植物荧光仪

袖珍植物叶绿素荧光仪/植物效率分析仪产品介绍： 袖珍植物叶绿素荧光仪/植物效率分析仪可准确记录叶绿素荧光诱导动力学曲线的快相部分，每秒钟可以连续记录10万次荧光踪迹数据，能在1秒钟内完整测定叶绿素的OJIP 荧光诱导曲线，测定的基本参数为：Fo，Fm，Fv，Fv/Fm，Tm（Fm出现的时间），Fo与Fm曲线之间的面积（该面积反映PSII电子受体库的大小），PI（光合性能指数），以及由OJIP荧光诱导曲线计算出来的全部参数，屏幕直接显示Fv/F及PI参数。技术参数：1.每秒钟连续记录10万次荧光踪迹数据， 1秒钟内完整测定叶绿素的O J I P 荧光诱导曲线。2.存储200个1秒钟的荧光动力学曲线的全数据。3.光源：红色二极管聚光光源，波长峰在650nm，谱线半宽22纳米，叶片表面光强度为3500 μmolm-2s-1, 记录时间有1秒和10秒2个选择档次。4.内置锂电池，连续使用时间长达4小时。5.测定参数：FO， Fm，Fv，Fv/Fm，Ft ，FJ ，FI，FP ，Tm, ψO，φEo，φDo，Vt，VJ，WK，PIABS，PICS，ABS/RC，TRO/RC，ETO/RC，DIO/RC，RC/CSO，RC/CSM等五十多个OJIP荧光诱导曲线计算出来的荧光参数。产品特点：具有单键操作的快速筛选功能板载存储多达 200 个完整数据集自动计算参数，包括 Fv/Fm 和 OJIP 分析带有密封高强度光学器件的坚固外壳100kHz 采样频率，16 位分辨率标配 Bluetooth? 无线数据传输包含强大的 Windows数据传输和分析软件技术参数：尺寸：175毫米(长)x 75 毫米(宽)x 35 毫米(深)重量：250g通信：Bluetooth? 无线通信运行条件：0°C – 40°C、非冷凝湿度。电池：环保(0%铅、镉汞)锂聚合物3.7V，570 mAhr充电器：一体式开关模式充电器输入电压 100V – 240V 50Hz – 60Hz输出电压 12V DC输出电流 3 安培。显示：2 行 x 12 字符 LCD 显示屏照明：具有 NIR 短通截止滤光片的光学稳定、聚焦、亮红色 LED峰值波长 627nm。*大限度、叶面强度：高达 3,500 μmol m -2 s -1检测器：具有 RG9 长通滤波器的快速响应 PIN 光电二及管电子产品：高性能16位微控制器16位分辨率 A/D 10微秒采集速率用于光源控制的8位 DAC实时时钟。记录长度：1、3 或 10 秒记忆：512 Kbits 非易失性存储器足以进行多达 200 次、时长10秒的完整跟踪数据记录。

用途：Pocket PEA为高速连续激发式荧光仪。袖珍型，超便携，坚实耐用。用于测定各种形状植物叶片、藻类、苔藓、地衣及叶绿体等快速叶绿素荧光诱导曲线，研究植物光合机构的光化学活性、光能的吸收和转化效率等。研究植物在不同环境下的光合效率、筛选高光效植物品种、植物抗逆性、转基因植物功能分析等。还可应用于遗传育种、除草剂功能、病虫害防治及污染监测等。主要应用于植物生理学、植物生态学、农学、园艺学、林学、环境科学、植物病理学、藻类生物学等领域。测定参数：全新软件可直接计算出FO，Fm，Fv，Fv/Fm，Ft，FJ，FI，FP，Tm, ψO，φEo，φDo，Vt，VJ，WK，PIABS，PICS，ABS/RC，TRO/RC，ETO/RC，DIO/RC，RC/CSO，RC/CSM等五十个叶绿素荧光参数。技术参数：功能准确记录叶绿素荧光诱导动力学曲线的快相部分，每秒钟可以连续记录10万次荧光踪迹数据，在1秒钟内完整测定叶绿素的OJIP荧光诱导动力学曲线，计算出FO，Fm，Fv，Fv/Fm以及由OJIP荧光诱导曲线计算出的全部荧光参数测定参数全新软件可直接计算出FO，Fm，Fv，Fv/Fm，Ft，FJ，FI，FP，Tm, ψO，φEo，φDo，Vt，VJ，WK，PIABS，PICS，ABS/RC，TRO/RC，ETO/RC，DIO/RC，RC/CSO，RC/CSM等五十个叶绿素荧光参数。光源红色二极管聚光光源，波长极值在650 nm，谱线半宽22 nm，叶片表面光强度3500µ mol m-2s-1处理器高性能16位微控制器，16位分辨率A / D 10μs采集速率，用于光源控制的8位DAC存储存储200条叶绿素荧光动力学曲线的全数据和参数记录时间有1秒、3秒和10秒3个选择档次软件功能强大的数据传输及分析软件传输蓝牙无线传输数据电池内置可充电锂电池，可连续使用4小时体积175×75×35 mm重量0.25Kg

世界上第一台活体浮游植物分类和生物量在线测量系统 与市场上常见的测量快速荧光，通过经验标定曲线得到浮游植物的分析和生物量不同，延迟荧光技术已成为研究热点。延迟荧光是在PS II 黑暗中的电子逆流过程中，电子和洞穴共同释放的。只有具备光合功能的细胞才能释放延迟荧光，而快速荧光技术测量的是所有能释放荧光的物质，包括死的浮游植物和腐殖质。）、硅藻（包括硅藻门、金藻门、黄藻门等）和隐藻类，增强型配置可以分到六类，从而把潜在的有害藻类蓝藻区分开来，精确地检测水华的爆发和消失。下图为2003年在欧洲Balaton湖监测到的数据。DF浮游植物延迟荧光测量单元主要特点如下：具触延迟荧光技术可有效屏蔽再悬浮、死的生物和腐殖质对测量精度的干扰，其它荧光测量技术无法实现。延迟荧光仪可精确探测藻类和水华的形成和消亡。延迟荧光技术和普通快速荧光技术的这一不同对浅水湖或河流能起到决定性的作用，特别是那些经常发生再悬浮和洪浪，从而将一定量的退化藻类或没有光合功能的藻类带入水体的区域。 功能： l 测量藻类浓度l 标准配置可识别蓝包括蓝藻、绿藻（包括绿藻、裸藻等）、硅藻（包括硅藻、金藻、黄藻等）和隐藻类 4种藻类，可扩展到6中藻类。l HAB 识别l 野外自动测量光合速率动态变化 技术指标：测量参数：4种浮游植物及生物量，可选增强型群落识别及光合速率-光曲线测量频率：每小时6-10次生物量分辨率：1-5ug CHl-al-1 (3-4个数量级)种类检测分辨率：4种藻类（可扩展到6种）精度±5％采样： 12VDC 采样泵工作模式：自动/手动用户界面：触摸屏，可以显示所有运行参数通信：USB口，可以很方便地用USB盘下载数据。也可通过英特网远程控制、数据下载乃至 硬件诊断，对Windows操作系统和苹果Mac操作系统都兼容其它：带GPS卫星定位系统，可以方便地定位，从而实现定位、定性和定量监测 2003年在欧洲Balaton湖的监测数据参考文献： Istvánovics V.， Honti M.， Osztoics A.， H. M. Shafik， Padisák J.， Y. Yacobi and W. Eckert (2005) On-line delayed fluorescence excitation spectroscopy，as a tool for continuous monitoring of phytoplankton dynamics and itsapplication in shallow Lake Balaton (Hungary). Freshwater Biology 50:1950-1970.Honti M.， Istvánovics V. and Osztoics A. (2005) Measuring and modelling in situ dynamic photosynthesis of various phytoplankton groups. Verh. Internat. Verein. Limnol. 29: 194-196.Honti M.， Istvánovics V. and Osztoics A. (2007) Stability and change of phytoplankton communities in a highly dynamic environment ? the case of large， shallow Lake Balaton (Hungary). Hydrobiologia 581: 225-240.Honti M.， Istvánovics V. and Kozma Zs. (2008) Assessing phytoplankton growth in River Tisza (Hungary). Verh. Internat. Verein. Limnol. 30 (1):87-89.Istvánovics V. and Honti M. (2008) Longitudinal variability in phytoplankton and basic environmental drivers along Tisza River， Hungary.Verh. Internat. Verein. Limnol. 30 (1): 105-108.

产品简介高通量植物荧光表型检测平台可以定制化的对小型样品进行荧光图像采集，通过定制化的数据分析软件连续720小时以上获取各类小型植物荧光图像参数以及动态参数，可用于拟南芥，烟草等小型植物的表型研究。应用领域植物病理研究作物抗病研究植物动态生长发育研究主要配置成像单位像素：14μm成像单元类型：高分辨率CCD相机照明位置：顶部，侧部 照明光源类型：紫外灯（荧光成像光源），日光灯（生长光源）尺寸：2000*2000*2000mm（长宽高）电源：单相 220VAC控制装置：WindowsPC控制机柜软件：在线控制，图像处理，数据分析主要性能参数可测参数：荧光图像亮斑个数，纹理，面积变化趋势，荧光亮度变化趋势等效率：5s/株检测方式：在线实时采集数据存储：JPG格式实存储数据分析：EXCEL格式自动存储系统稳定性：连续工作720h以上工作环境温度：0-50℃产品图片高通量植物荧光检测平台、荧光图像采集软件图、数据分析图（a）为原始荧光图像，（b）为分割伪彩图。公司简介谷丰光电（GREENPHENO）致力于植物表型，农业科研和机器视觉系统集成领域，具备核心图形处理、光机电控制、以及系统集成技术，掌握一批自主知识产权。主营业务包含：水稻数字化考种机；玉米在体、离体数字化考种机；全自动银染显影仪；双目视觉谷粒检测仪；叶片表型快速分析仪；水稻穗长测量系统；高通量植物分蘖测量系统；高通量植物表型参数自动提取系统等光机电一体化仪器设备定制，应用软件及算法开发。谷丰光电将立足于高端农业科研仪器、植物表型系统，坚持高科技、高价值、高效益三大目标，打造实力品牌优势、系统优势和价值优势的知名光电企业。

YZQ-500F植物荧光动力学测量系统，是我公司自主研发对叶绿素进行快速连续动态荧光测量（O-J-I-P）和脉冲测量的光合测量系统。该仪器主要特色是US级别的荧光细微变化监测，可测量动态荧光动力学O-J-I-P曲线。同时又进行脉冲测量得到FM’、Fs等参数，仪器内置锂电池，可持续工作24小时。可配置台式暗适应夹对叶片日变化的荧光动力学观测。希望能对光生物学理论研究和实际应用做点贡献。仪器性价比非常高，设计智能化。仪器主要功能：（1.1）快速荧光动力学曲线测定（获得OJIP等最大光化学效率）。（1.2）瞬态脉冲曲线测定（获得PSII天线尺寸、PSII连通性(p)以及QA-氧化速率等生理参数）。（1.3）暗驰豫荧光动力学（获得qE组分、qT组分和qI组分的尺寸）。（1.4）脉冲荧光动力学（获得实际光化学效率和NPQ等）。（1.5）Fo’, Fm’的测定。测试数据：草莓快速荧光动力学曲线

mini-FIRe浮游植物荧光仪在实验室和海洋中构建用于测量浮游植物生物量、生理学和光合作用的高级荧光系统1. 研究目的和内容 研究目的 该项目的目的是建造一种小型的台式仪器，称为F荧光I诱导和R驰预（mini-FIRe）系统，用于离散样品分析和连续测量浮游植物在海洋中的丰度和生理状况。与Rutgers团队发明和开发的前代FRRF和FIRe荧光仪不同，新仪器将表现出增强的灵敏度（约10倍），可实时提供更多生理参数。新仪器的极端灵敏度使得它们对于在公海的实地工作有巨大价值。 研究内容 使用可变荧光技术对浮游植物和其他光合作用生物的光合作用活性的评估 - 光合作用生物的生理状态的快速和无损评估依赖于使用快速重复率荧光学 （FRRF） 及其技术后续荧光感应和放松 （FIRE） 技术。这项技术是由Rutgers团队发明和开发的。评估光合作用生物生存能力的基本方法依赖于叶绿素"可变荧光"剖面的测量和分析，叶绿素是光合作用机构特有的特性（Falkowski等人于2005年对此进行了审查）。"可变荧光"技术依赖于叶绿素荧光与光合作用过程效率之间的关系，并提供了一套全面的荧光和光合作用参数的有机体。光学测量是灵敏的，快速的，无损的，可以实时和原位完成。 这种专利方法和已实现的仪器学原理是在同行评审文献中确立的（Falkowski and Kolber 1995 Kolber at al., 1998 Gorbunov et al., 2000, 2001 Gorbunov and Falkowski 2004）。最初是为研究水柱中的浮游植物而开发的，FRR技术提供了前所未有的信息，说明浮游植物群落的运作以及控制海洋初级生产力的环境因素的影响（e.g., Falkowski and Kolber 1995 Falkowski and Raven 2007 Behrenfeld et al., 1996 Coale et al, 2004 Falkowski et al, 2004）。使用台式和潜水式FRR和FIRe荧光仪成为美国和世界上大多数生物海洋学项目不可分割的一部分。 已开发出F荧光I诱导和R驰预（FIRe）技术 ，以测量光合作用生物的一套全面的光合作用和生理特征（Gorbunov and Falkowski 2005）。 FIRe 技术基于对由一系列激发闪光引起的荧光瞬态的记录和分析，这些闪光的强度、持续时间和间隔精确控制（图 1 和 Gorbunov and Falkowski 2005）。 该技术提供了一套全面的参数，这些参数的特点是光合作用采光过程、光系统 II （PSII） 中的光化学以及光合作用电子传输到碳固定。由于这些过程对环境因素特别敏感，FIRe 技术为识别和诊断自然（营养限制、光化学和光刺激、热应力等）和人为应激因素（如污染）提供了基础。图1。FIRe 荧光瞬时的例子。荧光产量的动力学记录为微秒时间分辨率，包括四个阶段：（第一阶段，100 ms）100 ms的强短脉冲（称为单周转闪光，STF）适用于累积饱和PSII，并测量从Fo到Fm（STF）的荧光感应：（第二阶段，500ms）弱调制光用于记录500ms时间尺度上荧光产量的放松动能：（第三阶段，50 ms）50ms 持续时间的强长脉冲（称为多周转闪光，MTF）用于饱和 PSII 和 PQ 库：（第 4 阶段，1 s） 弱调制光用于记录 PQ 库在 1s 的时间尺度内再氧化的动力学。 第 1 阶段的分析提供：最低和最大荧光产量（Fo，Fm）；PSII光化学电荷分离的量子效率Fv/Fm（STF）；PSII 的功能横截面，σPSII 和连接因子（p）。第 2 阶段为 PSII 接收方的电子传输提供时间常数（即Qa 受体侧再氧化）。第 3 阶段提供 Fm（MTF）和 Fv/Fm（MTF）。第 4 阶段揭示了 PSII 和 PSI 之间的电子传输时间常数（PQ 库的再氧化）。 可变荧光技术的生物物理背景- 在室温下，叶绿素荧光主要产生于PSII。当PSII反应中心处于开放状态（Qa氧化）时，荧光产量极小，Fo。当 Qa 还原（例如，通过暴露在强光下）时，反应中心关闭，荧光产量增加到其最高水平 Fm。为了检测Fo和Fm，FIRe技术记录了由强烈的饱和脉冲光（~100 μs，称为单周转闪光，STF）引起的荧光感应（图1第1阶段）。荧光感应率与PSII的功能吸收横截面成正比，而荧光上升的相对幅度Fv/Fm则由PSII光化学的量子效率来定义。荧光感应的形状由单个光合作用单元之间的激发量转移控制，并由"连接因子"（Kolber et al. 1998）定义。因此，在没有能量转移（p = 0）的情况下，荧光感应呈指数级，当p 增加到 ~0.5 到 0.7 的最大值时，就会变成反曲线。 PSII 受体侧电子传输的动能（即Qa再氧化）是通过 STF 之后的荧光驰预动力学分析（图 1 第 2 阶段）评估的。荧光动力学由几个部分组成，因为Qa再氧化的速度取决于第二个电子受体Q b的状态，Qb作为移动双电子受体工作：Qa- Qb → Qa Qb- (150 - 200 ms) (1)Qa- Qb- → Qa Qb= (600 - 800 ms) (2)Qa- _ → Qa- Qb → Qa Qb- (~ 2000 ms) (3) 反应 （3） 与 Qb 最初脱离 D1 蛋白结合位点时的条件相对应。此外，一小部分电子传输受损的失活反应中心可能有助于驰预动力学中最慢的组件。FIRe 软件使用 3 组件分析处理驰预动力学，以检索电子传输的时间常数（即 Q 氧化 tQa）。 PSII 和 PSI 之间的电子传输的时间常数 tPSII-PSI 是从多周转闪光（MTF，图 1 中的第 3 阶段和第 4 阶段）之后的荧光驰预动力学分析中检索到的。 在大多数生理条件下，这个时间常数是由质体醌（PQ）库再氧化的速度决定的，并且是一个数量级比tQa慢一个数量级。 测量一系列环境光强的FIRe荧光参数，可以重建光合作用电子传输的速率，Pf，作为光强的函数（光合作用与光强曲线）（Kolber and Falkowski, 1993）。Pf 与光照产物和环境光下测量的光化学量子产量成正比（DF' /Fm' ）。分析这些光合作用与光强曲线提供了光合作用最大电子传递速率（Pmax）和光饱和系数（Ek）。光合作用与辐射测量使用 FIRe 的光化光源 （ALS） 进行，该光源通过 FIRe 数据采集软件由计算机控制。 研发背景和专业知识 – Rutgers团队的成员在可变荧光技术和方法的研发方面积累了超过 20 年的经验。他们发明并开发了10多项生物物理研究的独特仪器（参见相关专利和同行评审出版物的附录参考清单），包括： ● Pump-and-Probe Fluorometer (Kolber and Falkowski, 1986) ● Pump-and-Probe LIDAR (Gorbunov et al. 1991) ● Fast Repetition Rate (FRR) Fluorometers (Kolber at al. 1993 1998) ● Single-Celled FRR Fluorometer (Gorbunov et al. 1999) ● Diver-operated FRR Fluorometer (Gorbunov et al. 2000) ● Moorable FRR Fluorometer (Gorbunov et al. 2001) ● FIRe System (Gorbunov and Falkowski 2005) ● Diving-FIRe System (Gorbunov 2012) ● Mini-FIRe System (Gorbunov 2013). 2. 仪器介绍 mini-FIRe基于与之前台式FIRe仪器相同的生物物理原理（Gorbunov and Falkowski 2005），但新仪器更紧凑3倍，灵敏度提高10倍。叶绿素浓度的下限低至 ~0.005 mg/m3，这使得mini- FIRe对于在公海进行现场采样非常有价值。 在这里，Rutgers团队提议建造一个mini-FIRe（图2）该仪器将用于离散样品分析（例如，从站点的尼斯金瓶收集的样品）和/或在海洋中持续进行取样。仪器将配备一个流经的样品室，用于连续绘制浮游植物生物量和光合作用特性。以下是mini-FIRe记录的生理参数列表和仪器技术规格mini-FIRe（图2）。该仪器将用于离散样品分析（例如，从站点的尼斯金瓶收集的样品）和/或在海洋中持续进行取样。该仪器将配备一个流经的样品室，用于连续绘制浮游植物生物量和光合作用特性。以下是mini-FIRe记录的生理参数列表和仪器技术规格。图2 mini-FIRe荧光仪，具有增强的灵敏度。测量参数：●暗适应后最小和最大荧光产量（Fo， Fm）●光适应下有效、最小和最大荧光产量（F' ， Fo' ， Fm' ） *●光系统II、PSII 中光化学最大有效量子产量（Fv/Fm 和DF' /F m））●三波长下功能性PSII吸收截面积（sPSII）●光合作用单元之间的能量转移效率（"连接因子"）●PSII 受体侧电子传递时间常数（Q a 到Qb，Qa 到 Qb-）●PSII 和 PSI 之间的光合作用电子传输时间常数●电子传递速率，ETR，作为光强的函数 *●光化学淬火系数 （qP）和非光化学淬火系数 （NPQ） *●最大光合速率、初始斜率和光合作用周转时间（从 F 与 E 曲线得到）●这些参数是使用光化光源 （ALS） 测量，并记录为光强曲线。mini-FIRe 系统的技术规格：●极端灵敏度：0.005 - 100 mg/m3叶绿素a（可通过添加中性密度减压过滤器提高采样浓度）●激发光源：蓝色（峰值波长450 nm，30 nm带宽），绿色（峰值波长530 nm，40 nm带宽），橙色（峰值波长590 nm，30 nm带宽），用于选择性激发不同功能组的浮游植物。●发射检测：680 nm（叶绿素a）和880 nm（细菌叶绿素a），其他波长可使用可更换的发射滤光片进行选择。●尺寸： 10 x 5 x 12 英寸 References related to methodology Peer-Reviewed Publications:Behrenfeld, M. J., A. J. Bale, Z. S. Kolber, J. Aiken, and P. G. Falkowski. 1996. Confirmation of iron limitation of phytoplankton photosynthesis in the equatorial Pacific Ocean. Nature 383: 508-511.K.H. Coale, K.S. Johnson, F.P. Chavez, K.O. Buesseler, R.T.. Barber, M.A. Brzezinski, W.P. Cochlan, F.J. Millero, P.G. Falkowski, J.E. Bauer, R.H. Wanninkhof, R.M. Kudela, M.A. Altabet, B.E. Hales, T. Takahashi, M.R. Landry, R.R. Bidigare, X.Wang, Z.Chase., P.G. Strutton, G.E. Friederich, M.Y. Gorbunov, V.P. Lance, A.K. Hilting, M.R. Hiscock, M.Demerest, W.T. Hiscock, K.A. Sullivan, S.J. Tanner, R. M. Gordon, C.L. Hunter, V.A. Elrod, S.E. Fitzwater, S. Tozzi, M. Koblizek, A.E. Roberts, J. Herndon, J. Brewster, N. Ladizinsky, G. Smith, D. Cooper, D. Timothy, S.L. Brown, K.E. Selph, C.C. Sheridan, B.S. Twining, and Z.I. Johnson (2004) - Southern ocean iron enrichment experiment: Carbon cycling in high- and low-Si waters. – Science, 304 (5669): 408-414.Falkowski PG, Koblizek M., Gorbunov M, and Kolber Z., (2004). Development and Application of Variable Chlorophyll Fluorescence Techniques in Marine Ecosystems. In: “Chlorophyll a Fluorescence: A signature of Photosynthesis” (Eds. C.Papageorgiou and Govingjee), Springer, pp. 757-778.Falkowski, P.G., and Z. Kolber. (1995). Variations in the chlorophyll fluorescence yields in the phytoplankton in the world oceans. Aust. J. Plant Physiol. 22: 341–355.Falkowski, P.G. and J.A. Raven. (2007). Aquatic Photosynthesis (2nd edition). Princeton University Press. Princeton, 484 pp.Gorbunov M.Y., Fadeev V.V., and Chekalyuk A.M. (1991) Method of remote laser monitoring of photosynthesis efficiency in phytoplankton. - Moscow University Physics Bulletin. 46(6): 59?65.Gorbunov M.Y., Kolber Z., and Falkowski P.G. 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Bruce), Allen Press, V.2, pp. 1029-1031.Kolber, Z., and Falkowski, P.G., (1993) Use of active fluorescence to estimate phytoplankton photosynthesis in situ, Limnol. Oceanogr., 38, 1646-1665, 1993.Kolber, Z., O. Prasil, and P.G. Falkowski (1998). Measurements of variable chlorophyll fluorescence using fast repetition rate techniques: defining methodology and experimental protocols. Biochem. Biophys. Acta 1367: 88-106.Lin H., Kuzminov F.I., Park J., Lee S.H., Falkowski P.G., and Gorbunov M.Y. (2016) The fate of photons absorbed by phytoplankton in the global ocean – Science, 351(6270), pp. 264-267. Park J., Bailleul B., Lin H., Kuzminov F.I., Yang E.J., Falkowski P.G., Lee S.H., and Gorbunov M.Y. (2017) Light availability rather than Fe controls the magnitude of massive phytoplankton bloom in the Amundsen Sea polynyas, Antarctica – Limnology and Oceanography, DOI: 10.1002/lno.10565.Thamatrakoln K., Bailleul B., Brown C.M., Gorbunov M.Y., Kustka A.B., Frada M., Joliot P.A., Falkowski P.G., Bidle K.D. (2014) Death-specific protein in a marine diatom regulates photosynthetic responses to iron and light availability - Proc. Natl. Acad. Sci USA, vol. 110, no. 50: 20123-20128. doi:10.1073/pnas.1304727110.

FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台 FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上，既可用于叶绿素荧光动态成像分析，又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量，成像面积35×35cm，是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域：实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析（Phenotyping）植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点：ü 多激发光－多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、滤波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和蓝光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü UV紫外光激发多光谱荧光成像： UV紫外光对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为蓝光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统，成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调，以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收／NDVI成像分析模块，对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等 技术指标： 1) 大型叶绿素荧光成像平台，成像面积达35×35cm2) 高分辨率CCD相机l 图像分辨率：1360×1024像素l 时间分辨率：在最 高图像分辨率下可达每秒20帧l A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）l 像元尺寸：6.45μm×6.45μm l 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量l 通讯模式：千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源（可选配蓝色或其它波长的LED光源），具备735nm红外光源，LED光源板面积750×750mm4) PAR吸收／NDVI成像模块：680nm红色光源、735nm红外光源板及相应滤波器和功能程序模块（选配）5) 多光谱荧光成像模块：UV紫外光源及相应滤波器和功能程序模块（选配）6) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器7) 成像平台高度可调，调整高度范围350-1350mm8) 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ，Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，qL，QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数；R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数（选配）；包括F440、F520、F690、F740等UV激发多光谱荧光参数（选配）；荧光强度Ft等GFP绿色荧光蛋白成像参数（选配）。每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像9) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔，系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名10) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等，可对Protocols进行编辑，实时在线数据分析和二维显示11) 客户定制实验程序协议（protocols），可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序12) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?13) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等14) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI)，，成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等15) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线，可进行“选区操作”（参见上条）或“分级操作”（图像阈值分割功能）；选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区（ROI），还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区；分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”，通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理，可设置不同的阈值进行图像阈值分割16) 结果展示报告功能：可展示所有选区（ROI）的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等，可对原数据（kinetic）、叶绿素荧光参数等导出到excel表，还可对每个参数成像图存储成位图17) 可自动测量多个样品（无限制）荧光动力学曲线及相应参数，程序软件可自动识别多个植物样品（数量不受限制）或多个区域（数量不受限制），也可手动选区（数量不受限制）18) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 19) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm，分辨率640x512，1－14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C，灵敏度30mK（0.03°C），传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换，标配9mm光学镜头、69°视野， 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol：一根电缆支持18通道；视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用，在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最小峰值温度等f) 32GB内存，可存储80000张图片或200分钟视频，图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片，图片采集间隔1－60s可调，带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等 产地：欧洲

Monitoring Pen 植物叶绿素荧光测量仪名称：植物叶绿素荧光测量仪 型号：MP 100-S； MP 100-E； MP 100-A 三种版本可选 产地：捷克 Monitoring Pen 物叶绿素荧光测量仪可用于田间或其他恶劣环境下进行植物胁迫后的光合状态监测。Monitoring Pen内置5个最常用的荧光测量程序：Ft、QY、NPQ、OJIP、和光响应曲线。可用于光合作用研究，自然环境下的光合性能监测，植物胁迫监测，除草剂测试，温室或野外条件下植物生长监测等。 Monitoring Pen具备可编程自动程序运行功能，可通过电池供电长期监测，测量数据直接存储在仪器内存存储里，可通过USB或蓝牙传输到电脑，采用FluorPen软件进行表格或图形数据显示。 有三个版本可选Monitoring Pen MP 100-S，塑制外壳，内部电池供电，用于室内研究；Monitoring Pen MP 100-E，外接电池包及电池单独购买，防水金属外壳，可用于室内及野外监测；Monitoring Pen MP 100-A，外接电池包及电池单独购买，用于水生植物监测。 测量原理：利用调制荧光测量技术，内置LED光源，内设测量给光程序测量并计算叶绿素荧光响应的各种参数。 特点：内置5个参数测量程序：Ft、QY、NPQ、OJIP、和光响应曲线； 自动运行程序和存储数据；电池支持365天监测运行；坚固的设计，适合户外无人极端条件；在线数据采集（可选）；FluorPen软件数据传送处理； 应用领域： 长期环境监控；光合作用研究、教学；在变化环境中环能性能调查； 恶劣条件下的无人荧光测定研究；植物筛选和土地研究；农艺、林业和生物工程学； 技术规格：测量和计算参数F0、FT、FM、FM'、QY、Fv/Fm、OJIP、NPQ1,2、LC1,2,3,饱和脉冲0~100 %可调节（较大3000μmol(photon)/m2/s）光化光0~100 %可调节（较大1000μmol(photon)/m2/s）测量光0~0.03μmol(photon)/m2探测波长范围PIN光电二极管带697~750nm滤光器FluorPen 2.0软件Windows 2000, XP或更高存储容量16MB内置数据记录10万个数据点显示2×8字符LCD显示屏按键密封，2个触屏按键自动关机无操作5分钟后自动关机电源4节AAA碱性或可充电电池（标准版）电池电量典型情况下可连续操作48小时，低电量LCD显示尺寸120 mm×57 mm×30 mm重量180克样品固定器机械式叶夹工作环境温度0~55℃，相对湿度0~95%（非冷凝）存储环境温度-10~+60℃，相对湿度0~95%（非冷凝）产地：捷克

CV-100植物叶绿素荧光成像系统CV-100植物叶绿素荧光成像系统采用箱体式外观，内置多波段LED用于测量光、饱和脉冲及反射率测量。基于机器视觉成像原理进行叶绿素荧光成像，从而计算植物生长、胁迫，育种，突变株筛选相关等科学研究；滤光系统允许叶绿素荧光波段光线进入传感器并成像。不同于传统的只能做点状测量的光纤式荧光仪，标准版CV-100成像面积高达20x20cm,可以同时对多个样品、整个叶片或小尺寸植株进行荧光成像。高功率LED提供饱和脉冲，强度≧3000μmol/m2/s PAR。同时CV-100提供多种不同灯板选配：385nm紫外，455nm蓝色，530nm绿色，660nm红色，适用于植物、藻类、苔藓、地衣等不同光合生物。并且提供底板控温选配功能，可以进行0-60摄氏度范围内进行控温，更方便的检测样品在温度胁迫时光合能力的变化。广泛应用于植物学、农学、林学、环境科学等植物相关领域，有助于进行植物生长、胁迫、育种、突变株筛选等相关学科光合研究，用于植物生理生态及表型研究。主要特点高集成度式设计；500万像素高清传感器；最大图像尺寸：2456x2054；快门模式：全局及卷帘快门；分辨率：约250DPI（10pix/mm）；可测量参数：F0，Fm，Ft，Fm’，Fv/Fm，Yield，qP，qL，qN，NPQ，Y（NPQ），Y（NO），慢速诱导，rETR等。其它功能：ROI，尺寸测量，伪色遮罩，分级统计，自动暗适应等选配功能：385nm灯板，455nm灯板，530nm灯板，660nm灯板，底板控温组件。技术参数成像功能：叶绿素荧光成像及多光谱波段测量；调制叶绿素荧光成像参数：Fo、Fm、Fv/Fm、Ft、Fm'、Fo'、PS、rETR、NPQ、Y(NO)、Y(NPQ)、qN、qP、qL、动力学曲线等；成像面积：≥20 cm x 20 cm；相机类型：CMOS传感器；相机分辨率：约500万像素颜色深度：12bit(软件扩展至16位)；接口：2个USB3.0，1个以太网口；专用嵌入式控制器：提供硬件控制功能；供电：供电：110-230V，最大功耗500W，待机功耗50W；测量光：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强大于3500 umol m-2 s-1 ，独立触发；饱和脉冲：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强3500 umol m-2 s-1，独立触发；近红外：LED，730nm，半峰全宽20nm，35W；可见光：LED，660nm，半峰全宽20nm，35W，可选蓝色、绿色LED；内置测量程序：内置多种测量功能可选，允许用户编辑设定测定参数 ；图像批处理：支持一键批处理，并可将数据导出至Excel；参数分级功能：支持对任意参数进行多区间分级，支持对分级区间自定义显示颜色，支持将分级成像结果叠加到可见光图像上进行展示；ROI功能：允许用户自定义多种ROI，并对ROI的数据自动分析；延时成像：支持设定暗适应延迟；支持图像背景、伪彩色标尺。系统配置主机1套控制和分析软件1套

FluorCam移动式多光谱荧光成像系统是国际知名FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，可用于叶绿素荧光动态成像分析、多激发光光合效率成像分析、紫外光激发多光谱荧光成像分析、PAR吸收与NDVI（植物光谱反射指数）成像分析、GFP/YFP稳态荧光成像等，全面、非接触、高灵敏度反映植物生理生态、胁迫生理与抗性、光合效率等，广泛应用于植物表型成像分析、植物胁迫与抗性检测、植物病害检测研究、遗传育种高通量筛选、植物生理生态学、植物初级代谢与刺激代谢研究、污染生态学研究检测/生物检测等。 主要功能特点：ü 客户定制四轮移动平台、模块式结构，便于温室内或野外移动使用、原位测量监测、系统扩展等ü 叶绿素荧光成像分析：植物光合效率、荧光淬灭热散失、光响应曲线、植物胁迫与抗性等生理功能测量检测ü 多光谱荧光成像分析：反映多酚与黄酮类等次级代谢产物动态变化、叶绿素动态变化、植物衰老、植物病虫害胁迫及非生物胁迫等ü GFP/YFP稳态荧光成像（选配）：遗传育种、基因标记ü NDVI成像分析（选配）：N素营养状态、植物胁迫等ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 多激发光、多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü 可选配13x13cm或大型20x20cm不同规格型号LED光源版，以实现不同大小均一的植物多光谱荧光成像面积，可对叶片、植物果实器官包括植物根系或整株植物甚至多株植物进行实验成像分析 ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳），以便于野外长时间（如几个小时）自动监测ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 可选配RGB成像、红外热成像及高光谱成像，以便与叶绿素荧光成像融合分析，全面研究分析形态结构、颜色、气孔导度、植物光谱特征、WUE（水分利用效率）、CWSI（水分胁迫指数）、植物生理生化等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标：1. 多光谱荧光成像1) 标配4+1智能LED光源系统，包括1对红色LED光源板、1对冷白色LED光源板、1个顶部紫外光源，可选配其它波段光源、多光谱光源2) 标准版LED光源板面积13x13cm，大型版LED光源板面积达20x20cm3) 脉冲调制测量光源，波段617nm，持续时间10μs - 100μs可调，可深入叶片栅栏组织，可选配蓝色等其它颜色测量光 4) 双波段持续光化学光：标配617nm橙色光化学光和6500K白色光化学光，300-2,000 μmol(photons)/m2.s光强可调，可选配3000 μmol(photons)/m2.s光强，还可选配蓝色、绿色等其它颜色光化学光5) 6500K白色饱和光脉冲，最大强度4000 μmol(photons)/m2.s，可选配强度达6000 μmol(photons)/m2.s，还可选配蓝色饱和光脉冲或120000μmol(photons)/m2.s单周转光脉冲6) Protocols（实验程序）：包括（根据选配配置而定）：a) Fv/Fmb) Kautsky 诱导效应c) 荧光淬灭分析d) 光响应曲线分析e) 静态荧光成像分析（选配）f) 多光谱荧光成像分析g) PARabs/NDVI成像分析（选配）7) 测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd，BGF，UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和多光谱荧光参数8) 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740及相应比率成像分析参数（下左图为西葫芦感染软腐病菌（Dickeya dadantii）RGB彩色成像、多光谱荧光成像（引自Maria L. Perez-Bueno等，2016）；右图为植物接种病毒（PMMoV-I为意大利菌株，PMMoV-S为西班牙菌株）后（dpi为接种后的侵染天数）的紫外光激发多光谱荧光成像，其中Abaxial为叶片背面成像，Adaxial为叶片正面成像（引自Monica Pineda等，2008） 9) 高分辨率CCD镜头，1392x1040像素，20fps，有效像素大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加（binning）以提高灵敏度（2x2，3x3，4x4）10) 自动测量分析功能（无人值守）：可预设1个或2个试验程序，系统可自动测量储存，比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序，夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序11) 7位滤波轮及滤波器，用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光（GFP荧光需选配相应功能模块），标准配置含7位滤波轮、ChlF.滤波器、MCF多光谱荧光滤波器等12) 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块，用于测量Fo’、PARabs及NDVI13) 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等，光强3000μmol(photons)/m2.s，用于气孔功能测量研究14) 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG（须选配相应滤波器等）15) 如测量其它荧光参数，须选配相应滤波器等（请咨询EcoLab实验室），以下为选配参考： 16) FluorCam多光谱荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre-processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单17) Protocol实验程序可自由编辑，也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序18) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19) 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差20) 给光制度：静态或动态（窦式）21) 通讯方式：USB 2.022) 供电电压：90 – 240 V （野外需另配轻便型发电机）2. 红外热成像单元：1) 非制冷红外焦平面检测器（uncooled VOx microbolometer），已经过欧盟标注校准，可直接测量温度，包括每个像素点的温度等2) 分辨率：640x512像素3) 光谱范围：7.5～13.5μm4) 温度测量范围：-25～150°C?5) 灵敏度：≤0.03℃（30mK）@ 30℃6) 帧频：标配9Hz或30Hz（须提前申请选配）7) 数据传输：USB-3或千兆以太网8) 19mm光学镜头，视野32℃x26℃，可选配13mm镜头或35mm镜头9) 具备视频模式和快照模式10) 具备14种调色板供任意选择，可多样化设置热成像假彩色11) 具备差值功能，可内查图像形成平滑影像以避免像素化12) 可通过软件设置大气温度、湿度、距离等参数13) 具备等温模式功能，包括以上、一下、之间、及以下与以上四种等温模式14) 结果在线报告功能，自动显示热影像、时距图及影像参数如发射率、反射温度、大气温度、湿度、外部光距离、传播等15) 影像处理软件具备ROI选区功能，包括点、线、折线、矩形等，并可进行分区处理，每个ROI即时显示最小温度、最高温度、平均温度等16) 热扫描功能及热剖面功能：可在线可视化显示线型ROI温度值、温度剖面图17) 所有ROI工具的温度值均可显示在时距图中18) 防护级：IP6519) 工作温度：-15°C～+50°C 20) 支持GPS信息，可将位置信息显示在谷歌地图上3. RGB成像分析单元：科研级RGB成像镜头，分辨率2592x1944像素，信噪比54dB，1-40x放大，最小视野6.1x7.9mm（40x），最大视野20.8x25.4 产地：欧洲

用途：用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程（瞬变）都可被摄取，从而提供2维荧光图像，测量计算常规的50多个荧光参数如F0, FM, FV, F0', FM', FV', NPQ, ΦPSII, FV/FM, FV'/FM', RFd, qN, qP等，这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。 应用：筛选用于光合作用效能；单个植物或叶片非均匀性研究，比如感染；不同生物体的研究，例如海藻或蓝藻群落，小型植物冠层；生长和产量。 实验和测量参数：猝灭分析Kautsky效应QA再氧化（需要选购附件）标准参数：Fo、FM、FV、Fo’、FM’、FV’、QY(II)50多种计算的参数：NPQ、FV/FM、FV’/FM’、Rfd、qN、qP、光合作用电子传递速率（ETR）和其他 附件：叶夹 标准成像规格：512×512像素A/D：12位（4096灰阶）8.2µ m×8.4µ m像素尺寸每秒50幅画面便于测量快速过程 可选成像格式：分别可选640×480像素和1392×1040像素A/D：12位（4096灰阶）6.45µ m×6.45µ m像素尺寸分别为每秒30和15幅画面主要用于测量相对较慢的过程和应用于一些要求高空间分辨率的重要实验 小麦成像叶片 光源：四块超亮LED光板；光板尺寸：40×40mm，每块光板包含25个LED；标准配置：白光（光化光和超脉冲），617nm红橙光（测量闪光），735nm红光；测量闪光持续时间：10 µ s~250 µ s；在持续时间和电源适合的前提下，连续光化光调节最大可达到2,000 µ mol(photons)/m² .s 新FluorCam 6.0软件功能：自动实验方案设置向导，软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序多重（自动重复）实验对视野内的单个植物或样品进行动态分析对单独植物或样品，视野内的，可自动标记，用于区分从视野内的所有样品进行动态分析获取数据批量画面操作工具支持读取条形码可输出为Excel操作系统支持Windows 2000, XP, Vista FluorCam软件界面 附件：三脚架 附件：电池组 产地：捷克 参考文献：Mascalchi M., Osticioli I., Riminesi C., et al. (2015). Preliminary investigation of combined laser and microwave treatment for stone biodeterioration. Studies in Conservation. Volume 60, Pages 19-27.DOI: 10.1179/0039363015Z.000000000203下载地址：点击下载更多期刊论文：便携式植物荧光成像系统参考文献-英文版.pdf

Monitoring Pen 植物叶绿素荧光测量仪产品介绍： Monitoring Pen 植物叶绿素荧光测量仪可用于田间或其他恶劣环境下进行植物胁迫后的光合状态监测。Monitoring Pen内置5个荧光测量程序：Ft、QY、NPQ、OJIP、和光响应曲线。可用于光合作用研究，自然环境下的光合性能监测，植物胁迫监测，除草剂测试，温室或野外条件下植物生长监测等。 有三个版本可选Monitoring Pen MP 100-S，塑制外壳，内部电池供电，用于室内研究；Monitoring Pen MP 100-E，外接电池包及电池单独购买，防水金属外壳，可用于室内及野外监测；Monitoring Pen MP 100-A，外接电池包及电池单独购买，用于水生植物监测。产品特点： 内置5个参数测量程序：Ft、QY、NPQ、OJIP、和光响应曲线； 电池支持365天监测运行；在线数据采集（可选）；FluorPen软件数据传送处理；应用领域： 长期环境监控；在变化环境中环能性能调查； 植物筛选和土地研究；技术参数：测量和计算参数F0、FT、FM、FM'、Qy Fv/Fm、OJIP、NPQ1,2、LC1,2,3,饱和脉冲0~100%可调节（最大3000µ mol(photon)/m2/s）光化光0~100%可调节（最大1000µ mol(photon)/m2/s）测量光0~0.03µ mol(photon)/m2探测波长范围PIN光电二极管带697~750nm滤光器FluorPen 2.0软件Windows 2000, XP或更高存储容量16MB内置数据记录最大10万个数据点显示2×8字符LCD显示屏按键密封，2个触屏按键自动关机无操作5分钟后自动关机电源4节AAA碱性或可充电电池（标准版）电池电量典型情况下可连续操作48小时，低电量LCD显示尺寸120 mm×57 mm×30 mm重量180克样品固定器机械式叶夹工作环境温度0~55℃，相对湿度0~95%（非冷凝）存储环境温度-10~+60℃，相对湿度0~95%（非冷凝）

OS-30P+ 快速植物胁迫荧光测量仪 产品介绍：OS-30P+ 快速植物胁迫荧光测量仪 广泛应用于植物生理、生态、农学、园艺和生物技术等学科的叶绿素荧光相关研究，特别是对植物胁迫的相关研究中OS-30p+采用的是先进的调制-饱和-脉冲技术测量时，先将叶片暗处理一段时间，然后再在饱和光强下暴露短暂的时间，测量这段时间内荧光强度随时间的变化的荧光动力学曲线曲线的形状和重要的瞬时值可以用于指示环境胁迫对光合器官的损伤产品特点：“JIP" Test – OJIP：通过OS30p+可直接读取以下数据：O、J、I、P、t100μs、t300μs (或K)、tFm (或到达Fm的时间)、A (曲线上方的 面积)、MO (或 RC/ABS)、PIABS (或performance Index)、FO/FM、FV/FM及FV/FO。更重要的是，OS-30p+直接 测量Fo，而不是通过计算获得。同时 ，它还可以直接显示设置，以及彩色的使用对数坐标轴的测量曲线，并直接读 取使用很多的测量参数。设备使用的红色光化光的光 强可以调节FV/FM、FV/Fo：相对于OS-30p，OS-30p+具有自动的程序，使用8个点的均值、确保仅25ms内达到很大值的叶绿素荧光被测量，因此 ，对于陆地植物 或海藻来说，饱和脉冲的持续时间问题将不存在，确保将误差控制在很小的范围内操作简单、测量快速USB数据输出彩色显示屏坚固、耐用、适于野外使用的设计手持式操作、提供野外便携箱技术参数：FV/FM、FV/FO：饱和强度 600- 6000μmols ，设定从10％到100％饱和光源红色点阵660 nm的LEDs调制光源红色0.2到1.0 umols检测方法调制脉冲检测器与过滤器 具有700-750 nm波段过滤器的Pin光电二很管测试时间0.1s到1.5 s，默认的饱和脉冲持续时间是1s，；但是仪器软件采用取每25ms测量值的平均值的方式计算FO和FM，可作为陆生和海藻植物理想的测量工具。调制光调节10％到100％手动调节测量和作图参数 FO、FM、FV/FM、FV/FOJIP测量：光化光强度6000 umols， 4500umol， 3500 umols， 3000umols， 2500 umols，1000 umols， 875 umols， 525 umols， 300 umols， 200 umols， 100 umols， & 50 umols. 一个650nm点阵LEDs用于光化光照明检测方法 具有700-750nm波段过滤的Pin光电二很管；使用红色脉冲调制光源，取样时间在10us 到1s测量时间JIP测量3 - 300sJIP测量参数 O， t100us， t300us (or K)， t2ms (or J)， t30ms (or I)， P， tFM， A (area above the curve)， MO(or RC/ABS)， PI/ABS (or performance index) FO， FM， FV/FM， FV/FO， Fo为实测值。S， M， T也是实测值 但他们只记录于数据文件中，并不再测量屏上显示。每个数据文件可存储20个曲线数据。通用参数：显示彩色图形显示存储 JIP测量中，每个数据文件可存储160000次测量及20个曲线；使用多个数据文件，可存储上百个曲线。数字输出 USB端口电池 工作时间8小时的镍氢充电电池尺寸 18cm×7 cm× 6cm.重量 2 lbs.便携箱 包含于标准配置

用途：FC 900-R移动式植物荧光成像系统是一款在野外用于大范围成像的荧光成像系统。具有非常稳定的结构，底部安装有轮子，方便在野外进行移动。大型植物（如玉米，大豆植物）不需要分离或破坏就可以进行测量。摄像机和光板能进行封闭，方便进行控制暗适应和光化光。系统扫描面积为20×20厘米，高度可在20~150cm范围进行调节。如果需要，可以添加摄像头使用真彩分析。 特点：用于野外大面积扫描；扫描面积为20×20厘米；稳定的结构，底部安装有轮子；在粗糙的地面方便移动；配置暗适应柜用于样品的暗适应；高度可在20~150cm范围进行调节；样品不需要分离或破坏。 产地：捷克

FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上，既可用于叶绿素荧光动态成像分析，又可用于长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量，成像面积35x35cm，是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域：实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析（Phenotyping）植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点：ü 多激发光－多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等； ü UV紫外光激发多光谱荧光成像：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统，成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调，以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收／NDVI成像分析模块，对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 可选配RGB成像分析模块,用于植物颜色和形态测量分析等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标：1) 大型叶绿素荧光成像平台，成像面积达35x35cm2) 高分辨率CCD镜头，图像分辨率：1360×1024像素、时间分辨率：在最 高图像分辨率下可达每秒20帧、A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）、像元尺寸：6.45μm×6.45μm、运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量、通讯模式：千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源（可选配蓝色或其它波长的LED光源），具备735nm红外光源，LED光源板750x750mm4) PAR吸收／NDVI成像模块：680nm红色光源、735nm红外光源及相应滤波器和功能程序模块，700x725x45mm5) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器 6) 成像平台高度可调，成像距离（平台离植物顶部距离）350-1350mm7) 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ，Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，qL，QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数、R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数、及UV激发多光谱荧光包括F440、F520、F690、F740等，每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像8) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔，系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名9) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等，可对Protocols进行编辑，实时在线数据分析和二维显示 10) 客户定制实验程序协议（protocols），可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序11) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?12) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等13) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI)，，成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等14) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线，可进行“选区操作”（参见上条）或“分级操作”（图像阈值分割功能）；选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区（ROI），还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区；分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”，通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理，可设置不同的阈值进行图像阈值分割15) 结果展示报告功能：可展示所有选区（ROI）的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等，可对原数据（kinetic）、叶绿素荧光参数等导出到excel表，还可对每个参数成像图存储成位图16) 可自动测量多个样品（无限制）荧光动力学曲线及相应参数，程序软件可自动识别多个植物样品（数量不受限制）或多个区域（数量不受限制），也可手动选区（数量不受限制）17) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 18) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm，分辨率640x512，1－14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C，灵敏度30mK（0.03°C），传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换，标配9mm光学镜头、69°视野， 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol：一根电缆支持18通道；视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用，在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最 小峰值温度等f) 32GB内存，可存储80000张图片或200分钟视频，图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片，图片采集间隔1－60s可调，带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等产地：欧洲

仪器简介：植物叶绿素荧光成像一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取，提供2维图像，计算常规的荧光参数。F0， FM， FV， F0&rsquo ， FM&rsquo ， FV&rsquo ， NPQ， &Phi PSII， FV/FM， FV&rsquo /FM&rsquo ， RFd， qN， qP，及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广，既可是单个叶绿体或单个细胞（用显微植物荧光成像系统），也可是小的冠层（用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统）。此外，除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外，该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统（植物荧光蛋白成像系统）。还有一种多功能荧光动态显微检测系统，它除具备显微叶绿素荧光成像系统的功能外，还集成了分光光度计SM－9000、PAM荧光测量技术及FL3500双调制荧光测量仪，用于高分辨率快速荧光动态测量和成像。多种激发光源可以激发不同的天线色素，从而分析出那些色素蛋白复合体对光化学荧光淬灭或非光化学荧光淬灭贡献更大。同时还可以对非叶绿素荧光（自发荧光及荧光染料等）动态进行测量分析，超高灵敏度镜头可以在很低的光线下（从而不干扰正常细胞代谢）成像，并且还可以对目前市场上其它镜头捕捉不到的快速过程如QA再氧化、天线联通性及天线大小等进行测量分析。技术参数：1）图象分辨率：12bit， 512x512像素 2）图象抓取速度：每秒50幅 3）数据传输:USB2.0 口 4）该系统的软件功能： 设置和修改实验要求，如控制时间，实验周期，光强和摄象机操作 智能分割图像，显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来，如FV， FV/FM， qP， qN， NPQ， Rfd等，作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5）分辨率： mm主要特点：植物叶绿素荧光成像采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。显微植物荧光成像系统可成像单个细胞和亚细胞的荧光。所有的常规荧光参数都可成像，分辨率达mm，可用于研究单个的叶绿体或是类囊体。该系统和配置多种显微镜。

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 上左图为上世纪90年代Nedbal等设计的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Photosynthesis Research, 66: 3-12, 2000），右图为柠檬彩色图及叶绿素荧光成像图（Photosynthetica, 38: 571-579, 2000）FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端植物活体成像技术设备，高灵敏度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内（还可根据需求选配第五个光源板置于顶部），植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过USB与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点: 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，成像面积达13x13cm 是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等20多个参数 是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100μs内可达到120,000 μmol(photons)/m2.s 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、2个叶绿素荧光淬灭分析（NPQ）protocolas（2套定制给光方案）、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析（选配）、OJIP快速荧光动力学分析（选配）及GFP绿色荧光蛋白成像（选配）等 可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）；还可预设两个实验程序（Protocols）；比如使系统白天自动运行Fv/Fm，夜间自动运行NPQ分析等 具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益左图A为100％红色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm，左图B为30%蓝色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm；右上图为光合作用强度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系，右下图为气孔导度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系 可运行叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、GFP稳态荧光成像 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 可选配高光谱成像单元和红外热成像单元，植物性状数字化、可视化，全面测量分析植物形态、光合效率、生化性状、气孔导度、胁迫与抗性等 可选配大型版移动式植物成像分析系统，成像面积35x35cm，可运行叶绿素荧光成像、红外热成像及RGB成像分析 最新应用案例：Hendrik Kupper与Zuzana Benedikty等，在2019年2月出版的《Plant Physiology》，发表了Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging，该研究首次采用超高速成像传感器FluorCam台式植物叶绿素荧光成像系统与FKM多光谱显微荧光成像系统，成像速度可达4000fps@640x512，QA再氧化叶绿素荧光动力学成像测量单脉冲饱和光闪达150,000 μmol/m2.s1。 附：OJIP快速荧光动力学测定分析参数包括： a) Fo：初始荧光或称最小荧光，50μs时的荧光b) Fj：2ms时的荧光c) Fi：60ms时的荧光d) P或Fm：最大荧光e) Vj＝(Fj-Fo)/(Fm-Fo):j阶荧光相对变量f) Vi＝(Fi-Fo)/(Fm-Fo)：i阶荧光相对变量g) Mo＝TRo/RC-ETo/RC=4(F300-Fo)/(Fm-Fo)：荧光瞬变初始斜率，或称OJIP曲线初始斜率h) Area：OJIP曲线与Fm之间的面积，可称为补偿面积（complementary area）为了对不同样品进行比较，Area需要标准化为：Sm＝Area/(Fm-Fo)，Sm是对关闭所有光反应中心所需能量的量度i) Fix Area：OJIP固定面积，OJIP曲线40微妙时的F值至1秒时的F值下面的面积j) Sm：标准化OJIP补偿面积，反映QA还原多次周转k) Ss＝Vj/Mo：标准化OJ相补偿面积，反映单周转QA还原l) N=Sm/Ss=Sm Mo(1/Vj)：OJIP QA还原周转数量（between 0 and tFm）m) Phi_Po＝QY＝φpo＝TRo/ABS＝Fv/Fm，最大光量子产量，吸收光量子通量反应中心初始捕获比率n) Psi_o＝ψo＝ETo/TRo＝1-Vj，捕获光量子通量中电子传递光量子通量比率o) Phi_Eo＝φEo=ETo/ABS=(1-(Fo/Fm))(1-Vj)，吸收光量子通量中电子传递光量子通量比率，或称电子传递光量子产量（quantum yield of electron transport at t=0）p) Phi_Do＝φDo＝1-φpo＝Fo/Fm，能量散失光量子产量（t＝0）q) Phi_pav＝φpav＝φpo（Sm/tFm），平均光量子产量，tFm为达到Fm所需时间（ms）r) ABS/RC＝Mo(1/Vj)(1/QY)：为单位反应中心的吸收光量子通量，这儿的反应中心仅指the active (QA to QA– reducing) centers（下同）。QY=TRo/ABS=Fv/Fms) TRo/RC＝Mo(1/Vj)：单位反应中心初始（或称最大）捕获光量子通量（导致QA的还原，也即反应中心关闭比率B的增加）t) ETo/RC＝Mo(1/Vj)（1-Vj）：单位反应中心初始电子传递光量子通量u) DIo/RC＝（ABS/RC）－（TRo/RC）：单位反应中心能量散失v) ABS/CS：单位样品截面的吸收光量子通量，CS stands for the excited cross-section of the tested sample（下同）。ABS/CSo＝Fo，ABS/CSm＝Fm，TRo/CSx＝QY(ABS/CSx)——单位截面捕获能量或光量子通量w) TRo/CSo＝QY.Fo；ETo/CSo＝φEo.Fo ＝QY.(1-Vj).Fox) RC/CSx：反应中心密度，RC / CS0 (active RCs per excited cross-section)y) PIABS＝(RC/ABS)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数z) PIcs＝(RC/CSx)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于截面的“性能”指数或称生存指数

用途：FC 900-XY平面式植物荧光成像系统是一款定制型的荧光成像系统，用于大型生长盘中样品的通量成像和多谱段分析。机体采用金属柜体设计，可以轻松移动、安全存储和运输，样品可以轻松的放入测量区域，柜子内部是自动控制高度和位置的光源是相机。 特点：测量面积80cm x 40cm；适用于高通量筛选；光源和相机高度和位置可调；可选自动重复测量，按照设定的程序自动循环成像，实现无人值守监测；内置测量程序，用户可根据实际情况定制程序；测量结果多样化，有数据、图表、图像等；测量和计算的参数多达50多个；无需分离或移动样品，原位测量； 应用领域：植物光合生理研究 植物表型组学研究 植物生理毒理学研究作物优良品种筛选植物逆境生理生态研究植物与生物或非生物胁迫交互作用研究技术参数：主体测量和计算参数FO；FM；FV；FO'；FM'；FV'；FT；FV/FM、FV'/FM'、PhiPSII 、NPQ、qN、qP、Rfd等测量区域80 x 40cm光谱响应QE最大在540nm（~70%），400nm~650nm出转降50%读出噪音小于12个电荷RMS，典型10个电荷满井容量大于70000电荷Bios可固件升级电压范围90-240V通讯USB 2.0光源类型LED灯板，4个，其中一对灯板提供测量光和光化光1，另两个分别提供光化光2和饱和脉冲激发光橙色、蓝色和红外三色光化光标准617nm，300~2000 µ mol(photons)/m² .s（标准版）最大3000µ mol(photons)/m² .s（升级版）饱和脉冲最大4000 µ mol(photons)/m² .s（标准版）最大6000 µ mol(photons)/m² .s（升级版）单一覆盖闪光(STF)100µ s脉冲下120000 µ mol(photons)/m² .s（QA再氧化版）光制静态或窦式滤波轮7位高灵敏度相机分辨率720x560像素，可选1024x768（视频模式）或1392x1040像素（快照模式）A/D12位（4096灰阶）CCD波长范围400-1000nm像素尺寸8.6µ m×8.3µ m成像速率50帧/s功率4W曝光方式手动工作环境0-50℃，相对湿度0-95%，非冷凝接口连接以太网专业软件测量程序内置常用测量程序，用户可自己编程新的程序重复测量可选重复测量模块，实现长时间自动重复测量分析区域自动或手动选定结果格式数据、图表、图像

FC800-O开放式植物荧光成像系统 FC 800-O开放式荧光成像系统是一款高度模块化的设备，具体配置可以定制。其LED发光板和饱和光源可以任意角度和到样品的距离排列，也可以通过调整CCD的位置来增加精度。标准配置的最大成像面积是13 x 13 cm ，通过选择光源的尺寸，可调整最大成像面积为20 x 20 cm 。成像尺寸可高达200 x 100 cm ，通过选择额外的LED板和/或将整个系统安装在一个移动支架上实现，相关内容见XY-Plane, Transect, Arch, 和 Rover FluorCam。应用领域 植物光合特性和代谢紊乱筛选生物和非生物胁迫的检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究工作原理FC-800系列植物荧光成像系统用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程(瞬变)都可被摄取，从而提供2维荧光图像。测量与计算参数多达50多个：F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合电子传递率ETR等。这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或基因突变造成的荧光变化。功能特点：实验过程和测量参数 Meter功能荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它。一次测量可获取多达50个参数荧光蛋白与荧光素成像，GFP、eGFP、wtGFP、BFP、YFP、CY3, CY5等技术参数 测量光为618nm红光，其它波段可选，持续时间10µ s - 100µ s可调；光化光强可达2,500 µ mol(photons)/m² .s ，波段可选蓝（455 nm）, 红 (618 nm), 白光。可升级最高光强至5,000 µ mol(photons)/m² .s· 饱和光强度可达 红/蓝/白光可选- 3,000 µ mol(photons)/m² .s (标准版)- 10,000 µ mol(photons)/m² .s (光源升级) STF -单次翻转饱和光闪，强度可达120,000 µ mol(photons)/m² .s ，100µ s脉冲远红光735nm(FAR)8位滤波轮（可选）：叶绿素荧光(高通695 nm, 低通 780 nm)，GFP荧光（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm）,PAR(透明玻璃)，YFP，CY3，CY5，以及其它荧光波段辅助光源可选：390 nm（紫外）、470 nm、505 nm、570 nm、605 nm、630 nm、735 nm（远红）, 或者其它波段，可安装在仪器支架或者设备侧面。荧光参数：F0, FM, FV, FO' , FM' , FV' , QY(II)), Abs PAR-value, 或计算出的其它参数(e.g., NPQ, FV/FM, FV' /FM' , Rfd, qN, qP), PAR-absorptivity, 光合电子传递速率(ETR),等给光制度：静态或动态（窦式）CCD检测器带宽：400 &ndash 1000 nmCCD 制式：512 x 512 像素 可选 640 x 480 像素或 1392 x 1040 像素（显微视野）像素尺寸：8.2 µ m x 8.4 µ mA/D 转换分辨率：12 位光谱响应：540 nm处量子效率最高(70 %),400 nm 和 650 nm 处转降50 %读出噪音：低于12eRMS，典型10e满阱容量：大于 70,000 e (unbinned)成像频率：50 张图片每秒Bios：固件可升级通讯方式：USB 2.0尺寸：471 mm(W) x 473 mm (D) x 512 mm (H)重量：Appr. 40 kg电源输入：Appr. 1100 W供电电压：90 &ndash 240 V 附：标准版与QA再氧化版配置对照表FluorCam FC-800 - Standard VersionLight TypeActinic 1ColorRed-orange Wavelength [nm]617 Intensity [umol]200-300 Light TypeActinic 2Colorred-orangeroyal-bluecool whiteneutral whitewarm whiteWavelength [nm]6174474500 - 10000 K3500 - 4500 K2540 - 3500 KIntensity [umol]200020002000 Light TypeSaturating PulseColorred-orangeroyal-bluecool whiteneutral whitewarm whiteWavelength [nm]6174474500 - 10000 K3500 - 4500 K2540 - 3500 KIntensity [umol]400040004000 FluorCam FC-800 - Light Upgraded Version / QA VersionLight TypeActinic 1Colorred-orange Wavelength [nm]617 Intensity [umol]2000 Light TypeActinic 2Colorred-orangeroyal-bluecool whiteneutral whitewarm whiteWavelength [nm]6174474500 - 10000 K3500 - 4500 K2540 - 3500 KIntensity [umol]300030003000 Max Intensity [umol]800080009000 Light TypeSaturating Pulse Colorred-orangeroyal-bluecool whiteneutral whitewarm whiteWavelength [nm]6174474500 - 10000 K3500 - 4500 K2540 - 3500 KIntensity [umol]600060006000 Max Intensity [umol]160001600016000 操作软件与实验结果 内置常用测量程序用户可自定义实验程序，界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持，便于批量处理样品数据可导出为excel· FluorCam 软件界面Windows 2000, XP, Vista兼容 配置型号指南：标准版1&mdash &mdash 超高速成像版：512 x 512 像素，50幅/秒超快CCD，适用于荧光参数的精细再现标准版2&mdash &mdash 超高分辨率版：1392 x 1040 像素分辨率，适用于高空间分辨率的应用，如气孔动态标准版3&mdash &mdash PAR吸收修正版：可测植物真实F0&rsquo 与PAR吸收系数，用于修正荧光参数和ETR标准版4&mdash &mdash 功能增强版：超强STF，强度可达120,000 µ mol(photons)/m² .s，可实现100µ s脉冲，用于QA瞬间饱和与再氧化研究；可同时进行荧光蛋白与荧光素成像，包括GFP、wGFP、eGFP、YFP、BFP、CY3, CY5等，用于转基因研究。 产地：欧洲

用途：FC 800-C密闭式植物荧光成像系统用于多谱动态荧光成像，它由一个CCD相机，4~5个LED灯板，可选择一个滤光器包含7个不同的发射器，LED灯板统一提供面积13x13cm辐照度，适合一些小的植物，比如分割的树叶，藓类，地衣，海藻聚集地或海藻悬浮液等等。相机通过光化光和饱和光瞬时荧光成像，用户自定义辐照度的时间和强度。FC 800-C相关软件提供数据采集和图像处理功能，同时还为专业人员提供了复杂的编程语言用来设计新的测量计划。 应用：筛选用于光合作用效能和代谢扰动；探测生物和非生物刺激；胁迫抗性或敏感性；线虫类荧光和行为；气孔分布；提供耕地产量；生长发育； 可测量的样品：树叶、培养植物、果实、蔬菜；藓类、地衣；蓝藻、绿藻；线虫类；样品大小，最大可达13 cm x 13 cm；成像滤光片可用于384多孔板，96多孔板，有盖培养皿中的样品；可选择搁板系统用于不同尺寸样品的测量；暗适应盒用于对样品进行暗适应测量（可选件）。 光板：FluorCam的标准配置4个超高亮度的LED面板灯，一对LED灯板提供测量光和光化光1（典型618nm），另外两个灯板提供光化光2和饱和脉冲（这两个灯板根据客户需求安装蓝色（455nm），红色（618nm）或白色灯光）；其他有效波长：470nm，505nm，570nm，605nm，630nm（FluorCam自定义版本）；附加LED灯板可以装在相机顶部，有红外（735nm），紫外（360或380nm）或绿色（505nm）可供选择（可选）；光化光强度：300~2000 µ mol(photons)/m² .s（标准版） 最大3000µ mol(photons)/m² .s（升级版）；超级脉冲强度：最大4000 µ mol(photons)/m² .s（标准版） 最大6000 µ mol(photons)/m² .s（升级版）；单一覆盖闪光（STF）：100µ s脉冲下120000 µ mol(photons)/m² .s（QA再氧化版）； 不同的发射带：叶绿素荧光（高通695nm，低通780nm）、GFP（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm）. 标准成像规格：512×512像素A/D：12位（4096灰阶）8.2µ m×8.4µ m像素尺寸每秒50幅画面便于测量快速过程 可选成像格式：逐行扫描CCD，1.4M像素；A/D：12位（4096灰阶）6.45µ m×6.45µ m像素尺寸两种模式：录像、拍照；分辨率：1392x1040像素-拍照模式下最高分辨率 1024x768像素（每秒10次拍摄）-录像模式下最大分辨率；分级选项，提供更高的灵敏度和帧率： 2x2：696x520像素，每秒25次拍摄 3x3：464x344像素，每秒20次拍摄 4x4：348x256像素，每秒50次拍摄；更高空间分辨率的叶绿素和荧光信号测量（显微镜）； FluorCam 7.0软件功能：自动实验方案设置向导，软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序多重（自动重复）实验对视野内的单个植物或样品进行动态分析对单独植物或样品，视野内的，可自动标记，用于区分从视野内的所有样品进行动态分析获取数据批量画面操作工具支持读取条形码可输出为Excel操作系统支持Windows 2000, XP, Vista FluorCam软件界面 技术规格：荧光参数F0、FM、 FV、 F0’、FM’、FV’、QY(II)、绝对PAR吸收值和从计算的参数PQ、FV/FM、FV’/FM’、Rfd、qN、qP、PAR吸收率、光合电子传递速率 (PS)等激发光源455nm、470 nm、505 nm、570 nm、605 nm、618nm、630 nm、735 nm和其它波长超级脉冲强度标准版：最大4000 µ mol(photons)/m² .s升级版：最大6000 µ mol(photons)/m² .s光化学光强度标准版：最大2000 µ mol(photons)/m² .s升级版：最大到3000 µ mol(photons)/m² .s滤光轮7位光源协议静态或动态，凹陷式定制实验方案可设置定时，专用语言和脚本CCD检测波长400~1000 nmCCD格式512×512，640×480和1392×1040像素A/D转换12 bit光谱灵敏度QE最大在540nm（~70%），50%滚降在400 nm和650 nm检出信号噪音RMS小于12e， 典型仅为10e满阱容量大于70000e成像频率最大50帧/秒Bios可升级固件数据交换端口USB2.0外部尺寸471mmx473mmx512mm内部尺寸450mmx450mmx400mm重量40 kg功率大约1100W电压90-240 V 产地：捷克 参考文献：BOURDAIS G., BURDIAK P., GAUTHIER A., ET AL. (2015) Large-Scale Phenomics Identifies Primary and FineTuning Roles for CRKs in Responses Related to Oxidative Stress. PLoS Genet,. Volume 11.DOI:10.1371/journal.pgen.1005373下载地址：点击下载更多相关期刊论文：密闭式植物荧光成像系统参考文献-英文版.pdf

用途：FC 1000-LC叶室型植物荧光成像系统具有其他FluorCam系列荧光成像系统一样的功能，不过它是专门为气体交换系统的叶室所设计的，因此能在气体交换测量过程中进行叶绿素荧光成像。特殊设计的叶室能够让使用者通过外接的控制设备轻松控制叶室内环境，如温度、相对湿度、以及光合作用的影响和蒸腾作用（二氧化碳和氧气等各种气体的分压，水蒸气）。能够安装在部分气体交换系统（ADC ，LICOR ，PP系统等）的叶室上或其他适合的叶室。 测量参数：最大效率的光合作用（FV/Fm）；光合作用的运行效率（Fq'/Fm', ΦPSII）；非光化学淬火；诱导瞬间； FluorWin软件功能：控制定时、持续时间、光强度以及相机的操作；通过FluorWin向导自动完成实验方案；大量图像处理工具；智能图像分割和显示选择的荧光图像片段；给选择出来的荧光图像片段进行自动标记；将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来，如FV, FV/FM, qP, qN, NPQ, Rfd等，作进一步分析。用图表或数据表示测量的数据。 产地：捷克

高通量植物荧光表型检测平台可以定制化的对小型样品进行荧光图像采集，通过定制化的数据分析软件连续720小时以上获取各类小型植物荧光图像参数以及动态参数，可用于拟南芥，烟草等小型植物的表型研究。应用领域：植物病理研究作物抗病研究植物动态生长发育研究成像单位像素：14μm成像单元类型：高分辨率CCD相机照明位置：顶部，侧部照明光源类型：紫外灯（荧光成像光源），日光灯（生长光源）尺寸：2000*2000*2000mm（长宽高）电源：单相 220VAC控制装置：WindowsPC控制机柜软件：在线控制，图像处理，数据分析 可测参数：荧光图像亮斑个数，纹理，面积变化趋势，荧光亮度变化趋势等效率：5s/株检测方式：在线实时采集数据存储：JPG格式实存储数据分析：EXCEL格式自动存储系统稳定性：连续工作720h以上工作环境温度：0-50℃ 高通量植物荧光检测平台、荧光图像采集软件图、数据分析图（a）为原始荧光图像，（b）为分割伪彩图。主营业务包含:水稻数字化考种机；经济型水稻数字化考种机；玉米籽粒数字化考种机；玉米果穗考种机；叶片表型快速分析仪；双目视觉植物表型分析系统；小型植物表型分析系统；高通量植物表型参数自动提取系统；高通量植物荧光表型检测平台；高光谱成像系统；水稻穗长测量系统；高通量植物分蘖测量系统；同时我们也提供作物考种服务，图像分析定制服务，表型仪器定制服务。谷丰光电将立足于高端农业科研仪器、植物表型系统，坚持高科技、高价值、高效益三大目标，打造实力品牌优势、系统优势和价值优势的知名光电企业。

Phenotron Pro 植物活体冷荧光影像分析系统第（分割线）一台环控型植物活体影像分析 ＊系统结构组成＊超大型触控萤幕＊超低温CCD萤光相机＊多功能温度环控暗箱＊四合一多晶植物光照模组光合生理型态光合作用病理研究表型研究植物胁迫生理与抗性,还可对GFP成像Phenotron Pro 植物活体冷荧光影像分析系统 技术规范内容光照调控范围采用多光谱4in1LED光源R660 B450G550 IR735 ±10nm每种光源均可独立控制0-100（分割线）%输出源调配 比例并可配合CCD照相时间设定(白光400-700nm)冷光相机分辨率：2750*2200(6MP)画素；画素大小：水平:4.54um, 垂直4.54 um；含制冷晶片散热系统：-550℃冷荧光相机分辨率：1024*1024(1MP)画素；画素大小：水平:13.3um,垂直13.3um；含制冷晶片散热系统：-100℃应用方向1.植物基因表达；2.植物生长周期监控；3.光生物周期；4.植物克隆筛选；5.植物抗逆性研究6.植物蛋白相互作用；7.植物萤光酵素转染表达；8.药用植物开发；9.基因育种筛选

仪器简介：植物荧光成像系统一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取，提供2维图像，计算常规的荧光参数。F0， FM， FV， F0&rsquo ， FM&rsquo ， FV&rsquo ， NPQ， &Phi PSII， FV/FM， FV&rsquo /FM&rsquo ， RFd， qN， qP，及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广，既可是单个叶绿体或单个细胞（用显微植物荧光成像系统），也可是小的冠层（用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统）。此外，除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外，该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统（植物荧光蛋白成像系统）。用途： 1. 基本型：用于一般叶绿素荧光成像及荧光参数测量研究、Kautsky 诱导效应、 OJIP等 2. 标准型：除上述基本用途外还可以对Abs、F0&rsquo 、PAR吸收率等成像测量 3. GFP＋型：基本型加GFP成像测量（或其它颜色荧光） 4. 光合仪配套型：除上述基本用途外还可以接光合仪配合使用 5. 加强型：可用于QA再氧化动力学、荧光快速诱导等 6. 全能型：除上述基本用途外，还可以对Abs、F0&rsquo 、PAR吸收率、GFP等进行成像测量，此外可以与光合仪配合使用技术参数：1）图象分辨率：12bit， 512x512像素 2）图象抓取速度：每秒50幅 3）数据传输:USB2.0 口 4）该系统的软件功能： 设置和修改实验要求，如控制时间，实验周期，光强和摄象机操作 智能分割图像，显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来，如FV， FV/FM， qP， qN， NPQ， Rfd等，作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5）测量区域：直径8cm的圆形 6）光源：持续时间可调，最大到2秒，最大光强可达2000 mmol photons m-1 s-1主要特点：植物荧光成像系统采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。荧光成像原理：卤素灯提供饱和光脉冲，两个发光二极管板提供测量光和持续性光化学光。 封闭式植物荧光成像系统其核心是CCD摄象机，在测量样品的周围装有两个发光二极管板，带快门的卤素灯。 摄象机的焦距为F1.2/2.8-6 mm，每秒抓取50幅分辨率为12bit 或14bit的512x512像素的图象。图像与测量光一起存储，通过USB2.0接口传输。两个发光二极管板激发10-33ms的闪烁光，每个板都有345个橙色发光二极，lmax = 620 nm，也可提供其它颜色。发光二极管板产生连续光，均匀照射在直径8cm的圆形测量区域。250w的卤素灯产生饱和光脉冲，其持续时间可调，最大到2秒，最大光强可达2000 mmol photons m-1 s-1。该系统用PC或笔记本电脑控制。其技术原理在Nedbal L. et al. 2000， Photosynth.Res. 66: 3-12， Nedbal L. and Whitmarsh J. 2002， Chlorophyll fluorescence imaging of leaves. In: Chlorophyll fluorescence: A signature of photosynthesis， eds. Govindjee and Papageorgiou， G.， Kluwer Academic Publishers， in press 有详细介绍。

FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的最新高级扩展产品。此系统既可用于PAM脉冲调制式叶绿素荧光动态成像分析，又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配滤波器组对GFP、RFP、YFP、SYBR Green等荧光蛋白和荧光染料进行稳态荧光成像测量。测量对象包括叶片、果实、花朵、整株拟南芥或其他小型植株、苔藓、微藻、大型藻类乃至特定的动物样品。 应用领域：§ 植物光合生理生态§ 植物逆境胁迫生理与易感性§ 植物初级代谢与次级代谢§ 植物表型组学成像分析（Phenotyping）§ 作物遗传育种与抗性筛选§ 种子萌发与活力监测§ 转基因植株筛选 功能特点：§ 多激发光-多光谱荧光成像技术：通过两种以上不同波长的光源激发植物样品中不同的发色团发出荧光并进行成像检测，即为多激发光多光谱荧光成像技术。植物的多光谱荧光主要包括叶绿素荧光、UV紫外光激发多光谱荧光和荧光蛋白荧光§ FluorCam-Pro无需更换任何配件即可同步实现多激发光-多光谱荧光成像功能：s PAM脉冲调制式叶绿素荧光成像s 紫外激发F440、F520、F690、F740多光谱荧光成像s GFP、RFP、YFP等常用荧光蛋白成像§ 可根据用户需要定制荧光蛋白或荧光染料成像，如BFP、CFP、SYBR Green、DAPI等§ 可对黄酮、花青素含量进行定量测量§ 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）§ 测量样品为各种活体植物样品，包括叶片、花卉、果实、整株拟南芥或其他小型植物、微藻（包括液滴、多孔板、固体培养基）及大型藻类等 技术指标：§ 一体式设计，自带暗适应箱体§ 最佳成像面积：20×20cm§ 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数；紫外激发多光谱荧光成像参数：F440、F520、F690、F740；荧光蛋白荧光强度参数Ft；每项参数均可显示对应二维荧光彩色图像。并可测量计算黄酮醇指数Flavonol Index,、花青素指数Anthocyanin Index。 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑1) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等叶绿素荧光参数2) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等叶绿素荧光参数3) Quenching荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个叶绿素荧光参数4) Light Curve光响应曲线：不同光强梯度条件下Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等叶绿素荧光参数5) MultiColor紫外激发多光谱荧光成像（选配）6) FPs荧光蛋白成像：GFP、YFP、RFP、BFP等（选配） § 荧光激发光源组：全LED光源，包括620nm红光、5700K冷白光、735nm远红光、365nm紫外光，445nm品蓝光，470nm蓝光，505nm青光，530nm绿光，590nm琥珀色光等§ 高分辨率CCD相机1) 图像分辨率：1360×1024像素2) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧§ 具备7位滤波轮，标配叶绿素荧光滤波器，根据用户需要可定制紫外激发多光谱荧光和GFP、RFP、YFP、BFP等荧光蛋白专用滤波器§ FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单§ 自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）§ 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000） § 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等应用案例：1. 抗病毒基因研究：叶绿素荧光成像与GFP成像联合分析法国国家农业科学研究院一直致力于马铃薯y病毒组的抗病基因研究，通过不同基因编辑处理方法，验证抗病毒分子机制。相关研究中，研究人员利用FluorCam多光谱荧光成像系统的GFP荧光蛋白成像功能，定量分析感染面积与病毒积累量，从而直观地反映了不同基因功能对拟南芥病毒抗性的影响。同时，叶绿素荧光成像则反映病毒对光合系统的损伤，同步提供植物的光合表型信息。 参考文献：§ Zafirov D, et al. 2021. When a knockout is an Achilles' heel: Resistance to one potyvirus species triggers hypersusceptibility to another one in Arabidopsis thaliana. Mol Plant Pathol. 22: 334–347§ Bastet A, et al. 2019. Mimicking natural polymorphism in eIF4E by CRISPR‐Cas9 base editing is associated with resistance to potyviruses. Plant Biotechnology Journal 17: 1736–1750§ Bastet A, et al. 2018. Trans-species synthetic gene design allows resistance pyramiding and broad-spectrum engineering of virus resistance in plants. Plant Biotechnology Journal: 1–13 2. 不同颜色凌霄叶片的叶绿素荧光与紫外激发多光谱荧光成像分析（易科泰EcoTech实验室） 产地：欧洲

一、产品介绍植物根系荧光系统HXIN-RootFlur140能够通过不同荧光光源实现CFP、GFP等荧光蛋白的激发，辅助植物根系及微生物研究，系统设有独立可调光源强度，波长可以定制，是植物根系生态、抗逆性、胁迫等研究者科学研究的有效辅助手段。 二、硬件参数1. 荧光激发光源：独立可调光源强度，可实现CFP、GFP荧光蛋白激发，并具有自动切换功能；2. 光源系统：在白光、UV紫外光和荧光三大光源之间自动切换，并同步自动切换滤光片；3. 软件程控调光：显微拍照视野，软件实现调光，无手动旋钮，精度不低于1%，自动记忆档位，确保实验重复一致性；4. 工作环境：0℃～60℃,相对湿度0～99%RH（没有水汽凝结）；5. 充电电压：笔记本电压；6. 供电电源：笔记本USB端口供电或外接蓄电池或交流电源适配器；7. 数据传输：USB；8. 数据存储：笔记本；9. 工作方式：连接笔记本电脑（或平板电脑等）工作；10. 数据浏览载体：掌上笔记本、台式机等有USB接口的设备；

Hipoint 植物活体成像仪/3D影像分析仪/冷荧光影像分析仪/多光谱活体成像仪＊系統結構組成＊超大型觸控螢幕＊超低溫CCD螢光相機＊多功能溫度環控暗箱＊四合一多晶植物光照模組應用方向1.植物基因表達2.植物生長周期監控3.光生物週期4.植物克隆篩選5.植物抗逆性研究6.植物蛋白相互作用7.植物螢光酵素轉染表達8.藥用植物開發9.基因育種篩選The LemnaTec PhenoTron is a versatile instrument for a broad range of phenotyping applications in laboratories. It combines the imaging and image processing capabilities of a Lab Scanalyzer with the advantages of a climate-controlled growth cabinet. Thus, prime sample types are such that require environmental control during the phenotyping process, such as seeds or seedlings that are observed in continuous time series. Imaging of samples that do not stay continuously in the cabinet is equally possible. Thus, the PhenoTron allows imaging of many different types of biological samples including plants as well as samples in plates:Seedlings and small plants in pots or small trayssamples in microtiter plates or petri-dishes, e.g. seeds, leaf disks, insectssamples in beakers, e.g. duckweed for ecotoxicology testingdetached plant parts, e.g. leaves, fruits, roots, tubersThe core compartment of the LemnaTec PhenoTron consists of a climate controlled growth chamber (15°C to 40°C ± 3°C) with tunable LED light sources. Optionally, air humidity and CO2 content can be controlled. It has up to 16 groups of LEDs in different spectral bands between 350 and 850 nm, which can be controlled independently. Top stereo RGB cameras suit most phenotyping applications. Optional cameras include IR, NIR, Multispectral, or chlorophyll fluorescence. The system is operated via a touch-screen interface with intuitive controls.

来因科技多功能植物活体成像系统 植物活体成像检测仪 植物多光谱荧光成像系统PLIS-95PLIS系列多功能植物活体成像系统搭载了超高灵敏度深冷背照式相机大光圈镜、RGB激光光源、IR激光光源、温控平台、全自动滤光轮，用于生物发光检测；植物活体荧光素酶检测；荧光检测；化学发光检测等满足客户多种实验需求的一套高性能植物活体成像分析系统。激光光源：相对LED 和卤素光而言，激光有更稳定的光谱以及更小的光衰，光源更纯净，无边缘效益， 在光斑处光都处于均匀的能量，使其成为最佳的荧光成像光源。背照式高灵敏度深冷相机：PLIS植物活体成像仪采用了660万高分辨深冷背照式相机其QE在峰值最高高达95%,制冷温度 达到-95℃, 配合F0.95大光圈镜头，同时具备的了出色的信噪比和灵敏度。专用滤镜：深度定制激光专用滤镜，双层镀膜，截止深度更是高达OD6, 杂散光通过率非常低，背景干净。植物活体成像应用：相对普通LED 的可见荧光，激光尤其红外激光因穿透力较强，背景低，激发效率高的特性，可以更好的拍摄活物体内的细胞活动和基因表达，有效地研究观测感染性疾病发生发展过程、植物转基因鉴定，植物突变体筛选，病毒侵染等。产品参数型号PLIS-68PLIS-95分辨率1200万像素(背照式相机)660万像素(背照式相机)制冷温度-68℃-95℃像素尺寸4.63um×4.63um11um×11um感光效率HighQE:95%像数密度16bit(0-65535)曝光时间1ms-60min像素合并1×1、2×2、4×4…8×8动态范围≥4.8个数量级电动镜头F=0.95/35MM自动聚焦镜头，可选配F0.8镜头RGB光源标配650nm、532nm、473nm(红绿蓝)激光器IR光源标配红外680nm、780nm激光器紫外反射254nm白光光源LED冷光滤光镜轮7位滤光轮滤光镜片标配535nm,570nm、605nm、699nm、720nm、820nm拍摄面积最大拍摄面积32×26cm×10cm(L×W×H),侧位相机选配光照模块选配旋转样品台选配输入气孔预留定时关闭1～60分钟

MonitoringPenMP100植物叶绿素荧光测量仪一、产品简介 MP 100叶绿素荧光自动监测仪是一款轻便、耐用、小巧的叶绿素荧光仪。它配备了坚固防水的外壳，可在野外恶劣环境下进行长期无人值守的叶绿素荧光监测，既可以电池供电也能使用太阳能板供电。 多个MP 100监测单元还可以连接到中央控制单元进行同步控制，数据可通过数据采集器和移动调制解调器进行在线传输。 MP 100植物叶绿素荧光测量仪可用于田间或其他恶劣环境下进行植物胁迫后的光合状态监测。内置5个常用的荧光测量程序：Ft、QY、NPQ、OJIP、和光响应曲线。 MP 100叶绿素荧光自动监测仪具备可编程自动运行功能，可以通过电池供电进行长期自主独立工作。测量数据存储到自带的内存中，可通过电脑导出数据和曲线图。 二、测量程序与功能 &bull Ft：瞬时叶绿素荧光,暗适应完成后Ft＝F0 &bull QY：量子产额，表示光系统II 的效率，等于Fv/Fm(暗适应状态)或ΦPSII (光适应状态) &bull OJIP：快速荧光动力学曲线，用于研究植物暗适应后的快速荧光动态变化 &bull NPQ：荧光淬灭动力学曲线，用于研究植物从暗适应到光适应状态的荧光淬灭变化过程 &bull LC：光响应曲线，用于研究植物对不同光强的荧光淬灭反应 &bull PAR：光合有效辐射，测量环境中植物生长可以利用的400-700nm实际光强（限PAR型号）三、产品型号 MP 100-E增强版：用于野外叶绿素荧光监测，配备防水金属外壳、测量探头、外置电池盒及FluorPen软件等 MP 100-A水下版：用于水下藻类叶绿素荧光监测，配备水下外壳、测量探头、外置电池盒及FluorPen软件等四、产品参数测量和计算参数F0、FT、FM、FM'、Qy Fv/Fm、OJIP、NPQ1,2、LC1,2,3,饱和脉冲0~100%可调节（Max：3000µ mol(photon)/m2/s）光化光0~100%可调节（Max：1000µ mol(photon)/m2/s）测量光0~0.03µ mol(photon)/m2探测波长范围PIN光电二极管带697~750nm滤光器FluorPen 2.0软件Windows 2000, XP或更高存储容量16MB内置数据记录10万个数据点（Max）显示2×8字符LCD显示屏按键密封，2个触屏按键自动关机无操作5分钟后自动关机电源4节AAA碱性或可充电电池（标准版）电池电量典型情况下可连续操作48小时，低电量LCD显示尺寸120 mm×57 mm×30 mm重量180克样品固定器机械式叶夹工作环境温度0~55℃，相对湿度0~95%（非冷凝）存储环境温度-10~+60℃，相对湿度0~95%（非冷凝）五、产地：捷克

FluorPen FP110植物效率分析仪用于实验室、温室和野外快速测量植物叶绿素荧光参数，具有便携性强、精确度高、性价比高等特点；双键操作，具图形显示屏，内置锂电和数据存储，广泛应用于研究植物的光合作用、胁迫监测、除草剂检测或突变体筛选，还可用于生态毒理的生物检测，如通过不同植物对土壤或水质污染的叶绿素荧光响应，找出敏感植物作为生物传感器用于生物检测。FP110配备多种叶夹型号，用于不同的样品与研究。FluorPen FP110植物效率分析仪应用领域&bull 适用于光合作用研究和教学，植物及分子生物学研究，农业、林业，生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变筛选等。&bull 植物光合特性研究&bull 光合突变体筛选与表型研究&bull 生物和非生物胁迫的检测&bull 植物抗胁迫能力或者易感性研究&bull 农业和林业育种、病害检测、长势与产量评估&bull 除草剂检测&bull 教学测量程序与功能&bull Ft：瞬时叶绿素荧光,暗适应完成后Ft＝F0&bull QY：量子产额，表示光系统II 的效率，等于Fv/Fm(暗适应状态)或ΦPSII (光适应状态)。&bull OJIP：快速荧光动力学曲线，用于研究植物暗适应后的快速荧光动态变化&bull NPQ：荧光淬灭动力学曲线，用于研究植物从暗适应到光适应状态的荧光淬灭变化过程。&bull LC：光响应曲线，用于研究植物对不同光强的荧光淬灭反应。&bull PAR：光合有效辐射，测量环境中植物生长可以利用的400-700nm实际光强（限PAR型号）。