目裸眼成像系统

荧光和荧光寿命分子包含多个单能态S0、S1、S2…和三重态T1…，每个能态都包含多个精细的能级。正常情况下，大部分电子处在*低能态即基态S0 的*低能级上，当分子被光束照射，会吸收光子能量，电子被激发到更高的能态S1 或S2 上，在S2 能态上的电子只能存在很短暂的时间，便会通过内转换过程跃迁到S1 上，而S1 能态上的电子亦会在极短时间内跃迁到S1 的*低能级上，而这些电子会存在一段时间后通过震荡弛豫辐射跃迁到基态，这个过程会释放一个光子，即荧光。此外，亦会有电子跃迁至三重态T1 上，再由T1 跃迁至基态，我们称之为磷光。荧光特性研究荧光特性时，主要在以下几方面进行分析：激发光谱，发射光谱、荧光强度、偏振荧光、荧光发光量子产率、荧光寿命等。其中荧光寿命（Fluorescence Lifetime）是指荧光分子在激发态上存在的平均时间（纳秒量级）。荧光寿命测试荧光寿命一般在几纳秒至几百纳秒之间，如今主要有两类测试方法：时域测量和频域测量时间稳定性实验测试曲线：1 时域测量由一束窄脉冲将荧光分子激发至较高能态S1，接着测量荧光的发射几率随时间的变化。其中目前广泛应用的是时间相关单光子计数，即TCSPC(Time Correlated Single Photon Counting)时间相关单光子计数(TCSPC) 实现了从百ps-ns-us 的瞬态测试，此方法对数据的获取完全依赖快速探测器和高速电路。用统计的方法计算样品受激后发出的*一个( 也是唯一的一个) 光子与激发光之间的时间差，也就是下图的START( 激发时刻) 与STOP( 发光时刻) 的时间差。由于对于Stop 信号的要求，所以TCSPC 一般需要高重复频率的光源作为激发源，其重复至少要在100KHz 以上，多数的光源都会达到MHz 量级；同时，在一般情况下还要对Stop 信号做数量上的控制，做到尽量满足在一个激发周期内，样品产生且只产生一个光子的有效荧光信号，避免光子对的出现。2 频域测量对连续激发光进行振幅调制后，分子发出的荧光强度也会受到振幅调制，两个调制信号之间存在与荧光寿命相关的相位差，因此可以测量该相位差计算荧光寿命。 左图为正弦调制激发光（绿色）频域显示，发射光信号（红色）相应的相位变化频域显示。右图为对应不同寿命的调制和相位的频域显示。TM- 调制寿命，TP- 相位寿命。[1]显微荧光寿命成像技术（FLIM）显微荧光寿命成像技术（Fluorescence Lifetime ImagingMicroscopy，FLIM）是一种在显微尺度下展现荧光寿命空间分布的技术，由于其不受样品浓度影响，具有其他荧光成像技术无法代替的优异性能，目前在生物医学工程、光电半导体材料等领域是一种重要的表征测量手段。FLIM 一般分为宽场FLIM 和激光扫描FLIM。宽场FLIM（Wide Field FLIM,WFM）该技术是用平行光照明并由物镜聚焦样品获得荧光信号，再由一宽场相机采集荧光成像。宽场FLIM 常用于快速获取大面积样品成像。时域或是频域寿命采集都可以应用在宽场成像FLIM 上。宽场FLIM 有更高帧率和低损伤的优势。2 激光扫描FLIM（Laser Scanning FLIM,LSM）激光扫描FLIM 是针对选定区域内的样品逐点获取其荧光衰减曲线，再经过拟合*终合成荧光寿命图像。相比宽场FLIM，其在空间分辨率、信噪比方面有更大的优势。扫描方式有两种：一种是固定样品，移动激光进行扫描，一种是固定激光，电动位移台带动样品移动进行扫描。FLIM 应用材料科学领域宽禁带半导体如GaN、SiC 等体系的少子寿命mapping 测量量子点如CdSe@ZnS 等用作荧光寿命成像显微镜探针钙钛矿电池/LED 薄膜的组分分析、缺陷检测铜铟镓硒CIGS，铜锌锡硫CZTS 薄膜太阳能电池的组分、缺陷检测镧系上转换纳米颗粒GaAs 或GaAsP 量子阱的载流子扩散研究生命科学领域细胞体自身荧光寿命分析自身荧光相对荧光标记的有效区分活细胞内水介质的PH 值测量局部氧气浓度测量具有相同频谱性质的不同荧光标记的区分活细胞内钙浓度测量时间分辨共振能量转移（FRET）：纳米级尺度上的远差测量，环境敏感的FRET 探针定量测量代谢成像：NAD(P)H 和FAD 胞质体的荧光寿命成像OmniFluo-FLIM系列显微荧光寿命成像系统应用案例1 用荧光分子对海拉细胞进行染色用荧光分子转子Bodipy-C12 对海拉细胞（宫颈癌细胞的一种） 进行染色。(a) 显微荧光寿命成像图，寿命范围1ns（蓝色）到2.5ns（红色）；(b) 荧光寿命直方图，脂肪滴的短寿命约在1.6ns 附近，细胞中其他位置寿命较长，在1.8ns 附近。用荧光分子转子的时间分辨测量*大的好处在于荧光寿命具备足够清晰的标签特性，且与荧光团的浓度无关。[2]2 金属修饰荧光金属修饰荧光：(a) 荧光寿命是荧光团到金表面距离的函数；(b) 用绿色荧光蛋白（GFP）标记乳腺腺癌细胞的细胞膜的共聚焦xz 横截面，垂直比例尺：5 m；(c) b 图的FLIM 图，金表面附近的GFP 荧光寿命缩短。[2]3 钙钛矿太阳能电池下图研究中，展示了一种动态热风（DHA）制备工艺来控制全无机PSC 的薄膜形态和稳定性，该工艺不含有常规的有害反溶剂，可以在大气环境中制备。同时，钙钛矿掺有钡（Ba2+） 碱金属离子（BaI2:CsPbI2Br）。这种DHA 方法有助于形成均匀的晶粒并控制结晶，从而形成稳定的全无机PSC。从而在环境条件下形成完整的黑色相。经过DHA处理的钙钛矿光伏器件，在0.09cm小面积下，效率为14.85%，在1x1cm的大面积下，具有13.78%的*高效率。DHA方法制备的器件在300h后仍然保持初始效率的92%。4 MQWs 多量子阱研究在(a) 蓝宝石和(b) GaN 上生长的MQWs 的共焦PL mapping 图像。具有较小尺寸的发光团的*高密度是观察到在GaN 上生长的MQWs。在(c) 蓝宝石和(d)GaN 上生长的MQWs 的共焦TRPL mapping 图。仅对于在GaN 上生长的MQWs，强的PL 强度区域与较长PL 衰减时间的区域很好地匹配。在(e) 蓝宝石和(f)GaN 上生长的MQWs 在A 点和B 点测量的局部PL 衰减曲线，均标记在图中。对于在GaN 上生长的MQWs，点A 和B 之间的PL 衰减时间差更高。OmniFluo-FLIM系列显微荧光寿命成像系统参数配置北京卓立汉光仪器有限公司提供的显微荧光寿命成像系统是基于显微和时间相关单光子计数技术，配合高精度位移台得到微观样品表面各空间分布点的荧光衰减曲线，再经过用数据拟合，得到样品表面发光寿命表征的影像。是光电半导体材料、荧光标记常用荧光分子等类似荧光寿命大多分布在纳秒、几十、几百纳秒尺度的物质的不二选择。参数指标：系统性能指标光谱扫描范围200-900nm*小时间分辨率16ps荧光寿命测量范围500ps-1μs@ 皮秒脉冲激光器空间分辨率≤1μm@100X 物镜@405nm 皮秒脉冲激光器荧光寿命检测IRF≤2ns配置参数激发源及匹配光谱范围（光源参数基于50MHz 重复频率）375nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：30ps，平均功率1.5mW，荧光波段：400-850nm405nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：25ps，平均功率2.5mW，荧光波段：430-920nm450nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：50ps，平均功率1.9mW，荧光波段：485-950nm488nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：70ps，平均功率1.3mW，荧光波段：500-950nm510nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：75ps，平均功率1.1mW，荧光波段：535-950nm635nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：65ps，平均功率4.3mW，荧光波段：670-950nm660nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：60ps，平均功率1.9mW，荧光波段：690-950nm670nm 皮秒脉冲激光器，脉宽：40ps，平均功率0.8mW，荧光波段：700-950nm科研级正置显微镜落射明暗场卤素灯照明，12V，100W5 孔物镜转盘，标配明场用物镜：10×，50×，100×监视CCD：高清彩色CMOS 摄像头，像元尺寸：3.6μm*3.6μm，有效像素：1280H*1024V，扫描方式：逐行，快门方式：电子快门电动位移台高精度电动XY 样品台，行程：75*50mm（120*80mm 可选），*小步进：50nm，重复定位精度：＜ 1μm光谱仪320mm 焦距影像校正单色仪，双入口、狭缝出口、CCD 出口，配置三块68×68mm 大面积光栅，波长准确度：±0.1nm，波长重复性：±0.01nm，扫描步距：0.0025nm，焦面尺寸：30mm(w)×14mm(h)，狭缝缝宽：0.01-3mm 连续电动可调探测器：制冷型紫外可见光电倍增管，光谱范围：185-900nm（标配，可扩展）光谱CCD（可扩展PLmapping）低噪音科学级光谱CCD（LDC-DD），芯片格式：2000x256，像元尺寸：15μm*15μm, 探测面：30mm*3.8mm，背照式深耗尽芯片，低暗电流，*低制冷温度-60℃ @25℃环境温度，风冷，*高量子效率值95%时间相关单光子计数器（TCSPC）时间分辨率：16/32/64/128/256/512/1024ps……33.55μs，死时间＜ 10ns，*高65535 个直方图时间窗口，瞬时饱和计数率：100Mcps，支持稳态光谱测试；OmniFluo-FM 荧光寿命成像专用软件控制功能：控制样品平移台移动，通过显微镜的明场光学像定位到合适区域，框选扫描区域进行扫描，逐点获得荧光衰减曲线，实时生成荧光图像等数据处理功能：自动对扫描获得的FLIM 数据，逐点进行多组分荧光寿命拟合（组分数小于等于4），对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示图像处理功能：直方图、色表、等高线、截线分析、3D 显示等操作电脑品牌操作电脑，Windows 10 操作系统 FLIM 软件界面控制测试界面测试软件的界面遵循“All In One”的简洁设计思路，用户可在下图所示的控制界面中完成采集数据的所有步骤：包括控制样品平移台移动，通过显微镜的明场光学像定位到合适区域，框选扫描区域进行扫描，逐点获得荧光衰减曲线，实时生成荧光图像等。数据处理界面功能丰富的荧光寿命数据处理软件，充分挖掘用户数据中的宝贵信息。可自动对扫描获得的FLIM 数据，逐点进行多组分荧光寿命拟合（组分数小于等于4），对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示。自主开发的一套时间相关单光子计数（TCSPC）荧光寿命的拟合算法，可对荧光衰减曲线中*多包含4 个时间组分的荧光过程进行拟合，获得每个组分的荧光寿命，光子数比例，计算评价函数和残差。TCSPC 荧光寿命通常并非简单的指数衰减过程，而是与光源及探测器相关的仪器响应函数（IRF）与荧光衰减过程相互卷积的结果，因此适当的拟合方法和参数选择对获得正确可靠的荧光寿命非常重要。该软件可导入实际测量的IRF 对衰减曲线进行卷积计算和拟合。但是大多数情况下， IRF 很难正确的从实验获得，针对这种情况，软件提供了两种无需实验获取IRF 的拟合方法：NO.1 通过算法对数据上升沿进行拟合，获得时间响应函数IRF，然后对整条衰减曲线进行卷积计算和拟合得到荧光寿命。NO.2对于衰减时间远长于仪器响应时间的，可对衰减曲线下降沿进行直接的指数拟合。该软件经过大量测试，可以很好的满足各种场合的用户需求。MicroLED 微盘的荧光强度像（3D 显示）：测试案例

8目裸眼3D成像系统720P八目立体摄像机是一套用于多视点视频技术的裸眼视频采集组件，它由成像模块、机械调整支架、存储模块、采集控制软件组成，可以实现8路720P视频的长时间同步采集与存储，适合于各种实时或非实时的裸眼立体视频研究。配备裸眼视频处理与显示模块模块后，可构建整个裸眼视频采集与显示研究平台。低畸变大视野软同步精度125us，无需外触发同步8路无丢帧采集支持20分钟长时间存储仅需1台服务器典型应用： 立体视频研究等。

720P八目立体摄像机是一套用于多视点视频技术的裸眼视频采集组件，它由成像模块、机械调整支架、存储模块、采集控制软件组成，可以实现8路720P视频的长时间同步采集与存储，适合于各种实时或非实时的裸眼立体视频研究。配备裸眼视频处理与显示模块模块后，可构建整个裸眼视频采集与显示研究平台。特性描述：低畸变大视野软同步精度125us，无需外触发同步8路无丢帧采集支持20分钟长时间存储仅需1台服务器组件结构:产品描述成像模块8套低畸变镜头与720P摄像机调整支架1套4维调整水平支架存储服务器1台2TB专用存储服务器采集软件1套8台摄像机同步与采集控制软件显示模块（选配）1台42寸裸眼显示器与采集显示软件产品规格：型号720P裸眼立体摄像机分辨率1280×720×8帧速30fps视场角60度（51度、31度、21度、16度、11度、8度、5度可选）畸变率0.1%同步精度125us单次存储时间20分钟存储速度300MB/s存储容量2TB相机间距调整范围35～120mm相机间距调整精度0.1mm显示分辨率1920×1080，42寸（46寸可选）主要应用：立体视频研究自由视点视频研究

一、产品简介　　JC-HYS1系列手持热成像单目夜视仪，由远红外热成像系统、高分辨率的OLED成像系统组成，产品一体化集成度高，体积小、重量轻、功耗低，是移动手持透雾和夜视监控的高性价比产品。　　该系列设备能有效解决24小时全天候移动式昼夜成像需求，全天支持热成像9种色底可选择、可切换显示功能 且具备优秀的成像透雾能力，昼夜最远探测距离为3000米 现已成功应用于森林消防、搜寻搜救、部队边防、海事水利、航道、自然保护区、公安武警、机场、文物保护、能源矿山等单兵、单警、单人巡查等安保领域。　　二、产品特性　　1、体积小巧，携带方便，可用于单兵手持 结构紧凑，内置WIFI、方位角、翻滚角、方位角、等多组传感器。　　2、开机时间小于5s，超长待机长达8小时，性能稳定可靠，可昼夜无差别工作等，这些优点使得设备在监测领域大显身手 抗摔及抗震能力强，超高防护等级，适合用于恶劣的监测环境。　　3、可一键式拍照摄像，便于捕捉监测细节 32G(存储空间可选，最高可达256G)的存储空间，便于信息的存储传输和查看取证。　　4、产品采用无挡片设计、独特的图像处理算法、去噪效果明显，独特的数字增强算法和画中画放大和图像自动拉伸算法，使用效果超过市面上普通热像产品。　　5、1024×768超高分辨率OLED目镜系统，使得系统成像更加清晰 50Hz实时成像，快速移动无拖影。专业的长焦锗镜头成像1-8倍连续变焦，探测距离更远、范围更广。白热/黑热/褐色/铁红/彩虹多种彩色可选，亮度、对比度可调节(更便于在极恶劣环境下发现目标)。　　6、红外镜片采用非球面技术，在提高光学性能的同时，减少镜片的重量和光学长度，同时采用独特中心校准方式，以保证光学对不同的目标在不同的距离和温度下成像清晰　　7、光学材料采用非常规材料且其可靠性和稳定性强 镜片镀红外增透膜和防水膜，便于擦拭和保护。外观用硬铝材料作为结构设计的主材料，工艺性和可靠性好，且其加工后的外观效果良好。　　三、应用场景　　可以用于公安执法、查毒缉私、武警反控、巡视边境、海岸巡逻单兵夜间侦察等场合。　　四、参数规格热像参数探测器类型非制冷型氧化钒或多晶硅工作波段8～14μm探测器规格384×288 / 640×480（17μm / 12μm）图像帧频25Hz（384）/ 50Hz(640)镜头参数50mm F=1.0调焦方式手动电子放大1~8倍连续放大变倍模式有普通变倍和画中画变倍两种变倍模式，热点追踪支持图像增强支持伪彩模式支持白热/黑热/褐色/铁红/彩虹等9种伪彩模式9种分划线及颜色5种分划线种类，5种分划线模式白平衡自动/手动探测距离1500米(典型气候条件）/3500米(典型气候条件）识别距离500米(典型气候条件）/1000米(典型气候条件）目镜参数目镜分辨率1024×768 双目OLED 显示屏0.39英寸， OLED对比度1000:1出瞳距离35mm放大倍数15倍图像存储录像拍照回放支持一键拍照、录像，并可本机回放观看视频及图片，录像格式MP4图像存储JPG图像分辨率1920×1080存储容量标配32G(可选64G/128G/256G)接口说明视频输出HDMI数据导出USB 2.0外接电源DC 5V 最大电流1A无线传输WIFI无线WIFI连接，可支持手机、平板电脑、笔记本电脑移动终端APP软件实时观看操作数据传感器冲击录像支持冲击自动录像，视频自动预录并保存冲击前后的视频，冲击视频时长可调、冲击灵敏度可调.一键校枪支持一键校枪功能。方位角传感器静态精度0.05°动态0.1°加速度传感器2g-60g内部可调翻滚角传感器量程±90°静态精度0.05°动态0.1°俯仰角传感器量程±180°静态精度0.05°动态0.1°高度传感器支持（可选）物理特性防水密封IP66（气密）工作温度-25℃～+60℃储存温度-45℃～+60℃输入电压DC5V电源功耗平均功耗3.5w电池容量18500*2可充锂电3.7V＠4080mAH工作时间连续工作时间8小时产品尺寸202×75×60（mm）产品重量≤600g(含电池)

安赛斯（中国）有限公司---国际先进检测设备优质供应商，产品标签：X射线检测系统，X光机，工业X射线系统Y.MU2000-D系列 通用数字射线实时成像检测系统 新一代MU2000-D系列配有最新的数字平板探测器，从而使获得的射线图像拥有极高的动态范围。Y.HDR-Inspect检测技术可使运动中的被检工件看上去像是“由玻璃制成的”一样。此外，当操作人员在X射线的光束范围之内移动被检物体时，该解决方案有助于迅速并准确的判断被检工件缺陷的空间位置，并给出其三维特征的描述；检测过程中无需调整任何射线参数以节约检测时间。 更多的产品信息，请登录安赛斯（中国）有限公司官网，公司可提供测试服务，如需产品详细资料和报价，请致电联系安赛斯工作人员。 工业X射线二维检测系统 MU2000-D安赛斯（中国）有限公司适用于铸件检测的工业X射线系统 MU2000-D 是一款稳定、可靠的工业X射线和CT检测系统，广泛应用于铸造业、研发、实验室、大学和各大教育机构中。该系统使用数字平板探测器和高动态X射线成像技术，具备出色的成像质量。l 稳定、可靠的数字X射线检测系统l 出色的高对比度成像质量，适用于抽样检测和连续检测l 仅需触控按钮（选装），即可快速完成计算机断层扫描（CT扫描）l 智能人体工学设计，易于操作l 定制化轮毂和轮胎配置l 符合ASTM标准要求以及汽车制造商制定的具体检测要求系统能力MU2000-D 是一套绝佳的系统解决方案，适用于大批量部件生产以及研发中的铸件检测。从大型跨国企业，到中小型铸造厂以及全球汽车制造商，均依赖这套稳健系统提供的检测结果。 MU2000-D 将帮助您检测以下部件中存在的铸造缺陷：l 铝制铸件（发动机机体、气缸、气缸盖、活塞、转向节）l 涡轮叶片l 轮毂和轮胎l 纤维增强材料l 陶瓷l 三维打印材料MU2000-D 系统将数字平板探测器阵列与Y. HDR检测软件相结合，提供出色的成像质量。即使是在各种不同材料厚度的情况下，HDR（高动态X射线摄影）技术仍然能够完美检测出细节内容，并且有助于通过显现图像确定铸造缺陷深度。 MU2000-D 用户界面直观，即使是没有任何专业知识的人也能够轻松操作，可选配的CT系统同样如此。我们的CT分析站配有业内领先的软件——来自Volume Graphics的VGStudio。 利用CT扫描的三维重构技术，您可以获取详细的铸造缺陷信息。您还可以将MU2000升级成选配有HDR和CT的系统，充分发挥这些扩展功能的作用。 面对未来需求，MU2000-D 已准备就绪。系统界面生成的数据将应用于机器学习、大数据、物联网以及机器对机器通信等领域。MU2000-D 遵循ASTM等现行行业标准要求以及汽车制造商制定的具体要求，确保您的安全关键零部件达到合格的检测质量水平。技术数据特性标准版(标准 225 kV)扩展版 (XL 225 kV)Maximum Sample Weight60 [kg](opt. 200 kg)60 [kg](opt. 200 kg)System Dimension2250 x 1850 x 2750 [mm]2700 x 2100 x 3350 [mm]System Weight~ 6,5 [t]~ 10 [t]Sample Diameter max. [mm]600 x 900 [mm]800 x 1500 [mm]Inspection Envelope CT (3D) Diameter x Height~170 x 150 [mm]~180 x 160 [mm]Focus-Detector-Distance (FDD)695 - 995 [mm] 945 - 1245 [mm] X-ray Tube160 - 450 [kV]160 - 450 [kV]Detector Active Area1024 x 1024 [px]1024 x 1024 [px]产品标签：X射线检测系统，X光机，工业X射线系统咨询或索取详细产品资料，请联系ANALYSIS（安赛斯）工作人员 您还可能感兴趣的产品有：德国工业CT系统 X射线计算机断层扫描系统美国声发射检测系统及声发射板卡Pocket-AE美国 水浸式超声C扫描系统德国X射线成像系统 Mu2000德国微焦点X射线成像系统 X光机 Y.Cheetah

1、 FluorCam叶绿素荧光成像技术功能特点由于叶绿素荧光技术本身在科学研究中有一系列的局限性。因此从上世纪八十年代末开始，随着Charge-Coupled Device(CCD)成像技术、LED光源板技术、图像分析技术的成熟，不断有科学家和工程师合作探索将这三项技术与PAM脉冲调制技术结合，进而将叶绿素荧光技术升级为叶绿素荧光成像技术（Daley et al. 1989 Raschke et al. 1990 Mott et al. 1993 Genty and Meyer 1994 Bro et al. 1995 Siebke and Weis 1995 Meyer and Genty 1998 Balachandran et al. 1994 Oxborough and Baker 1997）。20世纪90年代末，PSI首席科学家Nedbal和PSI总裁Trtilek等合作，成功研制了与PAM脉冲调制技术结合的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Nedbal et al., 2000），并推出第一台商业化叶绿素荧光成像设备FluorCam。这一发明正式开启了叶绿素荧光研究的二维时代。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界，并得到了国际科学界的一致认可。FluorCam叶绿素荧光成像系统已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像仪器。与之前的叶绿素荧光技术相比，FluorCam叶绿素荧光成像技术的主要优势有：• 能够全面反映整株植物、叶片、藻类群体等的不同位置荧光强度变化与分布。• 可测量叶片、果实、麦穗、大型藻/微藻、整株植物乃至植物冠层等各种样品。• 可同时测定几十、甚至上百株个样品。• 能够在显微水平研究叶绿体或藻类细胞。• 尤其适用于环境胁迫早期植物不同部位光合活性的变化规律、突变体不同部位的光合功能差异等研究。同时，FluorCam叶绿素荧光成像技术与同类技术相比具备以下国际领先优势：• 由真正的生物学家、数学家、电子工程师和光学工程师组成的研发团队所开发• FluorCam是脉冲调试式叶绿素荧光成像技术的最早实用化成果• 国际最权威的叶绿素荧光成像技术，仅2019-2021.3可查阅全文的SCI文献就有300篇以上• 可实现高通量植物表型分析、抗性筛选、种质资源检测等科研应用• 激发荧光的LED光源板和获取荧光数据的成像传感器不但技术国际领先，而且为PSI自行开发，具备完全自主知识产权• 测量及成像参数最多，具备叶绿素荧光显微成像、OJIP快速荧光动力学曲线、QA再氧化动力学、荧光蛋白活体成像、多光谱荧光成像、无人值守自动监测、图像阈值分割等世界独有的成像测量功能• 以FluorCam叶绿素荧光成像技术为核心的PlantScreen植物表型成像分析系统为目前国际最先进、安装最多的植物表型组学研究系统• 软件由PSI开发，为客户提供终身免费升级• PSI表型科研中心可进行科研合作并提供实验指导• 系统型号全面，适用于各种实验需求• 几乎无维护费用技术功能特点：1) 仪器型号和配置灵活多样，测量样品涵盖了从叶片、藻类、果实、花朵、整株植物、植物群体/冠层乃至单个微藻/植物细胞、叶绿体等几乎所有不同类型的宏观和微观植物样品，甚至还包括含有叶绿素的细菌和海洋生物；同时满足了从实验室光合机理精细研究到野外大田实地研究，从自然环境到精确可控环境等不同实验条件和尺度的要求。2) 高灵敏度CCD，时间分辨率可达50帧／秒，分辨率720×560像素；可选配高分辨率CCD，最高分辨率1360×1024像素，在最高图像分辨率下时间分辨率可达20帧／秒，用于稳态荧光如GFP荧光测量等；超高灵敏度成像传感器，最高分辨率1280×1024像素，最高时间分辨率高达16000帧／秒，真正实现了OJIP快速荧光诱导动力学曲线的成像测量3) 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收率、NDVI成像测量（选配）f) GFP、YFP、EBFP、CFP、DsRed等荧光蛋白与DAPI等荧光染料的荧光定量测量（选配）g) 多光谱荧光测量（选配）：F440、F520、F690、F740h) QA再氧化动力学曲线（选配）i) OJIP快速荧光诱导动力学曲线（选配）：Fo，Fj，Fi，P或Fm，Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等参数4) 自动重复实验功能，可无人值守自动循环完成选定的实验程序，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机5) 标配4个LED光源板，采用大型预封装LED光源，红/蓝或红/白双色光化光源，可选配其他不同颜色（波长）、不同光强LED光源6) 功能强大的FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单：7) 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”两种功能模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差8) 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等2、 FluorCam叶绿素荧光成像系统型号1. FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪• 可测量叶绿素荧光成像，可选配GFP荧光蛋白成像功能• 成像面积：便携式FluorCam 31.5mm×41.5 mm、便携式GFPCam 35mm×46 mm• 配备专用支架和电池包，便携性强，实验室、野外均可使用• 可编辑测量实验程序（protocol）• 具备自动重复测量功能• 配备专用暗适应叶夹，便于在野外对样品进行暗适应无损测量2. FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统• FluorCam系列中功能最全面，使用最便捷的型号• 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 • 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变；可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量；也可选配超高灵敏度成像传感器，实现真正的OJIP快速荧光诱导动力学曲线成像测量• 成像面积达13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析• 饱和光光强最高达6000 µmol(photons)/m².s，进行QA再氧化分析使用的单周转饱和光闪STF可达120000µmol(photons)/m².s• 世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等• 可选配GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 可进行自动重复成像测量分析• 4块大型高强度封装LED光源板，具备双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合3. FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统• 模块化设计，配置灵活，可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度，方便被测植物的处理、操作等• 4块大型高强度封装LED光源板，具备双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合• 可自由选配多种备用不同波长LEDs光源板，用户可简便自行更换，如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多光谱荧光成像测量等• 可进行GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 标准版成像面积13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析• 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量4. FluorCam多光谱荧光成像系统FluorCam多光谱成像系统是将稳态荧光成像技术与脉冲调制式叶绿素荧光成像技术完美融于一体，能够在一台仪器上实现GFP、BFP、CFP、YFP、RFP等荧光蛋白成像、DAPI等荧光染料成像、荧光素酶、脉冲调制式叶绿素荧光成像以及NDVI反射光谱成像分析功能，是真正功能全面的植物荧光活体成像系统。同时，除了植物样品外，植物荧光活体成像系统也可以进行藻类、珊瑚共生体、菌落乃至动物的荧光成像分析。• 1360×1024像素高分辨率CCD，可对样品荧光标记的分布进行精准成像分析• 标准版成像面积13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析• 专用荧光激发光源组与滤波器组合，精确测量不同荧光蛋白标记• 软件配置多种用户自定义调色板，可生成真实色彩成像图或对比增强彩色成像图• 可选配新型FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统，一体化完成各种荧光成像测量5. FKM多光谱荧光动态显微成像系统• 目前唯一用于植物/藻类显微叶绿素荧光成像研究的成熟商用仪器• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序，如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等，可获得70余项参数• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜，可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等，通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光，能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量，提高实验精度，也可以进行高温/低温胁迫研究6. FluorCam大型叶绿素荧光成像平台• 世界上单幅成像面积最大的脉冲调制式（PAM）叶绿素荧光成像系统，成像光源板面积70×70cm，成像面积达35×35cm，可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性叶绿素荧光成像分析• LED激发光源、CCD叶绿素荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可自由移动的成像平台上，成像平台高度可调，以适应于不同高度的植物成像分析• 可选配PAR吸收／NDVI成像分析模块，对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析• 可选配RGB成像分析模块,用于植物形态测量分析等• 可选配GFP绿色荧光蛋白成像分析功能，用于植物转基因研究三、FluorCam叶绿素荧光成像系统应用案例1. 拟南芥叶绿体R-loop调控机制2017年清华大学生命学院孙前文课题组通过分析获得一个新的定位于叶绿体中的核糖核酸酶H蛋白（AtRNH1C），发现该蛋白可以调节叶绿体中R-loop水平的变化，从而维持基因组的稳定性和发育。他们使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统，发现AtRNH1C对叶绿体的发育有重要作用。在使用喹诺酮类药物环丙沙星（CIP）处理后，通过FluorCam叶绿素荧光成像图可以直观发现野生型的生长被抑制，同时叶片变色。而atrnh1c突变体则加强了CIP的毒害效应。这更加证实了AtRNH1C的功能。本实验的荧光成像检测是在易科泰Ecolab实验室完成的。2020年，孙前文课题组又使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统结合分子实验结果，证实了R-loop解旋酶过表达能够拯救由于异常累积HO-TRC触发R-loop共同表达造成的缺陷，从而维持拟南芥叶绿体基因组完整性。参考文献：1. Yang Z, et al. 2017. RNase H1 Cooperates with DNA Gyrases to Restrict R-loops and Maintain Genome Integrity in Arabidopsis Chloroplasts. The Plant Cell, doi:10.1105/tpc.17.003052. Yang Z, et al. 2020. RHON1 Co-transcriptionally Resolves R-Loops for Arabidopsis Chloroplast Genome Maintenance. Cell Reports 30: 243–2562. 构建耐盐生菜品种表型鉴定体系目前，全球农业都受到土壤和灌溉水盐分升高的威胁。大约50%的灌溉农田都受到了盐分的影响。2013年的经济分析指出由于盐分诱发的土壤退化和作物产量损失在全球造成了273亿美元的损失。作为一种重要的蔬菜作物，生菜（Lactuca sativa L.）在世界范围内都进行了广泛的种植。生菜产量最高的国家为美国、欧盟和中国。而生菜对盐分胁迫非常敏感的。盐分胁迫会造成生菜生物量减少、诱发叶烧病和早衰等。美国农业部（USDA）的科学家尝试确定生菜盐胁迫的关键生理表型性状，用于筛选高耐盐的生菜品种，希望从这些数据中筛选出最灵敏的指标构建耐盐生菜品种表型鉴定体系。与传统作物表型测量相比，一方面光系统对各种生物和非生物胁迫因素都非常敏感，而叶绿素荧光成像分析可以无损地直接测量胁迫对光系统的损伤程度和机理，在胁迫初期乃至症状出现前即可检测到胁迫的发生；另一方面，叶绿素荧光成像分析技术与自动传送系统集合，能够实现对大量样品的高通量无损快速检测，非常适用于作物品种的筛选。他们使用的PlantScreen XYZ植物表型成像分析系统就能够将这两方面的优势完美地结合起来。其样带式FluorCam叶绿素荧光成像单元是目前唯一使用脉冲调制式叶绿素荧光成像技术实现大型整株植物测量的商用化仪器。自动传送系统可以自动调整成像单元的位置与高度，结合专用软件可以对几十株乃至上百株样品进行自动叶绿素荧光成像分析。实验中使用了球生菜、奶油生菜、直立生菜、叶生菜等不同的栽培品种和生菜的野生亲缘种L. serriola L，共240株样品。这些品种中既有耐盐品种，也有盐胁迫敏感品种。所有样品在同样盐胁迫处理下进行了叶绿素荧光成像分析。研究者重点分析了QY_max（Fv/Fm）最大光化学效率、Fv/Fm_L（Fv’/Fm’）光适应最大光化学效率、NPQ非光化学淬灭（最大荧光）、qN非光化学淬灭（可变荧光）、qP光化学淬灭、QY实际光化学效率（量子产额）、Rfd荧光衰减比率等荧光参数。值得一提的是，叶绿素荧光成像图经过校准后，还可以直接获得整株植物具备光合活性的叶面积。结合荧光参数还可以对叶面积进行不同胁迫程度的定量分级和图像分割。本研究中直接使用叶绿素荧光成像获得的光合活性叶面积取代了传统测量的叶面积。荧光数据与鲜重等传统表型数据进行了相关性分析和主成分分析，结果表明敏感栽培种的叶绿素荧光特征是低QY，qN，NPQ和Rfd，而耐受栽培种的特征是高QY_max，Fv/Fm_L和QY_D。与叶绿素荧光参数的高灵敏度相比，大多数样品的叶绿素指数和CO2同化速率在盐胁迫处理前后都没有表现出显著的差异。因此，研究者建议在筛选高耐受品系时以较高的叶面积配合较高的Fv/Fm和QY作为初筛指标。后续，美国农业部又使用加装了高光谱成像单元的PlantScreen表型成像系统与FluorCam结合，通过叶绿素荧光成像数据与高光谱成像数据绘制了生菜水分胁迫响应基因位点的分子图谱。参考文献：1. Adhikari N D, et al. 2019. Phenomic and Physiological Analysis of Salinity Effects on Lettuce. Sensors, 19: 48142. Kumar P, et al. 2021. Molecular Mapping of Water-Stress Responsive Genomic Loci in Lettuce (Lactuca spp.) Using Kinetics Chlorophyll Fluorescence, Hyperspectral Imaging and Machine Learning. Front. Genet. 12: 634554

K1-Fluo R 正置式生物荧光成像系统K1-Fluo Up是韩国Nanoscope Systems 共聚焦显微镜公司为化学，医疗，生物，材料等领域而开发的一款多功能激光荧光共聚焦显微镜。 优异的光学组件，性能以及出色的性价比吸引了大批的海内外用户. 模块化的设计，开放性的设计理念使得K1-Fluo 的激光控制模块能够与Nikon,Olympus,Zeiss,Leica 的商用显微镜模块兼容 Features & Benefits（性能及优势）： 1. 高清晰的图像质量 2. 紧凑的模块尺寸 3. 与各种商用显微镜主体兼容 4. 操作简单 5. 高性价比 6. 可定制的模块 主要功能：1.实时模式 在Live 模式下时，可通过移动物镜的位置并调节Detector Sensitivity并且可以实时观察图像的变化，以此获得高清晰的荧光图像。2. 二维图像测量 在Live 模式下时，点击Manual SNAP 可测量当前条件下的二维图像，若对当前测量的图像不满意，可再次选择测量的激光波长，调节测量条件后再次测量，可覆盖之前测量结果 。3. Z-SNAP (2D深度图像构建) 通过设置想要的scan range，interval，number of section 可获得二维图像的深度照片（选出每张照片上亮的点然后合成为一张二维照片，当样品倾斜时非常适用）4. Z-STACK (3D构建） 通过设置想要的Scan range, Interval, # of section后，系统利用测量的二维照片重新构建出三维图像。 通过K1-3DViewer软件可观察分析构建的三维荧光形貌， 并且可以对测量每一张测量的二维荧光图片进行单独的分析，调节LUT并导出特定区域的强度值，而且可以通过K1-image软件测量荧光部分的三维尺寸。5. Video 功能 通过测量多张连续的照片并将其连接起来，可连接成一个视频。 通过重新设置保存视频的帧数可以调节视频的大小。6. Stitch and EDF stitch（平面拼接与深度拼接） Stitch 是平面拼接功能，只扫描并拼接同一焦平面上的图片。 EDF stitch是在每一个扫描点同时做Z-SNAP 和Stitch(优点是可以看到深度图像，缺点是耗时比较长）7. Time lapse (延时） 通过设置拍摄的时间间隔以及需要拍摄的总张数，可以设置延时功能（特别适合追踪细胞活动以及观察细胞的分裂）8. Automatic Well Plate scanning （自动孔板扫描） 选择该功能后，根据所选的孔板类型，将会自动出现每一个对应的孔板坐标，单击每一个坐标，可将物镜自动移动到对应的孔板然后进行扫描。Software（软件）：3-dimensional display (Z-stack)（三维展示）：Z-STACK是利用Z轴的上下移动获得垂直方向的光学切片然后构建3D图像，选择用户想要的测量方法后（有三种测量方法可供选择：Top/bottom, Center/Range, Upper/Lower），设置Z轴的扫描范围（Scan range)，光学切片的间隔（Interval），光学切片的张数(# of section)Time lapse（延时功能）：Specifications（参数）：激光模块激光波长基础波长405, 488, 561nm (7mW each)可选波长445, 473, 514, 532, 637, 640, 660, 685, 705, 730, 785nm (10mW or more), selectable up to four lines扫描模块K1-Fluo RT扫描仪共振扫描器和检流镜扫描分辨率128x128 ~ 2048x2048 可选扫描速度 30fps at 512 x 512 pixels (Bi-scan) 15fps at 512 x 512 pixels (Uni-scan)放大范围0.7x~3x 连续扫描区域12.5mm的平方除以物镜放大倍数(场数18)扫描模式xy, xyz, xt, xyt, xyzt针孔自动切换针孔大小 (0.5~10 Airy size)重量7kg探测器模块探测范围400-750nm or NIR 可定制 探测范围标准高灵敏PMT基础模式带一个 PMT 的六轮滤光片转盘 连续切换探测探测器数量Multi-ch 模式高达4个 PMTs 同步检测Emission filter自动滤片切换转轮或单个可更换滤片数据深度12bit重量1.5 kg显微镜模块结构正置X，Y 位移台电动/手动位移台 行程范围 115x75 mm （可定制）， 可支持：载玻片，孔板，培养皿等Z-驱动自动位移台15mm行程 / 250nm 小步距.PZT 位移台 (单个物镜)400um 行程 / 1nm 步距配件Jog dial样品载物台（5个）目镜选配：细胞孵化器物镜：支持空气物镜，油镜，水镜等多种规格的物镜 气浮隔振光学平台空气压缩机重量12kg电子模块控制器电子器件 半导体激光发射器，扫描模块，探测器模块功耗: 100~240V, 450VA, 50/60Hz重量: 19kgPCPCWindows 10, 64bit功耗: 100~240V, 900VA, 50/60Hz

和相应硬件组成一高速度离子成像系统，分析和高精度比例成像 Molecular Devices 的离子成像系统，能够提供整个系统和系统升级服务。系统内包含的高精度和高速度部件能够为高速度离子成像分析和高精度比例成像, 配合高水平的 MetaFluor 软件系统，能够用于： 1， 神经细胞，心肌细胞，骨骼肌细胞，胰岛细胞等2，各种离子 (Ca2+、Mg2+、Zn2+、K+、Cl-、Na+、pH) 的荧光比值测量及单波长荧光测量3，快速的 FRET 测量 光源系统高精度高稳定性的光源系统，能够确保稳定可靠的离子浓度测量，同时提供超长寿命，无需频繁更换灯泡，更低使用成本。 波长切换高速和超高速的切换装置，能够快速切换激发光波长，方便快速地进行比例和非比例成像分析。 成像检测器MetaFluor 比例成像系统配置了针对不用实验要求的优化 sCMOS 检测器，提供高分辨率、高速度、高灵敏度的实验结果。 能够整合多种外围设备MetaFluor 比例成像系统能够整合多种外周设备，包括与膜片钳联用，整合自动灌流设备等。并能通过自动控制外围设备实现实验无人值守自动化。 实时获得细胞离子绝对浓度系统能够无限制圈选感兴趣区域 (ROI) 与细胞，能够在图像采集的过程中实时获得荧光亮度曲线、比例亮度曲线和离子浓度绝度值可以支持Teledyne /Photometrics, QImaging, Andor, Hamamatsu, PCO 等品牌相机

FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的最新高级扩展产品。此系统既可用于PAM脉冲调制式叶绿素荧光动态成像分析，又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配滤波器组对GFP、RFP、YFP、SYBR Green等荧光蛋白和荧光染料进行稳态荧光成像测量。测量对象包括叶片、果实、花朵、整株拟南芥或其他小型植株、苔藓、微藻、大型藻类乃至特定的动物样品。 应用领域：§ 植物光合生理生态§ 植物逆境胁迫生理与易感性§ 植物初级代谢与次级代谢§ 植物表型组学成像分析（Phenotyping）§ 作物遗传育种与抗性筛选§ 种子萌发与活力监测§ 转基因植株筛选 功能特点：§ 多激发光-多光谱荧光成像技术：通过两种以上不同波长的光源激发植物样品中不同的发色团发出荧光并进行成像检测，即为多激发光多光谱荧光成像技术。植物的多光谱荧光主要包括叶绿素荧光、UV紫外光激发多光谱荧光和荧光蛋白荧光§ FluorCam-Pro无需更换任何配件即可同步实现多激发光-多光谱荧光成像功能：s PAM脉冲调制式叶绿素荧光成像s 紫外激发F440、F520、F690、F740多光谱荧光成像s GFP、RFP、YFP等常用荧光蛋白成像§ 可根据用户需要定制荧光蛋白或荧光染料成像，如BFP、CFP、SYBR Green、DAPI等§ 可对黄酮、花青素含量进行定量测量§ 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）§ 测量样品为各种活体植物样品，包括叶片、花卉、果实、整株拟南芥或其他小型植物、微藻（包括液滴、多孔板、固体培养基）及大型藻类等 技术指标：§ 一体式设计，自带暗适应箱体§ 最佳成像面积：20×20cm§ 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数；紫外激发多光谱荧光成像参数：F440、F520、F690、F740；荧光蛋白荧光强度参数Ft；每项参数均可显示对应二维荧光彩色图像。并可测量计算黄酮醇指数Flavonol Index,、花青素指数Anthocyanin Index。 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑1) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等叶绿素荧光参数2) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等叶绿素荧光参数3) Quenching荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个叶绿素荧光参数4) Light Curve光响应曲线：不同光强梯度条件下Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等叶绿素荧光参数5) MultiColor紫外激发多光谱荧光成像（选配）6) FPs荧光蛋白成像：GFP、YFP、RFP、BFP等（选配） § 荧光激发光源组：全LED光源，包括620nm红光、5700K冷白光、735nm远红光、365nm紫外光，445nm品蓝光，470nm蓝光，505nm青光，530nm绿光，590nm琥珀色光等§ 高分辨率CCD相机1) 图像分辨率：1360×1024像素2) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧§ 具备7位滤波轮，标配叶绿素荧光滤波器，根据用户需要可定制紫外激发多光谱荧光和GFP、RFP、YFP、BFP等荧光蛋白专用滤波器§ FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单§ 自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）§ 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000） § 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等应用案例：1. 抗病毒基因研究：叶绿素荧光成像与GFP成像联合分析法国国家农业科学研究院一直致力于马铃薯y病毒组的抗病基因研究，通过不同基因编辑处理方法，验证抗病毒分子机制。相关研究中，研究人员利用FluorCam多光谱荧光成像系统的GFP荧光蛋白成像功能，定量分析感染面积与病毒积累量，从而直观地反映了不同基因功能对拟南芥病毒抗性的影响。同时，叶绿素荧光成像则反映病毒对光合系统的损伤，同步提供植物的光合表型信息。 参考文献：§ Zafirov D, et al. 2021. When a knockout is an Achilles' heel: Resistance to one potyvirus species triggers hypersusceptibility to another one in Arabidopsis thaliana. Mol Plant Pathol. 22: 334–347§ Bastet A, et al. 2019. Mimicking natural polymorphism in eIF4E by CRISPR‐Cas9 base editing is associated with resistance to potyviruses. Plant Biotechnology Journal 17: 1736–1750§ Bastet A, et al. 2018. Trans-species synthetic gene design allows resistance pyramiding and broad-spectrum engineering of virus resistance in plants. Plant Biotechnology Journal: 1–13 2. 不同颜色凌霄叶片的叶绿素荧光与紫外激发多光谱荧光成像分析（易科泰EcoTech实验室） 产地：欧洲

MULTIC宽带多光谱成像仪测试系统是为测试远距离宽带多光谱成像仪而开发的专业测试系统。它可看作是经过校正的投影系统，可在可见光至远红外波段投射出不同形状/大小/光强的标准图像。MULTIC测试系统由以下模块组成：CDT离轴反射平行光管(典型有效径为400mm或500mm)，VASIP14D宽带多光谱光源 ，TCB4D黑体，一套两个MRW-6L旋转靶轮，WEB模块切换转轮，一组靶标，计算机，一组图像采集卡，控制软件，测试软件，一组平台，BOREX平台。 MULTIC是专业的测试系统，用于测试远程宽带多光谱成像系统。它是校准的图像投影仪，能够在从可见光到远红外范围的不同光谱投影不同形状/尺寸/光强度的参考图像。 MULTIC被构建为具有固定，紧凑结构的离轴牛顿型平行光管，其具有位于平行光管焦平面处的一组可交换标准靶标，主要由单个宽带多光谱辐射源照射，这种编码为VASIP的特殊辐射源是该测试系统的核心，额外的TCB黑体用于热像仪测试。这种新设计可实现广泛的测试功能，同时保持超高系统精度和可靠性。产品参数根据所选配置MULTIC能够对光学孔径不超过400/500mm的大型宽带多光谱成像仪进行测试。详细测试功能如下表所示。 表1. VASIP光源作为辐射源时的测试功能热像仪可见光-近红外相机短波红外相机可见光-近红外高光谱仪FOV畸变MTFFOV畸变MTFNEI (噪声等效照度),空间噪声 (FPN, 非均匀性)MRC (**小可分辨对比度)响应函数 (线性度，动态范围)相对光谱灵敏度颜色**度 (选配)FOV畸变MTFNER (噪声等效反射率)空间噪声 (FPN, 非均匀性)MRC (**小可分辨对比度)响应函数 (线性度，动态范围)相对光谱灵敏度(步进测量)D* 比探测率FOV桶形畸变枕形畸变MTFNER (噪声等效反射率)空间噪声 (FPN, 非均匀性)响应函数 (线性度，动态范围)MRC (**小可分辨对比度)D* 比探测率校轴误差：1. 高光谱仪在不同谱段时的光轴偏差2. 高光谱仪光轴相对于热像仪(或VIS NIR相机/SWIR相机)的光轴偏差的测量3. 测量高光谱仪图像相对于热像仪图像和VIS NIR /SWIR相机图像之间的旋转角4. 同一成像仪/相机不同视场时光轴偏差的测量5. 可见光-近红外相机(或短波红外相机，高光谱仪，热像仪)到BOREX平台的参考机械平面(机械轴)的光轴偏差的测量表 2. TCB-4D黑体作为辐射源时的测试功能热像仪VIS-NIR 可见光-近红外相机VIS-SWIR 高光谱仪MTF噪声等效温差NETD**小可分辨温差MRTD**小可探测温差MDTD空间噪声 (固定图形噪声FPN,非均匀性)比探测率D*(可选配)------------

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端叶绿素荧光技术设备，高分辨度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内，植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过千兆以太网与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点:1.系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析2.是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等26个参数3.是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100µ s内可达到120,000 µ mol(photons)/m² .s4.备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析（quenching）protocols、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等5.可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）6.具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益 7.可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 技术参数： 1.测量光为617nm可调制红光，持续时间10µ s–100µ s可调； 2.双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合， Actinic1光强300µ mol(photons)/m² .s，Actinic2光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s。双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益3.饱和光光强可达4000µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s，QA再氧化分析单周转饱和光闪STF可达120000µ mol(photons)/m² .s4.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，每个光源板由36颗LED阵列组成，光源板有效面积与成像面积相同13×13cm，另外还具备一个顶部双色光源（735nm红外光源和650nm红色光源）用于PAR吸收和NDVI成像测量；高强度高稳定性LED提供持续、稳定、均一的光源，不会因为用大量光强弱的LEDs（比如几百个）造成光源不稳定、寿命短等问题（使用大量弱光LED用于弥补每个LED的不足，会造成系统出错率的提高，任何一个LED出现问题都会造成系统的不稳定甚至不能使用）5.测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数及PAR吸收和NDVI植物光谱反射指数（选配），每个参数均可显示2维荧光彩色图像6.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI（选配）f) QA再氧化动力学（选配）g) GFP等静态荧光成像测量（选配）h) OJIP快速荧光动力学分析（选配）：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数7.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网8.成像面积：13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析9.7位滤波轮及叶绿素荧光滤波器、PAR吸收与NDVI成像测量滤波器（选配），可根据需要选配其它滤波器（选配）10.QA再氧化动力学成像分析（选配）：可进行STF荧光动力学分析测量，单周转光闪（STF）光强达120000 µ mol(photons)/m² .s in 100µ s11.OJIP快速荧光动力学模块（选配）：时间分辨率达1µ s，可测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi   _Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）12.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单13.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序14.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）15.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片16.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）17.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差18.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19.暗适应操作箱，内置光源、CCD镜头、滤波轮及滤波器、控制单元、散热装置等，方便暗适应操作，样品平台36x30cm，高度7级可调，样品（整株植物）最大高度可达12cm 20.给光制式：静态或动态21.Bios：固件可升级22.尺寸：471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 23.重量：Appr. 40 kg 24.电源输入：Appr. 1100 W 25.供电电压：90–240 V 配置组成：1.主机系统，包括暗适应操作箱，内置LEDs光源、滤波轮及滤波器、CCD镜头、控制单元、高度可调样品隔板、散热装置等2.高稳定性电源转换器3.FluorCam系统控制与数据分析软件4.笔记本电脑 产地：欧洲 附：其它FluorCam叶绿素荧光成像系统1.FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统：可与LCProSD光合仪、Licor光合仪等联用2.FluorCam便携式叶绿素荧光成像系统：成像面积3.5x3.5cm，具暗适应叶夹及多功能轻便三脚架，可用于实验室或野外测量和监测3.FluorCam便携式Chl/GFP荧光成像系统：为便携式荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析4.FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统：LED光源、CCD荧光监测镜头、控制单元等集成于暗适应操作箱内形成一个完整的主机系统，是世界上唯一可进行QA再氧化动力学和OJIP测量分析的叶绿素荧光成像系统，成像面积13x13cm5.FluorCam封闭式Chl/GFP荧光成像系统：为封闭式叶绿素荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析6.FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统：模块式，具备高度可扩展性，可自由选配不同的激发光源及相应滤波器以对叶绿素荧光动态及稳态荧光等进行成像分析，镜头高度可调，成像面积13x13cm7.FluorCam开放式大型版叶绿素荧光成像系统：成像面积可达20x20cm8.FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统：多激发光、多光谱荧光成像与光谱分析，可对叶绿素荧光动态、QA再氧化、OJIP快速荧光动力学进行显微成像分析和光谱分析，还可对GFP荧光、细胞荧光染色等进行显微成像分析9.Fluorcam移动式大型叶绿素荧光成像系统：大型叶绿素荧光成像平台安装在具轮子的支架上，方便移动，成像平台可上下移动，成像面积达35x35cm10.FluorCam样带扫瞄式叶绿素荧光成像系统：大型成像平台可在100－500cm的支架上对样带进行扫瞄成像，标配扫瞄区域长度为400cm，成像平台可沿样带精确定位自动扫瞄，可选配RGB真彩扫瞄成像，从而实现叶绿素荧光成像和真彩成像分析11.FluorCam多光谱荧光成像系统：属多激发光、多光谱荧光成像系统，不仅可对叶绿素荧光进行成像分析，还可对UV紫外光激发F440（蓝色荧光）、F520（绿色荧光）、F690（红色荧光）和F740（红外荧光）进行成像分析用于全方位研究检测植物胁迫与抗性，有标准配置、扩展配置和大型配置3种型号12.PlantScreen叶绿素荧光与RGB真彩自动扫描成像系统：是PlantScreen系列高通量植物表型成像分析系统的基础版，可对叶绿素荧光和植物RGB真彩进行成像分析，以分析检测植物的功能表型和形态表型，自动扫瞄范围为60x129cm，定位定时并得到4维（XYZ三维位置信息和时间信息）测量数据

FluorCam野外移动式大型叶绿素荧光成像系统 FluorCam野外移动式大型叶绿素荧光成像系统专为原位植物表型成像分析及生理生态研究而设计，成像面积可达35×35cm，系统装配在一个可以自由移动的支架上，高度可调，适用于温室乃至野外植物的光合生理研究、植物Phenotyping、植物胁迫生理及抗性筛选、植物优良品种选育、植物生态毒理学研究等。 FluorCam野外移动式大型叶绿素荧光成像系统功能特点：§ 是世界上单幅成像面积最大的叶绿素荧光成像系统，达35×35cm，可对整株植物及多株植物同时进行叶绿素荧光成像分析§ 整套系统装配在具备4个轮子的支架上，可在野外自由移动，非损伤原位对植物进行叶绿素荧光成像研究§ 可进行自动重复成像测量，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳），从而实现无人职守自动监测功能§ 可选配RGB成像分析模块，用于植物形态测量分析等§ 在没有交流电的情况下，可选配直流供电单元供电 FluorCam野外移动式大型叶绿素荧光成像系统技术指标：§ 移动式大型植物荧光成像，成像面积可达35×35cm，具移动轮和暗适应屏幕§ 镜头及光源高度20cm–150cm可调，从而适于不同生长类型不同高度植物的原位非损伤荧光成像测量§ 测量参数包括F0，F0’，Fs，Fm，Fm’，Fp，FtDn，FtLn，Fv，NPQ_Dn，NPQ_Ln，Qp_Dn，Qp_Ln，qN，QY，QY_Ln，Rfd等50多个叶绿素荧光参数§ 高分辨率、高灵敏度2/3”CCD，10.2x8.3mm阵列，最高可达1392x1040像素（15fps），像素大小6.45微米；可2x2、3x3、4x4像素叠加以提高灵敏度和时间分辨率；高速USB2.0图像传输， 480Mbits／秒§ 自动测量分析功能：可预设1个试验程序，系统可自动测量储存，数据文件自动按时间命名§ 配置有通用叶绿素荧光成像测量实验程序（protocols），包括Fv/Fm Protocol，Kautsky诱导效应Protocol，荧光淬灭分析Protocol，客户定制光响应曲线等§ 橙色、白色和红外三色激发光，LED光源板72×72 cm，3x64 LEDs § 双色光化学光，标配光化学光1强度达350μmol(photons)/m2.s、光化学光2强度达550μmol(photons)/m2.s，饱和光脉冲可达3500μmol(photons)/m2.s § 防水设计（选配），用于野外实验测量§ FluorCam叶绿素荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单§ Protocol实验程序可自由编辑，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序§ 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等§ 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差§ 具触摸屏，可通过触摸屏操作和数据浏览§ 规格大小：192cm（高）x 125cm x 100cm§ 供电电压：380V三相交流电，另具备野外发电机供电单元 更多信息请参考产地：欧洲PSI

FluorCam-WIC模块式植物表型成像分析系统是一款高度灵活、应用广泛的植物生理生态研究仪器，系统采用模块化结构，由LED光源板、CCD成像传感器、支架、控制单元及FluorCam成像分析软件等组成，具备PAM叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像及GFP荧光蛋白成像等功能，广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物抗性、作物育种等研究。 应用领域:1.植物光合特性和光合电子传递功能研究2.生物和非生物胁迫的检测3.植物抗胁迫能力或者易感性研究4.气孔非均一性研究5.代谢混乱研究6.长势与产量评估 功能特点:1.模块化，配置灵活，可自由安装更换成像模块与光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度，方便被测植物的处理、操作等2.成像面积达20×20cm，可对各种植物/藻类样品、整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析3.可进行自动重复成像测量，可设置一个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）4.可同时具备PAM叶绿素荧光成像、UV-MCF多光谱荧光成像及GFP荧光蛋白成像等功能，测量分析参数达50多个5.可选配WIC植物冠层红外热成像分析单元，用于气孔导度、干旱胁迫研究分析6.可选配TetraCam RGB可见光成像分析单元，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态测量分析技术参数：1.成像面积：20 × 20cm，可对植物叶片、果实、麦穗、花朵、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析2.PAM叶绿素荧光成像测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像3.紫外光激发多光谱荧光参数（选配）： F440、F520、F690、F740、F440/F520、F440/F690、F440/F740、F520/F690、F520/F740、F690/F740等参数及二维荧光彩色图像。4.GFP荧光蛋白成像参数（选配）：GFP荧光强度Ft及二维荧光彩色图像 5.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收率与NDVI成像（选配）f) Multi-color多光谱荧光成像（选配）g) GFP荧光蛋白成像测量（选配）6.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网7.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，光源板有效面积20×20cm8.测量光：标配617nm红光，其它波段可选，持续时间10µ s–100µ s可调9.双色光化光：标配为2红光（617nm）+2白光，可选配2红光（617nm）+2蓝光（470nm或445nm）或其它波长光源组合， Actinic1最大光强300 µ mol(photons)/m² .s，Actinic2最大光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s10.饱和光闪：最大光强4000 µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s11.PAR吸收率测量模块（选配）：远红光735nm（FAR）、650nm双色LEDs光源板与7位滤波轮及专用滤波片，用于测量PAR吸收及NDVI12.紫外光激发多光谱荧光测量模块（选配）：UV紫外光源板与7位滤波轮及4组专用滤波片，用于测量UV-MCF多光谱荧光13.GFP测量模块（选配）：蓝色光化光源与7位滤波轮及专用滤波片，用于测量GFP（绿色荧光蛋白）14.WIC植物冠层红外热成像分析单元（选配）：利用红外热成像技术，测量植物冠层与叶片温度，成像分辨率640×512像素15.TetraCam RGB可见光成像分析单元（选配）：最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态测量分析16.蓝色LED光源板（选配）：470nm，测量EGFP（增强型绿色荧光蛋白）17.绿色LED光源板（选配）：530nm，测量YFP（黄色荧光蛋白）18.其他可选配光源板：品蓝（447 nm），青色（505 nm），红色（627 nm），深红（655 nm），琥珀色（590 nm），远红（740nm）等*测量其他荧光蛋白或荧光染料需配备7位滤波轮及相应滤波片，可参考下图 19.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单20.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序21.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）22.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片23.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）24.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 25.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等26.给光制度：静态或动态27.CCD检测范围：400–1000nm 28.Bios：固件可升级29.通讯方式：千兆以太网30.供电电压：90–240V 应用案例： 西班牙高等科学委员会的科学家使用加配紫外光激发多光谱荧光测量模块和植物冠层红外热成像分析单元的FluorCam系统，研究温室效应（温度与大气CO2浓度同步升高）对油菜生长状况与健康程度的影响（Pineda，2022）。产地：欧洲

FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统将气体交换测定功能和叶绿素荧光成像功能有机结合：既能够测定植物的光合速率、蒸腾速率、气孔导度等光合作用参数，全面衡量植物光合作用的强度和能力；又能够对植物的叶绿素荧光参数进行二维成像，反映光合作用过程中光系统对光能的吸收、传递、耗散、分配及光合特性的空间异质性。FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统能够全面测定光合作用的过程（包括原初反应、电子传递、碳同化等阶段），充分了解光合作用的物质转化和能量交换，从而对光合作用进行完整评估和直观呈现。 应用领域植物光合生理研究、植物胁迫逆境研究、优质作物品种筛选、植物固碳研究、全球气候变化研究技术特点强强结合：全球首台野外便携式光合仪（1983年）和全球首部商用叶绿素荧光成像仪（1996年）均出在生产厂家。FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统是数十年研发积累和技术经验的结晶——成熟耐用，值得信赖。 功能强大：荧光成像功能能够借助内置程序，自动测量Fv/Fm、NPQ、ΦPSII、qP、qN、Rfd、ETR等叶绿素荧光参数及对每个参数进行二维成像；光合仪能够自动测定同化速率（A）、蒸腾速率（E）、胞间CO2（Ci）、气孔导度（Gs）、叶片温度、光合有效辐射，运行光响应程序和CO2响应程序。配置灵活：可选配GFP荧光成像功能，用于转基因作物筛选和对植物个体水平的基因表达进行定位和分析。可选配OJIP快速荧光曲线测量模块，快速获取反映植物光能吸收、传递、转化、耗散及光合电子传递状况的26个JIP-test参数。可选配植物光谱及植被指数测量模块，轻松获取植物反射光谱曲线并直接获取NDVI、PRI等数十个反映植物色素含量、光能利用效率、健康状态的生理参数。可选配植物多酚-叶绿素测量模块，对色素含量进行测定，包括Chl叶绿素指数、Flav类黄酮指数、NBl氮平衡指数（Chl/Flav 比值）、Anth 花青素指数。 多使用场景：系统便携性强，非常适合长时间野外调查和大田试验，也可用于实验室、温室等可控环境下的基础研究，是植物学、农学研究的必备仪器。 技术参数1. 光合测量部分1.1 CO2测量范围：0-3000ppm1.2 CO2测量分辨率：1ppm1.3 CO2采用红外分析，差分开路测量系统，自动置零，自动气压和温度补偿1.4 H2O测量范围：0-75 mbar 1.5 H2O测量分辨率：0.1mbar1.6 PAR测量范围：0-3000 μmol m-2 s-1，余弦校正1.7 叶室温度：-5 - 50℃ 精度：±0.2℃1.8 叶片温度：-5 - 50℃ 1.9 空气泵流速：100 - 500ml / min1.10 CO2控制：由内部CO2供应系统提供，最高达2000ppm1.11 H2O控制：可高于或低于环境条件1.12 温度控制：由微型peltier元件控制，环境温度-10℃到+15℃，所有叶室自动调节1.13 PAR控制：RGB光源最大2400μmol m-2 s-1，LED白色光源最大2500μmol m-2 s-11.14 可选配多种带有光源的可控温叶室、叶夹1.15 显示：彩色WQVGA LCD触摸屏，480 x 272像素，尺寸95 x 53.9 mm，对角线长109mm1.16 数据存储：SD卡，最大兼容32G容量1.17 数据输出：Mini-B型USB接口，RS232九针D型接口，最大230400波特率PC通讯1.18 供电系统：内置12V 7.5AH锂离子电池，可持续工作至16小时，智能充电器1.19 尺寸：主机230×110×170mm，测量手柄300×80×75mm1.20 重量：主机4.1Kg，测量手柄0.8Kg1.21 操作环境：5到45℃2. 荧光成像部分2.1 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像2.2 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数2.3 高分辨率TOMI-2 CCD传感器最高图像分辨率：1360×1024像素时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）像元尺寸：6.45µ m×6.45µ m运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量通讯模式：千兆以太网2.4 高分辨率TOMI-2 CCD传感器（选配）2.5 成像面积：35mm×46 mm2.6 光源板：4块超亮LED光源板，每个光源板由5×5 LEDs阵列，尺寸4×4 cm2.7 测量光：620nm红光，持续时间10µ s–100µ s可调2.8 饱和光：标配白光，可选蓝光（455nm）或红光（620nm）白光：最高 3900 µ mol(photons)/m² .s 蓝光：最高 4900 µ mol(photons)/m² .s红光：最高 3800 µ mol(photons)/m² .s2.9 光化学光：标配白光，可选蓝光（455nm）或红光（620nm）白光：0–1000 µ mol(photons)/m² .s 蓝光：0–1400 µ mol(photons)/m² .s红光：0–800 µ mol(photons)/m² .s2.10 远红光：735nm，用于测量Fo’，4颗高能LED2.11 FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单2.12 客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序2.13 自动测量分析功能：选配，可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）2.14 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）2.15 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等 2.16 给光制度：静态或动态（窦式）2.17 CCD检测范围：400–1000nm 2.18 光谱响应：540nm处量子效率最高（70 %），400nm和650nm处转降50%2.19 读出噪音：低于12eRMS，典型10e2.20 满阱容量：大于70,000 e (unbinned) 2.21 Bios：固件可升级2.22 通讯方式：千兆以太网2.23 主机重量：1.8 kg 2.24 主机尺寸：21.5 cm×13.5 cm×13.5 cm2.25 叶夹：用于夹持测量叶片并进行暗适应2.26 支架系统：1）室内支架，可调整测量高度和角度，用于实验室内测量；2）三角支架（选配），防水防锈材料设计，满足测量稳定性，高度角度可调，最高测量高度1.5m，用于野外测量2.27 供电方式：1）90–240 V交流电，配有专用防电涌稳压电源；2）专用野外电池包（选配），一次充电可支持10小时以上不间断测量2.28 最大功率：200 W 应用案例1. 捷克帕拉茨基大学的研究人员使用FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统测定了热激预处理前后感染白粉病的番茄的气体交换参数及叶绿素荧光参数（成像），发现热激处理不会显著影响中等抗性基因型番茄的白粉病抗性和光合响应，但会增加易感基因型的易感性(Prokopová et al., 2010)。 2. 葡萄牙阿威罗大学的科研人员研究发现松树对脂溃疡病菌感染在时间序列上的生理响应依赖于宿主的易感水平，而脱落酸的分解代谢在此过程中发挥着重要的作用(Amaral et al., 2021)。FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统则被用来测定易感品种和抗性品种在感染过程中的光合表现。 3. 日本日本鹿儿岛大学农学院的科研人员使用FluorCam便携式光合测量-荧光成像系统研究了温度光照对百香果“夏日皇后”和“红星”光合特性的影响。发现两个品种的百香果在高温下的光合特性存在差异：“夏日皇后”在高温下受到了严重的伤害，而“红星”在高温下保持其蒸腾和NPQ值从而降低了高温胁迫的影响(Shimada et al., 2017)。 国内安装案例 参考文献1.Amaral, J., Correia, B., Escandón, M., Jesus, C., Serô dio, J., Valledor, L., Hancock, R.D., Dinis, L.-T., Gomez-Cadenas, A., Alves, A., et al. (2021). Temporal physiological response of pine to Fusarium circinatum infection is dependent on host susceptibility level: the role of ABA catabolism. Tree Physiology 41, 801–816. 2.Oliveira, D.C., Moreira, A.S.F.P., Isaias, R.M.S., Martini, V., and Rezende, U.C. (2017). Sink Status and Photosynthetic Rate of the Leaflet Galls Induced by Bystracoccus mataybae (Eriococcidae) on Matayba guianensis (Sapindaceae). Front. Plant Sci. 8, 1249. 3.Oliveira, T.M., Yahmed, J.B., Dutra, J., Maserti, B.E., Talon, M., Navarro, L., Ollitraut, P., da S. Gesteira, A., and Morillon, R. (2017). Better tolerance to water deficit in doubled diploid ‘Carrizo citrange’ compared to diploid seedlings is associated with more limited water consumption. Acta Physiol Plant 39, 1–13. 4.Porcar-Castell, A., Tyystjä rvi, E., Atherton, J., van der Tol, C., Flexas, J., Pfündel, E.E., Moreno, J., Frankenberg, C., and Berry, J.A. (2014). Linking chlorophyll a fluorescence to photosynthesis for remote sensing applications: mechanisms and challenges. Journal of Experimental Botany 65, 4065–4095. 5.Prokopová, J., Mieslerová, B., Hlavá&ccaron ková, V., Hlavinka, J., Lebeda, A., Nau&scaron , J., and &Scaron pundová, M. (2010). Changes in photosynthesis of Lycopersicon spp. plants induced by tomato powdery mildew infection in combination with heat shock pre-treatment. Physiological and Molecular Plant Pathology 74, 205–213. 6.Shimada, A., Kubo, T., Tominaga, S., and Yamamoto, M. (2017). Effect of Temperature on Photosynthesis Characteristics in the Passion Fruits ‘Summer Queen’ and ‘Ruby Star.’ The Hortic J 86, 194–199.

FluorTron植物光合表型成像分析技术基于高分辨率、高灵敏度叶绿素荧光动态成像技术、多通道调制智能LED光源技术及机器视觉技术，对植物表型特别是光合生理表型进行非接触、非损伤、数字化、可视化成像分析（可客户定制高通量表型分析），用于植物表型分析、植物光合生理研究检测、胁迫与抗性检测与筛选等。主要技术特点：1) 高分辨率，高灵敏度视频叶绿素荧光动态成像2) 可自动运行如下Protocols：a) 荧光淬灭分析b) 光响应曲线c) Kautsky诱导效应及叶绿素荧光快速动力学曲线3) 可同时进行植物形态分析，如长度、宽度、投影面积（相对生物量）、凸包面积、圆度等4) 可选配基于智能LED光源技术的多光谱成像，或多功能高光谱成像5) 可选配视频光谱成像功能，包括叶绿素荧光光谱成像、Red-Edge反射光光谱成像等 技术指标：1) 荧光淬灭分析叶绿素荧光成像测量参数：Fo、Fm、Fp、Ft、Fs、Fm’、Fv/Fm（QYmax）、∆ F/Fm’（YPSII）、Fv/Fo、NPQ、Rfd、qP、Y(NPQ)、Y(NO)、EXC、1-qP、ETR等2) 叶绿素荧光快速动力学测量参数：Fo、Fi、Fm、Vi、Mo、Sm、QY、能量散失光量子产量、平均光量子产量等3) 光响应曲线成像分析4) 成像面积：≥50cm x 50cm5) 叶绿素荧光成像分辨率：2448x2048像素6) 形态参数：投影面积（相对生物量）、长度、宽度、长宽比、凸包面积、ROI面积、圆度等常见形态参数7) 传感器：500万像素2/3”CMOS8) 像元大小：3.45µ m x 3.45µ m9) 最大帧频：≥70fps10) 曝光时间：15µ s-10s11) Binning：支持1x1和2x212) 激发光：蓝色LED激发光源，可选配多激发光13) 模块式具备可扩展性，可扩展选配Thermo-RGB成像，或多光谱成像等14) Thermo-RGB成像：具备红外热成像与RGB成像融合分析功能，对不同ROI进行温度、颜色及形态分析，包括最低温度、最高温度、平均温度、温度频率直方图、图像分割分析（如光照叶片温度、阴影叶片温度——反映不同光照条件下的光合状态和气孔行为）15) 可选配侧面多功能高光谱成像功能a) 包括高光谱成像、多光谱成像、Red-Edge光谱成像、近红外成像、RGB成像等，可进行高分辨率颜色分析（可区分100多种颜色），测量参数包括结构指数、色素指数、叶黄素循环色素指数、生理与衰老指数（包括健康指数）、光合物候指数、N指数、水含量指数等50多个参数b) 侧面形态分析功能：高度、冠层宽度、冠层侧面面积、冠层侧面凸包面积等c) 具备截面参数分析功能d) 叶绿素荧光高光谱成像（选配），稳态叶绿素荧光高光谱成像分析e) UV-MCF成像分析功能（可根据预算和需求选配）f) 可选配360度旋转平台，由操作系统自动调控旋转角度等，已进行三维成像分析16) 视频光谱成像：可运行叶绿素荧光光谱成像、Red-Edge光谱成像，高灵敏度每秒可达120个数据立方 其它相关产品：1. FluorTron多功能高光谱成像系统，高光谱成像、叶绿素荧光成像、UV-MCF生物荧光成像2. PhenoTron-PTS植物表型成像分析系统，叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、高光谱成像、Thermo-RGB成像3. 模块式植物表型成像分析系统，叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、Thermo-RGB成像4. 移动式叶绿素荧光成像系统，叶绿素荧光成像，多光谱荧光成像、高光谱成像、Thermo-RGB成像

FluorCam开放式多光谱荧光成像系统 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，既可用于叶绿素荧光动态成像分析，又可用于长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量。标准配置（标准版）的最大成像面积为13 x 13 cm ，大型版最大成像面积达20 x 20 cm ，广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性、作物育种、Phenotyping、转基因、稳态荧光成像测量等研究。 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统功能特点： ü 多激发光－多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 成像面积大，标准配置为13x13cm，大型版成像面积达20x20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟兰芥等小型植物）进行实验成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于形态测量分析，结合荧光成像分析参数，可作为植物表型分析（Phenotyping）的有力工具ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统配置规格：1) 标准配置：可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析，成像面积13 x 13cm，系统高度集成、方便使用，具备7位绿波轮及多光谱荧光成像滤波器组、高分辨率CCD镜头、UV紫外光激发多光谱荧光成像功能模块及程序软件等；2) 扩展配置：模块式结构，具备高度可扩展性，不仅可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析，还可进行PAR吸收及NDVI成像分析、GFP绿色荧光蛋白等稳态荧光成像分析（选配），可根据客户需求选配不同的激发光源和滤波器组合，成像面积13 x 13cm；3) 大型配置：具备上述扩展配置的所有功能优势，成像面积达20cm x 20cm，可对整株植物或多株植物进行成像分析。FluorCam开放式多光谱荧光成像系统技术指标： ? 标准版成像面积达13x13cm，大型版成像面积达20x20cm? 标准配置含滤波轮、ChlF.滤波器及高分辨率镜头，测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd，BGF，UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和稳态荧光? 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740? 高分辨率CCD镜头，1392x1040像素，有效像素大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加（binning）以提高灵敏度（2x2，3x3，4x4） ? 自动测量分析功能（无人值守）：可预设1个或2个试验程序，系统可自动测量储存，比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序，夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序? 配置有通用叶绿素荧光成像测量实验程序（protocols）和稳态荧光测量程序（选配），包括Fv/Fm Protocol，Kautsky诱导效应Protocol，荧光淬灭分析 Protocol，稳态荧光测量，客户定制光响应曲线及PAR吸收成像测量等? 4个13x13cmLED光源板（大型版为20x20cm），双色光源（2红橙光＋2蓝光），双色光化学光（Actinic light1和Actinic light2）? 标配Actinic1光强300μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强2000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪4000μmol(photons)/m2.s ? 光源升级：Actinic1光强2000μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强3000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪6000μmol(photons)/m2.s ? 标配测量光为618nm红光，其它波段可选，持续时间10μs - 100μs可调；? 7为滤波轮及滤波器，用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光（GFP荧光需选配相应功能模块）? 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块，用于测量Fo’、PARabs及NDVI? 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等，光强3000μmol(photons)/m2.s，用于气孔功能测量研究? 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG（须选配相应滤波器等）? 如测量其它荧光参数，须选配相应滤波器等（请咨询EcoLab实验室），以下为选配参考： ? FluorCam叶绿素荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre-processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单? Protocol实验程序可自由编辑，也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序? 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等? 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差? 给光制度：静态或动态（窦式）? A/D 转换分辨率：12 位；Bios：固件可升级? 通讯方式：USB 2.0 ? 供电电压：90 – 240 V 下图为植物接种病毒（PMMoV-I为意大利菌株，PMMoV-S为西班牙菌株）后（dpi为接种后的侵染天数）的紫外光激发多光谱荧光成像，其中Abaxial为叶片背面成像，Adaxial为叶片正面成像（引自Monica Pineda等，2008）产地：欧洲

长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱(Multi-color Fluorescence,MCF)，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740）(C.Buschmann等，1998)，其中F440和F520统称为BGF（蓝绿荧光），由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出（指示次级代谢产物等），F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光（UV-MCF）可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态如干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等（H.K.Lichtenthaler, 2021）。欧洲PSI公司采用光学滤波器技术，通过紫外线激发并仅使特定波长的激发荧光到达检测器，研制生产了FluorCam多光谱叶绿素荧光成像系列仪器设备，可以对F440、F520、F690、F740四个波长荧光（多光谱荧光）进行二维成像分析，成为目前广泛应用于植物表型分析、植物胁迫检测等领域的重要仪器技术。基于近二十年叶绿素荧光测量与成像技术、UV-MCF多光谱荧光成像分析技术服务与实验研究，值此公司成立二十周年之际，易科泰生态技术公司隆重推出UV-MCF生物荧光高光谱成像系统，其主要技术和功能特点为：1.基于高光谱成像技术的紫外光激发生物荧光光谱成像分析，可同时获得蓝色、绿色、红色及远红波段的荧光光谱成像，不仅可对生物荧光在二维尺度上进行成像分析，还可以获得荧光光谱特征（光谱指纹）并在高光谱维度上（多达几百个）进行荧光光谱分析。下图为银杏叶高光谱荧光成像（自左至右依次为：彩色成像、绿色荧光F533成像、UV-MCF荧光光谱。易科泰Ecolab实验室提供）2.不仅可进行叶绿素荧光及BGF成像分析，还可以得到其高光谱数据立方并进而分析其光谱特性，使生物荧光二维成像分析提升到高光谱成像分析（达几百个光谱纬度）水平3.可对GFP（绿色荧光蛋白）等进行成像分析4.可选配多激发光（绿色及红色激发光）植物荧光光谱成像分析，并进一步测量分析花青素、叶绿素、多酚等指数及氮素指数5.FluorVision高光谱荧光成像分析软件，可进行光谱融合、ROI选区分析、样品剖面荧光分析、频率直方图、自动识别不同波段峰值并分析其比值等6.可同时获取反射光光谱和荧光光谱，并进行高光谱成像分析和高光谱荧光成像分析（下图为花椰菜高光谱成像分析——光谱反射指数，和荧光成像分析）7.可对植物叶片或整株植物）、根系、果实、种子等不同组织部位进行荧光成像分析和反射光高光谱成像分析8.应用于植物表型成像分析、遗传育种、植物胁迫与抗性分析检测、种质资源分析检测、中草药检测鉴定、采后生物学研究、光生物学研究等。UV-MCF不仅适于活体植物成像分析，也适应于干燥后的茎叶、根系等荧光成像分析，如茶叶及中草药品质检测等分析参数：1.BGF蓝绿荧光Fb（或F440）和Fg（或F520）2.叶绿素荧光Fr（或F690）和Ffr（或F740）3.荧光比值，如Fb/Fg、Fb/Fr、Fb/Ffr、Fr/Ffr等，及F730-740/F680-690（反应叶绿素含量及植物长期胁迫等）、F735/F700（可精确反映叶绿素含量）。下表为UV-MCF部分比值参数与植物表型关系（参考H.K.Lichtenthaler, 2021。++指显著提高，+指提高，--指显著降低，-指降低，0为无明显变化）植物表型Fb/FrFb/FfrFr/FfrFb/FgF735/F700杂色叶片/绿色叶片++++++0背面/正面叶片+++++0-黄绿/绿色叶片++++++--第二片/第一片冒芽叶片----++-+干旱胁迫++++00N胁迫+++++0--暴晒+++++--虫害++++0+-敌草隆处理----+0光抑制++++--0野外/大棚植物++++-04.花青素指数（log(Ffr_R/Ffr_R)）、黄酮指数（log(Ffr_R/Ffr_UV）及氮素平衡指数NBI——需选配红绿多激发光模块5.高光谱成像分析，可自动分析计算NDVI、NDVI705红边归一化植被指数（对衰老敏感）、VOG1红边指数（对叶绿素浓度、物候变化等敏感）、PRI光化学植被指数、PSRI 植被衰减指数（用于指示冠层胁迫、植物衰老、果实成熟等）、SIPI结构不敏感色素指数（反映冠层胁迫程度、生理胁迫检测等）、CRI1 类胡萝卜素反射指数、ARI1/ ARI2 花青素反射指数、CI 叶绿素指数（红边指数）、WBIR水波段指数（反映水分含量分布）、HI健康指数等植物色素指数和胁迫敏感指数、NPQI归一化脱镁指数（用于早期胁迫检测）、PSSRa（R800/R680）指数等应用案例：植物对敌草隆的荧光响应参考文献：Claus Buschmann and Hartmut K. Lichtenthaler. Principles and characteristics of multi-colour fluorescence imaging of plants. Journal of Plant Physiology, 1998.H.K.Lichtenthaler. Multi-colour fluorescence imaging of photosynthetic activity and plant stress. Photosynthetica, 2021.

FC 00-C/1010GFP封闭式多光谱植物荧光成像系统是一个高度创新的，世界范围内广泛应用的多光谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现测量样品的暗适应。它由一个CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为13× 13 cm。适用对象为小植物，离体叶片，海藻稀释物等。系统结构紧凑且易于实现样品的暗适应，功能强大的软件可以控制整个系统，获取数据和处理图像。应用领域植物光合特性和代谢紊乱筛选生物与非生物胁迫检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究基因标记检测转基因表达研究功能特点：实验过程和测量参数荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它.实验过程和测量参数稳态荧光测定GFP，EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它荧光蛋白及荧光素荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它典型样品叶片，整株植物，小树苗，果实，蔬菜，苔藓，地衣，藻青菌，绿藻，各种转基因植物，适用于不同植物样品的支架，培养皿与多孔板蒙版 操作软件与实验结果内置常用测量程序用户可自定义实验程序，界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持，便于批量处理样品数据可导出为excelWindows 2000, XP, Vista，Win7兼容稳态荧光测定荧光蛋白和荧光素家族具有巨大的光谱多样性，它们通常具有不同的激发光谱和释放光谱。封闭式荧光成像系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮，以及一系列的滤光片组，可以来对GFP，EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它波段荧光蛋白进行检测和成像。高分辨率相机1392 x 1040 像素 可选 640 x 480 像素或512 x 512 像素；低像素模式适用于快速荧光过程的捕获；高像素模式适用于叶绿素荧光和需要长时间曝光的弱稳态荧光测量或者需要高空间分辨率的情景（显微视野）7位滤波轮多色激发光源wtGFP 主激发峰 395 - 397 nm，发射峰 504 nm. 滤波器建议设置: 激发光420 nm短通，532/28 或 530/25 nm检测.EGFP 主激发峰中心波长488 nm，发射峰 507 - 509 nm. 滤波器建议设置:激发光480 nm短通，532/28 或 530/25 nm检测.BFP 主激发峰 384 nm，发射峰近 448 nm.滤波器建议设置: 激发光400 nm短通，469/35 nm检测. 配置型号指南：标准版1&mdash &mdash 超高速成像版：512 x 512 像素，50幅/秒超快CCD，适用于荧光参数的精细再现标准版2&mdash &mdash 超高分辨率版：1392 x 1040 像素分辨率，适用于高空间分辨率的应用，如气孔动态标准版3&mdash &mdash PAR吸收修正版：可测植物真实F0&rsquo 与PAR吸收系数，用于修正荧光参数和ETR 标准版4&mdash &mdash 功能增强版：超强STF，强度可达120,000 µ mol(photons)/m² .s，可实现100µ s脉冲，用于QA瞬间饱和与再氧化研究；可同时进行荧光蛋白与荧光素成像，包括GFP、wGFP、eGFP、YFP、BFP、CY3, CY5等，用于转基因研究。 1.FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数成像进行动力学解析，典型的研究区域为3.5× 3.5 cm。在所有应用中，系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像，光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了最常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言，熟练的研究人员可以设计自己的闪光序列和测量过程。 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统是一个轻巧的便携系统，尤其适用于野外实验。系统可以通过肩背便携包中的密封铅酸电池在野外进行供电，稳固轻巧的三脚架使得野外测量变得简单易行。 2.FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统专门设计来与光合仪的气体交换叶室安装在一起使用，是一个高度创新的，世界范围内广泛应用的多广谱动力学荧光成像系统。它具备其他荧光成像系统的所有特征。这个系统高度紧凑，且可以实现测量样品的暗适应。叶绿素荧光测量与成像可以与气体交换测量同步进行，获取更丰富准确的信息。而且精确的样品所处环境控制功能，例如影响光合和蒸腾速率的温度、相对湿度和氧气和CO2的分压，远优于普通叶绿素荧光成像系统。系统可与目前市场上绝大多数厂家的光合仪联用，如Licor，ADC，PPS等。3. FC800-O开放式植物荧光成像系统 FC 800-O开放式荧光成像系统是一款高度模块化的设备，具体配置可以定制。其LED发光板和饱和光源可以任意角度和到样品的距离排列，也可以通过调整CCD的位置来增加精度。标准配置的最大成像面积为13× 13 cm ，通过选择光源的尺寸，可调整最大成像面积为20× 20 cm 。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。4. FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统高度紧凑，主要由一个扫描控制系统，CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。测量区域为200× 100 cm。该系统适用于实验室或样地中样带植株的原位快速测量，尤其适用于监测多因子实验中植物对各种处理的响应。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。尤其适用于高通量筛查和监测胁迫梯度对植物影响；适合户外与温室使用；结构坚固耐用，光源与相机位置可移动；无需取下或者移动样品；标准成像尺寸为20× 200 cm，其它尺寸可调整。5. FC 900-R野外移动式植物叶绿素荧光成像系统 FC 900-R野外移动式植物荧光成像系统主要由一个可移动支架，CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为20× 20 cm，适用于野外较大植物（如大豆、小麦）的原位无损测量。成像高度20 到 150 cm可调，可配真彩镜头。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。适用于野外大尺寸扫描测量面积20× 20 cm.移动系统极其坚固稳定可在粗糙地表轻松移动配置样品暗适应箱从 20 to 150 cm高度可调无需样品分离与破坏6. FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统 FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现对测量样品的3D成像，它由一个CCD相机，LED发光板，拱形支架，高性能PC和兼容软件包组成。FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统通过自动程序获取样品台上整株植物的3D图像，适用于对植物进行3D空间异质性研究以及荧光蛋白与荧光素等荧光标记在植株上表达的空间异质性。专用于三维荧光成像独特耐用的结构支架光源位置可自动调整可移动的相机使得可以从任意角度测量无需分离与移动样品软件可生成3D图像7. XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。该系统可以实现测量样品的暗适应，它由一个CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像，成像面积为80× 40 cm。适用对象为整株植物，离体叶片，海藻稀释物等。XY-Plane系统用于自动进行大型植物生长室中植物样品的大量筛选，FC 900-XY/8040植物荧光成像系统安装在一个坚固耐用的柜式结构中，所有部件可被安全存放，人性化的设计使得放置样品非常便捷。柜式结构内是一个光源和成像CCD位置可自由移动的自动控制框架。测量面积80× 40 cm.适用于高通量筛选尤其适合大培养盘中样品的多谱段分析适用于生物和非生物胁迫研究和转基因植物筛查光源与相机的高度和位置可调整无需分离与破坏样品8. FC 2000显微叶绿素荧光成像系统1. Micro-FluorCam FC 2000-ST内含: CCD 相机 简单显微镜架 光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.2. Micro-FluorCam FC 2000-EN内含: CCD 相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW内含: 6位滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 PC高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW内含：6位完全软件控制的滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.Micro-FluorCam FC2000-EFW: 6-位滤波器 (插入式)5. Kinetic Fluorescence Microscope FC 2000-Z 详见FKM多功能荧光动态显微监测系统 产地：欧洲 典型应用：1. CLAIRE M. M. GACHON etc. Single-cell chlorophyll fluorescence kinetic microscopy of Pylaiella littoralis (Phaeophyceae) infected by Chytridium polysiphoniae (Chytridiomycota). Eur. J. Phycol., (2006), 41(4): 395&ndash 403Fig. 2. UV激发荧光（壶菌属感染的褐藻过程）。A、C为亮视野图片；B、D为UV激发荧光情况；A、B为单细胞感染对照；C、D为严重感染对照。 Fig. 1.叶绿素荧光动力学（壶菌属感染的褐藻）.A为典型Kautsky诱导曲线（实线）与实测曲线比较；B为亮视野图片；C为 Fm值假彩图片；D为NPQ值假彩图片 请致电索取参考文献列表

FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统是一款高度灵活、应用广泛的植物生理生态研究仪器，系统采用模块化结构，有四个LEDs光源版、CCD镜头、支架、控制单元及FluorCam成像分析软件等组成。两对LEDs光源版提供测量光、光化学光和饱和光闪，角度和高度可调；CCD镜头高度可调，且可灵活配置PSI特制高灵敏度CCD镜头或高分辨率镜头，还可装配第五个光源版于镜头周边。标准配置（标准版）的最大成像面积为13×13 cm，大型版最大成像面积达20×20 cm。既可对单个叶片进行叶绿素荧光成像，还可对整株植物进行叶绿素荧光成像，广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物监测、植物抗性、作物育种等研究。 应用领域:1.植物光合特性和代谢紊乱筛选2.生物和非生物胁迫的检测3.植物抗胁迫能力或者易感性研究4.气孔非均一性研究5.代谢混乱研究6.长势与产量评估7.植物——微生物交互作用研究8.植物——原生动物交互作用研究 功能特点:1.模块化，配置灵活，可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度，方便被测植物的处理、操作等2.可自由选配不同波长LEDs光源板，如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多色荧光成像试验测量等3.成像面积大，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析4.可进行自动重复成像测量，可设置一个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）5.带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达50多个6.可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态测量分析7.测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等技术参数：1.成像面积：标准版成像面积达13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析2.测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像 3.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI（选配）f) GFP等静态荧光成像测量（选配）4.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网5.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，每个光源板由36颗 LED阵列组成，光源板有效面积与成像面积相同，标准版13×13cm，大型版20×20cm6.测量光：标配617nm红光，其它波段可选，持续时间10µ s–100µ s可调7.双色光化光：标配为2红光（617nm）+2白光，可选配2红光（617nm）+2蓝光（470nm或445nm）或其它波长光源组合， Actinic1最大光强300µ mol(photons)/m² .s，Actinic2最大光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s8.饱和光闪：最大光强4000µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s9.PAR吸收测量模块（选配）：远红光735nm（FAR）、650nm双色LEDs光源板与7位滤波轮及专用滤波片，用于测量PAR吸收及NDVI10.GFP测量模块（选配）：蓝色光化光源与7位滤波轮及专用滤波片，用于测量GFP（绿色荧光蛋白）11.7位滤波轮（选配）：加装不同波段滤波片，配合选配的专用光源板测量PAR吸收和GFP、YFP等稳态荧光12.紫外LED光源板（选配）：365nm或385nm，1）测量多色荧光（详见FluorCam多光谱荧光成像系统）；2）测量wtGFP（野生型绿色荧光蛋白）、DAPI（4',6-二脒基-2-苯基吲哚，一种荧光染料）13.蓝色LED光源板（选配）：470nm，1）测量EGFP（增强型绿色荧光蛋白）；2）用于气孔功能研究14.绿色LED光源板（选配）：530nm，测量YFP（黄色荧光蛋白）15.其他可选配光源板：品蓝（447 nm），青色（505 nm），红色（627 nm），深红（655 nm），琥珀色（590 nm），远红（740nm）等16.测量wtGFP、DAPI、EGFP、YFP等荧光蛋白或荧光染料还需要选配7位滤波轮，高分辨率CCD及相应滤波片 17.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单18.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序19.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）20.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片21.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）22.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 23.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等24.给光制度：静态或动态25.CCD检测范围：400–1000nm 26.Bios：固件可升级27.通讯方式：千兆以太网28供电电压：90–240V 产地：欧洲 典型应用：

LaVision 的 FlameMaster 系统系列旨在寻找新概念，以实现更高效、更清洁的燃烧设备。这些（激光）成像系统设计用于在各种火焰中进行多参数测量，具有很高的空间和时间分辨率。我们的 FlameMaster 成像系统支持工业设备中的在线火焰监测，并提供有关激光照明火焰区域中物质（颗粒）浓度、气体成分和火焰温度的定量信息。对于每个成像的燃烧参数，都提供了一组专用的硬件和软件模块，为直接的系统升级提供了可能性。这种模块化的成像升级特性为不同的火焰成像应用提供了充分的灵活性。

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 上左图为上世纪90年代Nedbal等设计的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Photosynthesis Research, 66: 3-12, 2000），右图为柠檬彩色图及叶绿素荧光成像图（Photosynthetica, 38: 571-579, 2000）FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端植物活体成像技术设备，高灵敏度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内（还可根据需求选配第五个光源板置于顶部），植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过USB与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点: 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，成像面积达13x13cm 是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等20多个参数 是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100μs内可达到120,000 μmol(photons)/m2.s 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、2个叶绿素荧光淬灭分析（NPQ）protocolas（2套定制给光方案）、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析（选配）、OJIP快速荧光动力学分析（选配）及GFP绿色荧光蛋白成像（选配）等 可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）；还可预设两个实验程序（Protocols）；比如使系统白天自动运行Fv/Fm，夜间自动运行NPQ分析等 具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益左图A为100％红色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm，左图B为30%蓝色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm；右上图为光合作用强度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系，右下图为气孔导度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系 可运行叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、GFP稳态荧光成像 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 可选配高光谱成像单元和红外热成像单元，植物性状数字化、可视化，全面测量分析植物形态、光合效率、生化性状、气孔导度、胁迫与抗性等 可选配大型版移动式植物成像分析系统，成像面积35x35cm，可运行叶绿素荧光成像、红外热成像及RGB成像分析 最新应用案例：Hendrik Kupper与Zuzana Benedikty等，在2019年2月出版的《Plant Physiology》，发表了Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging，该研究首次采用超高速成像传感器FluorCam台式植物叶绿素荧光成像系统与FKM多光谱显微荧光成像系统，成像速度可达4000fps@640x512，QA再氧化叶绿素荧光动力学成像测量单脉冲饱和光闪达150,000 μmol/m2.s1。 附：OJIP快速荧光动力学测定分析参数包括： a) Fo：初始荧光或称最小荧光，50μs时的荧光b) Fj：2ms时的荧光c) Fi：60ms时的荧光d) P或Fm：最大荧光e) Vj＝(Fj-Fo)/(Fm-Fo):j阶荧光相对变量f) Vi＝(Fi-Fo)/(Fm-Fo)：i阶荧光相对变量g) Mo＝TRo/RC-ETo/RC=4(F300-Fo)/(Fm-Fo)：荧光瞬变初始斜率，或称OJIP曲线初始斜率h) Area：OJIP曲线与Fm之间的面积，可称为补偿面积（complementary area）为了对不同样品进行比较，Area需要标准化为：Sm＝Area/(Fm-Fo)，Sm是对关闭所有光反应中心所需能量的量度i) Fix Area：OJIP固定面积，OJIP曲线40微妙时的F值至1秒时的F值下面的面积j) Sm：标准化OJIP补偿面积，反映QA还原多次周转k) Ss＝Vj/Mo：标准化OJ相补偿面积，反映单周转QA还原l) N=Sm/Ss=Sm Mo(1/Vj)：OJIP QA还原周转数量（between 0 and tFm）m) Phi_Po＝QY＝φpo＝TRo/ABS＝Fv/Fm，最大光量子产量，吸收光量子通量反应中心初始捕获比率n) Psi_o＝ψo＝ETo/TRo＝1-Vj，捕获光量子通量中电子传递光量子通量比率o) Phi_Eo＝φEo=ETo/ABS=(1-(Fo/Fm))(1-Vj)，吸收光量子通量中电子传递光量子通量比率，或称电子传递光量子产量（quantum yield of electron transport at t=0）p) Phi_Do＝φDo＝1-φpo＝Fo/Fm，能量散失光量子产量（t＝0）q) Phi_pav＝φpav＝φpo（Sm/tFm），平均光量子产量，tFm为达到Fm所需时间（ms）r) ABS/RC＝Mo(1/Vj)(1/QY)：为单位反应中心的吸收光量子通量，这儿的反应中心仅指the active (QA to QA– reducing) centers（下同）。QY=TRo/ABS=Fv/Fms) TRo/RC＝Mo(1/Vj)：单位反应中心初始（或称最大）捕获光量子通量（导致QA的还原，也即反应中心关闭比率B的增加）t) ETo/RC＝Mo(1/Vj)（1-Vj）：单位反应中心初始电子传递光量子通量u) DIo/RC＝（ABS/RC）－（TRo/RC）：单位反应中心能量散失v) ABS/CS：单位样品截面的吸收光量子通量，CS stands for the excited cross-section of the tested sample（下同）。ABS/CSo＝Fo，ABS/CSm＝Fm，TRo/CSx＝QY(ABS/CSx)——单位截面捕获能量或光量子通量w) TRo/CSo＝QY.Fo；ETo/CSo＝φEo.Fo ＝QY.(1-Vj).Fox) RC/CSx：反应中心密度，RC / CS0 (active RCs per excited cross-section)y) PIABS＝(RC/ABS)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数z) PIcs＝(RC/CSx)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于截面的“性能”指数或称生存指数

FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统 FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统可以为一系列应用到绿色荧光蛋白的分子和细胞生物学研究提供服务。在封闭式荧光成像系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮，以及一系列的滤光片组，可以对GFP、EGFP、wtGFP、YFP、BFP或者其它波段荧光蛋白和荧光素进行检测和成像。 FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统也可用于检测植物发出叶绿素荧光的动态变化和空间分布，测量Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程（瞬变）并提供2维荧光图像。专门设计的硬件配置使得本系统能够自动转换成荧光蛋白、荧光素成像或叶绿素荧光检测成像。该系统高度集成，并且可以进行样品的暗适应。 应用领域： 荧光蛋白与荧光素的荧光检测 基因转移和生物传感器技术 转基因植物研究 不同基因型抗性筛选 植物——微生物交互作用研究 植物——原生动物交互作用研究 植物光合特性和代谢紊乱筛选 生物和非生物胁迫的检测 植物抗胁迫能力或者易感性研究 气孔非均一性研究 代谢混乱研究 长势与产量评估 功能特点: 操作简便，测量样品高度可调，集成了专用暗适应箱，方便被测植物的暗适应处理、操作等 高分辨率CCD，分辨率高达1392×1040像素，快速精确捕捉叶绿素荧光和GFP 可进行自动重复成像测量，可设置一个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳） 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达50多个 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×625px，用于叶片或植物形态测量分析 典型样品： 叶片，茎，种子，根，整株小植物愈伤组织，培养皿中的小苗果实和花朵蓝细菌，绿藻，细菌转基因动物技术参数： 荧光参数：F0，Fm，Fv，F0’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项参数 高分辨率CCD：1392×1040像素，15幅每秒；30幅每秒时分辨率为640×480像素；积分时间可从毫秒到秒。可以很好地测量叶绿素荧光和长积分时间的弱稳态荧光或者用于对空间分辨率要求更高的测量，用于GFP等荧光蛋白成像 2个红色（627nm）或蓝色（470nm）LED光源板用于提供测量光和光化学光1，2个蓝色（470nm）LEDs光源板用于提供饱和光闪和光化学光2 标配Actinic1光强300μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强2000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪4000μmol(photons)/m2.s 光源升级：Actinic1光强2000μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强3000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪6000μmol(photons)/m2.s 成像面积：13×13 cm 7位滤波轮：叶绿素荧光（高通695nm，低通780nm），GFP荧光（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm），PAR，YFP，CY3，CY5，以及其它荧光波段QA在氧化动力学模块（可选）：内置单周转光闪（STF），光强达120000 μmol(photons)/m2.s in 100μsOJIP快速荧光动力学模块（可选）：可测定OJIP曲线与二十几项相关参数F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC，时间分辨率达1μsPAR吸收测量模块（可选）：包括7位滤波轮和红外／红色光源板置于顶部，用于测定PAR吸收FluorCam叶绿素荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单Protocol实验程序可自由编辑，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差可进行自动重复成像测量（可选），可设置一个实验程序（Protocol）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）CCD检测器带宽：40–1000nm 给光制度：静态或动态（窦式） A/D 转换分辨率：12位 光谱响应：540nm处量子效率最高（70 %），400nm和650nm处转降50% 读出噪音：低于12eRMS，典型10e 满阱容量：大于70,000 e (unbinned) Bios：固件可升级 通讯方式：USB 2.0 尺寸：471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 重量：Appr.40 kg 电源输入：Appr. 1100 W 供电电压：90–240 V 典型应用： 产地：捷克 请致电索取参考文献列表

FluorCam移动式多光谱荧光成像系统是国际知名FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，可用于叶绿素荧光动态成像分析、多激发光光合效率成像分析、紫外光激发多光谱荧光成像分析、PAR吸收与NDVI（植物光谱反射指数）成像分析、GFP/YFP稳态荧光成像等，全面、非接触、高灵敏度反映植物生理生态、胁迫生理与抗性、光合效率等，广泛应用于植物表型成像分析、植物胁迫与抗性检测、植物病害检测研究、遗传育种高通量筛选、植物生理生态学、植物初级代谢与刺激代谢研究、污染生态学研究检测/生物检测等。 主要功能特点：ü 客户定制四轮移动平台、模块式结构，便于温室内或野外移动使用、原位测量监测、系统扩展等ü 叶绿素荧光成像分析：植物光合效率、荧光淬灭热散失、光响应曲线、植物胁迫与抗性等生理功能测量检测ü 多光谱荧光成像分析：反映多酚与黄酮类等次级代谢产物动态变化、叶绿素动态变化、植物衰老、植物病虫害胁迫及非生物胁迫等ü GFP/YFP稳态荧光成像（选配）：遗传育种、基因标记ü NDVI成像分析（选配）：N素营养状态、植物胁迫等ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 多激发光、多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü 可选配13x13cm或大型20x20cm不同规格型号LED光源版，以实现不同大小均一的植物多光谱荧光成像面积，可对叶片、植物果实器官包括植物根系或整株植物甚至多株植物进行实验成像分析 ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳），以便于野外长时间（如几个小时）自动监测ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 可选配RGB成像、红外热成像及高光谱成像，以便与叶绿素荧光成像融合分析，全面研究分析形态结构、颜色、气孔导度、植物光谱特征、WUE（水分利用效率）、CWSI（水分胁迫指数）、植物生理生化等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标：1. 多光谱荧光成像1) 标配4+1智能LED光源系统，包括1对红色LED光源板、1对冷白色LED光源板、1个顶部紫外光源，可选配其它波段光源、多光谱光源2) 标准版LED光源板面积13x13cm，大型版LED光源板面积达20x20cm3) 脉冲调制测量光源，波段617nm，持续时间10μs - 100μs可调，可深入叶片栅栏组织，可选配蓝色等其它颜色测量光 4) 双波段持续光化学光：标配617nm橙色光化学光和6500K白色光化学光，300-2,000 μmol(photons)/m2.s光强可调，可选配3000 μmol(photons)/m2.s光强，还可选配蓝色、绿色等其它颜色光化学光5) 6500K白色饱和光脉冲，最大强度4000 μmol(photons)/m2.s，可选配强度达6000 μmol(photons)/m2.s，还可选配蓝色饱和光脉冲或120000μmol(photons)/m2.s单周转光脉冲6) Protocols（实验程序）：包括（根据选配配置而定）：a) Fv/Fmb) Kautsky 诱导效应c) 荧光淬灭分析d) 光响应曲线分析e) 静态荧光成像分析（选配）f) 多光谱荧光成像分析g) PARabs/NDVI成像分析（选配）7) 测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd，BGF，UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和多光谱荧光参数8) 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740及相应比率成像分析参数（下左图为西葫芦感染软腐病菌（Dickeya dadantii）RGB彩色成像、多光谱荧光成像（引自Maria L. Perez-Bueno等，2016）；右图为植物接种病毒（PMMoV-I为意大利菌株，PMMoV-S为西班牙菌株）后（dpi为接种后的侵染天数）的紫外光激发多光谱荧光成像，其中Abaxial为叶片背面成像，Adaxial为叶片正面成像（引自Monica Pineda等，2008） 9) 高分辨率CCD镜头，1392x1040像素，20fps，有效像素大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加（binning）以提高灵敏度（2x2，3x3，4x4）10) 自动测量分析功能（无人值守）：可预设1个或2个试验程序，系统可自动测量储存，比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序，夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序11) 7位滤波轮及滤波器，用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光（GFP荧光需选配相应功能模块），标准配置含7位滤波轮、ChlF.滤波器、MCF多光谱荧光滤波器等12) 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块，用于测量Fo’、PARabs及NDVI13) 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等，光强3000μmol(photons)/m2.s，用于气孔功能测量研究14) 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG（须选配相应滤波器等）15) 如测量其它荧光参数，须选配相应滤波器等（请咨询EcoLab实验室），以下为选配参考： 16) FluorCam多光谱荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre-processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单17) Protocol实验程序可自由编辑，也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序18) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19) 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差20) 给光制度：静态或动态（窦式）21) 通讯方式：USB 2.022) 供电电压：90 – 240 V （野外需另配轻便型发电机）2. 红外热成像单元：1) 非制冷红外焦平面检测器（uncooled VOx microbolometer），已经过欧盟标注校准，可直接测量温度，包括每个像素点的温度等2) 分辨率：640x512像素3) 光谱范围：7.5～13.5μm4) 温度测量范围：-25～150°C?5) 灵敏度：≤0.03℃（30mK）@ 30℃6) 帧频：标配9Hz或30Hz（须提前申请选配）7) 数据传输：USB-3或千兆以太网8) 19mm光学镜头，视野32℃x26℃，可选配13mm镜头或35mm镜头9) 具备视频模式和快照模式10) 具备14种调色板供任意选择，可多样化设置热成像假彩色11) 具备差值功能，可内查图像形成平滑影像以避免像素化12) 可通过软件设置大气温度、湿度、距离等参数13) 具备等温模式功能，包括以上、一下、之间、及以下与以上四种等温模式14) 结果在线报告功能，自动显示热影像、时距图及影像参数如发射率、反射温度、大气温度、湿度、外部光距离、传播等15) 影像处理软件具备ROI选区功能，包括点、线、折线、矩形等，并可进行分区处理，每个ROI即时显示最小温度、最高温度、平均温度等16) 热扫描功能及热剖面功能：可在线可视化显示线型ROI温度值、温度剖面图17) 所有ROI工具的温度值均可显示在时距图中18) 防护级：IP6519) 工作温度：-15°C～+50°C 20) 支持GPS信息，可将位置信息显示在谷歌地图上3. RGB成像分析单元：科研级RGB成像镜头，分辨率2592x1944像素，信噪比54dB，1-40x放大，最小视野6.1x7.9mm（40x），最大视野20.8x25.4 产地：欧洲

FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统植物的光合速率、蒸腾速率、气孔导度等光合作用参数可以全面衡量植物光合作用的强度和能力；而叶绿素荧光不仅能反映光能吸收、激发能传递和光化学反应等光合作用的原初反应过程，而且与电子传递、质子梯度的建立及ATP合成和CO2固定等过程有关。对两者的结合测量在植物光合生理研究中缺一不可。FluorCam便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统可以与目前国际上主流的各种光合仪如LCpro、LiCor6400等组成联用系统，在测量光合的同时测定植物的荧光，也可以在实验室或野外独立工作。 功能特点： 可以被安装在LCpro–SD、LiCor6400等光合仪的叶室上进行荧光和光合的同步测量，也可独立工作 便携性强，实验室、野外均可使用 可自己编辑测量实验程序（protocol） 既可进行持续光化学光成像测量，又可进行PAM成像测量 可选配手持式叶绿素快速荧光动力学测量模块 可选配平板型工控机 技术参数： 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率可达每秒50帧，512×512像素 可测荧光参数：F0，Fm，Fv，F0’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项参数 4块超亮LED光源板，均一照明面积2.5×2.5 cm 测量光：620nm红光，持续时间10μs–100μs可调 光化学光、饱和光闪：白光、蓝光、红光三选一，也可选配红光+蓝光，标配白光 远红光：IR735nm 给光制度：静态或者动态模式 自定义实验程序：多样化的时间顺序，专门的程序语言和脚本 FluorCam软件包括下列实验测量程序（protocols）：Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、光响应曲线等，可任意调整测量时间、光化学光持续时间、测量间隔、光强等参数 FluorCam软件具图像处理、选区ROI、测量分析等功能，可输出成像视频、图表、直方图等 供电方式：交流供电、电池供电（野外使用） 平板型工控机（可选）：用于野外长时间测量 手持式叶绿素快速荧光动力学测量模块（可选）：可测量OJIP曲线及相关的二十多项参数 CCD检测器带宽：400–1000 nm 像素尺寸：8.2 μm×8.4 μm 通讯方式：USB 2.0 重量：1.8 kg产地：捷克

小动物眼轴及前节oct一体化成像系统Smallanimal eye axis and anterior segment oct integrated imaging system 测量对象: 小鼠及大鼠(适用于眼球8mm以下动物,眼轴一体成像,测量准确)成像深度: 成像深度可达12mm专用测量软件: 可根据客户要求测量角膜、前房、晶状体、玻璃体及全眼轴厚度便捷的操作软件: 软件界面友好,操作简单,便捷的操作流程 采集-出图-测量成像效果---完全媲美切片测量软件介绍定量分析效果图实例1:C57小鼠生长发育眼轴测量使用小动物眼轴及前节oct一体化成像系统对同一生长周期C57小鼠正常鼠和模型鼠进行全眼轴一体成像测量,可得正常C57小鼠2.976mm,模型C57小鼠眼轴长2.688mm,影像学和定量分析数据的提供可进行相关眼科研究

一、产品介绍：一体式凝胶成像系统，无需配备电脑，15.6大尺寸触摸显示屏。WIN10操作系统，操作更加便捷，更大程度化的节约了仪器的占用空间。触屏反应灵敏，分辨率高。并可外接显示器，可多方位进行软件操作。二、应用范围：1、核酸检测：适用于绿色荧光蛋白、SYBR Green、Gelstar及SYPRO Orange等激发波长在400-500nm的大多数安全的荧光染料，其中接近470nm的染料效果最佳；2、蛋白检测：考马斯亮蓝胶，银染胶，以及各种染料Coomassie Blue、Copper stain、Zincstain、Flamingo、Oriole、Silver stain、Coomassie Fluor Orange、SYPROuby、Krypton标记胶/膜/芯片等；3、其他应用：培养皿菌落计数，酶标板，点杂交，蛋白芯片；三、产品特点：1、高分辨率相机和高灵敏度镜头，保证高质量的成像效果。2、智能化操作软件与大尺寸高灵敏触摸屏相结合的全方位操作，体验感极佳。3、超大15.6寸触摸屏，触感录敏、流畅。屏幕小角度倾斜，满足人体工程学设计，操作舒适，无压迫感。四、技术参数：摄像头：进口高分辨科研级摄像头；相机芯片：原装进口CCD；有效像素：2592×1944(503万)；像素密度：16bit(65536灰阶）；像素点大小：5.2μm×5.2μm；感光效率：0.78；信噪比：69.8dB；读出燥声: 5.1e- RMS；检测灵敏度：可测出低至0.02ng的核酸；镜头: 原装进口高通透6倍自动变焦镜头，F1.0, 8-48mm；一键自动聚焦功 能，可自动对所拍摄样品对焦，无须人工调整；滤光片：进口590nm,可选配其他滤光片；透射蓝光：标配470nm，矩阵式排布500颗蓝光LED灯珠设计，产生高强度的均匀蓝光光源，并且设有旋扭式开关，可对光源强度调节。透射白光：标配6档可调亮度LED白光板；透射紫外：选配254nm、302nm、365nm，落射紫外：选配254nm/302nm/365nm；落射白光：两侧高亮LED冷光源；蓝光透射面积：210×260mm，可见光透射面积：210×260mm；切胶装置：标配专用切胶装置；模块控制：高度程序化，实现镜头模组（变焦/ 焦距/光圈）、透射光源及反射光源、切胶光源全自动模块化控制；定时关灯：1-60分钟无操作自动关闭蓝光光源，有效延长蓝光灯组的使用寿命；结构：密闭无光泄露，微处理器控制暗箱，开门自动保护系统；计算机：内置：双核I3 CPU，8G内存，128G固态硬盘；显示器：15.6寸电容触摸屏，也可以通过外置电脑控制仪器；五、智能软件:1、图像拍摄：光源/镜头/相机控制，自动/手动曝光、自动/手动对焦、图像拍摄、图像管理；2、设有功能隐藏设置，部分功能可自由选择操作键显示或不显示，以保证软件操作界面简洁性。3、图像处理：调整亮度、对比度、Gamma、图像旋转、图像反色、图像裁切、图像缩放, 图像染色、图像合并；4、分析功能：泳道的自动/手动识别、条带的自动/手动识别、可手动添加、删除泳道和条带，可自定义分子量标准，进行分子量和浓度计算；5、操作软件自带直接打印窗口。网格线功能，选中后，图片界面出现均匀排布绿色网格线，并且专设可移动紫色横线，固定绿色框线与移动紫线相配合，方便参照对比Marker；6、设有图像默认保存路径，无需手动保存；也可在拍摄前自定义保存路径，当次拍摄图片自动存入所选路径，拍摄完成退出软件后，下次进入自动恢复默认路径，防止存储混乱；7、其他分析功能：菌落、斑点杂交\克隆计数；8、数据导出：结果可导出到Excel；9、软件终身免费上门安装、升级、培训，并根据客户需求进行上门维护；六、配置清单：1. 成像主机，1台 2. 无线鼠键套，1套 3. 电源线，1根 4. 合格证/保修卡,1份 5. 透射白光板,1份 6. 切胶罩,1个 7. 软件U盘, 1个

太赫兹件烟封装检测成像系统太赫兹件烟封装检测成像系统利用太赫兹波段的特性进行检测。首先，系统通过发射器产生太赫兹波，并将这些波发送到待测物体上。太赫兹波在物体表面反射、透射和散射，根据不同的物质特性和结构，波将以不同的方式与物体相互作用。接收器采集反射、透射和散射的太赫兹信号，并将其转换成数字信号。然后，系统通过处理这些信号，获得物体表面的特征信息和内部结构，包括封装烟草的包装密封状况。之后，系统将得到的信息转换成图像或数据，供操作人员分析和判断，以确定封装烟草的完整性和品质。总的来说，太赫兹件烟封装检测成像系统通过分析物体和太赫兹波之间的相互作用，实现对烟草封装品质的快速、准确的检测。太赫兹件烟封装检测成像系统通过太赫兹成像技术，在线实时监测件烟封装后件内条烟状况，并以图像形式显示件内条烟排布状态，对件内是否缺条进行直观呈现,还可通过AI智能识别，实现对件烟内部是否缺条的进行智能判断,通过深度学习，可实现标注件烟内部缺条缺陷的位置,通过自动剔除机构，可实现对缺条件烟的自动剔除。一、太赫兹件烟封装检测成像系统功能指标二、太赫兹件烟封装检测成像系统解决方案对比更多详情请联系昊量光电/欢迎直接联系昊量光电关于昊量光电：上海昊量光电设备有限公司是光电产品专业代理商，产品包括各类激光器、光电调制器、光学测量设备、光学元件等，涉及应用涵盖了材料加工、光通讯、生物医疗、科学研究、国防、量子光学、生物显微、物联传感、激光制造等；可为客户提供完整的设备安装，培训，硬件开发，软件开发，系统集成等服务。

脑体互作前沿技术-小动物清醒自由活动结合脑介观成像同步系统全皮层宽场成像可追踪全脑落射荧光，反向散射等。神经元信号+行为学InvigiloTM 结合Neurotar 的气浮笼TM 专利技术，实现行为学和大脑信号的实时配对，清醒活动小鼠神经元活性和血流动力学的光学成像系统。血流动力学Invigilo可用于血流动力学分析，也可收集血氧水平相关 (BOLD) 信号。钙信号校正Invigilo通过照明环对脑颅窗进行标准化和可重复性的均匀照明，并使用 BOLD 信号校正GCaMP6 信号，使实验结果重复性显著提升。数据分析Invigilo软件作为数据采集和分析的多功能平台，拥有控制硬件、同步数据和深入分析等功能，可用于分析实验条件与外部干预对神经元的多种影响。稳定的成像与高分辨率*“ 适用于位于表层皮质层的细胞体”多模态成像钙信号( GCaMP )。血氧水平( IOS/BOLD )全皮层钙成像透过头骨、玻璃或“See-Shells”聚合物头骨Invigilo"软件光电收集光学信号等基础功能。此外，它还能在收集的数据中进一步分析各种实验条件或外部干预如何影响神经元活性，这使其成为研究和理解神经网络对外部刺激反应的先进工具。主要部件照明环Invigilo使用LED照明环进行反向散射成像。360度标准化照明以及对活体脑血氧波动和钙信号成像的矫正补偿，大幅度提高了实验可重复性。照明时保护小鼠视觉，将照明光源对行为学的影响降到最低研究方法研究举例1、神经活动的及时分析并与运动、外部刺激的关联2、行为学与功能性关联电 话：+86-0731-84428665伍经理：+86-180 7516 6076徐经理：+86-138 1744 2250

产品简介：近红外二区小动物活体成像系统是新一代的具有900~1700 nm荧光波长探测范围的活体成像仪器，其克服了传统荧光成像难以在深层组织成像的问题，具有更深的穿透深度、更少的背景散射和生物组织自发光干扰、更高的信噪比，能够获得更高分辨率的图片。同时其也具有无创，成本低等优点，广泛应用于分析化学、化学生物学和生物医学领域，是基础生物研究，药物研发和临床应用中最为有效的实时成像手段之一。适用于小动物研究领域。 此外还有高分辨近红外二区活体显微镜可实现对样品的高分辨显微荧光成像。从细胞尺度的分子机理研究，到活体尺度的多器官协同作用进行深入的研究，为科学家提供一整套的跨尺度光学成像方案。恒光的光路系统具备升级3D（NIR-II光谱 ，共聚焦）的潜在优势。适用于小动物的细小组织与细胞层面研究。 产品原理：相对于传统的可见光(400～750 nm)和近红外一区(NIR I，750～900 nm)荧光成像技术，近红外二区(NIR II，1000～1700 nm)的发射波长更长，可显著降低生物组织内光子的散射，增强生物组织的光吸收，具有穿透深度大，空间分辨率高，速度快等优势，被誉为下一代荧光成像技术。穿透深度高于 15mm空间分辨率优于4um荧光寿命分辨率优于10us高速采集速度高于1000fps产品特点：近红外二区成像NIR-Ilin-vivo lmaging近红外I区与II区小鼠颅内血管成像对比全光谱成像 Full Spectrum全光谱（可见光-近红外一区/二区）活体荧光成像系统，具备300-1700 nm双光路设计，可实现高灵敏度生物发光（bioluminescence）与荧光（fluorescence）成像。全视野 Cross-Scale首创的全视野成像能力，满足了从微观到宏观成像视野的需求（1.5-250 mm），极大丰富了用户的使用场景：肿瘤微环境、脑部精细成像、斑马鱼、眼部血管、神经成像、小鼠大鼠整体成像，到兔、犬、猴大动物的局部成像等均可轻松实现。 高灵敏度成像系统的核心相机均采用了业界知名的Teledyne Princeton Instruments的NIRvana系列，具有高灵敏度，低噪声，高速成像等优势，其量子效率与噪声抑制技术为高品质成像提供保证。可拓展X-ray / CT 模块市场上首台可嵌入小动物荧光成像系统的桌面式 X-ray激发/CT成像模块，系统顶部配置一块铅玻璃，在隔离射线辐射的情况下，让350-1700 nm的 光透射出射线腔，实现X-ray激发的荧光成像，CT-荧光三维共定位等。 荧光寿命与高精度激光器系统采用了高精度控制的电子门控激光器（下降沿优于900ns），方便用户在荧光强度成像与荧光寿命成像之间快速切换，而无需繁琐的硬件系统（如斩波器等），且荧光寿命精度可达15μs。 活体多模态成像设计采用模块化的结构设计，可进行后期功能扩展，整合近红外一区荧光成像，超声，光声，CT断层扫描，荧光寿命，PET-C，MRI等系统，实现多模态成像解决方案。其遮光外壳、上下机体可分离组合，带来更加自由的实验平台。近红外二区荧光探针与众多科研院所合作，为用户提供丰富的荧光探针选择方案：小分子，量子点，AIE，稀土纳米探针等；可满足肿瘤靶向，血管造影，淋巴标记，细胞体内追踪，药物筛选，体内分布等众多应用。同时团队具有丰富的生物学实验设计与数据分析经验，可为用户提供生物成像的培训及N3服务。应用领域：NIR-II区荧光成像拓宽了荧光成像的应用范围，包括：肿瘤研究、血管成像、药物开发、靶向治疗、手术导航、肠道菌群成像、淋巴成像、脑科学、药理研究、药效评价及大分子药物药代动力学研究等众多领域。部分文献[1]Ji A, Lou H, Qu C, et al. Acceptor engineering for NIR-II dyes with high photochemical and biomedical performance[J]. nature communications, 2022, 13(1): 3815.[2] Dong S, Feng S, Chen Y, et al. Nerve suture combined with ADSCs injection under real-time and dynamic NIR-II fluorescence imaging in peripheral nerve regeneration in vivo[J]. Frontiers in Chemistry, 2021, 9: 676928.[3] Feng S, Chen M, Chen Y, et al. Seeking and identifying time window of antibiotic treatment under in vivo guidance of PbS QDs clustered microspheres based NIR-II fluorescence imaging[J]. Chemical Engineering Journal, 2023, 451: 138584.[4] Zhang X, Ji A, Wang Z, et al. Azide-dye unexpected bone targeting for near-infrared window ii osteoporosis imaging[J]. Journal of Medicinal Chemistry, 2021, 64(15): 11543-11553.[5] Yang S, Zhang J, Zhang Z, et al. More Is Better: Acceptor Engineering for Constructing NIR-II AIEgens to Boost Multimodal Phototheranostics[J]. 2022.[6] Qiu Q, Chang T, Wu Y, et al. Liver injury long-term monitoring and fluorescent image-guided tumor surgery using self-assembly amphiphilic donor-acceptor NIR-II dyes[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2022, 212: 114371.[7] Yang R, Bao G, Li H, et al. Lead/cadmium-free near-infrared multifunctional nanoplatform for deep-tissue bimodal imaging and drug delivery[J]. Materials Today Advances, 2022, 16: 100306.[8] Pan Y, He Y, Zhao X, et al. Engineered Red Blood Cell Membrane‐Coating Salidroside/Indocyanine Green Nanovesicles for High‐Efficiency Hypoxic Targeting Phototherapy of Triple‐Negative Breast Cancer[J]. Advanced Healthcare Materials, 2022, 11(17): 2200962.[9] Chen M, Shu G, Lv X, et al. HIF-2α-targeted interventional chemoembolization multifunctional microspheres for effective elimination of hepatocellular carcinoma[J]. Biomaterials, 2022, 284: 121512.

iSpecHyper-VS1000是莱森光学（LiSen Optics）最新明星产品，一款操作简单、配置灵活便携式高光谱成像系统，主要优势采样了独有高光通量分光设计、信噪比灵敏度高、大靶面探测器、高像质等特点。iSpecHyper-VS1000便携式高光谱成像系统采用了透射光栅内推扫原理，系统集成高性能数据采集与分析处理系统，高速USB3.0接口传输，全靶面高成像质量光学设计 ，物镜接口为标准C-Mount，可根据用户需求更换视场镜头。iSpecHyper-VS1000便携式高光谱成像系统广泛应用于公安刑侦、物证鉴定、精准农林、遥感遥测、 工业检测、 医学医疗、采矿勘探等各领域。技术优势特点1.光谱范围400-1000nm,分辨率优于3nm2.独有高光通量分光成像设计、信噪比灵敏度高3.24mm/35mm镜头电控自动对焦技术、自动曝光、自动成像扫描匹配、激光定位测距4.高帧率，辅助摄像透实时监控，内置锂电池供电无需额外电源5.全靶面高成像质量光学设计，点列斑直径小于0.5像元 6.数据格式支持ENVI等分析软件，支持多区域ROI,镜头可更换软件操作界面 便携式系统方案示例图 实验室系统方案示例图主要技术指标高光谱技术典型应用案例高光谱成像技术在水果分选的应用案例随着我国农产品加工业的发展和农业现代化进程的加快,使得农产品品质检测和分级技术显得更加重要，迫切性日益增加，水果的内部品质表示水果内部的生理、化学和物理性质，高光谱成像系统目前已经开始应用于水果分选，反映水果品质光谱信息主要集中在650-950nm之间，水果的糖分含量是决定光谱品质的重要因素，糖分光谱特征主要在700nm-820nm的吸收以及750nm附近800-900nm的峰值等。高光谱成像系统水果分选利用工业领域的传送带作为高光谱相机的推扫成像机构，高光谱相机利用龙门架结构架设在传送带上方，配合专用线型光源进行照明。系统主要包括高光谱相机及其支架、线型光源、控制模块、相关定位传感器、计算机（运行控制与数据采集软件）等组成。高光谱成像技术在血液氧含量检测的应用案例2015年发表的论文“Hyperspectral optical tomography of intrinsic signals in the rat cortex”一文中，研究人员研究了大鼠大脑皮层的高光谱成像，研究者发现有氧血红蛋白和脱氧血红蛋白分别在529nm和630nm处有敏感变化。鉴于高光谱技术数据算法的灵活多边性，作者开发了一种新的高光谱算法DOT，用于方便快捷的判断血液中结合氧含量。高光谱成像技术在光合作用研究的应用案例2017年发表的“Kleptoplast photosynthesis is nutritionally relevant in the sea slug Elysia viridis”一文中，研究了海蛞蝓的“光合作用”，海蛞蝓以大型藻类为食，并将叶绿体渗入其肾小管细胞中，研究者利用高光谱成像对海蛞蝓体内的叶绿体的丰度、分布和光合作用机制进行了研究，发现黑暗饥饿24天的海蛞蝓体内的叶绿体明显变少，可见，在极其恶劣的环境中，海蛞蝓体内的叶绿体可进行分解，以满足其能量需求。高光谱成像技术在生物医学的应用案例2012年发表的论文“Hyperspectral imaging and spectral-spatial classification for cancer detection”，文中提出高光谱成像是一种用于生物医学应用的新兴技术。本研究提出了一种先进的图像处理和分类方法，用于分析前列腺癌检测的高光谱图像数据。开发了最小二乘支持向量机（LS-SVM）并对其进行了评估以对高光谱数据进行分类，以增强对癌组织的检测。该方法用于检测荷瘤小鼠的前列腺癌。创建空间分辨图像以突出癌症的反射特性与正常组织的反射特性的差异。小鼠的初步结果表明，高光谱成像和分类方法能够可靠地检测动物模型中的前列腺肿瘤。高光谱成像技术可以为癌症的光学诊断提供新工具。Houzhu Dingd等（2015）、Michael S. Chin等（2015）本别以猪和裸鼠作为实验动物，对烧伤分级和恢复进行了高光谱成像研究。左图为根据高光谱成像分析得出的烧伤区域氧饱和分布与血红蛋白分布，T00、T01、T04、T24分别为烧伤0时、1小时、4小时、24小时后；右图上图为裸鼠烧伤皮肤彩色成像，中图为高光谱成像分析的氧合血红蛋白成像，下图为组织切片，高光谱成像可以将烧伤深度进行非损伤、非接触、高通量分级。高光谱成像技术在生物分类的应用案例2013年发表的“Non-Invasive Measurement of Frog Skin Reflectivity in High Spatial Resolution Using a Dual Hyperspectral Approach”一文中，研究者采用了由两个推扫式高光谱成像系统组成的双摄像机设置，其产生400和2500nm之间的反射图像，分析了三种树栖青蛙的光谱反射率。3中树蛙都呈现出肉眼可见的绿色，但物种之间的光谱反射率在700和1100nm之间显着不同，依次可以区分不同种类。 高光谱成像技术在文物考古的应用案例自1974年兵马俑被发现以来，一直为全世界关注，被法国前总统希拉克誉为“世界第八大奇迹”。但是，包括兵马俑在内的这些埋于地下两千多年的珍贵文物，突然暴露在空气中，极易发生变化，其修复和保护工作极为困难。高光谱成像技术通过非接触直接获取兵马俑的图像光谱信息，通过分析兵马俑的图像及光谱信息，可了解兵马俑被病害侵蚀程度以及兵马俑制造的颜料，*后根据分析结果对其进行模拟修复。高光谱成像技术在作物的精细分类和识别的应用案例高光谱数据能区分作物更细微的光谱差异，探测作物在更窄波谱范围内的变化，从而能够准确地对作物进行详细分类与信息提取。目前最流行、应用最广的高光谱作物分类方法有光谱角分类（SAM）、决策树分层分类等。中科院遥感所熊桢基于高光谱影像对常州水稻生长期进行监测，利用混合决策树法对水稻的品种进行了高光谱图像的精细分类，包括6个水稻品种的划分，分类精度达到 94.9%。张兵充分考虑自然界地物分布的一般性规律，针对高光谱遥感海量数据的特征，利用光谱特征优化的专家决策分类方法，用高光谱影像对日本南牧农作物进行精细分类。结果表明，这种分类模式一方面可以提高像元分类精度，另一方面也大大减少了分类结果图像上的误判噪声。高光谱成像技术在谷物检测的应用案例我国是世界上最大的粮食生产国，谷物类包含水稻、小麦、玉米、花生等。通过高光谱成像技术对大米急性检测，检测质量及种类，得到大米高光谱图像，以主成分分析方式，对图像中的数据降维处理，提取垩白度及形状特点，以PCA、BPNN建立谷物识别模型，发现采用BPNN模型效果较为理想，其准确率达到89.91%，而PCA准确率为89.18%，两者相差不大。BPNN和数据融合结合，准确率进一步提高，可达到94.45%。因此，采用高光谱成像技术对谷物进行检测，对大米种类及质量分析具有实用性。高光谱成像技术在森林物种识别的应用案例森林树种类型识别的主要目的是提取森林树种的专题信息，为划分森林类型、绘制林相图和清查森林资源提供基础和依据。目前研究多集中在河湖、盐沼、海岸滩等湿地生境的植被识别及制图，即群落尺度的区分。结合地面调查来提取不同物种典型的特征光谱曲线。数据源采用高光谱成像仪实地测得的数据，通过建立光谱信息模型等方法，实现对主要物种、森林类型或具体树种的识别。有学者借此对植被空间分布制图、植被变化监测进行研究，均取得了与地面数据相当好的一致性。（混合决策树、专家决策树法常用于农作物的精细分类，高光谱更多应用于草原生物量估算、农作物理化信息提取等方面。