种子品质检验仪

大米的外观反映了大米的品质，直接关系到我们吃的时候的口感，也影响到大米的储存时间。国外对稻米外观品质检测仪器的研究开展较早，日本等国开发的产品在技术水平上处于世界前列，相关产品早已问世。但这些产品在国内价格较高，而且主要是当地的稻谷和水稻品种，难以符合我国国情。近年来，国内许多科研院所和仪器生产企业根据国内样品和检测方法的实际情况开展了相关产品的研发，但市场上始终没有出现适应性强、可在流通中推广使用的产品。想要优 质大米，须要有优 质的稻种。如何鉴别水稻的种子?　　大米外观品质检测仪主要用于检测大米的品质。它可以检测米粒的各种参数。包括米粒的颜色、长度和周长。而且操作过程非常简单，检测所需时间非常短，检测结果误差非常小。它为我国粮食储藏和水稻种子检验做出了巨大贡献，是一种值得信赖和广泛推广的检测仪器。　　大米外观品质检测仪精准自动检测各种类大米(粳米、籼米、杂交米、有机米等)精米的外观品质指标　　1、★配光学分辨率4800×4800、A4幅面的反射稿扫描仪来彩色成像。　　2、★符合国标GB/T1350稻谷、GB/T17891优质稻谷或GB1354大米、大米粒型分类判定LS/T6116-2016(如：每粒的长、宽、长宽比、面积等)、粮食行业标准 大米LS/T 3247—2017等标准。可一次性测量自动分析30g以上大米样品的整精米率、碎米率、垩白度/率、黄粒米率、大米颜色黄度指数、大米白度。整精米率、碎米率指标的一键化分析测量误差≤±1.0%、重现性误差≤±0.25%。　　3、具有检测指标微调修正特性。　　4、★可自定义整精米率、碎米率、垩白度/率等与粮价的关系，以便收粮交易定价。可输出分析标记图、保存结果数据至Excel表。　　5、★具有条码枪样品名输入接口。　　6、温度10~30℃，相对湿度≤85%。　　7、仪器应放在平稳工作台上，周围无强烈的机械振动和电磁干扰 电源要求220V±10%，50Hz　　产品配置　　1、大米外观品质检测分析仪系统软件 U 盘及软件锁 1套　　2、光学分辨率 4800X4800、A4幅面扫描仪1台　　3、铺米器 1 付

Videometer Lite采用了LED频闪光源系统，有效组合了7个波长测量，并生成图谱合一的融合光谱图像，每个像素对应一个不同反射光谱。该设备包括可见光以及NIR近红外波段，用于作物表型、植物病害等等进行精确、全面检测。该便携式Videometer Lite可搭载到推车支架上，在田间使用，也可手持使用，是一款多功能成像平台。Videometer田间植物表型/种子检验检测系统主要功能结合可见光成像和光谱成像优点对种子、病害表型成像便携设计，方便带到温室或野外使用标准校准功能，数据可重复经验丰富的专家根据应用经验设计的软件，操作简单，解决农业应用中遇到的问题内置颜色校正标配7个光谱波段，并不断升级中Videometer田间植物表型/种子检验检测系统产品说明该系统也可以对细菌、真菌、虫卵等进行高通量成像测量，进行毒理学或其它研究，用于食品谷物、作物、肉品等等进行精确、全面品质检测。Videometer系统生成图片可用其它分析系统进行分析，如Matlab等。考虑到Videometer Lite可能需要经常带到温室、野外或其它地方进行测量，因此它被设计成可便携携带的样式。VideometerLab Lite的工作软件由Videometer公司强大的生物信息学和软件团队开发，充分考虑在实际应用的需求，操作简单，功能强大。Videometer还在不断研究、升级新算法，适合各种需求。VideometerLab Lite便携式种子表型多光谱成像系统通过测量种子在7种不同波长（波长范围405-850nm）的LED频闪光下的成像来获取有用的信息。这些图像可以独立分析使用，也可以叠加起来合成高分辨率的颜色图像。基础整合模块，含7个波段多光谱成像系统。软件可进行颜色校准，标签识别，灰度图转换等。田间多光谱表型成像系统应用表型性状分析/挖掘，基因型-表型关联农业育种园艺学、农业信息学果实品质分析植物病理研究生物量分析种子萌发研究抗逆研究直接测量的参数尺寸形状颜色形态纹理光谱质构与表面化学相关的光谱成分计数间接测量或计算种子纯度发芽百分比发芽率种子活力种子健康度种子成熟度种子寿命等主要特点集成球体提供均匀和弥散光线照明10-15秒钟内实现光谱成像和定量分析7不同波长/光源3百万像素/波长，提供,2100万像素/帧分辨率标准设备包括易于使用设备校准与传统RGB技术相比具有先进的彩色测量功能根据应用需求可自动切换动态范围光源寿命长、可达10万小时LED光源技术稳定性增强研究用强大探索软件易用常规应用配方构建工具（建模）成像特点快速、无损检测包括处理在内每样品处理仅需10-20秒与其它破坏性技术组合高灵活性测量主要专注：可重复洗、可追溯性、耐用性、可传递性技术参数全套分析时间10-15秒/样品电源：5 V DC 3 A电源功耗300 VA环境温度操作: 5-40℃，储存-5-50℃环境湿度20-90 % RH相对湿度，非冷凝软件备选：图像处理工具包 (IPT)光谱成像工具盒 (MSI) 斑点工具盒设备尺寸： 270 mm(h) * 240 mm(w) * 200 mm(d)重量：1.1kg 案例应用由叶绿素/成熟度区分种子来自英国的科学家研究重点是对高级成像技术进行评估，以对根定植进行真菌检测和精确定量，通过测量光合参数评估对地上部健康的影响。研究中使用了VideometerLab 多光谱成像系统。图中显示“Take-all”感染小麦幼苗。左侧是原始图像，有红色箭头标示“take-all ”损失，用手工评分；右图是相同图像经‘VideometerLab’分析，将根组织分类为感病(蓝色)和健康(桔色/黄色)。利用Videometer多光谱成像系统对藜麦霜霉病成像藜麦(Chenopodium quinoa)是一种作物，营养丰富，在多个国家广有种植。真菌病如霜霉病限制了谷物产量，培育抗性品系，如抗霜霉病品系是藜麦育种的中心目标。利用常规RGB成像来测量藜麦对霜霉病的表型反应(Peronospora variabilis ) 测量比较困难，原因在于来自不同藜麦基因型在叶片上有不同绿色和红色斑点进行干扰，参见图1和图2。 开发图像分析规程来区分健康藜麦叶片组织以及感染霜霉病的藜麦叶片组织。研究利用Videometer多光谱成像系统对严重度程度表型和孢子形成进行研究。严重程度是叶片正面损伤的面积占整个叶片面积的百分比。依基因型不同，颜色可为桔色、黄色或红色。孢子形成是损伤部上方孢子量，以百分比测量，通过测量叶片正面进行评估。 图2 叶片正面孢子形成多光谱图像分析研究人员利用VideometerLab 4多光谱成像系统进行多光谱成像，积分球确保对样品的均一照明(图3)。每个获取的图像层由19个不同图像波段组成，波长涵盖365nm（UVA）到970nm（NIR）。图像的每个像素分辨率为~41 µ m。每个图像层的分辨率为2192X2192像素。图像分析严重度模型从G9基因型叶片正面(图4)清楚看到了黄化现象(A)，拍摄了RGB图像（常规相机，人眼可见光波段。(B)和(C)显示了多光谱图层中的2个波段，蓝光490nm(B)和黄光570nm(C)。对健康植物组织和黄化界定进行了初始标记，转换建立了模型(D)，通过nCDA（归一化典型判别分析将19个波段信息（图像中多个图层），转换为了整个图层的代表像素范围值。之后切割(E和F)，可用于所有图像-所有品系和基因型，获取有黄化组织（E黄色）百分比定量分析，该特定叶片比例为68.0%，或者包括红色覆盖孢子区(F)，比例为18,9%，黄化（黄色）比例68%，孢子和黄化区综合面积占比75.8%。 图像分析孢子形成在叶片正面（底部），RGB图像中的G9基因型清晰可见到孢子形成图像（下底部A和B放大）。尽管在可见光波段很难检测到单个波段，这里特别标出了蓝光波段（490nm）（C）。进入NIR（780nm）波段（下左部的D和E放大），清晰看见了孢子。使用该信息（仅标识黑灰色孢子）可帮助我们区分切割孢子像素（F），并将该面积定量，该叶片孢子比例为12.5% （黄色显示），不包括黄化部分面积。另外，此处的孢子标识与正面图像分析而言更加保守。 覆盖的非黑灰区的像素部分 (像素比单个孢子要大）估计，孢子比例为~23%（此处未予以显示)。图4(A) sRGB图像。(B)，490nm(蓝光)，(C)，570nm(黄色)，(D) 转换，(E)和(F)，2种类型定量分割。图5(A) sRGB 图像，(B)490nm(蓝光)，(C) 570nm(黄色)，(D)转换，(E)定量分割。结果图6:133个基因型的平均严重程度（%）分布表1手工以及基于多光谱表型成像的藜麦霜霉病互作

Videometer Lite采用了LED频闪光源系统，有效组合了7个波长测量，并生成图谱合一的融合光谱图像，每个像素对应一个不同反射光谱。该设备包括可见光以及NIR近红外波段，用于作物表型、植物病害等等进行精确、全面检测。该便携式Videometer Lite可搭载到推车支架上，在田间使用，也可手持使用，是一款多功能成像平台。主要功能结合可见光成像和光谱成像优点对种子、病害表型成像便携设计，方便带到温室或野外使用标准校准功能，数据可重复经验丰富的专家根据应用经验设计的软件，操作简单，解决农业应用中遇到的问题内置颜色校正标配7个光谱波段，并不断升级中Videometer植物/种子检验检测表型分析平台产品说明该系统也可以对细菌、真菌、虫卵等进行高通量成像测量，进行毒理学或其它研究，用于食品谷物、作物、肉品等等进行精确、全面品质检测。Videometer系统生成图片可用其它分析系统进行分析，如Matlab等。考虑到Videometer Lite可能需要经常带到温室、野外或其它地方进行测量，因此它被设计成可便携携带的样式。VideometerLab Lite的工作软件由Videometer公司强大的生物信息学和软件团队开发，充分考虑在实际应用的需求，操作简单，功能强大。Videometer还在不断研究、升级新算法，适合各种需求。VideometerLab LiteVideometer植物/种子检验检测表型分析平台通过测量种子在7种不同波长（波长范围405-850nm）的LED频闪光下的成像来获取有用的信息。这些图像可以独立分析使用，也可以叠加起来合成高分辨率的颜色图像。基础整合模块，含7个波段多光谱成像系统。软件可进行颜色校准，标签识别，灰度图转换等。田间多光谱表型成像系统应用表型性状分析/挖掘，基因型-表型关联农业育种园艺学、农业信息学果实品质分析植物病理研究生物量分析种子萌发研究抗逆研究直接测量的参数尺寸形状颜色形态纹理光谱质构与表面化学相关的光谱成分计数间接测量或计算种子纯度发芽百分比发芽率种子活力种子健康度种子成熟度种子寿命等主要特点集成球体提供均匀和弥散光线照明10-15秒钟内实现光谱成像和定量分析7不同波长/光源3百万像素/波长，提供,2100万像素/帧分辨率标准设备包括易于使用设备校准与传统RGB技术相比具有先进的彩色测量功能根据应用需求可自动切换动态范围光源寿命长、可达10万小时LED光源技术稳定性增强研究用强大探索软件易用常规应用配方构建工具（建模）成像特点快速、无损检测包括处理在内每样品处理仅需10-20秒与其它破坏性技术组合高灵活性测量主要专注：可重复洗、可追溯性、耐用性、可传递性技术参数全套分析时间10-15秒/样品电源：5 V DC 3 A电源功耗300 VA环境温度操作: 5-40℃，储存-5-50℃环境湿度20-90 % RH相对湿度，非冷凝软件备选：图像处理工具包 (IPT)光谱成像工具盒 (MSI) 斑点工具盒设备尺寸： 270 mm(h) * 240 mm(w) * 200 mm(d)重量：1.1kg 案例应用由叶绿素/成熟度区分种子来自英国的科学家研究重点是对高级成像技术进行评估，以对根定植进行真菌检测和精确定量，通过测量光合参数评估对地上部健康的影响。研究中使用了VideometerLab 多光谱成像系统。图中显示“Take-all”感染小麦幼苗。左侧是原始图像，有红色箭头标示“take-all ”损失，用手工评分；右图是相同图像经‘VideometerLab’分析，将根组织分类为感病(蓝色)和健康(桔色/黄色)。利用Videometer多光谱成像系统对藜麦霜霉病成像藜麦(Chenopodium quinoa)是一种作物，营养丰富，在多个国家广有种植。真菌病如霜霉病限制了谷物产量，培育抗性品系，如抗霜霉病品系是藜麦育种的中心目标。利用常规RGB成像来测量藜麦对霜霉病的表型反应(Peronospora variabilis ) 测量比较困难，原因在于来自不同藜麦基因型在叶片上有不同绿色和红色斑点进行干扰，参见图1和图2。 开发图像分析规程来区分健康藜麦叶片组织以及感染霜霉病的藜麦叶片组织。研究利用Videometer多光谱成像系统对严重度程度表型和孢子形成进行研究。严重程度是叶片正面损伤的面积占整个叶片面积的百分比。依基因型不同，颜色可为桔色、黄色或红色。孢子形成是损伤部上方孢子量，以百分比测量，通过测量叶片正面进行评估。多光谱图像分析研究人员利用VideometerLab 4多光谱成像系统进行多光谱成像，积分球确保对样品的均一照明(图3)。每个获取的图像层由19个不同图像波段组成，波长涵盖365nm（UVA）到970nm（NIR）。图像的每个像素分辨率为~41 µ m。每个图像层的分辨率为2192X2192像素。图像分析严重度模型从G9基因型叶片正面(图4)清楚看到了黄化现象(A)，拍摄了RGB图像（常规相机，人眼可见光波段。(B)和(C)显示了多光谱图层中的2个波段，蓝光490nm(B)和黄光570nm(C)。对健康植物组织和黄化界定进行了初始标记，转换建立了模型(D)，通过nCDA（归一化典型判别分析将19个波段信息（图像中多个图层），转换为了整个图层的代表像素范围值。之后切割(E和F)，可用于所有图像-所有品系和基因型，获取有黄化组织（E黄色）百分比定量分析，该特定叶片比例为68.0%，或者包括红色覆盖孢子区(F)，比例为18,9%，黄化（黄色）比例68%，孢子和黄化区综合面积占比75.8%。 图像分析孢子形成在叶片正面（底部），RGB图像中的G9基因型清晰可见到孢子形成图像（下底部A和B放大）。尽管在可见光波段很难检测到单个波段，这里特别标出了蓝光波段（490nm）（C）。进入NIR（780nm）波段（下左部的D和E放大），清晰看见了孢子。使用该信息（仅标识黑灰色孢子）可帮助我们区分切割孢子像素（F），并将该面积定量，该叶片孢子比例为12.5% （黄色显示），不包括黄化部分面积。另外，此处的孢子标识与正面图像分析而言更加保守。 覆盖的非黑灰区的像素部分 (像素比单个孢子要大）估计，孢子比例为~23%（此处未予以显示)。图4(A) sRGB图像。(B)，490nm(蓝光)，(C)，570nm(黄色)，(D) 转换，(E)和(F)，2种类型定量分割。图5(A) sRGB 图像，(B)490nm(蓝光)，(C) 570nm(黄色)，(D)转换，(E)定量分割。结果图6:133个基因型的平均严重程度（%）分布表1手工以及基于多光谱表型成像的藜麦霜霉病互作