相关研究领域进行活体显微成像的理想平台。DeepVision核心技术来自于复旦大学脑科学转化研究院李博团队及工程与应用技术研究院董必勤团队的多年研发成果。系统采用了创新的设计理念和先进技术，能够实现双光子、三光子快速深层成像，并可拓展实现单细胞精度的三维双光子全息光遗传操控。[ 产品特点 ]&bull 更大的样品空间：龙门架式结构，可放置猕猴等非人灵长类动物或搭载小动物VR装置，实现小鼠跑球等行为学实验。&bull 更深的成像深度：三光子成像深度最大超过1500 μm，能记录到活体小鼠海马区神经元钙信号。&bull 多脑区同步成像：同一视野下可对多个脑区同步成像或刺激，实现多脑区互作神经环路研究。&bull 同步高精度光遗传刺激：对分布在三维空间中的多个目标神经细胞进行单细胞精度的全息光遗传学操控。&bull 无荧光标记谐波成像：利用二次谐波（SHG）或三次谐波（THG）进行无需荧光标记的谐波信号成像。[ 应用领域 ]&bull 活体脑（鼠/猴等）深层成像、神经元功能钙成像、光遗传实验&bull 各类模式生物（果蝇/斑马鱼/线虫）活体深层成像、神经元功能钙成像&bull 多色样品深层成像、谐波成像&bull 各种类器官和血管深层成像、谐波成像&bull 行为学实验中的神经元功能钙成像 活体小鼠海马区神经元钙信号成像（复旦大学脑科学转化研究院李博实验室）小鼠活体皮层三维双色成像，绿色：小胶质细胞；红色：皮层血管 （（复旦大学脑科学转化研究院李博实验室））脑类器官三光子三次谐波（THG)信号成像，无需荧光标记 （复旦大学脑科学转化研究院李博实验室）在三维空间中的多个目标神经细胞进行单细胞精度的光遗传学操控（复旦大学脑科学转化研究院李博实验室）

Invitrogen™ EVOS™ M5000细胞成像系统为您的科学研究带来简便、自动化细胞成像。一体化设计包含高灵敏单色相机和独特的彩色照明系统，精密的光路系统，直观的成像和操作系统，可帮助生物学家快速获得高质量细胞和组织样品图像，并可对细胞进行定量分析。荧光和彩色明场成像EVOS M5000采用科研级CMOS高清相机，适合各种细胞和组织样品荧光成像，即时获得可供发表的精美图像。独特的彩色照明系统，轻松拍摄免疫组化、H&E等明场样本，图片色彩更保真。Z-stack成像EVOS M5000具有自动聚焦功能，成像系统可以对不同聚焦平面进行Z-Stack扫描；不仅可以拍摄到同一视野下不同层面的图像，还能从每张图像中提取聚焦效果最佳的像素，生成Maximum Projection图像，或进行三维重构分析。适合厚组织样本、神经元及网络研究、3D细胞球等样品成像。活细胞检测配备EVOS台式Onstage Incubator活细胞培养室，精确控制湿度、温度、CO2、O2或N2浓度，模拟生理环境，通过时间序列成像对活细胞生长进行监测。适用于细胞缺氧实验、胚胎发育、细胞迁移等动态观察应用。用Image-iT Hypoxia缺氧指示剂和NucBlue活细胞核染料染A549细胞，暴露于不同氧浓度。左图20% O2条件下，仅呈现蓝色细胞核；右图1% O2条件下，观察到明显红色Hypoxia试剂信号，表明细胞缺氧。成像和分析一体化操作系统只需轻点鼠标，即刻拍摄多通道荧光成像和彩色明场成像。可随时在操作界面上快速切换物镜、荧光通道，调节光强度、曝光时间等参数，选择手动或自动聚焦模式拍摄样本。然后，在分析界面对细胞图像进行定量分析，如细胞计数、细胞活力等应用。Jurkat细胞热处理(60?C处理1小时)后，应用ReadyProbes 细胞活力试剂盒染色，通过EVOS M5000成像，DAPI（蓝色）染所有细胞，NucGreen dead 488（绿色）染死细胞，成像操作软件自动识别细胞并输出每个通道细胞个数，分析细胞活力。

FluorCam开放式多光谱荧光成像系统 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，既可用于叶绿素荧光动态成像分析，又可用于长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量。标准配置（标准版）的最大成像面积为13 x 13 cm ，大型版最大成像面积达20 x 20 cm ，广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性、作物育种、Phenotyping、转基因、稳态荧光成像测量等研究。 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统功能特点： ü 多激发光－多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 成像面积大，标准配置为13x13cm，大型版成像面积达20x20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟兰芥等小型植物）进行实验成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于形态测量分析，结合荧光成像分析参数，可作为植物表型分析（Phenotyping）的有力工具ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统配置规格：1) 标准配置：可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析，成像面积13 x 13cm，系统高度集成、方便使用，具备7位绿波轮及多光谱荧光成像滤波器组、高分辨率CCD镜头、UV紫外光激发多光谱荧光成像功能模块及程序软件等；2) 扩展配置：模块式结构，具备高度可扩展性，不仅可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析，还可进行PAR吸收及NDVI成像分析、GFP绿色荧光蛋白等稳态荧光成像分析（选配），可根据客户需求选配不同的激发光源和滤波器组合，成像面积13 x 13cm；3) 大型配置：具备上述扩展配置的所有功能优势，成像面积达20cm x 20cm，可对整株植物或多株植物进行成像分析。FluorCam开放式多光谱荧光成像系统技术指标： ? 标准版成像面积达13x13cm，大型版成像面积达20x20cm? 标准配置含滤波轮、ChlF.滤波器及高分辨率镜头，测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd，BGF，UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和稳态荧光? 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740? 高分辨率CCD镜头，1392x1040像素，有效像素大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加（binning）以提高灵敏度（2x2，3x3，4x4） ? 自动测量分析功能（无人值守）：可预设1个或2个试验程序，系统可自动测量储存，比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序，夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序? 配置有通用叶绿素荧光成像测量实验程序（protocols）和稳态荧光测量程序（选配），包括Fv/Fm Protocol，Kautsky诱导效应Protocol，荧光淬灭分析 Protocol，稳态荧光测量，客户定制光响应曲线及PAR吸收成像测量等? 4个13x13cmLED光源板（大型版为20x20cm），双色光源（2红橙光＋2蓝光），双色光化学光（Actinic light1和Actinic light2）? 标配Actinic1光强300μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强2000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪4000μmol(photons)/m2.s ? 光源升级：Actinic1光强2000μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强3000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪6000μmol(photons)/m2.s ? 标配测量光为618nm红光，其它波段可选，持续时间10μs - 100μs可调；? 7为滤波轮及滤波器，用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光（GFP荧光需选配相应功能模块）? 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块，用于测量Fo’、PARabs及NDVI? 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等，光强3000μmol(photons)/m2.s，用于气孔功能测量研究? 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG（须选配相应滤波器等）? 如测量其它荧光参数，须选配相应滤波器等（请咨询EcoLab实验室），以下为选配参考： ? FluorCam叶绿素荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre-processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单? Protocol实验程序可自由编辑，也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序? 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等? 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差? 给光制度：静态或动态（窦式）? A/D 转换分辨率：12 位；Bios：固件可升级? 通讯方式：USB 2.0 ? 供电电压：90 – 240 V 下图为植物接种病毒（PMMoV-I为意大利菌株，PMMoV-S为西班牙菌株）后（dpi为接种后的侵染天数）的紫外光激发多光谱荧光成像，其中Abaxial为叶片背面成像，Adaxial为叶片正面成像（引自Monica Pineda等，2008）产地：欧洲

产品介绍：化学发光成像系统可帮助您轻松进行化学发光和荧光成像以及分析免疫印迹。高分辨率高灵敏度制冷CCD相机配合自主研发软件轻松实现自动对焦、自动判定曝光时间、一键成像等功能。帮助您快速生成高品质的图像数据。应用场景：核酸检测各种荧光染料，如Ethidium bromide, SYBRTMGold, SYBRTMGreen, SYBRTMSafe, GelStarTM, Fluorescein, Texas Red标记的DNA/RNA检测；蛋白检测考马斯亮蓝胶，银染胶，以及荧光染料如SyproTMRed, SyproTMOrange, Pro-Q Diamond, Deep Purple&trade 标记胶/膜/芯片等；化学发光检测Western Lightning, ECL, ECL plus, CDP Star, SuperSignal, CSPD, LumiGlo等发光底物；荧光检测用于红绿蓝激发光源进行激发的荧光探针成像；其他应用各种杂交膜，蛋白转印膜，培养皿菌落计数，酶标板，点杂交，蛋白芯片，TLC板等；产品特点：全自动控制：变焦、聚焦等操作，无需手动调整，避免交叉干扰；样品位置多层设计，满足不同种类样品的曝光实验；样品托盘采用模块化设计更换方便，具有紫外/免染样品托盘、白光样品托盘、蓝光样品托盘可选；主机13.3 英寸触摸屏可显示及实时操作功能工作状态；内置红外感应系统，自动识别样品放置状态；LED白光光源，能量 0-100%可调，用于照明以及考马斯亮蓝或银染色的蛋白胶成像分析；采用高速USB3.0接口完成对相机、光源、紫外台等所有硬件的控制、数字图像采集；一体式触摸屏操作系统。软件功能：制冷CCD相机温度实时显示；数据库成像图片管理系统；软件定量测算功能；一键曝光的功能；多程序曝光：单/多帧曝光、连续曝光、叠加曝光；多屏同框对比；自动叠加Marker；技术参数：一体式化学发光成像系统一体式凝胶化学发光成像系统一体式多色荧光成像显影系统型号EPC E660EPC E760EPC E860相机进口高分辨率高灵敏度制冷CCD相机传感器大小：12.49×9.99mm像素尺寸：≥4.54μm×4.54μm读出燥声: 5.5e- RMS at 12 MHz暗电流: 0.0005 e-/pixel/sec. @ -20º C暗电流: 0.0005 e-/pixel/sec. @ -40º C动态范围: ﹥4.6OD物理分辨率：605万像素，2750*2200物理分辨率：890万像素，3354*2658像素密度： 16bit(真实65536灰阶)量子效率： 78%制冷：三级半导体热电式(TEC)致冷, 常温以下-65℃单一USB3.0线完成图像传输及控制镜头4/3英寸大靶面25mm F0.8镜头软件控制实现自动聚焦与光圈控制操作暗箱全封闭操作暗箱全开式门，三层平移式样品托盘, 满足用户的多类型样品需求辅助光源顶照式LED矩阵光源LED反射灯*2LED光可调节操作台荧光光源：302nm、470nm、530nm、630nm、660nm、770nm可选成像面积：200*180成像面积220*250紫外光源：302nm紫外激发光源：200*200滤镜系统标配6位置自动滤镜系统标配590nm，460nm、525nm、690nm、715nm、810nm超多层镀膜滤镜可选样品台化学发光样品台：三层化学发光载样台，可直接进行加样，无需拆卸下来，满足客户不同要求紫外样品台： 高透光率，自带冷风系统，最大显影面积：220×270mm蓝光样品台：亮度可调 最大显影面积220×270nm可见光样品台：高亮度LED白光透射，最大显影面积：220×270mm操作系统屏幕尺寸13.3寸存储512G系统win 10WIFI模块分辨率 1920*1080

FluorCam移动式多光谱荧光成像系统是国际知名FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，可用于叶绿素荧光动态成像分析、多激发光光合效率成像分析、紫外光激发多光谱荧光成像分析、PAR吸收与NDVI（植物光谱反射指数）成像分析、GFP/YFP稳态荧光成像等，全面、非接触、高灵敏度反映植物生理生态、胁迫生理与抗性、光合效率等，广泛应用于植物表型成像分析、植物胁迫与抗性检测、植物病害检测研究、遗传育种高通量筛选、植物生理生态学、植物初级代谢与刺激代谢研究、污染生态学研究检测/生物检测等。 主要功能特点：ü 客户定制四轮移动平台、模块式结构，便于温室内或野外移动使用、原位测量监测、系统扩展等ü 叶绿素荧光成像分析：植物光合效率、荧光淬灭热散失、光响应曲线、植物胁迫与抗性等生理功能测量检测ü 多光谱荧光成像分析：反映多酚与黄酮类等次级代谢产物动态变化、叶绿素动态变化、植物衰老、植物病虫害胁迫及非生物胁迫等ü GFP/YFP稳态荧光成像（选配）：遗传育种、基因标记ü NDVI成像分析（选配）：N素营养状态、植物胁迫等ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 多激发光、多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü 可选配13x13cm或大型20x20cm不同规格型号LED光源版，以实现不同大小均一的植物多光谱荧光成像面积，可对叶片、植物果实器官包括植物根系或整株植物甚至多株植物进行实验成像分析 ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳），以便于野外长时间（如几个小时）自动监测ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 可选配RGB成像、红外热成像及高光谱成像，以便与叶绿素荧光成像融合分析，全面研究分析形态结构、颜色、气孔导度、植物光谱特征、WUE（水分利用效率）、CWSI（水分胁迫指数）、植物生理生化等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标：1. 多光谱荧光成像1) 标配4+1智能LED光源系统，包括1对红色LED光源板、1对冷白色LED光源板、1个顶部紫外光源，可选配其它波段光源、多光谱光源2) 标准版LED光源板面积13x13cm，大型版LED光源板面积达20x20cm3) 脉冲调制测量光源，波段617nm，持续时间10μs - 100μs可调，可深入叶片栅栏组织，可选配蓝色等其它颜色测量光 4) 双波段持续光化学光：标配617nm橙色光化学光和6500K白色光化学光，300-2,000 μmol(photons)/m2.s光强可调，可选配3000 μmol(photons)/m2.s光强，还可选配蓝色、绿色等其它颜色光化学光5) 6500K白色饱和光脉冲，最大强度4000 μmol(photons)/m2.s，可选配强度达6000 μmol(photons)/m2.s，还可选配蓝色饱和光脉冲或120000μmol(photons)/m2.s单周转光脉冲6) Protocols（实验程序）：包括（根据选配配置而定）：a) Fv/Fmb) Kautsky 诱导效应c) 荧光淬灭分析d) 光响应曲线分析e) 静态荧光成像分析（选配）f) 多光谱荧光成像分析g) PARabs/NDVI成像分析（选配）7) 测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd，BGF，UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和多光谱荧光参数8) 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740及相应比率成像分析参数（下左图为西葫芦感染软腐病菌（Dickeya dadantii）RGB彩色成像、多光谱荧光成像（引自Maria L. Perez-Bueno等，2016）；右图为植物接种病毒（PMMoV-I为意大利菌株，PMMoV-S为西班牙菌株）后（dpi为接种后的侵染天数）的紫外光激发多光谱荧光成像，其中Abaxial为叶片背面成像，Adaxial为叶片正面成像（引自Monica Pineda等，2008） 9) 高分辨率CCD镜头，1392x1040像素，20fps，有效像素大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加（binning）以提高灵敏度（2x2，3x3，4x4）10) 自动测量分析功能（无人值守）：可预设1个或2个试验程序，系统可自动测量储存，比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序，夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序11) 7位滤波轮及滤波器，用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光（GFP荧光需选配相应功能模块），标准配置含7位滤波轮、ChlF.滤波器、MCF多光谱荧光滤波器等12) 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块，用于测量Fo’、PARabs及NDVI13) 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等，光强3000μmol(photons)/m2.s，用于气孔功能测量研究14) 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG（须选配相应滤波器等）15) 如测量其它荧光参数，须选配相应滤波器等（请咨询EcoLab实验室），以下为选配参考： 16) FluorCam多光谱荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre-processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单17) Protocol实验程序可自由编辑，也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序18) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19) 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差20) 给光制度：静态或动态（窦式）21) 通讯方式：USB 2.022) 供电电压：90 – 240 V （野外需另配轻便型发电机）2. 红外热成像单元：1) 非制冷红外焦平面检测器（uncooled VOx microbolometer），已经过欧盟标注校准，可直接测量温度，包括每个像素点的温度等2) 分辨率：640x512像素3) 光谱范围：7.5～13.5μm4) 温度测量范围：-25～150°C?5) 灵敏度：≤0.03℃（30mK）@ 30℃6) 帧频：标配9Hz或30Hz（须提前申请选配）7) 数据传输：USB-3或千兆以太网8) 19mm光学镜头，视野32℃x26℃，可选配13mm镜头或35mm镜头9) 具备视频模式和快照模式10) 具备14种调色板供任意选择，可多样化设置热成像假彩色11) 具备差值功能，可内查图像形成平滑影像以避免像素化12) 可通过软件设置大气温度、湿度、距离等参数13) 具备等温模式功能，包括以上、一下、之间、及以下与以上四种等温模式14) 结果在线报告功能，自动显示热影像、时距图及影像参数如发射率、反射温度、大气温度、湿度、外部光距离、传播等15) 影像处理软件具备ROI选区功能，包括点、线、折线、矩形等，并可进行分区处理，每个ROI即时显示最小温度、最高温度、平均温度等16) 热扫描功能及热剖面功能：可在线可视化显示线型ROI温度值、温度剖面图17) 所有ROI工具的温度值均可显示在时距图中18) 防护级：IP6519) 工作温度：-15°C～+50°C 20) 支持GPS信息，可将位置信息显示在谷歌地图上3. RGB成像分析单元：科研级RGB成像镜头，分辨率2592x1944像素，信噪比54dB，1-40x放大，最小视野6.1x7.9mm（40x），最大视野20.8x25.4 产地：欧洲

FKM（Fluorescence Kinetic Microscope）多光谱荧光动态显微成像系统是目前功能最为强大全面的植物显微荧光研究仪器，是基于FluorCam叶绿素荧光成像技术的显微成像定制系统。它由包含可扩展部件的增强显微镜、高分辨率CCD相机、激发光源组、光谱仪、控温模块以及相应的控制单元和专用的工作站与分析软件组成。它不仅可以进行微藻、单个细胞、单个叶绿体乃至基粒-基质类囊体片段进行Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等各种叶绿素荧光及MCF多光谱荧光（multicolor fluorescence）成像分析；还能通过激发光源组进行进行任意荧光激发和荧光释放波段的测量，从而进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料以及藻青蛋白、藻红蛋白、藻胆素等藻类特有荧光色素的成像分析；更可以利用光谱仪对各种荧光进行光谱分析，区分各发色团（例如PSI和PSII及各种捕光色素复合体等）并进行深入分析。 FKM多光谱荧光动态显微成像系统使荧光成像技术真正成为光合作用机理研究的探针，使科研工作者在藻类和高等植物细胞与亚细胞层次深入理解光合作用过程及该过程中发生的各种变化，为直接研究叶绿体中光合系统的工作机理提供了最为有力的工具。FKM作为藻类/植物表型和基因型显微研究的双重利器，得到了学界的广泛认可并取得了大量的科研成果。功能特点• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序，如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等，可获得70余项参数。• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜，可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光。• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等，通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光，能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图。• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量，提高实验精度，也可以进行高温/低温胁迫研究。 应用领域• 微藻、大型藻类/高等植物的单个细胞、单个叶绿体、基粒-基质类囊体片段等的显微结构植物光合生理研究• 藻类/植物逆境研究• 生物和非生物胁迫的研究• 藻类/植物抗胁迫能力及易感性研究• 突变体筛选及光合机理研究• 藻类长势与产量评估• 藻类特有色素与光合作用关系• 藻类/植物——微生物交互作用研究• 藻类/植物——原生动物交互作用研究• 基因工程与分子生物学研究测量样品• 植物活体切片• 植物表皮• 植物细胞• 绿藻、蓝藻等各种单细胞和多细胞微藻• 叶绿体提取液• 类囊体提取液• 含有叶绿体的原生动物工作原理 FKM分析过程中，通过连接在显微镜上的激发光源组和内置在6位滤波轮中的一系列滤波器、分光镜激发植物样品中各种发色团的动态荧光。样品激发出的荧光经显微镜放大后进行荧光光谱分析和荧光动力学成像分析。SM 9000光谱仪通过光纤与显微镜连接，以进行激发荧光光谱分析。安装在显微镜顶部的高分辨率CCD相机则用于荧光动力学成像分析。全部工作过程通过工作站和控制单元按照预先设定好的程序自动进行。测量过程中，可通过温控模块调控藻类、植物细胞等实验样品的温度。蠕动泵可以实现培养藻类的连续测量。仪器组成1. 增强显微镜 2. 高分辨率CCD相机 3. 激发光源组 4. SM 9000光谱仪 5. 主控制单元 6. 工作站及软件 7. 控温模块的控制单元8. 6位滤波轮技术参数• 测量参数?Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' , Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像?OJIP快速荧光曲线：测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi???_Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）等（选配）?GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白和荧光染料的成像分析（选配）?QA再氧化动力学曲线（选配）?Spectrum荧光光谱图（选配）• 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑?Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等?Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数?荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数，2套制式程序?光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数?Dyes & FPs稳态荧光成像测量?OJIP快速荧光动力学分析：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数（选配）?QA再氧化动力学（选配）?Spectrum荧光光谱分析（选配）• 荧光激发光源：红外光、红光、橙光、蓝光、绿光、白光、紫外光等可选，根据客户要求定制光源组• 透射光源（选配）：白光、远红光?高分辨率TOMI-2 CCD传感器：?逐行扫描CCD?最高图像分辨率：1360×1024像素?时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧?A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）?像元尺寸：6.45μm×6.45μm?运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量?通讯模式：千兆以太网• 显微镜：Axio Imager M2，可选配Axio Scope A1简洁版或Axio Imager Z2高级版?物镜转盘：研究级7孔自动物镜转盘?透射光快门?聚光器 Achr Apl 0.9 H?6位反光镜转盘?双目镜筒(100:0/30:70/0:100)?机械载物台：75×50mm，硬膜阳极氧化表面?样品架：76×26mm• 物镜：10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜（可选）• 6位滤波轮：叶绿素荧光、GFP/SYTOX、DAPI/CTC等• SM9000光谱仪?入射狭缝：70μm×1400μm ?光栅：平场型校正?光谱范围：200-980nm?波长绝对精确度：0.5nm?再现性：0.1nm?温度漂移：0.01nm/K• 温度调控模块：温度调节范围 5℃-70℃，精确度0.1℃• 蠕动泵（选配）：流速10-5600μl/min，用于藻类连续培养测量• FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单 • 客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序• 自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）• 快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片• 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）• 数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差• 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等叶绿素荧光与光谱分析结果典型应用：产地：捷克参考文献：1.Küpper H, et al. 2019. Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging. Plant Physiology 179: 369-3812.Konert G, et al. 2019. Protein arrangement factor: a new photosynthetic parameter characterizing the organization of thylakoid membrane proteins. Physiologia Plantarum 166: 264-277.3.Exposito-Rodriguez M, et al. 2017. Photosynthesis-dependent H2O2 transfer from chloroplasts to nuclei provides a high-light signalling mechanism. Nature Communications, 8: 494.Higo S, et al. 2017. Application of a pulse-amplitude-modulation (PAM) fluorometer reveals its usefulness and robustness in the prediction of Karenia mikimotoi blooms: A case study in Sasebo Bay, Nagasaki, Japan. Harmful Algae, 61:63-705.Jacobs M, et al. 2016. Photonic multilayer structure of Begonia chloroplasts enhances photosynthetic efficiency. Nature Plants, doi:10.1038/nplants.2016.1626.Andresen E, et al. 2016. Cadmium toxicity investigated at the physiological and biophysical levels under environmentally relevant conditions using the aquatic model plant Ceratophyllum demersum. New Phytol., 210(4):1244-12587.Thomas G, et al. 2016. Deficiency and toxicity of nanomolar copper in low irradiance—A physiological and metalloproteomic study in the aquatic plant Ceratophyllum demersum. Aquatic Toxicology, 177:226-2368.Fujise L, et al. 2014. Moderate Thermal Stress Causes Active and Immediate Expulsion of Photosynthetically Damaged Zooxanthellae (Symbiodinium) from Corals. PLOS ONE, DOI:10.1371/journal.pone.01143219.Gorecka M, et al. 2014. Abscisic acid signalling determines susceptibility of bundle sheath cells to photoinhibition in high light-exposed Arabidopsis leaves. Philosophical Transactions of the Royal Society B, 369(1640), DOI: 10.1098/rstb.2013.023410.Mishra S, et al. 2014. A different sequence of events than previously reported leads to arsenic-induced damage in Ceratophyllum demersum L. Metallomics, 6: 444-45411.Ferimazova N, et al. 2013. Regulation of photosynthesis during heterocyst differentiation in Anabaena sp. strain PCC 7120 investigated in vivo at single-cell level by chlorophyll fluorescence kinetic microscopy. Photosynthesis Research, 116(1): 79-9112.Andresen E, et al. 2013. Effects of Cd & Ni toxicity to Ceratophyllum demersum under environmentally relevant conditions in soft & hard water including a German lake. Aquatic Toxicology. 142–143, 15: 387–402

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 上左图为上世纪90年代Nedbal等设计的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Photosynthesis Research, 66: 3-12, 2000），右图为柠檬彩色图及叶绿素荧光成像图（Photosynthetica, 38: 571-579, 2000）FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端植物活体成像技术设备，高灵敏度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内（还可根据需求选配第五个光源板置于顶部），植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过USB与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点: 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，成像面积达13x13cm 是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等20多个参数 是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100μs内可达到120,000 μmol(photons)/m2.s 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、2个叶绿素荧光淬灭分析（NPQ）protocolas（2套定制给光方案）、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析（选配）、OJIP快速荧光动力学分析（选配）及GFP绿色荧光蛋白成像（选配）等 可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）；还可预设两个实验程序（Protocols）；比如使系统白天自动运行Fv/Fm，夜间自动运行NPQ分析等 具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益左图A为100％红色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm，左图B为30%蓝色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm；右上图为光合作用强度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系，右下图为气孔导度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系 可运行叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、GFP稳态荧光成像 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 可选配高光谱成像单元和红外热成像单元，植物性状数字化、可视化，全面测量分析植物形态、光合效率、生化性状、气孔导度、胁迫与抗性等 可选配大型版移动式植物成像分析系统，成像面积35x35cm，可运行叶绿素荧光成像、红外热成像及RGB成像分析 最新应用案例：Hendrik Kupper与Zuzana Benedikty等，在2019年2月出版的《Plant Physiology》，发表了Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging，该研究首次采用超高速成像传感器FluorCam台式植物叶绿素荧光成像系统与FKM多光谱显微荧光成像系统，成像速度可达4000fps@640x512，QA再氧化叶绿素荧光动力学成像测量单脉冲饱和光闪达150,000 μmol/m2.s1。 附：OJIP快速荧光动力学测定分析参数包括： a) Fo：初始荧光或称最小荧光，50μs时的荧光b) Fj：2ms时的荧光c) Fi：60ms时的荧光d) P或Fm：最大荧光e) Vj＝(Fj-Fo)/(Fm-Fo):j阶荧光相对变量f) Vi＝(Fi-Fo)/(Fm-Fo)：i阶荧光相对变量g) Mo＝TRo/RC-ETo/RC=4(F300-Fo)/(Fm-Fo)：荧光瞬变初始斜率，或称OJIP曲线初始斜率h) Area：OJIP曲线与Fm之间的面积，可称为补偿面积（complementary area）为了对不同样品进行比较，Area需要标准化为：Sm＝Area/(Fm-Fo)，Sm是对关闭所有光反应中心所需能量的量度i) Fix Area：OJIP固定面积，OJIP曲线40微妙时的F值至1秒时的F值下面的面积j) Sm：标准化OJIP补偿面积，反映QA还原多次周转k) Ss＝Vj/Mo：标准化OJ相补偿面积，反映单周转QA还原l) N=Sm/Ss=Sm Mo(1/Vj)：OJIP QA还原周转数量（between 0 and tFm）m) Phi_Po＝QY＝φpo＝TRo/ABS＝Fv/Fm，最大光量子产量，吸收光量子通量反应中心初始捕获比率n) Psi_o＝ψo＝ETo/TRo＝1-Vj，捕获光量子通量中电子传递光量子通量比率o) Phi_Eo＝φEo=ETo/ABS=(1-(Fo/Fm))(1-Vj)，吸收光量子通量中电子传递光量子通量比率，或称电子传递光量子产量（quantum yield of electron transport at t=0）p) Phi_Do＝φDo＝1-φpo＝Fo/Fm，能量散失光量子产量（t＝0）q) Phi_pav＝φpav＝φpo（Sm/tFm），平均光量子产量，tFm为达到Fm所需时间（ms）r) ABS/RC＝Mo(1/Vj)(1/QY)：为单位反应中心的吸收光量子通量，这儿的反应中心仅指the active (QA to QA– reducing) centers（下同）。QY=TRo/ABS=Fv/Fms) TRo/RC＝Mo(1/Vj)：单位反应中心初始（或称最大）捕获光量子通量（导致QA的还原，也即反应中心关闭比率B的增加）t) ETo/RC＝Mo(1/Vj)（1-Vj）：单位反应中心初始电子传递光量子通量u) DIo/RC＝（ABS/RC）－（TRo/RC）：单位反应中心能量散失v) ABS/CS：单位样品截面的吸收光量子通量，CS stands for the excited cross-section of the tested sample（下同）。ABS/CSo＝Fo，ABS/CSm＝Fm，TRo/CSx＝QY(ABS/CSx)——单位截面捕获能量或光量子通量w) TRo/CSo＝QY.Fo；ETo/CSo＝φEo.Fo ＝QY.(1-Vj).Fox) RC/CSx：反应中心密度，RC / CS0 (active RCs per excited cross-section)y) PIABS＝(RC/ABS)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数z) PIcs＝(RC/CSx)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于截面的“性能”指数或称生存指数

FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的最新高级扩展产品。此系统既可用于PAM脉冲调制式叶绿素荧光动态成像分析，又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配滤波器组对GFP、RFP、YFP、SYBR Green等荧光蛋白和荧光染料进行稳态荧光成像测量。测量对象包括叶片、果实、花朵、整株拟南芥或其他小型植株、苔藓、微藻、大型藻类乃至特定的动物样品。 应用领域：§ 植物光合生理生态§ 植物逆境胁迫生理与易感性§ 植物初级代谢与次级代谢§ 植物表型组学成像分析（Phenotyping）§ 作物遗传育种与抗性筛选§ 种子萌发与活力监测§ 转基因植株筛选 功能特点：§ 多激发光-多光谱荧光成像技术：通过两种以上不同波长的光源激发植物样品中不同的发色团发出荧光并进行成像检测，即为多激发光多光谱荧光成像技术。植物的多光谱荧光主要包括叶绿素荧光、UV紫外光激发多光谱荧光和荧光蛋白荧光§ FluorCam-Pro无需更换任何配件即可同步实现多激发光-多光谱荧光成像功能：s PAM脉冲调制式叶绿素荧光成像s 紫外激发F440、F520、F690、F740多光谱荧光成像s GFP、RFP、YFP等常用荧光蛋白成像§ 可根据用户需要定制荧光蛋白或荧光染料成像，如BFP、CFP、SYBR Green、DAPI等§ 可对黄酮、花青素含量进行定量测量§ 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）§ 测量样品为各种活体植物样品，包括叶片、花卉、果实、整株拟南芥或其他小型植物、微藻（包括液滴、多孔板、固体培养基）及大型藻类等 技术指标：§ 一体式设计，自带暗适应箱体§ 最佳成像面积：20×20cm§ 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数；紫外激发多光谱荧光成像参数：F440、F520、F690、F740；荧光蛋白荧光强度参数Ft；每项参数均可显示对应二维荧光彩色图像。并可测量计算黄酮醇指数Flavonol Index,、花青素指数Anthocyanin Index。 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑1) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等叶绿素荧光参数2) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等叶绿素荧光参数3) Quenching荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个叶绿素荧光参数4) Light Curve光响应曲线：不同光强梯度条件下Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等叶绿素荧光参数5) MultiColor紫外激发多光谱荧光成像（选配）6) FPs荧光蛋白成像：GFP、YFP、RFP、BFP等（选配） § 荧光激发光源组：全LED光源，包括620nm红光、5700K冷白光、735nm远红光、365nm紫外光，445nm品蓝光，470nm蓝光，505nm青光，530nm绿光，590nm琥珀色光等§ 高分辨率CCD相机1) 图像分辨率：1360×1024像素2) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧§ 具备7位滤波轮，标配叶绿素荧光滤波器，根据用户需要可定制紫外激发多光谱荧光和GFP、RFP、YFP、BFP等荧光蛋白专用滤波器§ FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单§ 自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）§ 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000） § 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等应用案例：1. 抗病毒基因研究：叶绿素荧光成像与GFP成像联合分析法国国家农业科学研究院一直致力于马铃薯y病毒组的抗病基因研究，通过不同基因编辑处理方法，验证抗病毒分子机制。相关研究中，研究人员利用FluorCam多光谱荧光成像系统的GFP荧光蛋白成像功能，定量分析感染面积与病毒积累量，从而直观地反映了不同基因功能对拟南芥病毒抗性的影响。同时，叶绿素荧光成像则反映病毒对光合系统的损伤，同步提供植物的光合表型信息。 参考文献：§ Zafirov D, et al. 2021. When a knockout is an Achilles' heel: Resistance to one potyvirus species triggers hypersusceptibility to another one in Arabidopsis thaliana. Mol Plant Pathol. 22: 334–347§ Bastet A, et al. 2019. Mimicking natural polymorphism in eIF4E by CRISPR‐Cas9 base editing is associated with resistance to potyviruses. Plant Biotechnology Journal 17: 1736–1750§ Bastet A, et al. 2018. Trans-species synthetic gene design allows resistance pyramiding and broad-spectrum engineering of virus resistance in plants. Plant Biotechnology Journal: 1–13 2. 不同颜色凌霄叶片的叶绿素荧光与紫外激发多光谱荧光成像分析（易科泰EcoTech实验室） 产地：欧洲

FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台 FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上，既可用于叶绿素荧光动态成像分析，又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量，成像面积35×35cm，是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域：实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析（Phenotyping）植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点：ü 多激发光－多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、滤波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和蓝光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü UV紫外光激发多光谱荧光成像： UV紫外光对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为蓝光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统，成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调，以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收／NDVI成像分析模块，对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等 技术指标： 1) 大型叶绿素荧光成像平台，成像面积达35×35cm2) 高分辨率CCD相机l 图像分辨率：1360×1024像素l 时间分辨率：在最 高图像分辨率下可达每秒20帧l A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）l 像元尺寸：6.45μm×6.45μm l 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量l 通讯模式：千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源（可选配蓝色或其它波长的LED光源），具备735nm红外光源，LED光源板面积750×750mm4) PAR吸收／NDVI成像模块：680nm红色光源、735nm红外光源板及相应滤波器和功能程序模块（选配）5) 多光谱荧光成像模块：UV紫外光源及相应滤波器和功能程序模块（选配）6) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器7) 成像平台高度可调，调整高度范围350-1350mm8) 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ，Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，qL，QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数；R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数（选配）；包括F440、F520、F690、F740等UV激发多光谱荧光参数（选配）；荧光强度Ft等GFP绿色荧光蛋白成像参数（选配）。每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像9) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔，系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名10) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等，可对Protocols进行编辑，实时在线数据分析和二维显示11) 客户定制实验程序协议（protocols），可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序12) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?13) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等14) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI)，，成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等15) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线，可进行“选区操作”（参见上条）或“分级操作”（图像阈值分割功能）；选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区（ROI），还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区；分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”，通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理，可设置不同的阈值进行图像阈值分割16) 结果展示报告功能：可展示所有选区（ROI）的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等，可对原数据（kinetic）、叶绿素荧光参数等导出到excel表，还可对每个参数成像图存储成位图17) 可自动测量多个样品（无限制）荧光动力学曲线及相应参数，程序软件可自动识别多个植物样品（数量不受限制）或多个区域（数量不受限制），也可手动选区（数量不受限制）18) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 19) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm，分辨率640x512，1－14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C，灵敏度30mK（0.03°C），传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换，标配9mm光学镜头、69°视野， 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol：一根电缆支持18通道；视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用，在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最小峰值温度等f) 32GB内存，可存储80000张图片或200分钟视频，图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片，图片采集间隔1－60s可调，带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等 产地：欧洲

多色荧光及化学发光成像系统，搭载更高效率相机及相应硬件配置，成像速度更快，画质更好。并且机箱面板配有一键拍摄按扭，无需软件操作，即可进行一键拍摄，得到优质的曝光图片。产品特点： 1、600万高分辨率相机和高灵敏度镜头,保证高质量的成像效果。2、机身采用抗冲击性、耐热性、耐低温材料，抽屉式开门设计，节省空间，简化操作步骤，并且保证了密闭性。3、一键拍摄,无需摸索曝光时间自动进行预估、拍摄。技术参数： 体积小巧，节省实验空间，整机尺寸仅340*375*600(L×W×H)；摄像头：原装进口高分辨低照度摄像头相机：深度制冷科研级CCD有效像素：2688×2200(600万)像素合并：1×1，2×2，4×4，6×6，8×8，12×12，16×16像素密度：16bit(0～65536灰阶）像素点大小：4.54×4.54μm感光效率：75%动态范围：4.6个数量级暗电流:0.0005e-/pixel/sec.@-40º C制冷方式：半导体制冷制冷温度：可低于环境温度75℃，软件界面实时显示镜头:标配F0.8高清大光圈高通透定焦镜头落射白光：两侧LED白光样品台：抽屉内嵌可自由取放特制发光底板，便于放膜、加光发液，方便操作拍摄面积：16x16cm电脑控制：高度程序化，集成软件系统，对设备进行控制及参数设置定时关灯：1-60分钟无操作关闭光源结构：密闭无光泄露，微处理器控制暗箱智能软件： 1、软件两种登陆模式，免密登陆和多用户密码登陆。可设置权限，便于操作管理。2、图像拍摄：光源/镜头/相机控制，自动/手动曝光、自动/手动对焦、图像拍摄、图像管理3、图像处理：调整亮度、对比度、Gamma、图像旋转、图像反色、图像裁切、图像缩放,图像染色、图像合并4、两种拍摄模式：单张、多张，满足不同用户的使用习惯，可选择是否拍摄Marker，可更改图像显示格式；多张模式设有自动（5连拍、10连拍）、手动多张拍摄（不限张数）、信号累积模式拍摄。5、一键式成像，无需调整曝光参数，简化成像操作；可框选特定区域，对选定区域进行自动预估、曝光，提升自动曝光精准度。

FC 00-C/1010GFP封闭式多光谱植物荧光成像系统是一个高度创新的，世界范围内广泛应用的多光谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现测量样品的暗适应。它由一个CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为13× 13 cm。适用对象为小植物，离体叶片，海藻稀释物等。系统结构紧凑且易于实现样品的暗适应，功能强大的软件可以控制整个系统，获取数据和处理图像。应用领域植物光合特性和代谢紊乱筛选生物与非生物胁迫检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究基因标记检测转基因表达研究功能特点：实验过程和测量参数荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它.实验过程和测量参数稳态荧光测定GFP，EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它荧光蛋白及荧光素荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它典型样品叶片，整株植物，小树苗，果实，蔬菜，苔藓，地衣，藻青菌，绿藻，各种转基因植物，适用于不同植物样品的支架，培养皿与多孔板蒙版 操作软件与实验结果内置常用测量程序用户可自定义实验程序，界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持，便于批量处理样品数据可导出为excelWindows 2000, XP, Vista，Win7兼容稳态荧光测定荧光蛋白和荧光素家族具有巨大的光谱多样性，它们通常具有不同的激发光谱和释放光谱。封闭式荧光成像系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮，以及一系列的滤光片组，可以来对GFP，EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它波段荧光蛋白进行检测和成像。高分辨率相机1392 x 1040 像素 可选 640 x 480 像素或512 x 512 像素；低像素模式适用于快速荧光过程的捕获；高像素模式适用于叶绿素荧光和需要长时间曝光的弱稳态荧光测量或者需要高空间分辨率的情景（显微视野）7位滤波轮多色激发光源wtGFP 主激发峰 395 - 397 nm，发射峰 504 nm. 滤波器建议设置: 激发光420 nm短通，532/28 或 530/25 nm检测.EGFP 主激发峰中心波长488 nm，发射峰 507 - 509 nm. 滤波器建议设置:激发光480 nm短通，532/28 或 530/25 nm检测.BFP 主激发峰 384 nm，发射峰近 448 nm.滤波器建议设置: 激发光400 nm短通，469/35 nm检测. 配置型号指南：标准版1&mdash &mdash 超高速成像版：512 x 512 像素，50幅/秒超快CCD，适用于荧光参数的精细再现标准版2&mdash &mdash 超高分辨率版：1392 x 1040 像素分辨率，适用于高空间分辨率的应用，如气孔动态标准版3&mdash &mdash PAR吸收修正版：可测植物真实F0&rsquo 与PAR吸收系数，用于修正荧光参数和ETR 标准版4&mdash &mdash 功能增强版：超强STF，强度可达120,000 µ mol(photons)/m² .s，可实现100µ s脉冲，用于QA瞬间饱和与再氧化研究；可同时进行荧光蛋白与荧光素成像，包括GFP、wGFP、eGFP、YFP、BFP、CY3, CY5等，用于转基因研究。 1.FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数成像进行动力学解析，典型的研究区域为3.5× 3.5 cm。在所有应用中，系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像，光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了最常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言，熟练的研究人员可以设计自己的闪光序列和测量过程。 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统是一个轻巧的便携系统，尤其适用于野外实验。系统可以通过肩背便携包中的密封铅酸电池在野外进行供电，稳固轻巧的三脚架使得野外测量变得简单易行。 2.FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统专门设计来与光合仪的气体交换叶室安装在一起使用，是一个高度创新的，世界范围内广泛应用的多广谱动力学荧光成像系统。它具备其他荧光成像系统的所有特征。这个系统高度紧凑，且可以实现测量样品的暗适应。叶绿素荧光测量与成像可以与气体交换测量同步进行，获取更丰富准确的信息。而且精确的样品所处环境控制功能，例如影响光合和蒸腾速率的温度、相对湿度和氧气和CO2的分压，远优于普通叶绿素荧光成像系统。系统可与目前市场上绝大多数厂家的光合仪联用，如Licor，ADC，PPS等。3. FC800-O开放式植物荧光成像系统 FC 800-O开放式荧光成像系统是一款高度模块化的设备，具体配置可以定制。其LED发光板和饱和光源可以任意角度和到样品的距离排列，也可以通过调整CCD的位置来增加精度。标准配置的最大成像面积为13× 13 cm ，通过选择光源的尺寸，可调整最大成像面积为20× 20 cm 。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。4. FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统高度紧凑，主要由一个扫描控制系统，CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。测量区域为200× 100 cm。该系统适用于实验室或样地中样带植株的原位快速测量，尤其适用于监测多因子实验中植物对各种处理的响应。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。尤其适用于高通量筛查和监测胁迫梯度对植物影响；适合户外与温室使用；结构坚固耐用，光源与相机位置可移动；无需取下或者移动样品；标准成像尺寸为20× 200 cm，其它尺寸可调整。5. FC 900-R野外移动式植物叶绿素荧光成像系统 FC 900-R野外移动式植物荧光成像系统主要由一个可移动支架，CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为20× 20 cm，适用于野外较大植物（如大豆、小麦）的原位无损测量。成像高度20 到 150 cm可调，可配真彩镜头。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。适用于野外大尺寸扫描测量面积20× 20 cm.移动系统极其坚固稳定可在粗糙地表轻松移动配置样品暗适应箱从 20 to 150 cm高度可调无需样品分离与破坏6. FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统 FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现对测量样品的3D成像，它由一个CCD相机，LED发光板，拱形支架，高性能PC和兼容软件包组成。FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统通过自动程序获取样品台上整株植物的3D图像，适用于对植物进行3D空间异质性研究以及荧光蛋白与荧光素等荧光标记在植株上表达的空间异质性。专用于三维荧光成像独特耐用的结构支架光源位置可自动调整可移动的相机使得可以从任意角度测量无需分离与移动样品软件可生成3D图像7. XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。该系统可以实现测量样品的暗适应，它由一个CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像，成像面积为80× 40 cm。适用对象为整株植物，离体叶片，海藻稀释物等。XY-Plane系统用于自动进行大型植物生长室中植物样品的大量筛选，FC 900-XY/8040植物荧光成像系统安装在一个坚固耐用的柜式结构中，所有部件可被安全存放，人性化的设计使得放置样品非常便捷。柜式结构内是一个光源和成像CCD位置可自由移动的自动控制框架。测量面积80× 40 cm.适用于高通量筛选尤其适合大培养盘中样品的多谱段分析适用于生物和非生物胁迫研究和转基因植物筛查光源与相机的高度和位置可调整无需分离与破坏样品8. FC 2000显微叶绿素荧光成像系统1. Micro-FluorCam FC 2000-ST内含: CCD 相机 简单显微镜架 光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.2. Micro-FluorCam FC 2000-EN内含: CCD 相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW内含: 6位滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 PC高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW内含：6位完全软件控制的滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.Micro-FluorCam FC2000-EFW: 6-位滤波器 (插入式)5. Kinetic Fluorescence Microscope FC 2000-Z 详见FKM多功能荧光动态显微监测系统 产地：欧洲 典型应用：1. CLAIRE M. M. GACHON etc. Single-cell chlorophyll fluorescence kinetic microscopy of Pylaiella littoralis (Phaeophyceae) infected by Chytridium polysiphoniae (Chytridiomycota). Eur. J. Phycol., (2006), 41(4): 395&ndash 403Fig. 2. UV激发荧光（壶菌属感染的褐藻过程）。A、C为亮视野图片；B、D为UV激发荧光情况；A、B为单细胞感染对照；C、D为严重感染对照。 Fig. 1.叶绿素荧光动力学（壶菌属感染的褐藻）.A为典型Kautsky诱导曲线（实线）与实测曲线比较；B为亮视野图片；C为 Fm值假彩图片；D为NPQ值假彩图片 请致电索取参考文献列表

恒光智影自主研发最新的近红外二区小动物活体荧光成像系统-MARS。这是一款多色成像系统，可实现全波段（400-1700 nm）荧光，X射线，CT多模态成像。这款产品突破了传统荧光活体成像系统的局限，具有从微观到宏观，由细胞至活体的全视野成像能力，可以实现更深，更快，更清晰的成像效果。在肿瘤研究，动物模型成像，血管成像，纳米药物开发，药物制剂，靶向治疗，及脑科学研究等方向提供新的影像解决方案。 1. 活体穿透深度高于 15 mm2. 空间分辨率优于 3 μm3. 荧光寿命分辨率优于 5 μs4. 高速采集速度优于 1000 fps（帧每秒）5. 精准光热治疗模块6. 可定制多模态系统 （X射线辐照、荧光寿命、一区荧光成像、原位成像光谱，CT等） 可实现小鼠颅内血管成像，皮下肿瘤成像，大鼠褐色脂肪及血管成像，小鼠肝肺成像，淋巴管与淋巴结成像，肠道系统成像的应用案例。您也可以在恒光智影的网站上找到更多的应用案例和视频：上海恒光智影医疗科技有限公司为您提供恒光智影 近红外二区小动物活体荧光成像系统的参数、价格、型号、原理等信息，恒光智影 近红外二区小动物活体荧光成像系统产地为上海、品牌为恒光智影，型号为MARS，价格为面议，更多相关信息可来电咨询，公司客服电话7*24小时为您服务。

Akoya Biosciences PhenoImager™ Fusion是一款为细胞微环境的定量空间分析所设计、新型超快速成像仪。PhenoImager Fusion集合了快速全片成像和多重免疫荧光检测蛋白或核酸的功能，能够在完整的组织切片中定位生物标志物的表达，以及区分数十种细胞类型和它们的相互作用。当与PhenoCycler™ 集成时，PhenoImager Fusion能够支持超过100个生物标志物发现的工作流程。• 灵活的工作流程，支持高参数生物标志物发现的工作流程(100+生物标志物)，也可专注于高通量大样本数量多达6个生物标志物的同时检测。• 18分钟内完成全片7色扫描• 独特的光学系统设计，具有优化的多光谱成像线路，能够精确检测多达6个生物标记物、DAPI和样本自发荧光(AF)• 快速全片多光谱技术，用于快速图像采集和拆分全片信号(多达7种颜色 使用一个或多个专利)• 利用光密度(OD)进行荧光和明场全片多光谱成像• 基于多个落射荧光(epi-fluorescence)滤块采集的发射光谱，自动获取整个载片的多光谱图像• 包含液晶电子可调节的滤波器，其中心波长和带通可在440-780nm范围内调节• 可在10倍，20倍，或40倍下全片成像• 一次可自动拍摄4张载片• 支持全片在明场RGB或常规荧光(非多光谱)下的分析• 正在申请专利的非接触式盖片检测方法可有效阻止灰尘和微粒• 超精确的载物台，位于扫描器的最佳位置，突破显微镜的衍射极限• Phenochart™ viewer/专利的快速全片多光谱技术注释程序• 集成了inForm® 图像分析软件• 兼容组织芯片(TMA)采集和分析• 输出的文件格式(.QPTIFF)可兼容Akoya软件套件(phenoptrReports)或第三方解决方案• 所有图像符合防篡改的21CFRpart11条款要求

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端叶绿素荧光技术设备，高分辨度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内，植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过千兆以太网与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点:1.系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析2.是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等26个参数3.是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100µ s内可达到120,000 µ mol(photons)/m² .s4.备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析（quenching）protocols、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等5.可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）6.具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益 7.可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 技术参数： 1.测量光为617nm可调制红光，持续时间10µ s–100µ s可调； 2.双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合， Actinic1光强300µ mol(photons)/m² .s，Actinic2光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s。双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益3.饱和光光强可达4000µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s，QA再氧化分析单周转饱和光闪STF可达120000µ mol(photons)/m² .s4.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，每个光源板由36颗LED阵列组成，光源板有效面积与成像面积相同13×13cm，另外还具备一个顶部双色光源（735nm红外光源和650nm红色光源）用于PAR吸收和NDVI成像测量；高强度高稳定性LED提供持续、稳定、均一的光源，不会因为用大量光强弱的LEDs（比如几百个）造成光源不稳定、寿命短等问题（使用大量弱光LED用于弥补每个LED的不足，会造成系统出错率的提高，任何一个LED出现问题都会造成系统的不稳定甚至不能使用）5.测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数及PAR吸收和NDVI植物光谱反射指数（选配），每个参数均可显示2维荧光彩色图像6.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI（选配）f) QA再氧化动力学（选配）g) GFP等静态荧光成像测量（选配）h) OJIP快速荧光动力学分析（选配）：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数7.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网8.成像面积：13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析9.7位滤波轮及叶绿素荧光滤波器、PAR吸收与NDVI成像测量滤波器（选配），可根据需要选配其它滤波器（选配）10.QA再氧化动力学成像分析（选配）：可进行STF荧光动力学分析测量，单周转光闪（STF）光强达120000 µ mol(photons)/m² .s in 100µ s11.OJIP快速荧光动力学模块（选配）：时间分辨率达1µ s，可测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi   _Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）12.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单13.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序14.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）15.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片16.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）17.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差18.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19.暗适应操作箱，内置光源、CCD镜头、滤波轮及滤波器、控制单元、散热装置等，方便暗适应操作，样品平台36x30cm，高度7级可调，样品（整株植物）最大高度可达12cm 20.给光制式：静态或动态21.Bios：固件可升级22.尺寸：471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 23.重量：Appr. 40 kg 24.电源输入：Appr. 1100 W 25.供电电压：90–240 V 配置组成：1.主机系统，包括暗适应操作箱，内置LEDs光源、滤波轮及滤波器、CCD镜头、控制单元、高度可调样品隔板、散热装置等2.高稳定性电源转换器3.FluorCam系统控制与数据分析软件4.笔记本电脑 产地：欧洲 附：其它FluorCam叶绿素荧光成像系统1.FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统：可与LCProSD光合仪、Licor光合仪等联用2.FluorCam便携式叶绿素荧光成像系统：成像面积3.5x3.5cm，具暗适应叶夹及多功能轻便三脚架，可用于实验室或野外测量和监测3.FluorCam便携式Chl/GFP荧光成像系统：为便携式荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析4.FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统：LED光源、CCD荧光监测镜头、控制单元等集成于暗适应操作箱内形成一个完整的主机系统，是世界上唯一可进行QA再氧化动力学和OJIP测量分析的叶绿素荧光成像系统，成像面积13x13cm5.FluorCam封闭式Chl/GFP荧光成像系统：为封闭式叶绿素荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析6.FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统：模块式，具备高度可扩展性，可自由选配不同的激发光源及相应滤波器以对叶绿素荧光动态及稳态荧光等进行成像分析，镜头高度可调，成像面积13x13cm7.FluorCam开放式大型版叶绿素荧光成像系统：成像面积可达20x20cm8.FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统：多激发光、多光谱荧光成像与光谱分析，可对叶绿素荧光动态、QA再氧化、OJIP快速荧光动力学进行显微成像分析和光谱分析，还可对GFP荧光、细胞荧光染色等进行显微成像分析9.Fluorcam移动式大型叶绿素荧光成像系统：大型叶绿素荧光成像平台安装在具轮子的支架上，方便移动，成像平台可上下移动，成像面积达35x35cm10.FluorCam样带扫瞄式叶绿素荧光成像系统：大型成像平台可在100－500cm的支架上对样带进行扫瞄成像，标配扫瞄区域长度为400cm，成像平台可沿样带精确定位自动扫瞄，可选配RGB真彩扫瞄成像，从而实现叶绿素荧光成像和真彩成像分析11.FluorCam多光谱荧光成像系统：属多激发光、多光谱荧光成像系统，不仅可对叶绿素荧光进行成像分析，还可对UV紫外光激发F440（蓝色荧光）、F520（绿色荧光）、F690（红色荧光）和F740（红外荧光）进行成像分析用于全方位研究检测植物胁迫与抗性，有标准配置、扩展配置和大型配置3种型号12.PlantScreen叶绿素荧光与RGB真彩自动扫描成像系统：是PlantScreen系列高通量植物表型成像分析系统的基础版，可对叶绿素荧光和植物RGB真彩进行成像分析，以分析检测植物的功能表型和形态表型，自动扫瞄范围为60x129cm，定位定时并得到4维（XYZ三维位置信息和时间信息）测量数据

1、 FluorCam叶绿素荧光成像技术功能特点由于叶绿素荧光技术本身在科学研究中有一系列的局限性。因此从上世纪八十年代末开始，随着Charge-Coupled Device(CCD)成像技术、LED光源板技术、图像分析技术的成熟，不断有科学家和工程师合作探索将这三项技术与PAM脉冲调制技术结合，进而将叶绿素荧光技术升级为叶绿素荧光成像技术（Daley et al. 1989 Raschke et al. 1990 Mott et al. 1993 Genty and Meyer 1994 Bro et al. 1995 Siebke and Weis 1995 Meyer and Genty 1998 Balachandran et al. 1994 Oxborough and Baker 1997）。20世纪90年代末，PSI首席科学家Nedbal和PSI总裁Trtilek等合作，成功研制了与PAM脉冲调制技术结合的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Nedbal et al., 2000），并推出第一台商业化叶绿素荧光成像设备FluorCam。这一发明正式开启了叶绿素荧光研究的二维时代。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界，并得到了国际科学界的一致认可。FluorCam叶绿素荧光成像系统已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像仪器。与之前的叶绿素荧光技术相比，FluorCam叶绿素荧光成像技术的主要优势有：• 能够全面反映整株植物、叶片、藻类群体等的不同位置荧光强度变化与分布。• 可测量叶片、果实、麦穗、大型藻/微藻、整株植物乃至植物冠层等各种样品。• 可同时测定几十、甚至上百株个样品。• 能够在显微水平研究叶绿体或藻类细胞。• 尤其适用于环境胁迫早期植物不同部位光合活性的变化规律、突变体不同部位的光合功能差异等研究。同时，FluorCam叶绿素荧光成像技术与同类技术相比具备以下国际领先优势：• 由真正的生物学家、数学家、电子工程师和光学工程师组成的研发团队所开发• FluorCam是脉冲调试式叶绿素荧光成像技术的最早实用化成果• 国际最权威的叶绿素荧光成像技术，仅2019-2021.3可查阅全文的SCI文献就有300篇以上• 可实现高通量植物表型分析、抗性筛选、种质资源检测等科研应用• 激发荧光的LED光源板和获取荧光数据的成像传感器不但技术国际领先，而且为PSI自行开发，具备完全自主知识产权• 测量及成像参数最多，具备叶绿素荧光显微成像、OJIP快速荧光动力学曲线、QA再氧化动力学、荧光蛋白活体成像、多光谱荧光成像、无人值守自动监测、图像阈值分割等世界独有的成像测量功能• 以FluorCam叶绿素荧光成像技术为核心的PlantScreen植物表型成像分析系统为目前国际最先进、安装最多的植物表型组学研究系统• 软件由PSI开发，为客户提供终身免费升级• PSI表型科研中心可进行科研合作并提供实验指导• 系统型号全面，适用于各种实验需求• 几乎无维护费用技术功能特点：1) 仪器型号和配置灵活多样，测量样品涵盖了从叶片、藻类、果实、花朵、整株植物、植物群体/冠层乃至单个微藻/植物细胞、叶绿体等几乎所有不同类型的宏观和微观植物样品，甚至还包括含有叶绿素的细菌和海洋生物；同时满足了从实验室光合机理精细研究到野外大田实地研究，从自然环境到精确可控环境等不同实验条件和尺度的要求。2) 高灵敏度CCD，时间分辨率可达50帧／秒，分辨率720×560像素；可选配高分辨率CCD，最高分辨率1360×1024像素，在最高图像分辨率下时间分辨率可达20帧／秒，用于稳态荧光如GFP荧光测量等；超高灵敏度成像传感器，最高分辨率1280×1024像素，最高时间分辨率高达16000帧／秒，真正实现了OJIP快速荧光诱导动力学曲线的成像测量3) 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收率、NDVI成像测量（选配）f) GFP、YFP、EBFP、CFP、DsRed等荧光蛋白与DAPI等荧光染料的荧光定量测量（选配）g) 多光谱荧光测量（选配）：F440、F520、F690、F740h) QA再氧化动力学曲线（选配）i) OJIP快速荧光诱导动力学曲线（选配）：Fo，Fj，Fi，P或Fm，Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等参数4) 自动重复实验功能，可无人值守自动循环完成选定的实验程序，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机5) 标配4个LED光源板，采用大型预封装LED光源，红/蓝或红/白双色光化光源，可选配其他不同颜色（波长）、不同光强LED光源6) 功能强大的FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单：7) 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”两种功能模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差8) 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等2、 FluorCam叶绿素荧光成像系统型号1. FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪• 可测量叶绿素荧光成像，可选配GFP荧光蛋白成像功能• 成像面积：便携式FluorCam 31.5mm×41.5 mm、便携式GFPCam 35mm×46 mm• 配备专用支架和电池包，便携性强，实验室、野外均可使用• 可编辑测量实验程序（protocol）• 具备自动重复测量功能• 配备专用暗适应叶夹，便于在野外对样品进行暗适应无损测量2. FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统• FluorCam系列中功能最全面，使用最便捷的型号• 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 • 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变；可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量；也可选配超高灵敏度成像传感器，实现真正的OJIP快速荧光诱导动力学曲线成像测量• 成像面积达13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析• 饱和光光强最高达6000 µmol(photons)/m².s，进行QA再氧化分析使用的单周转饱和光闪STF可达120000µmol(photons)/m².s• 世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等• 可选配GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 可进行自动重复成像测量分析• 4块大型高强度封装LED光源板，具备双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合3. FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统• 模块化设计，配置灵活，可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度，方便被测植物的处理、操作等• 4块大型高强度封装LED光源板，具备双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合• 可自由选配多种备用不同波长LEDs光源板，用户可简便自行更换，如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多光谱荧光成像测量等• 可进行GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 标准版成像面积13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析• 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量4. FluorCam多光谱荧光成像系统FluorCam多光谱成像系统是将稳态荧光成像技术与脉冲调制式叶绿素荧光成像技术完美融于一体，能够在一台仪器上实现GFP、BFP、CFP、YFP、RFP等荧光蛋白成像、DAPI等荧光染料成像、荧光素酶、脉冲调制式叶绿素荧光成像以及NDVI反射光谱成像分析功能，是真正功能全面的植物荧光活体成像系统。同时，除了植物样品外，植物荧光活体成像系统也可以进行藻类、珊瑚共生体、菌落乃至动物的荧光成像分析。• 1360×1024像素高分辨率CCD，可对样品荧光标记的分布进行精准成像分析• 标准版成像面积13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析• 专用荧光激发光源组与滤波器组合，精确测量不同荧光蛋白标记• 软件配置多种用户自定义调色板，可生成真实色彩成像图或对比增强彩色成像图• 可选配新型FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统，一体化完成各种荧光成像测量5. FKM多光谱荧光动态显微成像系统• 目前唯一用于植物/藻类显微叶绿素荧光成像研究的成熟商用仪器• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序，如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等，可获得70余项参数• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜，可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等，通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光，能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量，提高实验精度，也可以进行高温/低温胁迫研究6. FluorCam大型叶绿素荧光成像平台• 世界上单幅成像面积最大的脉冲调制式（PAM）叶绿素荧光成像系统，成像光源板面积70×70cm，成像面积达35×35cm，可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性叶绿素荧光成像分析• LED激发光源、CCD叶绿素荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可自由移动的成像平台上，成像平台高度可调，以适应于不同高度的植物成像分析• 可选配PAR吸收／NDVI成像分析模块，对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析• 可选配RGB成像分析模块,用于植物形态测量分析等• 可选配GFP绿色荧光蛋白成像分析功能，用于植物转基因研究三、FluorCam叶绿素荧光成像系统应用案例1. 拟南芥叶绿体R-loop调控机制2017年清华大学生命学院孙前文课题组通过分析获得一个新的定位于叶绿体中的核糖核酸酶H蛋白（AtRNH1C），发现该蛋白可以调节叶绿体中R-loop水平的变化，从而维持基因组的稳定性和发育。他们使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统，发现AtRNH1C对叶绿体的发育有重要作用。在使用喹诺酮类药物环丙沙星（CIP）处理后，通过FluorCam叶绿素荧光成像图可以直观发现野生型的生长被抑制，同时叶片变色。而atrnh1c突变体则加强了CIP的毒害效应。这更加证实了AtRNH1C的功能。本实验的荧光成像检测是在易科泰Ecolab实验室完成的。2020年，孙前文课题组又使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统结合分子实验结果，证实了R-loop解旋酶过表达能够拯救由于异常累积HO-TRC触发R-loop共同表达造成的缺陷，从而维持拟南芥叶绿体基因组完整性。参考文献：1. Yang Z, et al. 2017. RNase H1 Cooperates with DNA Gyrases to Restrict R-loops and Maintain Genome Integrity in Arabidopsis Chloroplasts. The Plant Cell, doi:10.1105/tpc.17.003052. Yang Z, et al. 2020. RHON1 Co-transcriptionally Resolves R-Loops for Arabidopsis Chloroplast Genome Maintenance. Cell Reports 30: 243–2562. 构建耐盐生菜品种表型鉴定体系目前，全球农业都受到土壤和灌溉水盐分升高的威胁。大约50%的灌溉农田都受到了盐分的影响。2013年的经济分析指出由于盐分诱发的土壤退化和作物产量损失在全球造成了273亿美元的损失。作为一种重要的蔬菜作物，生菜（Lactuca sativa L.）在世界范围内都进行了广泛的种植。生菜产量最高的国家为美国、欧盟和中国。而生菜对盐分胁迫非常敏感的。盐分胁迫会造成生菜生物量减少、诱发叶烧病和早衰等。美国农业部（USDA）的科学家尝试确定生菜盐胁迫的关键生理表型性状，用于筛选高耐盐的生菜品种，希望从这些数据中筛选出最灵敏的指标构建耐盐生菜品种表型鉴定体系。与传统作物表型测量相比，一方面光系统对各种生物和非生物胁迫因素都非常敏感，而叶绿素荧光成像分析可以无损地直接测量胁迫对光系统的损伤程度和机理，在胁迫初期乃至症状出现前即可检测到胁迫的发生；另一方面，叶绿素荧光成像分析技术与自动传送系统集合，能够实现对大量样品的高通量无损快速检测，非常适用于作物品种的筛选。他们使用的PlantScreen XYZ植物表型成像分析系统就能够将这两方面的优势完美地结合起来。其样带式FluorCam叶绿素荧光成像单元是目前唯一使用脉冲调制式叶绿素荧光成像技术实现大型整株植物测量的商用化仪器。自动传送系统可以自动调整成像单元的位置与高度，结合专用软件可以对几十株乃至上百株样品进行自动叶绿素荧光成像分析。实验中使用了球生菜、奶油生菜、直立生菜、叶生菜等不同的栽培品种和生菜的野生亲缘种L. serriola L，共240株样品。这些品种中既有耐盐品种，也有盐胁迫敏感品种。所有样品在同样盐胁迫处理下进行了叶绿素荧光成像分析。研究者重点分析了QY_max（Fv/Fm）最大光化学效率、Fv/Fm_L（Fv’/Fm’）光适应最大光化学效率、NPQ非光化学淬灭（最大荧光）、qN非光化学淬灭（可变荧光）、qP光化学淬灭、QY实际光化学效率（量子产额）、Rfd荧光衰减比率等荧光参数。值得一提的是，叶绿素荧光成像图经过校准后，还可以直接获得整株植物具备光合活性的叶面积。结合荧光参数还可以对叶面积进行不同胁迫程度的定量分级和图像分割。本研究中直接使用叶绿素荧光成像获得的光合活性叶面积取代了传统测量的叶面积。荧光数据与鲜重等传统表型数据进行了相关性分析和主成分分析，结果表明敏感栽培种的叶绿素荧光特征是低QY，qN，NPQ和Rfd，而耐受栽培种的特征是高QY_max，Fv/Fm_L和QY_D。与叶绿素荧光参数的高灵敏度相比，大多数样品的叶绿素指数和CO2同化速率在盐胁迫处理前后都没有表现出显著的差异。因此，研究者建议在筛选高耐受品系时以较高的叶面积配合较高的Fv/Fm和QY作为初筛指标。后续，美国农业部又使用加装了高光谱成像单元的PlantScreen表型成像系统与FluorCam结合，通过叶绿素荧光成像数据与高光谱成像数据绘制了生菜水分胁迫响应基因位点的分子图谱。参考文献：1. Adhikari N D, et al. 2019. Phenomic and Physiological Analysis of Salinity Effects on Lettuce. Sensors, 19: 48142. Kumar P, et al. 2021. Molecular Mapping of Water-Stress Responsive Genomic Loci in Lettuce (Lactuca spp.) Using Kinetics Chlorophyll Fluorescence, Hyperspectral Imaging and Machine Learning. Front. Genet. 12: 634554

显微拉曼荧光寿命成像系统 德国S&I GmbH成立于1995年，是一家专门从事科研级拉曼光谱分析设备的制造公司，也是美国普林斯顿仪器（Princeton Instruments）在欧洲的OEM客户,其设备以优异的灵活性，高灵敏及易操作性著称。 显微拉曼荧光寿命成像系统，型号：MonoVista CRS+系列产品定位：服务于科学研究的强大“光谱成像综合分析平台”。lS&I公司擅长于提供各种科研级定制化的解决方案；l根据用户的应用需求，适用并可拓展不同的配置；l在保证系统自动控制与高可靠性情况下，适合各种光学测试；l显微拉曼光谱 /显微荧光 / 荧光寿命TCSPC成像/l变温红外光谱 / 时间分辨光谱 / 暗场光谱/l适用高压科学研究要求的开放式测试环境，如大样品系统，低温，强磁，高温等。 lMonovista CRS+系统是基于共聚焦显微镜设计的多功能光谱成像分析系统；应用领域：高压科学材料,半导体材料特性,碳纳米材料，钙钛矿材料，生物细胞研究等。 低波数性能： Stokes/Anti-Stokes spectrum from L-Cystine显微拉曼荧光寿命成像系统特点：l深紫外到近红外波长范围l多达 4 个集成多线激光器，可选配外接大型激光器端口l紫外和可见光/近红外双光束路径l自动控制激光选择l自动对准，聚焦和校准功能l超高拉曼光谱分辨率，例如 FWHM＜25px -1 @ 633 nml利用低波数拉曼附件，低波数可测试到 +/- 10 cm-1 l高波数范围可达 225000px-1（@ 532nm），适用于光致发光l热电制冷和液氮制冷探测器l正置/倒置/双显微镜l步进电机和压电驱动 XYZ 位移台l快速拉曼 mappingl集成控制加热/冷却台，液氦温度低温恒温器l可结合拉曼成像和原子力显微镜成像l自动控制的偏振光谱功能 硬件与激光选择软件自动切换 荧光扣减与背景抑制功能 同一样品不同成分的拉曼成像图显微拉曼荧光寿命成像系统定制应用案例 Monovista显微光路+宏光路拉曼+AFM Monovista与低温，强磁测试条件(HPSTAR)

CV-100植物叶绿素荧光成像系统CV-100植物叶绿素荧光成像系统采用箱体式外观，内置多波段LED用于测量光、饱和脉冲及反射率测量。基于机器视觉成像原理进行叶绿素荧光成像，从而计算植物生长、胁迫，育种，突变株筛选相关等科学研究；滤光系统允许叶绿素荧光波段光线进入传感器并成像。不同于传统的只能做点状测量的光纤式荧光仪，标准版CV-100成像面积高达20x20cm,可以同时对多个样品、整个叶片或小尺寸植株进行荧光成像。高功率LED提供饱和脉冲，强度≧3000μmol/m2/s PAR。同时CV-100提供多种不同灯板选配：385nm紫外，455nm蓝色，530nm绿色，660nm红色，适用于植物、藻类、苔藓、地衣等不同光合生物。并且提供底板控温选配功能，可以进行0-60摄氏度范围内进行控温，更方便的检测样品在温度胁迫时光合能力的变化。广泛应用于植物学、农学、林学、环境科学等植物相关领域，有助于进行植物生长、胁迫、育种、突变株筛选等相关学科光合研究，用于植物生理生态及表型研究。主要特点高集成度式设计；500万像素高清传感器；最大图像尺寸：2456x2054；快门模式：全局及卷帘快门；分辨率：约250DPI（10pix/mm）；可测量参数：F0，Fm，Ft，Fm’，Fv/Fm，Yield，qP，qL，qN，NPQ，Y（NPQ），Y（NO），慢速诱导，rETR等。其它功能：ROI，尺寸测量，伪色遮罩，分级统计，自动暗适应等选配功能：385nm灯板，455nm灯板，530nm灯板，660nm灯板，底板控温组件。技术参数成像功能：叶绿素荧光成像及多光谱波段测量；调制叶绿素荧光成像参数：Fo、Fm、Fv/Fm、Ft、Fm'、Fo'、PS、rETR、NPQ、Y(NO)、Y(NPQ)、qN、qP、qL、动力学曲线等；成像面积：≥20 cm x 20 cm；相机类型：CMOS传感器；相机分辨率：约500万像素颜色深度：12bit(软件扩展至16位)；接口：2个USB3.0，1个以太网口；专用嵌入式控制器：提供硬件控制功能；供电：供电：110-230V，最大功耗500W，待机功耗50W；测量光：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强大于3500 umol m-2 s-1 ，独立触发；饱和脉冲：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强3500 umol m-2 s-1，独立触发；近红外：LED，730nm，半峰全宽20nm，35W；可见光：LED，660nm，半峰全宽20nm，35W，可选蓝色、绿色LED；内置测量程序：内置多种测量功能可选，允许用户编辑设定测定参数 ；图像批处理：支持一键批处理，并可将数据导出至Excel；参数分级功能：支持对任意参数进行多区间分级，支持对分级区间自定义显示颜色，支持将分级成像结果叠加到可见光图像上进行展示；ROI功能：允许用户自定义多种ROI，并对ROI的数据自动分析；延时成像：支持设定暗适应延迟；支持图像背景、伪彩色标尺。系统配置主机1套控制和分析软件1套

产品介绍： 金竟科技推出的Rainbow系列阴极荧光成像及光谱探测系统能够同扫描电子显微镜或聚焦离子束系统配合，实现阴极荧光全谱及单谱扫描成像、光谱采集以及阴极荧光光谱面分布探测。系统配备荧光收集镜及光纤传输接口、信号调理采集系统、电子束扫描发生器、成像光谱仪、多通道及单通道探测器，通过系统控制与采集软件集成控制。 系统采用电子束扫描发生器控制电子显微镜的电子束扫描和触发探测器工作，同时可采集经信号调理采集系统获得的荧光强度信号，实现电子束扫描信号与探测器数据采集的严格同步，获得阴极荧光成像、阴极荧光光谱面分布数据。 Rainbow系列产品可在纳米空间分辨率下提供各类材料的阴极荧光成像和光谱测量，尤其适用于半导体材料研究、光电材料和器件研究研发、纳米光子学科学研究、薄膜和纳米结构、地质氧化物及矿物等。

FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统是一款高度灵活、应用广泛的植物生理生态研究仪器，系统采用模块化结构，有四个LEDs光源版、CCD镜头、支架、控制单元及FluorCam成像分析软件等组成。两对LEDs光源版提供测量光、光化学光和饱和光闪，角度和高度可调；CCD镜头高度可调，且可灵活配置PSI特制高灵敏度CCD镜头或高分辨率镜头，还可装配第五个光源版于镜头周边。标准配置（标准版）的最大成像面积为13×13 cm，大型版最大成像面积达20×20 cm。既可对单个叶片进行叶绿素荧光成像，还可对整株植物进行叶绿素荧光成像，广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物监测、植物抗性、作物育种等研究。 应用领域:1.植物光合特性和代谢紊乱筛选2.生物和非生物胁迫的检测3.植物抗胁迫能力或者易感性研究4.气孔非均一性研究5.代谢混乱研究6.长势与产量评估7.植物——微生物交互作用研究8.植物——原生动物交互作用研究 功能特点:1.模块化，配置灵活，可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度，方便被测植物的处理、操作等2.可自由选配不同波长LEDs光源板，如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多色荧光成像试验测量等3.成像面积大，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析4.可进行自动重复成像测量，可设置一个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）5.带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达50多个6.可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态测量分析7.测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等技术参数：1.成像面积：标准版成像面积达13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析2.测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像 3.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI（选配）f) GFP等静态荧光成像测量（选配）4.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网5.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，每个光源板由36颗 LED阵列组成，光源板有效面积与成像面积相同，标准版13×13cm，大型版20×20cm6.测量光：标配617nm红光，其它波段可选，持续时间10µ s–100µ s可调7.双色光化光：标配为2红光（617nm）+2白光，可选配2红光（617nm）+2蓝光（470nm或445nm）或其它波长光源组合， Actinic1最大光强300µ mol(photons)/m² .s，Actinic2最大光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s8.饱和光闪：最大光强4000µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s9.PAR吸收测量模块（选配）：远红光735nm（FAR）、650nm双色LEDs光源板与7位滤波轮及专用滤波片，用于测量PAR吸收及NDVI10.GFP测量模块（选配）：蓝色光化光源与7位滤波轮及专用滤波片，用于测量GFP（绿色荧光蛋白）11.7位滤波轮（选配）：加装不同波段滤波片，配合选配的专用光源板测量PAR吸收和GFP、YFP等稳态荧光12.紫外LED光源板（选配）：365nm或385nm，1）测量多色荧光（详见FluorCam多光谱荧光成像系统）；2）测量wtGFP（野生型绿色荧光蛋白）、DAPI（4',6-二脒基-2-苯基吲哚，一种荧光染料）13.蓝色LED光源板（选配）：470nm，1）测量EGFP（增强型绿色荧光蛋白）；2）用于气孔功能研究14.绿色LED光源板（选配）：530nm，测量YFP（黄色荧光蛋白）15.其他可选配光源板：品蓝（447 nm），青色（505 nm），红色（627 nm），深红（655 nm），琥珀色（590 nm），远红（740nm）等16.测量wtGFP、DAPI、EGFP、YFP等荧光蛋白或荧光染料还需要选配7位滤波轮，高分辨率CCD及相应滤波片 17.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单18.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序19.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）20.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片21.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）22.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 23.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等24.给光制度：静态或动态25.CCD检测范围：400–1000nm 26.Bios：固件可升级27.通讯方式：千兆以太网28供电电压：90–240V 产地：欧洲 典型应用：

产品介绍S3000采用先进的三条纹转盘共聚焦成像技术,配合电动Z轴快速扫描,极大提高成像速度,满足活细胞动态观察研究需求。采用LED面光源激发时间更短,光毒性、光漂白性大大降低,适合连续观测。紧凑的新型共聚焦光路设计,既可灵活耦合在多品牌显微镜上,也可整机搭建,满足不同实验室需求。产品特点超快共聚焦成像采用结构光转盘技术，光通量比针孔式转盘提高数倍，允许LED激发光源共聚焦成像；根据相机配置、成像度可达20-40帧/秒；三种切片模式自由切换，实现快速成像和高质量成像的结合。全谱段探测一个LED光源可应对全普段检测应用，激发光：370-700nm，发射光：410-750nm；覆盖常见荧光染料的光谱范围；4位滤光块转轮,通道切换时间小于0.2s,滤光块免工具更换,可实现4+N多通道荧光拍摄。 模块化设计采用紧凑的共聚焦光路设计，仪器外形更小巧；无需庞大空间也可安装，共聚焦模块可灵活耦合在正置、倒置、体式等各种显微镜上，适应不同应用场景。高可靠性及可扩展性，兼容已有成像设备，让科学工作者从仪器维护中释放出来，把更多时间投入到科学研究本身。共聚焦动态成像模块超长时间观测采用安全的非激光光源（Laser-free confocol），超低光毒性及光漂白性，结合智能图像动态识别与分析算法，适用于生物活体样品的实时、动态、长时间观测。对跳动的斑马鱼胚胎心脏进行长时间连续成像（图示分别为共聚焦模式和宽场模式的观测效果）产品应用S3000为细胞生物学、微生物学、发育生物学、神经生物学及植物学等领域研究提供快速三维荧光成像的有力工具。3day幼虫三维动态成像髓母细胞癌细胞巨噬细胞与假丝酵母细胞中的纳米药物百合花芽

Videometer Lab 4是一款新型、功能强大且性价比超高的多光谱表型成像测量系统，通过控制系统就可以进行高分辨率多光谱成像。多光谱成像模块包括可见光成像，UV紫外成像以及NIR成像。可固定摄像头或移动摄像头。因拍照速度迅速，可实现较高通量成像。Videometer Lab 4通过测量样品在19种不同波长的LED频闪光下的成像来获取有用的信息。这些图像可以独立分析使用，也可以叠加起来合成高分辨率的彩色图像。Videometer备选模块包括叶绿素荧光成像模块，能够实现叶绿素荧光成像（叶绿素a和叶绿素b）。Videometer Lab 4 同时也可以测量较小的样品，比如拟南芥等小植株、用多孔板培养的植物、多孔板里的叶圆片、植物的种子、药片、肉类、调料等，分析软件功能强大。该系统也可以对细菌等进行高通量成像测量，进行毒理学或其它研究。对于拟南芥等冠层平展的植物，可以进行自动的叶片计数等。Videometer Lab 4 用于种子表型研究，直接测量种子参数如尺寸、颜色、形状等，通过算法分析还可得到如下参数：种子纯度、发芽百分比、发芽率、种子活力、种子健康度、种子病害情况、种子成熟度等。Videometer Lab 4 可选配基于盛料盘的进料系统，用于测量前后自动分发和移动样品。Autofeeder配件与Videometer Lab 4 共同为颗粒样品提供了高通量多光谱分析检测。对于特定谷物或颗粒，样品大小可达100g（基于密度和分辨率），成为一款测量成品以及生产控制用的独特模块。自动进料器使用振动器将颗粒从漏斗均匀分布到传送带上，传送带将颗粒传送到Videometer Lab 4下，然后进入一个收集箱。在采集、分割和分析样本图像后，在测量结束时自动创建摘要报告。根据需求，系统还可以定制分拣机器（如图所示），根据分析结果来筛选颗粒。筛选系统设计用于高价值颗粒的物理分拣，例如去除缺陷颗粒（破碎、未发芽、受感染等）。自动进样模块的振动装置将颗粒均匀地分布在皮带上，形成单层。分割程序提取颗粒，分离接触颗粒，并为样本中的所有颗粒创建blob图像。预测模型根据颜色、形状和纹理特征对颗粒进行分类。测量过程中显示颗粒图像和分析结果。测量结束时自动创建总结报告。如配置分拣机器可直接实现样品颗粒分类放置。产品功能：通过成像，可获取样品的图像，包括单波段的灰度图像和对应的反射率值及sRGB图像，用于不同的形状分析：可用于种子表型研究，直接测量种子参数如尺寸、颜色、形状等，通过算法分析还可得到如下参数：种子纯度、发芽百分比、发芽率、种子活力、种子健康度、种子病害情况、种子成熟度等；可用于种子品种鉴别，例如不同品种的水稻、玉米、小麦等；可用于花朵测量，可分析花径、花瓣面积、花色分级、花朵病斑、花图像提取等；可用于果实测量，可分析果实纵径、果实横径、果实颜色分级、果实数量、果实病斑、果实裂缝、果实图像提取等；可用于植物资源品种鉴别和种质资源研究（形态学结合多光谱信息）、植物疾病（如小孢链格孢属鉴别）研究、植物生理生态发育以及胁迫研究（如对植物进行激素处理后、植物形态学的一些变化）、植物繁育栽培研究、果品和蔬菜品种、品质检测（如草莓、浆果品质特征和成熟阶段研究）；可用于中药、民族药和茶叶等的形态、分类、品质、种植和地道性研究；可用于茶叶分类、鉴别、品质检测与评估等；可用于食品参假鉴定，比如食品原料的选择；可用于昆虫如蚕蛹雌雄鉴别、动物寄生虫检测、进行昆虫的游动测试，自动获取图像；产品特点：积分球提供均匀和弥散光线照明5-10秒钟内实现光谱成像和定量分析19-20种不同波长/光源6或9.1百万像素/波长提供1.2-3.6亿像素/帧分辨率标准设备包括使用设备校准与传统RGB技术相比具有卓越的彩色测量功能根据应用需求可自动切换动态范围光源寿命长、可达10万小时独特LED光源技术稳定性增强前光灯和背光灯组合、备选背光灯相对样品自动移动照明研究应用强大的软件分析多光谱荧光备选颗粒产品自动进料备选分拣机器备选产品技术参数主机技术参数摄像头：顶部，可固定或者移动，6或9.1百万像素，波长提供1.2-3.6亿像素/帧分辨率采用积分球设计，积分球提供均匀和弥散光线照明5-10秒钟内实现光谱成像和定量分析，19-20种不同波长的光源与传统RGB技术相比具有卓越的彩色测量功能光源寿命长，可达10万小时具有19个高功率LED灯源，波段范围从375nm-970nm，集成了RGB成像模块、紫外UV成像模块、叶绿素荧光成像模块、NIR近红外成像模块备选350nm-1700nm，包含30-40个波段图像尺寸：2056 × 2056像素或更高分辨率：～45μm/像素根据应用需求可自动切换动态范围NIST可追溯校准，使用2个反射校准以及几何定标靶。简单校准向导程序，只需3分钟样品尺寸：（台式）高度最高可调定制；落地式可根据用户需求调节设计尺寸，需要对相机镜头进行设置快速无损检测，分析时间：每个样品5-10秒室温，操作：5～40℃，储存：-5～50℃，环境湿度：20～90%RH相对湿度，非冷凝PC要求：最低配置：Intel i7 或更高，16GB RAM， 1THDD，USB3高端端口，千兆以太网软件：Microsoft Windows 7 Professional 64 bit， full windows update可选配颗粒样品自动进样模块、暗场/明场背光、滤波轮（用于荧光），可选配图像处理工具盒（IPT）、光谱成像工具盒（MSI）、斑点工具盒选配进样器技术参数样品容量标准为1.5升（可定制更大的样品尺寸）传送带宽度76nm处理速度每分钟1200cm2传送面积。样品处理量示例：宠物食品吊桶，18分钟内1公斤。玉米粒：6分钟300克。小麦和大麦：10分钟100克适用于不同尺寸和类型颗粒产品，软件自动进料器选项由Videometer Lab Biob Analyzer工具控制，可通过定制的软件插件与外部进样接口

应用范围：1.化学发光（ECL）&荧光Western blot，Northern 或 Southern blot；2.DNA和RNA凝胶及荧光成像：Ethidium Bromide, Sybr-Safe, Sybr-Green, Gel-Red, Gel-Green, Sybr-Gold, GFP, Pro-Q Emerald, Sypro Ruby, FITC, DAPI...3.免染胶，银染&考染蛋白胶，SSCP胶，培养皿（细胞或菌落），微孔板，蛋白芯片或其他基于荧光或化学发光的样品...性能特点：1.采用V.070超级镜头，f0.70超大光圈，提高单位时间内进光量从而提高检测灵敏度2.多至7个荧光通道，涵盖紫外~近红外，满足市面上几乎所有常用染料，支持免染胶成像3. 5层化学发光&荧光样品位置，根据需要可任意选择，带有样品位置感应器，无需手动调节，自动识别样品位置4.带有双近红外定位，便于样品放置，更加人性化5.带有电磁吸附及阻尼的门，成像过程中始终保持关闭状态，避免误操作，保证实验人员安全6. 具有彩色Marker成像功能，一键合并彩色Marker及信号图像技术参数：相机 & 光学1.Darq9 科研0级，深度制冷型CCD相机，-90℃，暗电流可低至0.0001e/p/s2. EVO-6 科研0级，制冷型CCD相机，-55℃，暗电流可降低至0.0002e/p/s3.采用定制的V.070自动定焦镜头，f0.70超大光圈全自动暗箱1.带有阻尼及磁力吸附的门，电磁门锁，保证曝光过程中门不被打开2.推拉式超亮紫外透照台，带有一体式紫外防护板，方便切胶操作， 透照台可任意更换，可拆出单独使用3.侧壁白光及透射白光，用于照明以及考马斯亮兰或银染的蛋白胶、胶片或膜4.侧壁7通道激发光装置，涵盖深蓝,蓝光、绿光、红光，远红光，双通道近红外等波段，满足多种激发光源的需求，可用于多色荧光成像5.全自动控制7位滤光片轮， 配有6个窄波发射滤光片，涵盖500~900nm6.六层样品位置，五层用于化学发光， 带有样品位置感应器，系统自动感应样品位置，无需反复对焦7.双近红外定位，便于放置样品获取及分析软件1Evolution-Capt 图像采集及分析软件，具有一键获取成像技术2.自动，手动，连拍三种曝光模式，最多可连拍≥99张图片， 连拍模式中，具有递增，积累，重复和任意编程等模式3.可设定个人拍照参数，并保存为方法，方便调用4.具有自动生成Marker图像功能，自动合并信号图像，可拍摄彩色Marker图像，非添加伪彩5.具有3D扫描功能，直接获取3D图像，便于了解图像的背景，信号强度等信息6.GLP功能，记录图像的拍照时间，拍照参数等信息7.图片编辑功能，可对图像进行裁剪，添加文本，旋转角度；背景去除功能，可去除背景或去除噪点；平场校正功能8.具有分子量测定功能，自动计算所有条带分子量；具有迁移率分析功能9. 具有定量分析功能，获得条带面积、灰度值以及相对信号强度等10.具有Apps Studio功能，包含了40多种实验室常用的方法，提供常用染料的激发和发射波长信息，并自动调整设备的设置

Celloger Pro全自动活细胞成像系统无缝成像，无限洞察。与Celloger Pro一起，发现无限可能 ★ 培养箱内的实时细胞监测★ 双荧光显微镜增强成像★ 用户可手动更换不同倍率物镜★ 直观的软件操作界面和多种便捷分析工具★ 多点高性能延时成像多荧光通道及明场成像凭借其双色荧光和亮场成像能力， CellogerPro能够捕获高质量和高分辨率图像通过增强的扫描方法和创新的合并技术，该系统大幅减少了扫描时间，使研究人员能够以清晰和高效的方式分析细胞动力学。实时监控培养箱内部情况CellogerPro的设计是为了方便对培养箱内的细胞进行实时监测。只需将设备放入培养箱中，并将其连接到外部电脑，研究人员便能够远程实时观察细胞。 利用延时成像功能，按照研究者设定的时间表拍摄细胞图像 这些图像后期可以很容易地转换成延时视频。 用户可手动更换不同倍率物镜 CellogerPro提供给用户可手动互换的物镜。根据研究人员的具体研究需求提供更灵活的选择。有2X、4X、10X等物镜选项。用户可以手动在这些镜头之间切换。 可从多个位置捕获图像CellogerPro通过自动移动得镜头，同时保持培养容器和样品固定在载物台上，使样品在多个位置成像。这确保了细胞的稳定环境，从而提高了图像质量和精确的研究结果 兼容不同类型的培养容器 CellogerPro可以通过更换容器夹具兼容不同类型的细胞培养容器，如多孔板(多至384孔板)、T型瓶、培养皿和载玻片。 应用：细胞毒性测试Cytotoxicity监测和测定物质对细胞的毒性作用，帮助完成各种应用，如药物开发和筛选 球体成像分析Spheroid assay 实时研究球体的形成和生长，以跟踪细胞行为和药物反应 细胞划痕实验Scratch wound assay 评估治疗对关键细胞过程的影响，如迁移、增殖和伤口愈合 神经突生长Neurite outgrowth 研究神经元发育、连接、再生的机制和因素 参数：成像模式：明场, 双荧光 (绿荧光 & 红荧光)物镜倍率：2X、4X、10X (用户可手动更换)荧光：绿荧光 (激发: 470/40 发射 : 540/50)红荧光 (激发: 562/40 发射: 641/75)载物台：电动 XYZ轴 (载物台固定, 镜头可控制自由移动)镜头：高灵敏度500百万像素 CMOS成像位置：多点聚焦：自动调焦，手动调焦视野范围：2X (2.02×1.49 mm), 4X (1.41×1.05 mm), 10X (0.70×0.52 mm)操作软件：扫描软件、分析软件尺寸 (长×宽×高)：250×338×412 mm成像方法：单色/多色, 图像拼接, Z轴堆叠, 延时成像, 实时视频录制重量：9.6 kg文件导出格式：TIFF, AVI (JPEG, PNG)培养容器：多孔板，T型瓶，培养皿，载玻片操作环境：10-40℃，湿度95%电源要求：100-240V, 50/60Hz电脑操作系统：Windows 10 以上

产品创新点上市时间：2019年10月创新点主要有两个方面：硬件方面：全球首创将将荧光分光度计与CMOS相机结合在一起，能够同时观察样品光谱和图像的技术。软件方面：运用了智能光谱算法，可以获取样品任意区域的光谱信息。常规的荧光分光光度计测得的是样品表面信息平均化的信号，得到的是一条荧光光谱，这个新的系统能够对样品表面进行分区，从而获得不同区域的光谱信号，使得光谱信息细致化了。产品简介1. 荧光分布成像系统（EEM View）简介作为荧光分光光度计的配件系统，这是全球首创将相机与荧光分光光度计的完美结合，融合了智能算法的先进技术。能够同时获取样品图像和光谱信息。新型荧光分布成像系统可安装到F-7100荧光分光光度计的样品仓内。入射 光经过积分球的漫反射后均匀照射到样品，利用F-7100标配的荧光检测器可以获得样品荧光光谱，结合积分球下方的CMOS相机可获得样品图像，并利用独特的AI光谱图像处理算法，可以同时得到反射和荧光图像。2. 荧光分布成像系统特点：①测定样品的光谱数据（反射光、荧光特性）②在不同光源条件下（白光和单色光）拍摄图像（区域：Φ20mm、空间分辨率：0.1 mm左右、波长范围：360-700nm）③利用自主研发的分析系统1)，分开显示荧光图像和反射图像④根据图像可获得不同区域的光谱信息（荧光光谱、反射光谱） 国立信息学研究所 佐藤IMARI 教授?郑银强副教授共同研究成果荧光分布成像系统软件分析（EEM View Analysis）界面(样品：LED电路板) 样品安装简单，适用于各种样品测试样品只需摆放到积分球上，安装十分简单！丰富的样品支架支持精确测量的校正工具 总结以上为荧光分布成像系统的特点和功能结束，这是一种全新的技术，将它配置到荧光分光光度计中，改变了常规荧光光度计只能获得样品表面区域平均化信息的现状，可以查看样品图像任意区域的光谱信息，十分适合涂料、材料、油墨、LED、化工等领域。

荧光标记成像系统，用以成像并分析来自荧光标记生物的荧光信号。● FOBI利用对绿荧光与近红外线特别优化的光源及滤光镜来分辨背景与信号--无须预前处理。● 扩散LED灯能减低亮度及温度变动让结果更加可靠。● 并非仅拾取高感度 (单张静态)影像，FOBI也能摄录 (连续动态)影片。● FOBI的简单设计与程序成就其易于使用与快速获取数据的性能。产品的主要优势简单－体积小巧 (240×240×400mm)，只需连接USB线至PC。方便－比数字相机更方便使用。每个过程稍一点按即可完成。快速－荧光信号侦测，实时成像。强势－去除背景噪音，可定量分析荧光强度。经济－高性价比。肿瘤成像● 利用绿荧光蛋白稳定细胞系来获取肿瘤影像。● 凭借亮度测量，FOBI可检测抗肿瘤活性而无需牺牲动物。● 追踪荧光信号，FOBI可判定癌转移的位置与范围。 细胞追踪● FOBI可确认标靶细胞的存活与位置所在--这些标靶细胞因应不同目的而制成。● 利用病毒载体导入荧光基因存在若干问题；干细胞和免疫细胞经荧光染料染色后，可马上用于动物体内检测。 体外实验● 在动物体内成像数据的结果可借体外成像再次确认。● 在动物牺牲后，荧光信号可持续显现。通过分离组织可取得标本，从而再定量荧光影像。●上述的体外数据可为实验做很好的数据支撑并增加测试的可靠度。 植物成像● FOBI可记录并定量分析植物叶片--由于叶绿素的自发荧光，此功能在同类产品中极难实现！● FOBI的彩色摄影机不仅能记录绿荧光蛋白之绿色荧光，也能摄取红色荧光。因此您也能检测植物的健康状况。● 您能在同一叶片上进行绿荧光蛋白分析也能检测其健康状况。● FOBI能就种子和 (植物伤口)愈合组织成像。● 您可籍FOBI观察植物包含整个生长期与再生期的功能。分 析● 您可利用NEOimage软件去除荧光背景噪声。此功能将提升定量分析的精确度。 请关注玉研仪器的更多相关产品。如对产品细节和价格感兴趣，敬请来电咨询！

FC 1000-H/GFP便携式GFP/叶绿素荧光成像系统是FC 1000-H 的功能增强版本，既能做叶绿素荧光成像也能做GFP成像研究。该系统被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数和GFP表达情况成像进行动力学解析，典型的研究区域为3.5 x 3.5 cm。在所有应用中，系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像，光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了最常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言，熟练的研究人员可以设计自己的闪光序列和测量过程。FC 1000-H/GFP便携式GFP/叶绿素荧光成像系统是一个轻巧的便携系统，尤其适用于野外实验。系统可以通过肩背便携包中的密封铅酸电池在野外进行供电，稳固轻巧的三脚架使得野外测量变得简单易行。应用领域 转基因表达和定位植物光合特性和代谢紊乱筛选生物和非生物胁迫的检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究工作原理FC 1000系列植物荧光成像系统用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程(瞬变)都可被摄取，从而提供2维荧光图像。测量与计算参数多达50多个：F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合电子传递率ETR等。这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或基因突变造成的荧光变化。典型样品 海藻，蓝藻群落整株小植物植物冠层，叶片或者果实小动物其它功能特点：实验过程和测量参数 GFP表达强度与分布位置成像Meter功能荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析光响应曲线分析可测量与计算多达50个参数: Fo, FM, Fs, Fo&rsquo , FM&rsquo , FV&rsquo , QY(II)， NPQ, FV/FM, FV&rsquo /FM&rsquo , Rfd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它。技术参数 可测荧光参数：(F0, FM, FV, FO' , FM' , FV' , QY(II)), or 计算参数 (e.g., NPQ, FV/FM, FV' /FM' , Rfd, qN, qP),光合电子传递速率 ETR,及其它4块超亮LED光源板，尺寸4 X 4 cm；均一照明面积3.5 X 3.5 cm。测量光为620nm红光， 455 nm蓝光，持续时间10µ s - 250µ s可调；光化光，标配蓝光蓝光: 大约350 µ mol(photons)/m² .s饱和光，标配蓝光蓝光: 最高 1,000 µ mol(photons)/m² .s远红光：IR735nm给光制度：静态或者动态模式自定义实验程序：多样化的时间顺序，专门的程序语言和脚本CCD检测器带宽：400 &ndash 1000 nmCCD 制式：512 x 512 像素 可选 640 x 480 像素或 1392 x 1040 像素像素尺寸：8.2 µ m x 8.4 µ mA/D 转换分辨率：12 位光谱响应：540 nm处量子效率最高(70 %),400 nm 和 650 nm 处转降50 %读出噪音：低于12eRMS，典型10e满阱容量：大于 70,000 e (unbinned)成像频率：50 张图片每秒Bios：固件可升级通讯方式：USB 2.0重量：1.8 kg叶夹重量：0.2 kg供电模块重量：2.5 kg支架重量：1.5 kg笔记本重量（含所有附件）：3.5 kg耗电Max.：200 W供电电压：90 &ndash 260 V ；AC或蓄电池供电尺寸：21.5 cm x 13.5 cm x 13.5 cm 操作软件与实验结果 内置常用测量程序用户可自定义实验程序，界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持，便于批量处理样品数据可导出为excel· FluorCam 软件界面Windows 2000, XP, Vista兼容 典型应用：产地：欧洲请致电索取参考文献列表

■产品特点 OI全自动化学发光/荧光成像系统具有超高灵敏度深冷CCD相机及大光圈镜头的一台多功能成像分析系统，搭载了RGB荧光光源、IR红外光源、紫外光源、白光光源，可检测化学发光、荧光、紫外、白光等样品，满足客户多种实验需求。 ■产品应用印迹膜：Chemiluminescent、 ECL、ECL plus、CDP Star、SuperSignal、CSPD、 LumiGlo、Cy2、Cy3、Cy5、Cy5.5、Cy7、FITC、Alexa Dyes、DyLight Dyes、ProQ Diamond、ProQ Emerald 300、ProQ Emerald 488、IR Dye 680、IR Dye 780等。核酸检测：EB,SYBRGold, SYBRGreen, SYBRSafe, GelRed, GelGreen，Fluorescein, 等标记的DNA/RNA检测各种染料。蛋白检测：考马斯亮蓝胶，银染胶，以及各种可见染标记胶/膜等；其他应用：各种杂交膜、蛋白转印膜、培养皿菌落计数、酶标板、点杂交、蛋白芯片、TLC板 ■产品参数型号：OI600 MF 多功能成像仪型号：OI 900MF多功能成像仪分辨率：605万像素分辨率：1200万像素1ms-120min曝光时间：1ms-120min感光效率：High QE: 75%感光效率：High QE: 79%像数密度：16 bit （0 - 65535色）像数密度：16 bit （0 - 65535色）像数尺寸： 4.54um×4.54um像数尺寸： 4.54um×4.54um像素合并：1×1 2x2 4x4 8x8像素合并：1×1 2x2 4x4 8x8动态范围：﹥4.8个数量级动态范围：﹥4.8个数量级RGB光源：选配 （蓝光） （绿光） （红光）LED或激光RGB光源：选配 （蓝光）（绿光） （红光）LED或激光IR 光源：选配红外 680nm、780nm（IR和RGB二选一） LED或激光IR 光源：选配红外 680nm、780nm（IR和RGB二选一） LED或激光紫外透射：紫外 302nm+365nm，可选配透射蓝光紫外透射：紫外 302nm+365nm，可选配透射蓝光白光透射：有白光透射：有白光反射：有白光反射：有紫外反射：紫外302nm、254nm、365nm任选一组紫外302nm、254nm、365nm任选一组滤光镜轮：根据配置选2、5、7位滤光轮根据配置选2、5、7位滤光轮滤光镜片：标配590nm，可选520nm、570nm、 670nm、720nm、 820nm可定制滤光镜片：标配590nm，可选520nm、570nm、 670nm、720nm、 820nm可定制定时关闭：1～60分钟定时关闭：1～60分钟触控系统：可选配13寸触控内置系统触控系统：可选配13寸触控内置系统触控型号：OI600MF Touch触控型号：OI900MF Touch

FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统将气体交换测定功能和叶绿素荧光成像功能有机结合：既能够测定植物的光合速率、蒸腾速率、气孔导度等光合作用参数，全面衡量植物光合作用的强度和能力；又能够对植物的叶绿素荧光参数进行二维成像，反映光合作用过程中光系统对光能的吸收、传递、耗散、分配及光合特性的空间异质性。FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统能够全面测定光合作用的过程（包括原初反应、电子传递、碳同化等阶段），充分了解光合作用的物质转化和能量交换，从而对光合作用进行完整评估和直观呈现。 应用领域植物光合生理研究、植物胁迫逆境研究、优质作物品种筛选、植物固碳研究、全球气候变化研究技术特点强强结合：全球首台野外便携式光合仪（1983年）和全球首部商用叶绿素荧光成像仪（1996年）均出在生产厂家。FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统是数十年研发积累和技术经验的结晶——成熟耐用，值得信赖。 功能强大：荧光成像功能能够借助内置程序，自动测量Fv/Fm、NPQ、ΦPSII、qP、qN、Rfd、ETR等叶绿素荧光参数及对每个参数进行二维成像；光合仪能够自动测定同化速率（A）、蒸腾速率（E）、胞间CO2（Ci）、气孔导度（Gs）、叶片温度、光合有效辐射，运行光响应程序和CO2响应程序。配置灵活：可选配GFP荧光成像功能，用于转基因作物筛选和对植物个体水平的基因表达进行定位和分析。可选配OJIP快速荧光曲线测量模块，快速获取反映植物光能吸收、传递、转化、耗散及光合电子传递状况的26个JIP-test参数。可选配植物光谱及植被指数测量模块，轻松获取植物反射光谱曲线并直接获取NDVI、PRI等数十个反映植物色素含量、光能利用效率、健康状态的生理参数。可选配植物多酚-叶绿素测量模块，对色素含量进行测定，包括Chl叶绿素指数、Flav类黄酮指数、NBl氮平衡指数（Chl/Flav 比值）、Anth 花青素指数。 多使用场景：系统便携性强，非常适合长时间野外调查和大田试验，也可用于实验室、温室等可控环境下的基础研究，是植物学、农学研究的必备仪器。 技术参数1. 光合测量部分1.1 CO2测量范围：0-3000ppm1.2 CO2测量分辨率：1ppm1.3 CO2采用红外分析，差分开路测量系统，自动置零，自动气压和温度补偿1.4 H2O测量范围：0-75 mbar 1.5 H2O测量分辨率：0.1mbar1.6 PAR测量范围：0-3000 μmol m-2 s-1，余弦校正1.7 叶室温度：-5 - 50℃ 精度：±0.2℃1.8 叶片温度：-5 - 50℃ 1.9 空气泵流速：100 - 500ml / min1.10 CO2控制：由内部CO2供应系统提供，最高达2000ppm1.11 H2O控制：可高于或低于环境条件1.12 温度控制：由微型peltier元件控制，环境温度-10℃到+15℃，所有叶室自动调节1.13 PAR控制：RGB光源最大2400μmol m-2 s-1，LED白色光源最大2500μmol m-2 s-11.14 可选配多种带有光源的可控温叶室、叶夹1.15 显示：彩色WQVGA LCD触摸屏，480 x 272像素，尺寸95 x 53.9 mm，对角线长109mm1.16 数据存储：SD卡，最大兼容32G容量1.17 数据输出：Mini-B型USB接口，RS232九针D型接口，最大230400波特率PC通讯1.18 供电系统：内置12V 7.5AH锂离子电池，可持续工作至16小时，智能充电器1.19 尺寸：主机230×110×170mm，测量手柄300×80×75mm1.20 重量：主机4.1Kg，测量手柄0.8Kg1.21 操作环境：5到45℃2. 荧光成像部分2.1 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像2.2 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数2.3 高分辨率TOMI-2 CCD传感器最高图像分辨率：1360×1024像素时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）像元尺寸：6.45µ m×6.45µ m运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量通讯模式：千兆以太网2.4 高分辨率TOMI-2 CCD传感器（选配）2.5 成像面积：35mm×46 mm2.6 光源板：4块超亮LED光源板，每个光源板由5×5 LEDs阵列，尺寸4×4 cm2.7 测量光：620nm红光，持续时间10µ s–100µ s可调2.8 饱和光：标配白光，可选蓝光（455nm）或红光（620nm）白光：最高 3900 µ mol(photons)/m² .s 蓝光：最高 4900 µ mol(photons)/m² .s红光：最高 3800 µ mol(photons)/m² .s2.9 光化学光：标配白光，可选蓝光（455nm）或红光（620nm）白光：0–1000 µ mol(photons)/m² .s 蓝光：0–1400 µ mol(photons)/m² .s红光：0–800 µ mol(photons)/m² .s2.10 远红光：735nm，用于测量Fo’，4颗高能LED2.11 FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单2.12 客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序2.13 自动测量分析功能：选配，可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）2.14 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）2.15 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等 2.16 给光制度：静态或动态（窦式）2.17 CCD检测范围：400–1000nm 2.18 光谱响应：540nm处量子效率最高（70 %），400nm和650nm处转降50%2.19 读出噪音：低于12eRMS，典型10e2.20 满阱容量：大于70,000 e (unbinned) 2.21 Bios：固件可升级2.22 通讯方式：千兆以太网2.23 主机重量：1.8 kg 2.24 主机尺寸：21.5 cm×13.5 cm×13.5 cm2.25 叶夹：用于夹持测量叶片并进行暗适应2.26 支架系统：1）室内支架，可调整测量高度和角度，用于实验室内测量；2）三角支架（选配），防水防锈材料设计，满足测量稳定性，高度角度可调，最高测量高度1.5m，用于野外测量2.27 供电方式：1）90–240 V交流电，配有专用防电涌稳压电源；2）专用野外电池包（选配），一次充电可支持10小时以上不间断测量2.28 最大功率：200 W 应用案例1. 捷克帕拉茨基大学的研究人员使用FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统测定了热激预处理前后感染白粉病的番茄的气体交换参数及叶绿素荧光参数（成像），发现热激处理不会显著影响中等抗性基因型番茄的白粉病抗性和光合响应，但会增加易感基因型的易感性(Prokopová et al., 2010)。 2. 葡萄牙阿威罗大学的科研人员研究发现松树对脂溃疡病菌感染在时间序列上的生理响应依赖于宿主的易感水平，而脱落酸的分解代谢在此过程中发挥着重要的作用(Amaral et al., 2021)。FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统则被用来测定易感品种和抗性品种在感染过程中的光合表现。 3. 日本日本鹿儿岛大学农学院的科研人员使用FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统研究了温度光照对百香果“夏日皇后”和“红星”光合特性的影响。发现两个品种的百香果在高温下的光合特性存在差异：“夏日皇后”在高温下受到了严重的伤害，而“红星”在高温下保持其蒸腾和NPQ值从而降低了高温胁迫的影响(Shimada et al., 2017)。 国内安装案例 参考文献1.Amaral, J., Correia, B., Escandón, M., Jesus, C., Serô dio, J., Valledor, L., Hancock, R.D., Dinis, L.-T., Gomez-Cadenas, A., Alves, A., et al. (2021). Temporal physiological response of pine to Fusarium circinatum infection is dependent on host susceptibility level: the role of ABA catabolism. Tree Physiology 41, 801–816. 2.Oliveira, D.C., Moreira, A.S.F.P., Isaias, R.M.S., Martini, V., and Rezende, U.C. (2017). Sink Status and Photosynthetic Rate of the Leaflet Galls Induced by Bystracoccus mataybae (Eriococcidae) on Matayba guianensis (Sapindaceae). Front. Plant Sci. 8, 1249. 3.Oliveira, T.M., Yahmed, J.B., Dutra, J., Maserti, B.E., Talon, M., Navarro, L., Ollitraut, P., da S. Gesteira, A., and Morillon, R. (2017). Better tolerance to water deficit in doubled diploid ‘Carrizo citrange’ compared to diploid seedlings is associated with more limited water consumption. Acta Physiol Plant 39, 1–13. 4.Porcar-Castell, A., Tyystjä rvi, E., Atherton, J., van der Tol, C., Flexas, J., Pfündel, E.E., Moreno, J., Frankenberg, C., and Berry, J.A. (2014). Linking chlorophyll a fluorescence to photosynthesis for remote sensing applications: mechanisms and challenges. Journal of Experimental Botany 65, 4065–4095. 5.Prokopová, J., Mieslerová, B., Hlavá&ccaron ková, V., Hlavinka, J., Lebeda, A., Nau&scaron , J., and &Scaron pundová, M. (2010). Changes in photosynthesis of Lycopersicon spp. plants induced by tomato powdery mildew infection in combination with heat shock pre-treatment. Physiological and Molecular Plant Pathology 74, 205–213. 6.Shimada, A., Kubo, T., Tominaga, S., and Yamamoto, M. (2017). Effect of Temperature on Photosynthesis Characteristics in the Passion Fruits ‘Summer Queen’ and ‘Ruby Star.’ The Hortic J 86, 194–199.

近红外二区小动物活体成像系统 MARS 拥有完整的小动物活体光学成像系统，并可个性化定制，满足不同需求。 MARS的近红外二区相机采用Teledyne Princeton Instruments 的NIRvana系列，其出色的量子效率与先进的噪声抑制技术为高品质成像提供保证。 FAST与Pathfinder两套定制的光学方案能实现不同场景的实验需求，从大视场下对小鼠的整体拍摄，到局部的微观分析，我们独特的光学解决方案在保证空间分辨率的前提下，为您提供优异的光通量与信号强度。 MARS系统采用别具匠心的整体设计，开放的用户界面带来独特的便捷性与灵活性。模块化的设计可以方便用户扩展功能，并可整合超声，光声，CT断层扫描，荧光寿命，PET-CT，MRI等成像系统，提供无缝多模态成像解决方案。 小鼠血管荧光成像， 使用水溶性D-A-D小分子染料（QY≈1.2%）

Invitrogen™ EVOS™ M5000细胞成像系统为您的科学研究带来简便、自动化细胞成像。一体化设计包含高灵敏单色相机和独特的彩色照明系统，精密的光路系统，直观的成像和操作系统，可帮助生物学家快速获得高质量细胞和组织样品图像，并可对细胞进行定量分析。荧光和彩色明场成像EVOS M5000采用科研级CMOS高清相机，适合各种细胞和组织样品荧光成像，即时获得可供发表的精美图像。独特的彩色照明系统，轻松拍摄免疫组化、H&E等明场样本，图片色彩更保真。Z-stack成像EVOS M5000具有自动聚焦功能，成像系统可以对不同聚焦平面进行Z-Stack扫描；不仅可以拍摄到同一视野下不同层面的图像，还能从每张图像中提取聚焦效果非常不错的像素，生成Maximum Projection图像，或进行三维重构。适合厚组织样本、神经元及网络研究、3D细胞微球等样品成像。活细胞检测配备EVOS台式Onstage Incubator活细胞培养室，精确控制湿度、温度、CO2、O2或N2浓度，模拟生理环境，通过时间序列成像对活细胞生长进行监测。适用于细胞缺氧实验、胚胎发育、细胞迁移等动态观察应用。用Image-iT Hypoxia缺氧指示剂和NucBlue活细胞核染料染A549细胞，暴露于不同氧浓度。左图20% O2条件下，仅呈现蓝色细胞核；右图1% O2条件下，观察到明显红色Hypoxia试剂信号，表明细胞缺氧。成像和分析一体化操作系统只需轻点鼠标，即刻拍摄多通道荧光成像和彩色明场成像。可随时在操作界面上快速切换物镜、荧光通道，调节光强度、曝光时间等参数，选择手动或自动聚焦模式拍摄样本。然后，在分析界面对细胞图像进行定量分析，如细胞计数、细胞活力等应用。Jurkat细胞热处理(60?C处理1小时)后，应用ReadyProbes 细胞活力试剂盒染色，通过EVOS M5000成像，DAPI（蓝色）染所有细胞，NucGreen dead 488（绿色）染死细胞，成像操作软件自动识别细胞并输出每个通道细胞个数，计算细胞活力。