抗体纯化层析柱

[font=宋体]抗体纯化是生物医药领域的一项关键技术，它涉及到从复杂的混合物中提取出高纯度的抗体。纯化后的抗体具有更高的特异性和灵敏度，能够提高实验的准确性和重复性。本文将详细介绍抗体纯化的方法和步骤，包括亲和色谱、离子交换色谱、凝胶过滤色谱等常用技术，并探讨纯化过程中的注意事项和应用实例。通过了解和掌握这些知识，研究人员可以更好地进行抗体相关的实验和研究。[/font][b][font=宋体]抗体纯化方法及步骤详解：[/font][/b][font=宋体] [/font][b][font=宋体]一、凝胶过滤层析法[/font][/b][font=宋体]凝胶过滤层析法的原理是基于抗体分子的不同大小，利用不同孔径的凝胶过滤介质将目标分子（抗体）与较大分子（如蛋白质等杂质）分离开来。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的凝胶柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]使用缓冲液进行洗脱，较大分子无法通过凝胶柱而流出。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]目标抗体分子大小适中，可通过凝胶柱并被保留下来。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液将目标抗体从凝胶柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]凝胶过滤层析法在医药研发外包服务中应用广泛，例如美迪西提供从小试到规模生产全程的蛋白分离纯化服务，并根据工艺的要求结合产品特点给客户定制适用的工艺和系统。此外，凝胶过滤层析法还被广泛应用于蛋白质等大分子物质非分离纯化、分子质量测定、脱盐等试验中。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]在使用凝胶过滤层析法时，需要注意以下几点：[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]正确选择凝胶类型和粒度：不同类型和粒度的凝胶具有不同的分离效果和分辨率，需要根据实验需求进行选择。[/font][font=宋体][font=宋体]优化层析条件：包括流速、缓冲液[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值和离子强度等，这些因素都会影响分离效果和分辨率。[/font][/font][font=宋体]防止柱床干涸：在分离过程中，要保持层析柱的湿润，避免柱床干涸，影响分离效果。[/font][font=宋体]注意样品性质：凝胶过滤层析法适用于相对分子质量较大的物质，对于小分子物质可能无法有效分离。同时，需要注意样品的溶解性、电荷等性质，以选择合适的凝胶和实验条件。[/font][font=宋体]检测和分析：在分离结束后，需要对分离得到的成分进行检测和分析，以确定分离效果和纯度。[/font][font=宋体]总之，凝胶过滤层析法是一种有效的分离和分析方法，需要注意实验条件的选择和操作方法的正确性，以保证实验结果的准确性和可靠性。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]二、亲和层析法[/b][/font][font=宋体][url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-ac][b]亲和层析法[/b][/url]的原理是利用抗体分子与抗原之间的特异性结合来实现目标抗体的纯化。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先包含特异性结合配体[/font][font=Calibri]([/font][font=宋体]如蛋白[/font][font=Calibri]A[/font][font=宋体]、蛋白[/font][font=Calibri]G[/font][font=宋体]等[/font][font=Calibri])[/font][font=宋体]的亲和层析柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]目标抗体与配体之间发生特异性结合。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]使用洗脱缓冲液将非特异结合的组分洗脱掉。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液将目标抗体从亲和层析柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体]亲和层析法的应用范围广泛，例如在免疫分析中，可以利用抗体与抗原的特异性结合，通过亲和层析法分离和纯化抗体；在蛋白质组学研究中，可以利用蛋白质与配基之间的相互作用，分离和纯化特定的蛋白质；在药物筛选中，可以利用药物与靶点之间的相互作用，筛选出潜在的药物分子。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]在使用亲和层析法时，需要注意以下几点：[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]正确选择配基：配基的选择对于亲和层析的效果至关重要，需要根据目标分子的特性和需要纯化的样品类型选择合适的配基。[/font][font=宋体][font=宋体]优化层析条件：包括流速、缓冲液[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值和离子强度等，这些因素都会影响分离效果和分辨率。[/font][/font][font=宋体]注意配基的结合力和选择性：亲和层析中配基与目标分子的结合力决定了分离效果和纯度，而选择性则决定了能否有效区分不同的目标分子。[/font][font=宋体]检测和分析：在分离结束后，需要对分离得到的成分进行检测和分析，以确定分离效果和纯度。[/font][font=宋体]注意层析过程中的稳定性：亲和层析过程中需要保持层析柱的稳定性，以避免层析柱的塌陷或堵塞等问题。[/font][font=宋体]总之，亲和层析法是一种非常有效的分离和分析方法，需要注意实验条件的选择和操作方法的正确性，以保证实验结果的准确性和可靠性。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]三、离子交换层析法[/b][/font][font=宋体][url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-iec][b]离子交换层析法[/b][/url]的原理是利用目标抗体分子与离子交换柱中固定的离子之间的相互作用来实现纯化。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的离子交换柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]使用缓冲液进行洗脱，使与固定离子相同电荷的分子无法通过离子交换柱而流出。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]目标抗体由于表面电荷不同，能够通过离子交换柱被保留下来。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液改变[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]或盐浓度等条件，将目标抗体从离子交换柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]离子交换层析法的应用范围非常广泛，例如在蛋白质分离中，可以利用蛋白质所带电荷的不同，通过离子交换层析法将其分离；在核酸分离中，可以利用核酸所带电荷的不同，通过离子交换层析法将其分离；在多糖分离中，可以利用多糖所带电荷的不同，通过离子交换层析法将其分离。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]在使用离子交换层析法时，需要注意以下几点：[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]正确选择离子交换剂：根据待分离的生物分子的电荷性质和所需分离的离子的性质，选择合适的离子交换剂。[/font][font=宋体][font=宋体]优化层析条件：包括流速、缓冲液[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值和离子强度等，这些因素都会影响分离效果和分辨率。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]注意控制洗脱液的[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值和离子强度：洗脱液的[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值和离子强度可以影响生物分子与离子交换剂的结合和解离，进而影响分离效果和纯度。[/font][/font][font=宋体]检测和分析：在分离结束后，需要对分离得到的成分进行检测和分析，以确定分离效果和纯度。[/font][font=宋体]注意层析过程中的稳定性：离子交换层析过程中需要保持层析柱的稳定性，以避免层析柱的塌陷或堵塞等问题。[/font][font=宋体]注意保护层析柱：离子交换层析过程中需要避免过度冲洗和压力过大等问题，以保护层析柱的结构和使用寿命。[/font][font=宋体]总之，离子交换层析法是一种非常有效的生物分子分离和纯化技术，需要注意实验条件的选择和操作方法的正确性，以保证实验结果的准确性和可靠性。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]四、逆向相色谱法[/b][/font][font=宋体]逆向相色谱法的原理是利用目标抗体分子与逆向相色谱柱中固定的疏水基团之间的相互作用来实现纯化。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的逆向相色谱柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]使用缓冲液进行洗脱，使疏水性较低的分子无法通过逆向相色谱柱而流出。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]目标抗体由于表面疏水性不同，能够通过逆向相色谱柱被保留下来。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液改变溶剂极性等条件，将目标抗体从逆向相色谱柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]逆向色谱法的应用范围广泛，例如在蛋白质分离中，可以利用蛋白质在色谱柱上的吸附和洗脱过程，通过逆向色谱法将其分离；在多肽分离中，可以利用多肽在色谱柱上的吸附和洗脱过程，通过逆向色谱法将其分离；在核酸分离中，可以利用核酸在色谱柱上的吸附和洗脱过程，通过逆向色谱法将其分离。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]在使用逆向色谱法时，需要注意以下几点：[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]正确选择色谱柱：根据待分离的生物分子的性质和所需分离的离子的性质，选择合适的色谱柱。[/font][font=宋体][font=宋体]优化层析条件：包括流速、缓冲液[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值和离子强度等，这些因素都会影响分离效果和分辨率。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]注意控制洗脱液的[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值和离子强度：洗脱液的[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值和离子强度可以影响生物分子与色谱柱的吸附和解离，进而影响分离效果和纯度。[/font][/font][font=宋体]检测和分析：在分离结束后，需要对分离得到的成分进行检测和分析，以确定分离效果和纯度。[/font][font=宋体]注意层析过程中的稳定性：逆向色谱过程中需要保持层析柱的稳定性，以避免层析柱的塌陷或堵塞等问题。[/font][font=宋体]注意保护色谱柱：逆向色谱过程中需要避免过度冲洗和压力过大等问题，以保护色谱柱的结构和使用寿命。[/font][font=宋体]注意样品性质：逆向色谱法适用于相对分子质量较大的物质，对于小分子物质可能无法有效分离。同时，需要注意样品的溶解性、电荷等性质，以选择合适的色谱柱和实验条件。[/font][font=宋体]总之，逆向色谱法是一种非常有效的生物分子分离和纯化技术，需要注意实验条件的选择和操作方法的正确性，以保证实验结果的准确性和可靠性。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]抗体纯化是一项关键技术，在抗体制备过程中十分重要。每种方法都有其特点和适用性，义翘神州可根据您的具体需求选择合适的抗体纯化方法，保证交付高质量、高纯度的纯化抗体。详情可以关注[/font][font=Calibri]:https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/antibody-purification[/font][/font]

[font=宋体][font=宋体]抗体纯化的原理是依据抗体的生物学特征，如抗体分子的电荷、大小、疏水性等，选用合适的方法将目标抗体分子从初始混合物中分离纯化出来。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]抗体纯化方法包括[/font][/font][b][font=宋体][font=宋体]亲和层析法、离子交换层析法、凝胶过滤层析法和疏水作用层析法[/font][/font][/b][font=宋体][font=宋体]等。选用何种纯化方法取决于抗体的来源、时间、成本以及抗体的最终用途等。[/font][/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体][font=宋体]抗体纯化的方法及步骤[/font][/font][/b][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]抗体是一类免疫蛋白，可识别并结合特定抗原，在生物研究以及临床应用中，纯化得到高质量的抗体十分重要。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]一、凝胶过滤层析法[/font][/font][font=宋体][font=宋体]凝胶过滤层析法的原理是基于抗体分子的不同大小，利用不同孔径的凝胶过滤介质将目标分子（抗体）与较大分子（如蛋白质等杂质）分离开来。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的凝胶柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]使用缓冲液进行洗脱，较大分子无法通过凝胶柱而流出。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]目标抗体分子大小适中，可通过凝胶柱并被保留下来。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液将目标抗体从凝胶柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]二、[url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-ac][b]亲和层析法[/b][/url][/font][/font][font=宋体][font=宋体]亲和层析法的原理是利用抗体分子与抗原之间的特异性结合来实现目标抗体的纯化。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先包含特异性结合配体[/font][font=Calibri]([/font][font=宋体]如蛋白[/font][font=Calibri]A[/font][font=宋体]、蛋白[/font][font=Calibri]G[/font][font=宋体]等[/font][font=Calibri])[/font][font=宋体]的亲和层析柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]目标抗体与配体之间发生特异性结合。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]使用洗脱缓冲液将非特异结合的组分洗脱掉。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液将目标抗体从亲和层析柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]三、离子交换层析法[/font][/font][font=宋体][font=宋体]离子交换层析法的原理是利用目标抗体分子与离子交换柱中固定的离子之间的相互作用来实现纯化。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的离子交换柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]使用缓冲液进行洗脱，使与固定离子相同电荷的分子无法通过离子交换柱而流出。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]目标抗体由于表面电荷不同，能够通过离子交换柱被保留下来。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液改变[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]或盐浓度等条件，将目标抗体从离子交换柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]四、逆向相色谱法[/font][/font][font=宋体][font=宋体]逆向相色谱法的原理是利用目标抗体分子与逆向相色谱柱中固定的疏水基团之间的相互作用来实现纯化。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的逆向相色谱柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]使用缓冲液进行洗脱，使疏水性较低的分子无法通过逆向相色谱柱而流出。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]目标抗体由于表面疏水性不同，能够通过逆向相色谱柱被保留下来。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液改变溶剂极性等条件，将目标抗体从逆向相色谱柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]抗体纯化是一项关键技术，在[url=https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/antibody-production][b]抗体制备[/b][/url]过程中十分重要。每种方法都有其特点和适用性，义翘神州可根据您的具体需求选择合适的抗体纯化方法，保证交付高质量、高纯度的纯化抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]更多[url=https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/antibody-purification][b]抗体纯化[/b][/url]详情可以关注：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/antibody-purification[/font][/font][font=宋体] [/font]

[font=宋体]抗体是一类免疫蛋白，可识别并结合特定抗原，在生物研究以及临床应用中，纯化得到高质量的抗体十分重要。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]? 凝胶过滤层析法[/b][/font][font=宋体]凝胶过滤层析法的原理是基于抗体分子的不同大小，利用不同孔径的凝胶过滤介质将目标分子（抗体）与较大分子（如蛋白质等杂质）分离开来。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的凝胶柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]使用缓冲液进行洗脱，较大分子无法通过凝胶柱而流出。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]目标抗体分子大小适中，可通过凝胶柱并被保留下来。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液将目标抗体从凝胶柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]? 亲和层析法[/b][/font][font=宋体]亲和层析法的原理是利用抗体分子与抗原之间的特异性结合来实现目标抗体的纯化。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先包含特异性结合配体[/font][font=Calibri]([/font][font=宋体]如蛋白[/font][font=Calibri]A[/font][font=宋体]、蛋白[/font][font=Calibri]G[/font][font=宋体]等[/font][font=Calibri])[/font][font=宋体]的亲和层析柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]目标抗体与配体之间发生特异性结合。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]使用洗脱缓冲液将非特异结合的组分洗脱掉。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液将目标抗体从亲和层析柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]? 离子交换层析法[/b][/font][font=宋体]离子交换层析法的原理是利用目标抗体分子与离子交换柱中固定的离子之间的相互作用来实现纯化。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的离子交换柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]使用缓冲液进行洗脱，使与固定离子相同电荷的分子无法通过离子交换柱而流出。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]目标抗体由于表面电荷不同，能够通过离子交换柱被保留下来。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液改变[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]或盐浓度等条件，将目标抗体从离子交换柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]? 逆向相色谱法[/b][/font][font=宋体]逆向相色谱法的原理是利用目标抗体分子与逆向相色谱柱中固定的疏水基团之间的相互作用来实现纯化。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]具体操作步骤如下：[/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的逆向相色谱柱中。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]使用缓冲液进行洗脱，使疏水性较低的分子无法通过逆向相色谱柱而流出。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]目标抗体由于表面疏水性不同，能够通过逆向相色谱柱被保留下来。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]最后使用洗脱缓冲液改变溶剂极性等条件，将目标抗体从逆向相色谱柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]抗体纯化方法的优缺点[/b][/font][font=宋体]凝胶过滤层析法：优点：[/font][font=宋体]简单易行，不需要特殊设备，适用于各种规模的实验室 缺点：[/font][font=宋体]分离效率低，只能实现较为粗略的纯化[/font][font=宋体]亲和层析法 优点：[/font][font=宋体]纯度高，效率高 缺点：[/font][font=宋体]需要特定的亲和试剂和配体，成本较高[/font][font=宋体]离子交换层析法 优点：[/font][font=宋体]选择性高，适用性强 缺点：[/font][font=宋体]需要根据不同抗体进行条件优化，操作较复杂[/font][font=宋体]逆向相色谱法 优点：[/font][font=宋体]选择性高，灵活性强 缺点：[/font][font=宋体]需要特定设备支持，操作条件较为复杂[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]抗体纯化是一项关键技术，在抗体制备过程中十分重要。每种方法都有其特点和适用性，义翘神州可根据您的具体需求选择合适的抗体纯化方法，保证交付高质量、高纯度的纯化抗体。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]更多详情可以参看：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/antibody-purification[/font][/font]

[font=宋体][font=宋体][b]多克隆抗体纯化原理[/b]是依据抗体的生物学特性，一般通过[/font][font=Calibri]Protein A[/font][font=宋体]或[/font][font=Calibri]Protein G[/font][font=宋体]的方法从动物血清中纯化抗体。但某些使用场景对抗体的质量要求很高，需要利用抗原亲和层析从总[/font][font=Calibri]IgG[/font][font=宋体]抗体中进一步纯化和分离抗原特异性抗体，最终获得纯度高、非特异性背景低的多克隆抗体。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]抗血清是一个非常复杂的混合物，包括血清的全部成分。抗血清被收集后，可通过硫酸铵沉淀法对其进行初步纯化，移除许多粘性蛋白，尽可能减少这些杂质对后续亲和层析纯化的影响。不同的纯化方法经常联合使用，用于从血清中纯化高质量的多克隆抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b][font=宋体]①[/font][font=Calibri]Protein A/G[/font][font=宋体]纯化[/font][/b][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]Protein A[/font][font=宋体]、[/font][font=Calibri]Protein G[/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]Protein L[/font][font=宋体]是三种细菌蛋白，具有能与抗体高效结合的特性。这些蛋白经过基因工程技术重组表达，常用于不同物种关键抗体类型的亲和纯化。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]Protein A/G[/font][font=宋体]纯化是一种快速高效的多克隆抗体纯化方法，其原理是能与不同物种的[/font][font=Calibri]IgG[/font][font=宋体]恒定区发生结合，从而除去血清蛋白和[/font][font=Calibri]IgM[/font][font=宋体]抗体。应该注意的是，终产品包含总[/font][font=Calibri]IgG[/font][font=宋体]抗体和特异性抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]义翘神州已生产了[/font][font=Calibri]Protein A[/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]Protein G[/font][font=宋体]琼脂糖纯化树脂，可用于纯化小鼠[/font][font=Calibri]IgG2a/2b/3[/font][font=宋体]、大鼠[/font][font=Calibri]IgG2c[/font][font=宋体]、人[/font][font=Calibri]IgG1/2/4[/font][font=宋体]和兔[/font][font=Calibri]IgG[/font][font=宋体]等多种来源的抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体][b]②抗原亲和纯化[/b][/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]在[/font][font=Calibri]Protein A/G[/font][font=宋体]纯化步骤后，抗原亲和纯化可进一步用于制备具有特异性高和纯度高的多克隆抗体。这种高灵敏度和高特异性的多克隆抗体适合用于[/font][font=Calibri]IHC[/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]IF[/font][font=宋体]等免疫学检测实验，即使在较低的稀释比下使用，也不会增加信号背景。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]抗原亲和纯化，首先将抗原固定至树脂上，然后目的抗体与抗原发生特异性结合，最后洗脱得到目的抗体，以达到纯化多克隆抗体的目的。与[/font][font=Calibri]Protein A[/font][font=宋体]法相比，此方法识别的是抗体的可变区，能高度识别和结合目的抗体，常用于多克隆抗体的纯化。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体][b]多克隆抗体的纯化主要包括以下几个步骤：[/b][/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]①收集细胞上清液或培养上清液：多克隆抗体是通过免疫动物（如小鼠、兔子等）产生的，因此首先需要收集包含抗体的细胞上清液或培养上清液。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]②蛋白[/font][font=Calibri]A/G[/font][font=宋体]层析：将收集到的上清液通过蛋白[/font][font=Calibri]A/G[/font][font=宋体]层析柱进行纯化。蛋白[/font][font=Calibri]A/G[/font][font=宋体]是常用于捕获免疫球蛋白的亲和色谱基质，可以选择性地结合抗体。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]③洗脱：通过改变洗脱缓冲液的[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值或盐浓度等条件，将结合在蛋白[/font][font=Calibri]A/G[/font][font=宋体]柱上的抗体洗脱下来。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]④纯化筛选：使用各种纯化筛选方法，如凝胶过滤、离子交换层析、尺寸排阻层析等，进一步去除杂质并提高抗体的纯度。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]⑤浓缩和储存：对纯化后的抗体进行浓缩处理，通常使用离心浓缩或超滤浓缩等方法。最后，将抗体在适当的储存缓冲液中保存，确保其稳定性和活性。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]更多[url=https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/pab-purification][b]多克隆抗体纯化[/b][/url]详情可以关注：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/pab-purification[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=Calibri] [/font]

[font=宋体][font=宋体]亲和层析是应用生物高分子与配基可逆结合的原理，将配基通过共价键牢固结合于载体上而制得的层析系统。这种可逆结合的作用主要是靠生物高分子对它的配基的空间结构的识别。常用的生物亲和关系有酶[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]底物、底物类似物、抑制剂、激活剂、辅因子，抗体[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]抗原，激素[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]受体蛋白、载体蛋白，外源凝集素[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]多糖、糖蛋白、细胞表面受体，核酸[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]互补核苷酸序列、组蛋白、核酸结合蛋白等，具有高效、简单、快速的优点，是当前最为理想的分离纯化蛋白的方法。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]亲和层析纯化步骤：[/b][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]1[/font][font=宋体]、捕获阶段[/font][/font][font=宋体]在样品捕获阶段，通过将速度和容量进行优化组合，使样品中的目标产物被有效的分离、浓缩和稳定化处理。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]捕获阶段一般选择亲和层析，离子交换层析或者疏水层析，通过吸附作用使样品和杂质实现分离。如果样品带有标签，第一步可以选择标签蛋白亲和层析；如果样品不带有标签，可以考虑使用离子交换[/font][font=Calibri]/[/font][font=宋体]疏水层析。由于捕获阶段一般样品量较大，杂质较多，所以捕获阶段分辨率不是特别主要考虑的因素，可以主要考虑增加上样量和速度。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]2[/font][font=宋体]、中度纯化阶段[/font][/font][font=宋体]在中度纯化阶段，应将注意力集中于将目标样品和大多数大体积的杂质分开。在中度纯化阶段，速度不是最重要的因素，因为经过捕获阶段样品体积会缩减。中度纯化阶段一般建议使用离子交换层析或者疏水层析进一步提高样品的纯度。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]3[/font][font=宋体]、精细纯化阶段[/font][/font][font=宋体]在精细纯化阶段，关注的重点就是如何达到高分辨率，从而完成最终的纯化。在此前的步骤中已经去除了大部分的污染物和杂质。如果需要达到较高的分辨率，可能会在此步骤造成一些回收率的损失。精细纯化阶段一般建议使用高分辨率的分子筛或者高分辨率的离子交换层析柱。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]亲和层析纯化优缺点：[/b][/font][font=宋体][font=Calibri]1. [/font][font=宋体]亲和层析法是分离蛋白质的一种极为有效的方法，它经常只需经过一步处理即可使某种待提纯的蛋白质从很复杂的蛋白质混合物中分离出来，而且纯度很高。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]2. [/font][font=宋体]是最有效的生物活性物质纯化方法，它对生物分子选择性的吸附和分离，可以取得很高的纯化倍数。此外蛋白在纯化过程中得到浓缩，结合到亲和配基后，性质更加 稳定，其结果提高了活性回收率。此外它可以减少纯化步骤，缩短纯化时间，对不稳定蛋白的纯化十分有利。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]3. [/font][font=宋体]除特异性的吸附外，仍然会因分子的错误认别和分子间非选择性的作用力而吸附一些杂蛋白质，另洗脱过程中的配体不可避免的脱落进入分离体系。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]4. [/font][font=宋体]载体较昂贵，机械强度低，配基制备困难，有的配基本身要经过分离纯化，配基与载体耦联条件激烈等。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]更多详情可以参看义翘神州[url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-ac][b]亲和层析纯化蛋白[/b][/url]：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-ac[/font][/font]

[font=宋体]蛋白纯化介质主要应用于研究目的蛋白的结构、功用以及相互作用的和过程中。比如：在蛋白纯化过程中，由于[url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-ac][b]亲和层析法[/b][/url]的选择性和结合力较强，分辨率也高。所以，亲和层析法是一种常用的蛋白、抗体纯化方法，天地人和生物多种简单易用的亲和纯化介质，适用于批量或利用重力进行纯化，可以高效、便捷、可靠地从品中分离蛋白和抗体，为下游应用提供有力保证。[/font][font=宋体][b]亲和层析法的原理：[/b][/font][font=宋体][font=宋体]亲和层析是应用生物高分子与配基可逆结合的原理，将配基通过共价键牢固结合于载体上而制得的层析系统。这种可逆结合的作用主要是靠生物高分子对它的配基的空间结构的识别。常用的生物亲和关系有酶[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]底物、底物类似物、抑制剂、激活剂、辅因子，抗体[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]抗原，激素[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]受体蛋白、载体蛋白，外源凝集素[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]多糖、糖蛋白、细胞表面受体，核酸[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]互补核苷酸序列、组蛋白、核酸结合蛋白等，具有高效、简单、快速的优点，是当前最为理想的分离纯化蛋白的方法。[/font][/font][b][font=宋体][font=宋体]亲和层析的操作步骤[/font][font=Calibri]:[/font][/font][/b][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]在亲和层析中，蛋白在影响蛋白[/font][font=Calibri]([/font][font=宋体]或标签[/font][font=Calibri])[/font][font=宋体]与其配体之间结合的条件下被加载到柱子上。在不破坏特定相互作用但能破坏污染蛋白与固定相之间任何非特异性相互作用的条件下洗涤结合的蛋白。然后用含有竞争性分子的缓冲液或破坏所有蛋白[/font][font=Calibri]/[/font][font=宋体]蛋白相互作用的条件洗脱结合的蛋白。竞争分子与配体结合，取代目标蛋白，这种竞争分子通常通过另一种色谱流程或透析法从目标蛋白中去除。[/font][/font][font=宋体] [/font][table][tr][td][b][font=微软雅黑][color=#232323]亲和层析配体和洗脱条件[/color][/font][/b][/td][td][font=微软雅黑] [/font][/td][td][font=微软雅黑] [/font][/td][/tr][tr][td][b][font=微软雅黑][color=#232323]需纯化的蛋白[/color][/font][/b][/td][td][b][font=微软雅黑][color=#232323]配体[/color][/font][/b][/td][td][b][font=微软雅黑][color=#232323]洗脱条件[/color][/font][/b][/td][/tr][tr][td][font=微软雅黑][color=#232323]抗体（抗原特异性）[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]抗原肽[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]游离肽[/color][/font][/td][/tr][tr][td][font=微软雅黑][color=#232323]多聚组氨酸标签蛋白[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]Ni2+或Co2+[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]咪唑或游离组氨酸[/color][/font][/td][/tr][tr][td][font=微软雅黑][color=#232323]FLAG标签蛋白[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]FLAG特异性抗体[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]FLAG肽或低pH值[/color][/font][/td][/tr][tr][td][font=微软雅黑][color=#232323]GST标签蛋白[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]还原型谷胱甘肽[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]游离谷胱甘肽[/color][/font][/td][/tr][tr][td][font=微软雅黑][color=#232323]Myc标签蛋白[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]Myc特异性抗体[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323][font=微软雅黑]低[/font][font=微软雅黑]pH[/font][/color][/font][/td][/tr][tr][td][font=微软雅黑][color=#232323]抗体（类特异性）[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323][font=微软雅黑]蛋白[/font][font=微软雅黑]A、G和L或精蛋白[/font][/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]pH极端值[/color][/font][/td][/tr][tr][td][font=微软雅黑][color=#232323]DNA结合蛋白[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]肝素[/color][/font][/td][td][font=微软雅黑][color=#232323]高离子强度[/color][/font][/td][/tr][/table][font=宋体][font=宋体]更多详情可以关注：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-ac[/font][/font]

各位大神，蛋白纯化时层析柱尺寸如何影响反相层析的规模和柱效的？请各位大神给详细介绍一下。

在文献上看到这么一段话"将浓缩液采用5%水脱活硅胶层析柱 (1cmVi .d.x 9cm)分离纯化"。不知道这个“5%水脱活硅胶层析柱”到底是什么东西，是常用的硅胶层析柱么？

[font=宋体][font=Calibri]ProteinA/G[/font][font=宋体]纯化技术是一种基于亲和层析的分离方法，它利用抗体与其百度文库定抗原之间的亲和力来实现纯化。 该技术的原理是将抗体固定在亲和树脂上，然后将混合物通过亲和树脂柱，使抗原与抗体结合，从而实现抗原的纯化。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b][url=https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/antibody-purification]抗体纯化[/url]常见问题解析：[/b][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]1[/font][font=宋体]、[/font][font=Calibri]PROTEIN A [/font][font=宋体]， [/font][font=Calibri]PROTEIN G [/font][font=宋体]和 [/font][font=Calibri]PROTEIN L [/font][font=宋体]对不同种属和抗体亚型的相对结合强度？[/font][/font][font=宋体][font=宋体]首先根据不同的种属亚型参考[/font][font=宋体]“相对结合强度”表（如下图），[/font][font=Calibri]Protein A[/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]Protein G [/font][font=宋体]均结合抗体的重链部分，若存在 [/font][font=Calibri]Protein A [/font][font=宋体]及 [/font][font=Calibri]Protein G [/font][font=宋体]都有较强结合能力时， 更加推荐 [/font][font=Calibri]Protein A[/font][font=宋体]。 [/font][font=Calibri]Protein A [/font][font=宋体]的洗脱条件（[/font][font=Calibri]pH 3.5[/font][font=宋体]–[/font][font=Calibri]4.5[/font][font=宋体]）较 [/font][font=Calibri]Protein G[/font][font=宋体]（[/font][font=Calibri] pH 3[/font][font=宋体]）更加温和，利于对低 [/font][font=Calibri]pH [/font][font=宋体]敏感抗体的稳定性。 另外， [/font][font=Calibri]Protein A [/font][font=宋体]有耐碱清洗的 [/font][font=Calibri]PrismA[/font][font=宋体]或 [/font][font=Calibri]SuRe [/font][font=宋体]配基可供选择，且载量更高。 尤其是纯化多个抗体，为了避免交叉污染，优先推荐耐碱清洗的填料，长久使用更经济。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]Protein G Sepharose [/font][font=宋体]来源于链球菌， 为细胞表面的 [/font][font=Calibri]III [/font][font=宋体]型 [/font][font=Calibri]Fc [/font][font=宋体]受体。 可以广泛、更强地结合更多类型的[/font][font=Calibri]IgG[/font][font=宋体]、 多克隆 [/font][font=Calibri]IgG [/font][font=宋体]及人 [/font][font=Calibri]IgG[/font][font=宋体]。同时， 重组表达的 [/font][font=Calibri]Protein G [/font][font=宋体]去除了 [/font][font=Calibri]N [/font][font=宋体]端白蛋白结合结构域， 血清蛋白结合水平更低。 此外，[/font][font=Calibri]Protein G [/font][font=宋体]还可以和某些抗体的 [/font][font=Calibri]Fab [/font][font=宋体]和 [/font][font=Calibri]F (ab[/font][font=宋体]’[/font][font=Calibri])2 [/font][font=宋体]段结合。 但是，其工业化程度低于 [/font][font=Calibri]Protein A[/font][font=宋体]。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]Protein L[/font][font=宋体]结合抗体的轻链可变区，适合抗体片段的纯化。同时[/font][font=Calibri]Protein L[/font][font=宋体]对于某些种属亚型有结合能力，可以作为[/font][font=Calibri]Protein A[/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]Protein G[/font][font=宋体]的有效的补充。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]2[/font][font=宋体]、不同类型的 [/font][font=Calibri]PROTEIN A [/font][font=宋体]配基，有什么差别，如何选择？[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]Nprotein A [/font][font=宋体]即为天然 [/font][font=Calibri](Native) Protein A[/font][font=宋体]，来源于金黄色葡萄球菌。有[/font][font=Calibri]5 [/font][font=宋体]个结合结构域可以和 [/font][font=Calibri]IgG [/font][font=宋体]的 [/font][font=Calibri]Fc [/font][font=宋体]区有强的特异性结合。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]Rprotein A Sepharose 4 FF[/font][font=宋体]，为重组 [/font][font=Calibri]Protein A[/font][font=宋体]，去除了天然蛋白中跟抗体结合不相关的细胞壁结合结构域，分子量从 [/font][font=Calibri]42 KD [/font][font=宋体]减少到 [/font][font=Calibri]34 KD[/font][font=宋体]。主要结合 [/font][font=Calibri]Fc [/font][font=宋体]区。经基因工程改造后，单点定向偶联于琼脂糖骨架上，降低空间位阻，增加了与 [/font][font=Calibri]IgG [/font][font=宋体]的结合能力，载量比 [/font][font=Calibri]nprotein A[/font][font=宋体]更高 ；同时重组的配基，在发酵和纯化过程中没有使用人源的[/font][font=Calibri]IgG[/font][font=宋体]，避免了人源 [/font][font=Calibri]IgG [/font][font=宋体]的污染风险。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]rmpProtein A[/font][font=宋体]，多位点附着的技术，保证更低的重组[/font][font=Calibri]protein A[/font][font=宋体]配基的脱落。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]MabSelect [/font][font=宋体]为 [/font][font=Calibri]rProtein A [/font][font=宋体]配基，使用高流速琼脂糖凝胶基架 [/font][font=Calibri]( [/font][font=宋体]类似 [/font][font=Calibri]Capto[/font][font=宋体]，但孔径更大[/font][font=Calibri])[/font][font=宋体]。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]MabSelect Xtra(rProtein A [/font][font=宋体]配基[/font][font=Calibri])[/font][font=宋体]，比 [/font][font=Calibri]MabSelect [/font][font=宋体]粒径小、载量更高，孔径更大。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]MabSelect SuRe [/font][font=宋体]偶联了耐碱的 [/font][font=Calibri]SuRe [/font][font=宋体]配基，耐受 [/font][font=Calibri]0.1~0.5 M NaOH[/font][font=宋体]。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]MabSelect SuRe LX [/font][font=宋体]相对于 [/font][font=Calibri]MabSelect SuRe[/font][font=宋体]，增加了配基密度，载量提高[/font][font=Calibri]30%[/font][font=宋体]。 [/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]3[/font][font=宋体]、抗体片段的纯化填料，如何选择？[/font][/font][font=宋体][font=宋体]不同配基结合特征如下[/font] [font=宋体]：[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]rProtein A [/font][font=宋体]和 [/font][font=Calibri]PrismA [/font][font=宋体]配基可以结合抗体 [/font][font=Calibri]Fc [/font][font=宋体]区域以及重链可变区[/font][font=Calibri]VH3[/font][font=宋体]。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]Protein G [/font][font=宋体]配基除了与 [/font][font=Calibri]IgG [/font][font=宋体]的 [/font][font=Calibri]Fc [/font][font=宋体]区域特异性结合，还可以和某些抗体的 [/font][font=Calibri]Fab [/font][font=宋体]段结合。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]Protein L [/font][font=宋体]配基对于人 [/font][font=Calibri]kappa I, III [/font][font=宋体]和 [/font][font=Calibri]IV [/font][font=宋体]亚型以及小鼠的 [/font][font=Calibri]K1 [/font][font=宋体]轻链有很强的亲合力，结合位点在 [/font][font=Calibri]Kappa [/font][font=宋体]轻链的可变区。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]KappaSelect [/font][font=宋体]层析介质与人 [/font][font=Calibri]KappaFab ( [/font][font=宋体]恒定区 [/font][font=Calibri]) [/font][font=宋体]结合，以及[/font][font=Calibri]LambdaFabSelect [/font][font=宋体]层析介质与人 [/font][font=Calibri]LambdaFab( [/font][font=宋体]恒定区 [/font][font=Calibri]) [/font][font=宋体]结合。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]4[/font][font=宋体]、纳米抗体 [/font][font=Calibri]VHH [/font][font=宋体]的纯化，选择什么填料？[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]PrismA [/font][font=宋体]填料，配基是改造的耐碱配基 [/font][font=Calibri]PrismA[/font][font=宋体]，保留了与[/font][font=Calibri]VH3 [/font][font=宋体]的结合能力，可以用于 [/font][font=Calibri]VHH [/font][font=宋体]的亲和捕获。耐 [/font][font=Calibri]1M NaOH [/font][font=宋体]和高载量，为首选。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]rProtein A [/font][font=宋体]的配基填料，包括 [/font][font=Calibri]MabSelect[/font][font=宋体]、 [/font][font=Calibri]MabSelect Xtra [/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]rProtein A[/font][font=宋体]。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]注意[/font] [font=宋体]：[/font] [font=Calibri]SuRe [/font][font=宋体]配基，如 [/font][font=Calibri]MabSelect SuRe [/font][font=宋体]和 [/font][font=Calibri]MabSelect SuRe LX [/font][font=宋体]不行。 [/font][font=Calibri]SuRe [/font][font=宋体]配基是一个同型四聚体配基，避免了不同配基结构域与抗体[/font][font=Calibri]Fc [/font][font=宋体]段亲和性的差异，也消除了对某些 [/font][font=Calibri]Fab [/font][font=宋体]段的亲和作用，不能用于 [/font][font=Calibri]Fab [/font][font=宋体]区样品结合。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]5[/font][font=宋体]、普通的 [/font][font=Calibri]PROTEIN G [/font][font=宋体]和 [/font][font=Calibri]PROTEIN A SEPHAROSE [/font][font=宋体]填料如何清洗？可以重复使用吗？[/font][/font][font=宋体][font=宋体]普通的[/font] [font=Calibri]Protein G [/font][font=宋体]和 [/font][font=Calibri]Protein A [/font][font=宋体]配基，不耐碱，清洗效果差，使用次数很有限。建议反向清洗：[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]对于沉淀或变性的蛋白：用[/font] [font=Calibri]6M [/font][font=宋体]盐酸胍清洗 [/font][font=Calibri]2 [/font][font=宋体]个柱体积，立即用 [/font][font=Calibri]5 [/font][font=宋体]个柱体积的 [/font][font=Calibri]pH 7-8 [/font][font=宋体]结合缓冲液来清洗，反向冲洗，每次清洗时间不超过 [/font][font=Calibri]10min[/font][font=宋体]。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]对于去除疏水性的物质[/font] [font=Calibri]( [/font][font=宋体]如疏水性蛋白、脂蛋白、脂质 [/font][font=Calibri])[/font][font=宋体]：使用非离子型去污剂，如 [/font][font=Calibri]0.1% Triton X-100[/font][font=宋体]， [/font][font=Calibri]37 [/font][font=宋体]度孵育 [/font][font=Calibri]1 min[/font][font=宋体]。立即用至少 [/font][font=Calibri]5 [/font][font=宋体]个柱体积的无菌结合缓冲液清洗 ；或者 [/font][font=Calibri]70% [/font][font=宋体]乙醇浸泡[/font][font=Calibri]12 [/font][font=宋体]小时左右，然后立即用 [/font][font=Calibri]5 [/font][font=宋体]个柱体积的 [/font][font=Calibri]pH 7-8 [/font][font=宋体]结合缓冲液来清洗。注意 [/font][font=Calibri]70% [/font][font=宋体]乙醇处理时，粘稠故压力大，需要降低流速。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]义翘神州提供瞬时转染[/font][font=Calibri]HEK293[/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]CHO[/font][font=宋体]细胞培养物的[url=https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/recombinant-antibody-overview][b]重组抗体[/b][/url]、来自杂交瘤培养物的小鼠、大鼠和兔单克隆抗体以及来自动物血清的多克隆抗体。我们的抗体纯化服务涵盖人抗体、小鼠抗体、大鼠抗体、兔抗体、犬（狗）抗体和牛抗体的所有亚型和类别（[/font][font=Calibri]IgG[/font][font=宋体]、[/font][font=Calibri]IgA[/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]IgM[/font][font=宋体]）。通常，我们的抗体纯化服务与抗体生产和细胞培养服务相结合。以下是我们的抗体纯化部分清单：[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]? 具有单体纯度和内毒素控制的优质抗体纯化和精纯[/font][font=宋体][font=宋体]? 人、小鼠、大鼠、兔和犬[/font][font=Calibri]IgG[/font][font=宋体]抗体纯化服务[/font][/font][font=宋体][font=宋体]? 人和小鼠[/font][font=Calibri]IgA[/font][font=宋体]抗体纯化服务[/font][/font][font=宋体][font=宋体]? 人和小鼠[/font][font=Calibri]IgM[/font][font=宋体]抗体纯化服务[/font][/font][font=宋体][font=宋体]? 利用蛋白[/font][font=Calibri]A/G[/font][font=宋体]亲和树脂法的克隆抗体纯化[/font][/font][font=宋体]? 利用抗原亲和树脂的[url=https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/pab-purification][b]多克隆抗体纯化[/b][/url][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]更多详情可以参看：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/antibody-purification[/font][/font][font=Calibri] [/font]

目的要求（1）了解克隆基因表达的方法和意义。（2）了解重组蛋白亲和层析分离纯化的方法。实验原理克隆基因在细胞中表达对理论研究和实验应用都具有重要的意义。通过表达能探索和研究基因的功能以及基因表达调控的机理，同时克隆基因表达出所编码的蛋白质可供作结构与功能的研究。大肠杆菌是目前应用最广泛的蛋白质表达系统，其表达外源基因产物的水平远高于其它基因表达系统，表达的目的蛋白量甚至能超过细菌总蛋白量的80%。本实验中，携带有目标蛋白基因的质粒在大肠杆菌BL21中，在 37℃，IPTG诱导下，超量表达携带有6个连续组氨酸残基的重组氯霉素酰基转移酶蛋白，该蛋白可用一种通过共价偶连的次氨基三乙酸（NTA）使镍离子（Ni2+）固相化的层析介质加以提纯，实为金属熬合亲和层析（MCAC）。蛋白质的纯化程度可通过聚丙烯酰胺凝胶电泳进行分析。试剂和器材一、试剂 LB液体培养基：Trytone 10g, yeast extract 5g, NaCl 10g, 用蒸馏水配至1000mL. 氨苄青霉素：100mg/mL 上样缓冲液：100 mM NaH2PO4, 10 mMTris, 8M Urea, 10 mM2-ME, pH8.0 Washing Buffer：100 mM NaH2PO4, 10 mM Tris, 8 M Urea, pH6.3 Elution Buffer:100 mM NaH2PO4, 10 mMTris, 8M Urea, 500 mM Imidazole, pH8.0 IPTG二、器材摇床，离心机，层析柱（1′10 cm）操作方法一、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的诱导1. 接种含有重组氯霉素酰基转移酶蛋白的大肠杆菌BL21菌株于5mL LB液体培养基中（含100ug/mL 氨苄青霉素），37℃震荡培养过夜。2. 转接1mL过夜培养物于100mL（含100ug/mL 氨苄青霉素）LB液体培养基中，37℃震荡培养至OD600 = 0.6 - 0.8。取10ul 样品用于SDS-PAGE 分析。3. 加入IPTG至终浓度0.5 mmol/l, 37℃继续培养1-3h.4. 12，000rpm 离心10 min, 弃上清，菌体沉淀保存于-20℃或-70℃冰箱中。二、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的分离、纯化1. NTA层析柱的准备：在层析柱中加入1mL NTA介质，并分别用8mL 去离子水，8mL上样缓冲液洗涤。2. 重组蛋白的变性裂解：在冰浴中冻融菌体沉淀，加入5mL上样缓冲液, 用吸管抽吸重悬，超声波破裂菌体，用振荡器等轻柔的混匀样品60min, 4℃ 12000rpm 离心 30 min, 将上清吸至一个干净的容器中，并弃沉淀。取10ul 上清样品用于SDS-PAGE 分析。3. 上清样品以10-15mL/h 流速上Ni2+-NTA柱，收集流出液，取10ul样品用于SDS-PAGE 分析。4. 洗脱杂蛋白：用Washing Buffer以10-15mL/h流速洗柱，直至OD280 = 0.01.分步收集洗脱液，约3-4h,取10ul洗脱开始时的样品用于SDS-PAGE 分析。5. 洗脱目标蛋白：用Elution Buffer洗柱，收集每1 mL 级分，分别取10ul样品用于SDS-PAGE 分析。

[font=宋体]在生物科学领域，蛋白质纯化是一项关键的技术，它对于研究生物分子的结构和功能至关重要。凝胶过滤层析是一种常用的蛋白质纯化技术，它具有分辨率高、分离效果好的优点。本文将介绍用凝胶过滤层析进行蛋白纯化的流程，包括实验准备、样品处理、层析柱的制作和上样、洗脱和收集等步骤。通过学习本文，读者可以了解凝胶过滤层析在蛋白纯化中的应用及其优缺点，为后续的实验和研究提供参考。[/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体]用凝胶过滤层析进行蛋白纯化的流程，主要分为以下步骤：[/font][/b][font=宋体] [/font][font=宋体]准备凝胶柱：选择适当的凝胶材料和柱子，根据待纯化蛋白的分子大小选择合适的孔径。[/font][font=宋体]杂质去除：使用缓冲液预先洗脱凝胶，去除其中的杂质和阻塞物。[/font][font=宋体]样品加载：将待纯化的蛋白溶液加载到凝胶柱中，注意保持柱子的垂直姿势，防止样品泄漏。[/font][font=宋体]洗脱：使用缓冲液进行洗脱，以去除非目标蛋白和杂质。[/font][font=宋体]收集纯化蛋白：收集洗脱液，进行后续的分析或使用。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]以上步骤只是粗略的概述，实际操作时还需要注意许多细节和技巧。例如，选择合适的凝胶类型和柱子对纯化效果有很大影响；样品加载时需要防止样品泄漏；洗脱时需要选择合适的缓冲液等。因此，建议在进行实验前仔细阅读相关文献和资料，并请教有经验的实验人员。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b][font=宋体]凝胶过滤层析（[/font][font=Calibri]Gel Permeation Chromatography[/font][font=宋体]，[/font][font=Calibri]GPC[/font][font=宋体]）具有以下优点：[/font][/b][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]①操作条件温和：[/font][font=Calibri]GPC[/font][font=宋体]不需要使用有机溶剂等强烈的条件，因此对样品的活性影响较小。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]②高分离效果：[/font][font=Calibri]GPC[/font][font=宋体]可以分离不同分子量的蛋白质，且分辨率较高，能够实现样品的较纯分离。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]③重复性好：[/font][font=Calibri]GPC[/font][font=宋体]的层析柱可以重复使用，分离效果稳定，有利于提高实验的可重复性和数据可靠性。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]④适用范围广：[/font][font=Calibri]GPC[/font][font=宋体]可用于各种生化物质，如肽类、激素、蛋白质、多糖、核酸等的分离纯化、脱盐、浓缩以及分析测定等。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]在应用方面，[/font][font=Calibri]GPC[/font][font=宋体]被广泛应用于蛋白质和其他生物分子的分离纯化。例如，从混合物中分离纯化蛋白质、去除蛋白质中的盐和缓冲剂、脱去多糖和脂质等杂质、对蛋白质进行分子量测定等。此外，[/font][font=Calibri]GPC[/font][font=宋体]还可以用于分离合成多肽和基因克隆产物的纯度鉴定等。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]总之，凝胶过滤层析具有温和的操作条件、高分离效果、重复性好等优点，被广泛应用于蛋白质和其他生物分子的分离纯化。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]详情可以关注：义翘神州[url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/chromatography-purification][b]蛋白层析纯化[/b][/url][/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/chromatography-purification[/font][/font]

[font=宋体][b]离子交换层析基本原理：[/b][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]离子交换层析法是蛋白纯化的一种方式，通过带电的溶质分子与离子交换层析介质中可交换离子进行交换，从而达到分离纯化的目的。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]离子交换层析法主要依据电荷间的相互作用，利用带电分子中电荷的微小差异而进行分离，具有较高的分离容量。几乎所有的生物大分子都是极性的，都可使其带电，所以离子交换层析法的应用很广泛。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]离子交换层析的介质：[/b][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]有许多离子交换介质都已经商品化，但不存在一种神奇的介质其最适合各种蛋白质的纯化。选择离子交换介质的标准包括应用的特异性需要、样品成分的等电点和分子大小（即目的蛋白和污染物），以及可得到的装备（如泵和柱子）。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]首先需要选择阴离子或阳离子介质，如果目的蛋白的等电点已知，选择阴离子介质且操作的[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]高于目的蛋白的[/font][font=Calibri]pI[/font][font=宋体]，或选择阳离子介质且操作[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]低于目的蛋白的[/font][font=Calibri]pI[/font][font=宋体]。如果靶蛋白的[/font][font=Calibri]pI[/font][font=宋体]未知，开始之前最好先测定它。最佳操作[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]可根据经验确定。因为大多数蛋白质的[/font][font=Calibri]pI[/font][font=宋体]低于[/font][font=Calibri]7[/font][font=宋体]，选择阴离子交换和操作[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]为[/font][font=Calibri]8.5[/font][font=宋体]开始是合理的，然后根据估计结果和优化条件。知道蛋白质溶液中污染物[/font][font=Calibri]pI[/font][font=宋体]和结合特征也是有用的。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]离子交换层析应用：[/b][/font][font=宋体][font=宋体]离子交换层析法是生物纯化中应用最广泛的色谱模式，应用于大多数下游处理平台。在[/font][font=Calibri]IEX[/font][font=宋体]中结合目标蛋白、洗脱柱子和洗脱目标蛋白的典型方案被称为“结合[/font][font=Calibri]/[/font][font=宋体]洗脱模式”，经常应用于中间纯化步骤如抗体的下游处理。阴离子交换层析是大多数血浆蛋白纯化平台的组成部分如凝血因子[/font][font=Calibri]VIII[/font][font=宋体]的纯化。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b][font=宋体]离子交换层析（[/font][font=Calibri]IEX[/font][font=宋体]）具体操作步骤：[/font][/b][/font][font=宋体]平衡[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]第一步是固定相的平衡。当达到平衡时，所有的固定相带电基团都与可交换的平衡离子结合，如氯或钠。选择起始缓冲液的[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]和离子强度，以确保目标蛋白与介质的结合。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]上样和清洗[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]第二步的目标是结合目标分子，并清洗出所有未结合的物质。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]洗脱[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]随着离子强度的增加，在选定的[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值下净电荷最低的蛋白将最先从柱子上洗脱。同样地，在一定[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]值下电荷最高的蛋白被保留得最牢固，并且在最后被洗脱。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]再生[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]最后用高离子强度的缓冲液进行最后一次清洗，使色谱柱再生，并去除任何仍结合的分子。然后在开始下一次运行之前，色谱柱需要在起始缓冲液中重新平衡。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体][url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-iec][b]离子交换层析蛋白纯化[/b][/url]详情可以关注：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-iec[/font][/font]

[font=宋体]离子交换层析是一种在生物化学和生物技术领域中广泛使用的分离和纯化技术。它基于离子间的相互作用，特别是离子与固定在层析介质上的带电基团之间的相互作用，从而实现对混合物中不同离子的分离。以下将详细介绍离子交换层析的步骤及其作用。[/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体]一、步骤[/font][/b][font=宋体][font=Calibri]1[/font][font=宋体]、预处理：在开始离子交换层析之前，通常需要对样品进行预处理，以去除大颗粒杂质和不需要的成分。这通常包括离心、过滤和可能的浓缩步骤。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2[/font][font=宋体]、选择合适的离子交换剂：离子交换剂是层析过程的核心。根据待分离离子的性质（如电荷、大小和与交换剂的亲和力）选择合适的离子交换剂。常见的离子交换剂包括阳离子交换剂和阴离子交换剂。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3[/font][font=宋体]、平衡离子交换剂：在将样品加载到离子交换柱之前，需要用适当的平衡溶液（通常是水或盐溶液）冲洗离子交换剂，以去除可能存在的杂质并确保离子交换剂处于最佳状态。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4[/font][font=宋体]、加载样品：将预处理过的样品加载到离子交换柱上。样品中的离子会与离子交换剂上的带电基团发生相互作用。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]5[/font][font=宋体]、洗脱：用洗脱液（通常是盐溶液，其浓度逐渐增加）将结合的离子从离子交换剂上洗脱下来。这一步骤是离子交换层析中最为关键的一步，因为它决定了不同离子之间的分离效果。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]6[/font][font=宋体]、收集和分析：收集洗脱下来的各个组分，并进行分析，以确定每个组分中包含的离子种类和浓度。常见的分析方法包括电导率测量、紫外[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]可见光谱和质谱等。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]7[/font][font=宋体]、后处理：根据需要对收集到的组分进行进一步的处理，如浓缩、脱盐或重新配制等。[/font][/font][b][font=宋体] [/font][font=宋体]二、作用[/font][/b][font=宋体]离子交换层析在生物化学和生物技术领域有着广泛的应用，主要作用包括：[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]1[/font][font=宋体]、分离和纯化蛋白质：离子交换层析可用于从复杂的混合物中分离和纯化蛋白质，这对于后续的生物化学研究和药物开发至关重要。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]2[/font][font=宋体]、去除杂质：离子交换层析能够有效地去除样品中的离子杂质，提高样品的纯度。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3[/font][font=宋体]、样品制备：在进行其他分析或实验之前，离子交换层析可用于样品的制备和预处理。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]4[/font][font=宋体]、研究蛋白质与离子的相互作用：通过离子交换层析，可以研究蛋白质与不同离子之间的相互作用和亲和力，这对于理解蛋白质的生物学功能和调控机制具有重要意义。[/font][/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体][font=宋体]三[/font] [font=宋体]、应用领域[/font][/font][/b][font=宋体]离子交换层析法在许多领域得到广泛应用：[/font][font=宋体]●生物制药：用于药物蛋白质的纯化，确保生物制剂的质量和稳定性。[/font][font=宋体]●生物学研究：在分离和纯化特定电荷性质的蛋白质时被广泛使用，尤其在基因表达和蛋白质互作研究中。[/font][font=宋体]●食品工业：用于提取和纯化食品中的蛋白质，改善食品的质地和口感。[/font][font=宋体]●环境监测：可用于从环境样品中分离和检测特定蛋白质，例如水体中的生物标志物。离子交换层析法凭借其良好的选择性和高效性，是生物分离和纯化领域不可或缺的重要工具。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]更多详情可以关注：[url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-iec][b]离子交换层析蛋白纯化[/b][/url][/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-iec[/font][/font][b][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]义翘神州：蛋白与抗体的专业引领者，欢迎通过百度搜索[/font][font=宋体]“义翘神州”与我们取得联系。[/font][/font][/b]

[font=宋体]层析法无疑是下游处理中主要和常用的操作，因为层析法相比其他单元操作具有某些优势。例如层析法支持高分辨率的效率，可以分离分子性质非常相似的复杂粗制混合物。此外，层析法是生物工艺中遇到的稀释溶液中捕获分子的理想选择。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]柱色谱法[/font][font=Calibri]([/font][font=宋体]层析法[/font][font=Calibri])[/font][font=宋体]的原理是将一个大的蛋白池分离成许多小的蛋白池，其中一些富集了目标蛋白。虽然柱色谱法有昂贵的专业设备，但只需要基本的设备就可以了。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体]在所有色谱技术中，亲和层析法占主要地位。事实上，亲和层析是最特异、最有效的蛋白纯化技术，为靶蛋白纯化提供了合理的依据。它利用了生物分子识别的原理，即生物活性大分子与亲和配体形成特定的可逆复合物的能力。随着高价值蛋白的传统纯化方案被基于亲和色谱等先进的方法所取代，人们的关注重点转向了设计和选择具有高亲和力和特异性的配体。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]从用于生化表征的浓缩蛋白提取物的制备到治疗性重组蛋白的大规模生产，任何纯化过程都需要经济且足量地获得纯化蛋白。因此，下游处理面临的挑战是高产能、高分辨率和高成本效率。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]亲和层析法适用于基于高特异性相互作用的生化混合物的分离。在纯化过程中可以利用具有明确特性的靶蛋白。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-iec][b]离子交换层析法[/b][/url]是一种常见的蛋白纯化方法，该方法基于与离子交换器的亲和力分离离子和极性分子。可溶性分子在通过色谱柱时与带相反电荷的不溶性固定相结合。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]尺寸排阻色谱法，根据分子的大小和分子量分离分子。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]疏水作用层析分离表面有疏水氨基酸侧链的靶蛋白，与疏水基团相互作用并结合在一起。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]蛋白纯化的原理为：不同蛋白质的氨基酸序列及空间结构不同，导致其在物理、化学、生物学等性质上存在差异，利用待分离蛋白质与其它蛋白质性质上的差异，即可以设计出一套合理的蛋白纯化方案。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]蛋白的纯化大致分为粗分离阶段和精细纯化阶段两个阶段。粗分离阶段主要将目的蛋白和其他细胞成分如[/font][font=Calibri]RNA[/font][font=宋体]、[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]等分开，常用的方法为硫酸铵沉淀法。精细纯化阶段的目的是把目的蛋白与其他大小及理化性质接近的蛋白区分开来，[b]常用的方法有：凝胶过滤层析、离子交换层析、疏水层析、亲和层析等。[/b][/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]凝胶过滤层析[/b][/font][font=宋体]凝胶过滤（也叫排阻层析或分子筛）是一种根据分子大小从混合物中分离蛋白质的方法。不同蛋白的形状及分子大小存在差异，在混合物通过含有填充颗粒的凝胶过滤层析柱时，由于各种蛋白的分子大小不同，扩散进入特定大小孔径颗粒内的能力也各异，大的蛋白分子会被先洗脱出来，分子越小，越晚洗脱，从而达到分离蛋白的目的。一般来说，凝胶过滤层析柱越细、越长纯化的效果越好。凝胶过滤层析详细介绍[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]凝胶过滤层析所能纯化的蛋白分子量范围很宽，纯化过程中也不需要能引起蛋白变性的有机溶剂。缺点是所用树脂有轻度的亲水性，电荷密度较高的蛋白容易吸附在上面，不适宜纯化电荷密度较高的蛋白。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]离子交换层析[/b][/font][font=宋体][font=宋体]离子交换层析是一种依据蛋白表面所带电荷量不同进行蛋白分离纯化的技术。蛋白表面通常会带有一定的电荷，电荷的氨基酸残基均匀地分布在蛋白质的表面，在一定条件下可以与阳离子交换柱或阴离子交换柱结合。这种带电分子与固定相之间的结合作用是可逆的，在改变[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]或者用逐渐增加离子强度的缓冲液洗脱时，离子交换剂上结合的物质可与洗脱液中的离子发生交换而被洗脱到溶液中。由于不同物质的电荷不同，其与离子交换剂的结合能力也不同，所以被洗脱到溶液中的顺序也不同，从而达到分离的效果。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]亲和层析[/b][/font][font=宋体][url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-ac][b]亲和层析纯化[/b][/url]是利用生物大分子物质具有与某些相应的分子专一性可逆结合的特性进行蛋白纯化的技术。该方法适用于从成分复杂且杂质含量远大于目标物的混合中提纯目标物，具有分离效果好、分离条件温和、结合效率高、分离速度快的优点。亲和层析技术可以利用配基与生物分子间的特异性吸附来分离蛋白，也可以在蛋白上加入标签，利用标签与配基之间的特异性结合来纯化蛋白。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]疏水作用层析[/b][/font][font=宋体][font=宋体]疏水作用层析是利用盐[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]水体系中样品分子的疏水基团和层析介质的疏水配基之间疏水力的不同而进行分离的一种层析方法。该法利用了蛋白的疏水性，蛋白经变性处理或处于高盐环境下疏水残基会暴露于蛋白表面，不同蛋白疏水残基与固定相的疏水性配体之间的作用强弱不同，依次用从高至低离子强度洗脱液可将疏水用作由弱至强的组分分离。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]更多详情可以关注：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/chromatography-purification[/font][/font]

各位大侠：本人 做环境样本中痕量有机物的分析与检测。我的目标物和有机溶剂过层析柱纯化后损失很大，比如今天做的空白加标，目标物0.1ppm,过层析柱，然后浓缩50倍，理论上讲是5ppm了吧，上GC/MS分析定量后只有1.975PPM，损失也太大了吧本人用的层析柱组成：从下向上活化硅胶、碱性硅胶、活化硅胶、酸性硅胶、活化硅胶、硝酸银硅胶、无水硫酸钠。方法是：先70ml正己烷淋洗，上样，100ml正己烷－二氯甲烷洗脱，接取洗脱液。请各位大侠给小的出出注意，怎样才能提高样品回收率呢?我的E-mail:rjl2000cn@gmail.comQQ:15486575我真心诚意的向大家学习。希望大家积极踊跃！

[font=宋体][b]什么是抗体纯化？抗体纯化原理：[/b][/font][font=宋体][font=宋体]抗体纯化是指从抗血清（[/font][font=Calibri]pAb[/font][font=宋体]）、腹水或杂交瘤细胞系（[/font][font=Calibri]mAb[/font][font=宋体]）细胞培养上清液中提取抗体的过程。纯化后的抗体适用于多种应用。该过程可以在提供抗体纯化服务的实验室中进行，如果有必需的设备和工具，也可以自行纯化。如研究人员担心原始研究的完整性受到破坏，可在实验室中进行纯化，确保研究快速进行。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]抗体的主要来源之一是在动物体内生成的抗血清。在这种情况下，反复向动物体内注射抗原，直到抗体开发完成为止，其血液用于制备抗血清，经纯化后可获得多克隆抗体。抗体的另一个来源是克隆细胞，其作为相同细胞群的一部分生成抗体；这种方法用于大规模生产单克隆抗体。查看更多有关[/font][font=宋体]“单克隆抗体纯化”的信息。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]什么是蛋白纯化？[/b][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]重组蛋白的纯化是生物学研究中的重要技术。为了研究蛋白的特定功能和结构，研究人员必须将重组蛋白从生物体中分离并纯化。蛋白纯化方法主要利用不同重组蛋白之间的相似性和差异性。可以根据蛋白之间的相似性去除非蛋白物质，然后根据蛋白之间的差异分离纯化目标重组蛋白。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]蛋白标签是一种可以提高重组蛋白的溶解度、简化蛋白纯化的简单有效的工具，并通过简单的方法跟踪蛋白表达和纯化过程。此外，蛋白标签是追踪活细胞中蛋白和进程的一种有效工具，可以通过显微镜直接跟踪或者通过[/font][font=Calibri]Western blot[/font][font=宋体]、免疫沉淀或免疫染色间接进行跟踪。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]蛋白纯化原理：[/b][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]不同的重组蛋白具有不同的氨基酸序列和空间结构，导致其物理、化学和生物学特性存在差异。我们也可以根据目标蛋白与其他蛋白和裂解液的性质差异设计合理的蛋白纯化方案。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]大多数的纯化方案需要不止一步才能达到理想的纯度水平。该过程中的每一步都会造成一定的产品损失，假设每一步的获得率为[/font][font=Calibri]80%[/font][font=宋体]。因此，建议尽可能减少纯化步骤。起始原料的选择是纯化过程设计的关键。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]在背景信息、检测方法和样品规格都已到位的情况下，可以考虑采用三阶段纯化策略。纯化分为捕获、中度纯化和精细纯化三个阶段，每个阶段都有特定的目标。捕获阶段的目标是分离、浓缩和稳定目标产物。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]义翘神州提供重组蛋白表达纯化服务和[url=https://cn.sinobiological.com/services/monoclonal-antibody-production-services][b]单克隆抗体定制服务[/b][/url]，更多详情可以关注[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/services/monoclonal-antibody-production-services[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/services/recombinant-protein-expression-service[/font][/font]

想用层析柱分离油脂和其中的抗氧化剂(也会做其他一些成分分离),在洗脱接收试管中,直接点样薄层层析检测洗脱成分(要保证95%以上的收率),紫外灯检测,是否会由于抗氧化剂刚洗脱时由于含量较低,检测灵敏度而观察不到???

柱层析和TLC是有机化学工作者必须下苦功夫的两项实验技术。这两项技术掌握与 否，对于提高实验的效率至关重要。常见的例子是：在柱层析时，由于层析柱中的硅胶 填料装得不均匀（没有填严实），使得柱子在淋洗过程中就因为出现太多气泡变花，导 致分离效果不好。更常见的例子是：层析柱虽然装得不错，但是由于淋洗剂选择不恰 当，结果导致几十毫克产品，用了几百毫升淋洗剂都还没有完全分离。分离同样的东 西，熟手可能只需要半个小时，而一个层析技术不过关的人可能半天都不能得到纯品。 由此可见，这两项技术掌握与否，对于提高工作效率，减轻工作量，减少有机溶剂的使用，从而对身心健康和环境保护都有明显的作用。 柱层析关键在于柱子是否装好和淋洗剂是否选择恰当。而淋洗剂的选择则是通过 TLC确定。这里要指出的一点是：TLC的作用除了跟踪反应进程，检测试剂和原料纯度 外，一个重要的用途就是为柱层析选择适当的淋洗剂。

我做的是样品中农残测定，在提取液净化阶段要用到层析柱，想购买层析柱，请熟知这方面的专业人士指点一下： 1.可以去哪里购买？（杭州附近） 2.什么样的柱子比较好，价位怎么样？ 多谢！！

amesham抗体纯化手册.pdf[~174108~]

大家好，因为做有机实验需要用到层析柱，填充层析柱的药品分别为玻璃棉、硅胶和无水硫酸钠。国标上说装好的层析柱需要先后用二氯甲烷和正己烷进行冲洗和洗脱，现在不明白用二氯甲烷和正己烷冲洗和洗脱那些有机成分和杂质？？？望各位贤人异士能多多指教啊。。。。。

有关层析柱净化问题-- 参照EPA3610及EPA3630：每一步都十分严格谨慎的按照要求去操作，可加入萃取液和洗脱液以后，发现液体滴出的速率很慢，特别是氧化铝柱，前后要花4h才能滴完。（甚至更长时间，好几秒才滴一滴）.请问各位大虾，有什么好办法可以加快过层析柱时间？是否可以不过层析柱而直接测试，这样做会有什么不良影响？

[color=#dc143c]最近版里原创热风呼呼的刮~~于是我也特来跟风积极参与！近来一直在做包涵体的复性与纯化，就特来与大家分享，希望大家多多支持、指点[em09511][/color][b]1.包涵体的分离纯化[/b] 蛋白质的纯化是基因工程下游的关键内容，以包涵体形式表达的重组蛋白质的纯化研究一直是重组基因工程药物研究中的热点和难点。重组蛋白在宿主系统中高水平表达时，无论是用原核表达体系或酵母表达体系甚至高等真核表达体系，都可形成包涵体。蛋白表达后的分离纯化对蛋白的规模化生产也是至关重要的，所以本实验通过采用稀释复性、透析复性、离子交换层析、凝胶过滤层析等实验方法，研究探讨对分离纯化以及蛋白复性的最佳方法和条件。[b]1.2.1包涵体的复性[/b] 重组蛋白质在分离纯化的过程中, 必须维持一定的浓度和生物活性形式, 以及防止被降解。从包涵体中获得有生物活性的蛋白，需要寻找一种简单而有效的复性方法。在小规模的蛋白复性研究及其进一步的纯化中，稀释复性是最常用的方法。但是稀释复性在商业规模生产中具有一定的缺陷，如需要较大体积的复性液，以及需要附加的浓缩步骤。许多其他方法也已发展起来，例如：透析、渗透、低分子量辅助物添加复性、离子和无离子表面活性剂辅助复性、聚乙烯乙二醇辅助复性等方法。 在折叠反应中，从伸展态到中间体的速度是非常快的，只需要几毫秒，但从中间体转变为天然态的过程比较缓慢，是一个限速过程。聚集过程与复性过程相互竞争，故而应尽量避免聚集体的产生。一般认为，蛋白质在复性过程中涉及两种疏水作用，一是分子内的疏水相互作用，可促进蛋白质正确折叠 一是部分折叠的肽链分子间的疏水相互作用，在复性过程中，部分折叠的中间体的疏水簇外露，分子间的疏水相互作用会导致蛋白质聚集。蛋白质的立体结构虽然由其氨基酸的顺序决定，然而伸展肤链折叠为天然活性结构的过程还受到周围环境的影响，如温度、pH值、离子强度、复性时间等因素的影响。[b]1.2.2包涵体离子交换层析纯化[/b] 为了获得高纯度的活性蛋白, 需要对复性的蛋白质进行进一步纯化。根据分离目标蛋白的特点(如P I、疏水性、氨基酸组成, 分子量大小、表面电荷的分布状况) , 然后确定分离方法, 从而正确选择最有效的分离介质,本实验采用SP Sepharose F.F 阳离子交换层析分离纯化重组蛋白 离子交换层析是以蛋白质分子净电荷和表面电荷分布为分离基础的。具体说就是利用蛋白质带电性的差异,在离子吸附剂上静电吸附能力不同,用不同的pH 离子强度洗脱液洗脱,从而使蛋白质分离的柱层析方法。离子交换又分为阴离子交换和阳离子交换。离子交换剂又有强弱之分,强的离子交换剂在整个pH 范围内都是离子化的,而弱的离子交换剂通常仅在pH6～9 之间是离子化状态,因而后者对所适用的pH 范围又有了进一步的限制。 在洗脱方式上,阳离子交换主要是改变pH ,它主要应用于等电点大于5 的蛋白质。20 种氨基酸中,大部分带正电或负电,这是IEC 应用范围广的原因。离子交换层析处理量大,附载系数高,一步缩小样品体积很多。离子交换层析去除杂质能力强,如对热原质,核酸、及电荷性有差别的蛋白均可去除。它还有一个特点,利用蛋白质在不同pH 和盐浓度下带电性的不同,通过不同条件下应用同种类型或不同类型介质,分步使目标蛋白质达到提纯目的,这是除亲和柱层析外,别的柱层析达不到的分离能力。离子交换层析原则上可放在纯化工艺的任何一步,它属吸附型层析,单步损失也较大。

层析柱 极性小的用乙酸乙酯：石油醚系统 极性较大的用甲醇：氯仿系统 极性大的用甲醇：水：正丁醇：醋酸系统 拖尾可以加入少量氨水或冰醋酸硅胶柱层析下面介绍我现在惯用的方法：匀浆法。 1。称量称30-70倍于上样量；如果极难分，也可以用100倍量的硅胶H。干硅胶的视密度在0.4左右，所以要称40g硅胶，用烧杯量100ml也可以。 2。搅成匀浆。加入干硅胶体积一倍的溶剂用玻璃棒充分搅拌。如果洗脱剂是石油醚/乙酸乙酯/丙酮体系，就用石油醚拌；如果洗脱剂是氯仿/醇体系，就用氯仿拌。如果不能搅成匀浆，说明溶剂中含水量太大，尤其是乙酸乙酯/丙酮，如果不与水配伍走分配色谱的话，必须预先用无水硫酸钠久置干燥。氯仿用无水氯化钙干燥，以除去1%的醇。如果样品对酸敏感，不能用氯仿体系过柱。 3。装柱。将柱底用棉花塞紧，不必用海沙，加入约1/3体积石油醚（氯仿），装上蓄液球，打开柱下活塞，将匀浆一次倾入蓄液球内。随着沉降，会有一些硅胶沾在蓄液球内，用石油醚（氯仿）将其冲入柱中。

商品SPE小柱可以代替自填层析柱么??

[font=宋体]蛋白质是包括人类在内的各种生物有机体的重要组成成分，是生命的物质基础之一。生物体的生长、发育、遗传和繁殖等一切生命活动都离不开蛋白质。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]随着分子生物学、结构生物学、基因组学等研究的不断深入，人们意识到仅仅依靠基因组的序列分析来试图阐明生命活动的现象和本质是远远不够的。只有从蛋白质组学的角度对所有蛋白质的总和进行研究，才能更科学地掌握生命现象和活动规律，更完善地揭示生命的本质。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]由此许多学者将生命科学领域的研究焦点从基因转向蛋白质，使蛋白质成为揭示生命活动现象和分子生物学机理的重要研究对象。研究蛋白质首要的步骤是将目的蛋白从复杂的大分子混合物中分离纯化出来，得到高纯度具有生物学活性的目的物。因此，高效的纯化技术和手段是蛋白质研究的重要基础和关键之一。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体][font=宋体]蛋白纯化的目的[/font] [/font][/b][font=宋体][font=宋体]蛋白纯化的目的是将目标蛋白质从细胞裂解液的全部组分中分离出来，同时仍保留蛋白的生物学活性及化学完整性。蛋白质的分离和提纯工作是一项艰巨而繁重的任务，需根据蛋白的特性选择合适的纯化方法来提高获得的蛋白制品的纯度。[/font] [/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体][font=宋体]蛋白纯化的原理[/font] [/font][/b][font=宋体][font=宋体]不同蛋白质的氨基酸序列及空间结构不同，导致其在物理、化学、生物学等性质上存在差异，利用待分离蛋白质与其它蛋白质性质上的差异，即可以设计出一套合理的蛋白纯化方案。蛋白的纯化大致分为粗分离阶段和精细纯化阶段两个阶段。粗分离阶段主要将目的蛋白和其他细胞成分如[/font] [font=Calibri]RNA[/font][font=宋体]、[/font][font=Calibri]DNA [/font][font=宋体]等分开，常用的方法为硫酸铵沉淀法。精细纯化阶段的目的是把目的蛋白与其他大小及理化性质接近的蛋白区分开来，[/font][/font][b][font=宋体][font=宋体]常用的方法有：凝胶过滤层析、离子交换层析、疏水层析、亲和层析等。[/font] [/font][/b][font=宋体] [/font][b][font=宋体]①[/font][font=宋体]凝胶过滤层析[/font][/b][font=宋体]凝胶过滤层析（又叫做分子筛）是根据样品的分子大小对样品进行分离的一种简单温和的层析技术。凝胶过滤层析也称分子筛层析、排阻层析，是利用具有网状结构的凝胶的分子筛作用，根据被分离物质的分子大小不同来进行分离。不同于离子交换层析和亲和层析，凝胶过滤的层析样品不与层析柱料结合，因此，缓冲液成分不直接影响分辨率。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]原理：层析柱中的填料是球状颗粒的惰性的多孔网状结构的柱料，多是交联的聚糖[/font][font=Calibri]([/font][font=宋体]如葡聚糖或琼脂糖[/font][font=Calibri])[/font][font=宋体]类物质。在加入样品之后，样品中的小分子物质能进入球状填料内部，在柱子中停留时间较长；而大分子物质不能进入球状填料内部，停留时间较短。所以当样品经过凝胶过滤层析柱分离后，样品中的不同分子大小的物质就可以被分离开了。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]特点：[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]根据分子大小和形状进行分离[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]是一种非吸附的分离方式[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]缓冲液成分不直接影响分辨率，只需要一种缓冲液[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]操作便捷[/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体]②[/font][font=宋体]离子交换层析[/font][/b][font=宋体]离子交换层析是目前蛋白质分离纯化中应用最广泛的方法之一。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]原理：不同蛋白等电点差异，分子大小差异，在同一个流动相中电荷密度分布不同，电荷量不等，与具有相反电荷的离子交换介质结合强度不同，在流动相洗脱时保留时间不同，从而得以分离。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体]特点：[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]根据分子大小和等电点差异进行分离[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]灵敏度高，重复性，选择性好，分析速度快[/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体]③[/font][font=宋体]疏水层析[/font][/b][font=宋体]原理：疏水层析是依据蛋白质疏水性差异分离的。即根据蛋白质和疏水介质表面的疏水基团的可逆相互作用进行分离。蛋白的疏水性在高离子强度下被增强，因此在高离子强度环境中结合，通常采用降低离子强度的方式进行洗脱。独特的吸附分离模式使得疏水层析成为硫酸铵盐析后或离子交换高盐洗脱后理想的纯化方式。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]特点：[/font][font=宋体] [/font][font=宋体]采用了盐的水溶液作为流动相，色谱条件温和，生物大分子的活性回收率很高。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]蛋白质在[/font][font=Calibri]HIC[/font][font=宋体]操作过程中是高盐上样，低盐洗脱（高盐浓度的样品不必作处理就可直接上样）。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]在一次色谱中可同时实现出去盐酸胍、蛋白质复性和分离三个目的。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]温度升高，蛋白质天然折叠伸展，暴露出更多内部疏水集团，使蛋白质的[/font][font=Calibri]HIC[/font][font=宋体]保留发生变化。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]色谱填料稳定性好，盐水体系作流动相无环境污染。[/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体]④[/font][font=宋体]亲和层析[/font][/b][font=宋体][font=宋体]原理：[url=https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-by-ac][b]亲和层析[/b][/url]是应用生物高分子与配基可逆结合的原理，将配基通过共价键牢固结合于载体上而制得的层析系统。这种可逆结合的作用主要是靠生物高分子对它的配基的空间结构的识别。常用的生物亲和关系有酶[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]底物、底物类似物、抑制剂、激活剂、辅因子，抗体[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]抗原，激素[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]受体蛋白、载体蛋白，外源凝集素[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]多糖、糖蛋白、细胞表面受体，核酸[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]互补核苷酸序列、组蛋白、核酸结合蛋白等，具有高效、简单、快速的优点，是当前最为理想的分离纯化蛋白的方法。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]更多详情可以参看蛋白纯化技术[/font][font=Calibri]/[/font][font=宋体]方法：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/protein-review/protein-purification-techniques[/font][/font][font=Calibri] [/font]

两者是否具有可比性？ 哪种净化效果好？ 比如硅胶spe柱，1g/6mL规格的，会比玻璃层析柱，填20cm的硅胶，效果更好吗？ 有没有人做过对比实验？感觉玻璃层析柱填料多，长度更长，净化效果应该更好，分离也更好？

[font=宋体][font=宋体][url=https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/monoclonal-antibody-technology][b]单克隆抗体[/b][/url]是由单一[/font][font=Calibri]B[/font][font=宋体]细胞克隆产生的高度均一、仅针对某一特定抗原表位的抗体。通常采用杂交瘤技术来制备，杂交瘤（[/font][font=Calibri]hybridoma[/font][font=宋体]）抗体技术是在细胞融合技术的基础上，将具有分泌特异性抗体能力的致敏[/font][font=Calibri]B[/font][font=宋体]细胞和具有无限繁殖能力的骨髓瘤细胞融合为[/font][font=Calibri]B[/font][font=宋体]细胞杂交瘤。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]1975[/font][font=宋体]年分子生物学家[/font][font=Calibri]G.J.F.[/font][font=宋体]克勒和[/font][font=Calibri]C.[/font][font=宋体]米尔斯坦在自然杂交技术的基础上，创建立杂交瘤技术，他们把可在体外培养和大量增殖的小鼠骨髓瘤细胞与经抗原免疫后的纯系小鼠[/font][font=Calibri]B[/font][font=宋体]细胞融合，成为杂交细胞系，既具有瘤细胞易于在体外无限增殖的特性，又具有抗体形成细胞的合成和分泌特异性抗体的特点。将这种杂交瘤作单个细胞培养，可形成单细胞系，即单克隆。利用培养或小鼠腹腔接种的方法，便能得到大量的、高浓度的、非常均一的抗体，其结构、氨基酸顺序、特异性等都是一致的，而且在培养过程中，只要没有变异，不同时间所分泌的抗体都能保持同样的结构与机能。这种单克隆抗体是用其他方法所不能得到的。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]单克隆抗体的优势和局限性[/b][/font][font=宋体][font=Calibri]1[/font][font=宋体]．单克隆抗体的优点[/font][/font][font=宋体][font=Calibri](1)[/font][font=宋体]杂交瘤可以在体外“永久”地存活并传代，只要不发生细胞株的基因突变，就可以不断地生产高特异性、高均一性的抗体。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri](2)[/font][font=宋体]可以用相对不纯的抗原，获得大量高度特异的、均一的抗体。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri](3)[/font][font=宋体]由于可能得到“无限量”的均一性抗体，所以适用于以标记抗体为特点的免疫学分析方法，如[/font][font=Calibri]IRMA[/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]ELISA[/font][font=宋体]等。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri](4)[/font][font=宋体]由于单克隆抗体的高特异性和单一生物学功能，可用于体内的放射免疫显像和免疫导向治疗。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]2[/font][font=宋体]．单克隆抗体的局限性[/font][/font][font=宋体][font=Calibri](1)[/font][font=宋体]单克隆抗体固有的亲和性和局限的生物活性限制了它的应用范围。由于单克隆抗体不能进行沉淀和凝集反应，所以很多检测方法不能用单克隆抗体完成。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri](2)[/font][font=宋体]单克隆抗体的反应强度不如多克隆抗体。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri](3)[/font][font=宋体]制备技术复杂，而且费时费工，所以单克隆抗体的价格也较高。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][b]单克隆抗体的应用[/b][/font][font=宋体][font=Calibri]1[/font][font=宋体]．检验医学诊断试剂[/font][/font][font=宋体]作为检验医学实验室的诊断试剂，单克隆抗体以其特异性强、纯度高、均一性好等优点，广泛应用于酶联免疫吸附试验、放射免疫分析、免疫组化和流式细胞仪等技术。并且单克隆抗体的应用，很大程度上促进了商品化试剂盒的发展。[/font][font=宋体][font=Calibri]2[/font][font=宋体]．蛋白质的提纯[/font][/font][font=宋体][font=宋体]单克隆抗体是亲和层析中重要的配体。将单克隆抗体吸附在一个惰性的固相基质（如[/font][font=Calibri]Speharose 2B[/font][font=宋体]、[/font][font=Calibri]4B[/font][font=宋体]、[/font][font=Calibri]6B[/font][font=宋体]等）上，并制备成层析柱。当样品流经层析柱时，待分离的抗原可与固相的单克隆抗体发生特异性结合，其余成分不能与之结合。将层析柱充分洗脱后，改变洗脱液的离子强度或[/font][font=Calibri]pH[/font][font=宋体]，欲分离的抗原与抗体解离，收集洗脱液便可得到欲纯化的抗原。[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]3[/font][font=宋体]．肿瘤的导向治疗和放射免疫显像技术[/font][/font][font=宋体][font=宋体]将针对某一肿瘤抗原的单克隆抗体与化疗药物或放疗物质连接，利用单克隆抗体的导向作用，将药物或放疗物质携带至靶器官，直接杀伤靶细胞，称为肿瘤导向治疗。另外，将放射性标记物与单克隆抗体连接，注入患者体内可进行放射免疫显像，协助肿瘤的诊断。单克隆抗体主要为鼠源性抗体，异种动物血清可引起人体过敏反应。因此，制备人[/font][font=Calibri]-[/font][font=宋体]人单克隆抗体或人源化抗体更为重要，但此方面仍未取得明显进展。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]义翘神州提供多种单克隆抗体、多克隆抗体、一抗、二抗、抗体蛋白等生物试剂、抗体试剂应用于细胞学、免疫蛋白质组化、[url=https://cn.sinobiological.com/services/molecular-biology-service][b]分子生物学技术服务[/b][/url][/font][font=宋体]……。详情可以关注：[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/resource/antibody-technical/monoclonal-antibody-technology[/font][/font][font=Calibri] [/font]

色谱层析和活性碳层析柱的区别