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光合作用分析仪

仪器信息网光合作用分析仪专题为您提供2024年最新光合作用分析仪价格报价、厂家品牌的相关信息， 包括光合作用分析仪参数、型号等，不管是国产，还是进口品牌的光合作用分析仪您都可以在这里找到。 除此之外，仪器信息网还免费为您整合光合作用分析仪相关的耗材配件、试剂标物，还有光合作用分析仪相关的最新资讯、资料，以及光合作用分析仪相关的解决方案。

光合作用分析仪相关的论坛

  • 光合作用测定仪功能介绍

    光合作用测定仪是一款集高精度、智能化、便捷性于一体的科学仪器，专门用于测定植物叶片的光合作用相关参数。通过精确测量，研究人员能够深入了解植物的光合作用过程，进而为农业生产和生态研究提供有力支持。　　光合作用测定仪具备多种功能，能够全面、准确地反映植物光合作用的各个方面。首先，它能够测量叶片的净光合速率，即植物在光照条件下吸收二氧化碳并释放氧气的速度。这一指标对于评估植物的生长状态、光合效率以及抗逆性具有重要意义。　　其次，光合作用测定仪还能够测定叶片的蒸腾速率。蒸腾作用是植物通过气孔排放水分的过程，与植物的光合作用密切相关。通过测量蒸腾速率，研究人员可以了解植物的水分利用效率和抗旱能力，为制定合理的灌溉和施肥方案提供依据。　　此外，该仪器还能测量叶片的叶绿素含量。叶绿素是植物进行光合作用的关键色素，其含量的多少直接影响植物的光合效率。通过测定叶绿素含量，研究人员可以判断植物的光合能力，为植物育种和栽培提供指导。　　光合作用测定仪还具有智能化的特点。它采用先进的传感器技术和数据处理算法，能够实时、准确地记录测量数据，并通过软件界面进行直观展示。用户可以通过简单的操作，轻松获取所需数据，并进行进一步的分析和处理。　　总之，光合作用测定仪是一款功能强大、操作简便的科学仪器，能够为植物生理生态研究提供有力的支持。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406041010323380_5237_5604214_3.jpg!w690x690.jpg[/img]

  • 光合作用测定仪有哪些用途

    [img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405280917103142_1865_5604214_3.jpg!w690x690.jpg[/img]　　光合作用测定仪是一款重要的科学仪器，它主要用于测量植物的光合作用过程。通过精确测量植物在光照条件下的气体交换，光合作用测定仪能够帮助科研人员深入理解植物的生长机制，评估环境因素对植物生长的影响，以及优化农业生产的条件。　　首先，光合作用测定仪在植物生理学研究中发挥着不可替代的作用。科研人员可以利用该仪器，实时监测植物在不同光照、温度、湿度等条件下的光合速率、呼吸速率等生理指标，从而揭示植物对环境的适应机制和生理响应。　　其次，在生态学领域，光合作用测定仪也发挥着重要的作用。通过测量不同生态系统中植物的光合作用效率，可以评估生态系统的生产力和稳定性，为生态系统的保护和恢复提供科学依据。　　此外，光合作用测定仪在农业生产实践中也具有广泛的应用价值。通过测量作物在不同生长阶段的光合作用性能，农民和农业科研人员可以制定更为合理的种植管理策略，如调整灌溉、施肥和种植密度等，以提高作物产量和品质。　　最后，随着全球气候变化问题的日益严重，光合作用测定仪在气候变化研究领域也展现出了巨大的潜力。通过长期监测植物的光合作用性能，可以揭示气候变化对植物生长的影响，为应对气候变化提供科学依据。　　总之，光合作用测定仪具有广泛的用途，它在植物生理学、生态学、农业生产和气候变化研究等领域都发挥着重要的作用。随着科学技术的不断进步，光合作用测定仪的性能和应用范围还将不断拓展，为人类认识自然、保护生态和推动可持续发展提供有力支持。

  • 光合作用测定仪在实验课程中有哪些应用

    [font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=18px]　　光合作用测定仪在实验课程中有哪些应用，光合作用测定仪在实验课程中有多种应用，主要体现在以下几个方面：　　植物生理实验课程：光合作用测定仪是植物生理实验课程中常用的检测仪器。利用它，学生可以开展植物光合作用、呼吸作用、蒸腾作用的相关课题研究以及教学。　　测定光合作用参数：在实验过程中，学生可以将植物样品放入光合作用仪中，调节光源的强度和波长，使其符合实验要求。然后，通过CO2供应系统向光合作用仪中注入一定浓度的CO2，以模拟植物在自然环境中的CO2浓度。在此过程中，学生可以测定光合作用的净速率、光补偿点和CO2补偿点等指标，从而了解植物光合作用的效率。　　测定环境参数：光合作用测定仪还可以测定CO2浓度、叶片温度、光合有效辐射和叶室温湿度等环境参数。通过科学计算，可以得出叶片的光合速率、叶片蒸腾速率、细胞间CO2浓度、气孔导度、水分利用率等光合作用指标，从而更全面地了解植物的生长状况。　　科学研究与指导农业生产：光合作用测定仪的应用不仅限于教学和实验，还可以在科研和生产方面发挥积极作用。例如，在农业生产和农业科研中，可以利用光合作用测定仪来科学指导农业生产，提高作物产量和品质。　　总的来说，光合作用测定仪在实验课程中的应用广泛，是植物生理实验、科研和生产中不可或缺的工具。通过使用该仪器，学生可以更深入地了解植物光合作用的原理和过程，为未来的科研和农业生产奠定坚实的基础。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405210944478055_8620_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

  • 利用X射线可看到植物光合作用分子结构 为最终实现人工光合作用提供新途径

    中国科技网讯 据物理学家组织网6月5日（北京时间）报道，一个由瑞典、德国等多国人员组成的小组，利用短脉冲X射线分析看到了植物进行光合作用的分子结构，发现钙在水分解过程中极为重要，是构建人工光合系统的关键“建材”。这一方法为理解自然界植物的光合作用、光合系统结构与反应机制并最终实现人工光合作用提供了新途径。论文发表在近日出版的《美国国家科学院学报》上。 光合作用可分两步进行：第一步为光反应，由阳光提供能量分解水分子，放出氧气，为下一步暗反应供应能量；第二步为暗反应，利用第一步的能量与CO2反应，生成各种碳水化合物。而光合作用中心的两种不同的光合蛋白复合色素体系，分别进行光合系统Ⅰ（PSⅠ）和光合系统Ⅱ（PSⅡ）两种光化学反应。其中，PSⅡ在光反应过程中激发高能电子、分解水分子、释放氧和推动电子传递，并启动第一步光反应，在该过程中地位非常重要。 瑞典奥默大学化学系教授约翰尼斯·梅辛杰领导的团队试图以“人造树叶”项目模拟植物利用太阳能的方法，开发人工光合作用。但其必须先清楚，光合作用中哪些分子是分解水必不可少的，以及这些分子如何发挥作用。为此，团队设计了一种工具来研究植物在进行光合作用时的光合系统。 此前研究发现，放氧复合物（Mn4O5Ca）是PSⅡ的组成部分，去除钙离子则导致无法放氧。梅辛杰团队从PSⅡ中分离出放氧复合物分子，设法去除了其中的钙离子，再用美国斯坦福大学的X射线自由电子激光设备发出的超短X射线脉冲对分子结构进行了分析，记录下原子50飞秒（1飞秒＝10－15秒）的运动过程。 “放氧复合物中5个氧原子将4个锰离子联合在一起，去除了钙离子后，这种结构没有变化，说明钙离子一定在水分解反应中起着极为重要的作用。”梅辛杰解释说，由于实验所用的X射线脉冲极短暂，所以探测时不会扰乱光合系统。“利用这一新工具，我们最终能够探求水在被分解时，氧原子怎样形成了氧络桥最后产生氧分子的。以往要从细节上研究这一阶段是不可能的。”（记者 常丽君） 总编辑圈点 如果要评选地球上最重要的化学反应，光合作用毫无疑问排在第一，它是目前已知的绝大多数生命的基础。19世纪后半期人们才发现光合作用的存在，而直到今天，科学家也没有完全把握其实质。欧洲科学家此次利用新的光学手段，窥测到转瞬即逝的化学迹象，从而将光合作用的机制还原到了分子级尺度。如此一来，人们就有望模仿自然界，造出高效率的“光合机器”。 《科技日报》（2012-06-06 一版）

  • 光合作用测定仪传感器是进口的吗

    [font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=16px]　　光合作用测定仪传感器是进口的吗，光合作用测定仪的传感器是否进口，取决于具体的仪器品牌和型号。参考文章中的信息，不同品牌和型号的光合作用测定仪可能采用不同的传感器。　　进口传感器：有些光合作用测定仪确实采用了进口传感器，光合作用测定仪，其强调使用了“进口传感器”。但具体是哪个国家或地区的进口传感器，文章并未提及。　　国产传感器：其他品牌的光合作用测定仪可能使用国产传感器。光合作用检测仪，虽然文章没有直接说明其传感器是否进口，但考虑到其产地为山东，且未特别强调进口传感器，可以推测其可能使用了国产传感器。　　传感器类型：无论是进口还是国产传感器，光合作用测定仪通常都用于测量与植物光合作用相关的参数，如CO2浓度、叶片温度、光合有效辐射等。这些传感器通常具有高精度和稳定性，以确保测量结果的准确性。　　综上所述，光合作用测定仪的传感器是否进口取决于具体的仪器品牌和型号。一些品牌可能采用进口传感器，而另一些品牌则可能使用国产传感器。无论采用哪种传感器，光合作用测定仪都旨在提供准确、可靠的测量数据，以支持植物生理学、生态学等领域的研究和应用。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406131140373957_9631_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

  • 植物光合作用测定仪反应灵敏度高吗

    [font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][size=15px][color=#05073b]　　植物光合作用测定仪反应灵敏度高吗，植物光合作用测定仪的反应灵敏度通常是非常高的，这主要得益于其先进的传感器技术和设计。以下是一些关于植物光合作用测定仪反应灵敏度的详细信息和特点：　　传感器技术：　　植物光合作用测定仪配备了高精度的传感器，用于测量与光合作用相关的关键参数，如二氧化碳浓度、空气温湿度、叶片温度、光照强度等。　　这些传感器通常具有快速响应能力，能够迅速捕捉到微小的环境变化，并准确地转化为数据输出。　　测量精度：　　由于采用了高精度的传感器和先进的测量技术，植物光合作用测定仪能够提供非常准确的测量数据。　　例如，一些光合作用测定仪的二氧化碳测量精度不会受到温度变化的影响，并且具备稳定、高精度、反应灵敏等特性，可以在一秒钟以内完成二氧化碳差值收集。　　智能化系统：　　许多植物光合作用测定仪配备了智能化系统，能够实时显示、储存和传输测量数据。　　这种智能化系统可以大大提高测量的便捷性和效率，同时也能够确保数据的准确性和可靠性。　　稳定性：　　光合作用测定仪通常具有良好的稳定性，能够在长时间连续测量中保持高灵敏度。　　这对于需要进行长时间监测或连续监测的研究项目来说尤为重要。　　多功能性：　　植物光合作用测定仪可以同时测量多个参数，如光合速率、蒸腾速率、细胞间二氧化碳浓度、气孔导度等。　　这种多功能性使得它能够满足不同研究项目的需求，并提供全面的数据支持。　　综上所述，植物光合作用测定仪的反应灵敏度通常是非常高的。它采用了高精度的传感器技术、先进的测量技术、智能化系统和稳定的设计，能够迅速、准确地捕捉到与光合作用相关的微小环境变化，并提供准确的测量数据。这些特点使得植物光合作用测定仪在植物生理学、生态学、农业科学等领域的研究中具有重要的应用价值。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406131144468576_457_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/color][/size][/font]

  • 【原创大赛】光合活性分析仪在环境监测中的应用

    【原创大赛】光合活性分析仪在环境监测中的应用

    光合活性分析仪在环境监测中的应用前言植物作为光合生物，无论是陆生的花草树木还是水生的挺水植物（如荷花、香蒲）、浮水植物（如绿萍、满江红）、浮游植物（如微囊藻、甲藻），都是靠光合作用提供自身生长所需的能量的。换句话说，光合作用是植物生长最基本的生命特征指标。目前分析光合作用的仪器主要有两大类，一类是分析光合放氧或CO2感知的，另一类是利用叶绿素荧光分析植物光合活性。前者常用于农业上农作物或大型植物的分析，在水中由于O2和CO2除藻类外还存在很多影响因子（如温度变化，风力元素等等），其数据应用时偏差非常大。而光合活性由于是直接测试叶绿素荧光，所以有效避免了这个缺点。由于植物在不同环境状态下的光量子产率（光合活性）不同，这使得光合活性成为研究植物生长条件和影响因子的有力工具。一、光合活性分析仪原理http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/10/201210181638_397663_1653274_3.jpg☆这个是光合作用的原理图（光合活性主要是分析光反应阶段（PSII）的情况） 光合活性一般采用叶绿素荧光的变化来反映。打开饱和脉冲时，本来处于开放态的电子门将该用于光合作用的能量转化为了叶绿素荧光和热，F（荧光值）达到最大值。 经过充分暗适应后，所有电子门均处于开放态，打开测量光得到Fo，此时给出一个饱和脉冲，所有的电子门就都将该用于光合作用的能量转化为了荧光和热，此时得到的叶绿素荧光为Fm。根据Fm和Fo可以计算出PS II的最大量子产量Fv/Fm=(Fm-Fo)/Fm，它反映了植物的潜在最大光合能力。 在光照下光合作用进行时，只有部分电子门处于开放态。如果给出一个饱和脉冲，本来处于开放态的电子门将该用于光合作用的能量转化为了叶绿素荧光和热，此时得到的叶绿素荧光为Fm’。根据Fm’和F可以求出在当前的光照状态下PS II的实际量子产量Yield=ΦPSII=ΔF/Fm’=(Fm’-F)/Fm’，它反映了植物目前的实际光合效率。二、市售光合活性仪类型 目前，市售的可以测定光合活性的仪器大致可以分为探头型、实验室型、便携型三类。已有产品以WALZ公司的PAM系列最为成熟，当然强大如中国的研发团队也有自己的“自主研发”产品（如中科院最新研制的藻类光合作用活性原位测量仪）。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/10/201210181638_397664_1653274_3.jpg☆PAM荧光成像仪（可以做每个点的光合作用和荧光成像，理论上用这个就能分辨藻的死活）http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/10/201210181639_397665_1653274_3.jpg☆这款是朗石的叶绿素荧光探头，一个原理的（能实时读水下的叶绿素荧光信息，了解不同 水层的情况，不过由于探头大，很难放进小的容器里，也就不能测多个地点的样品了，除非你跑到当地去）[

  • 叶绿素荧光显微成像技术在光合作用研究中的应用

    [align=center][size=16px][/size][/align][size=16px] 光合作用是地球上最重要的化学反应，植物、藻类及光合细菌等吸收光能、将[/size][size=16px]CO[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]和水转化为有机物并释放[/size][size=16px]O[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]。获得光能的叶绿素分子从基态跃迁到激发态，激发态的叶绿素分子可通过三种途径释放能量回到基态：推动光化学反应、以热的形式耗散、释放光子产生荧光。这三种途径的总和是一定的，因此叶绿素荧光的变化反映了光化学效率和热耗散能力的变化。叶绿素荧光成像是[/size][size=16px]广泛应用[/size][size=16px]的[/size][size=16px]光合生理研究的重要探针[/size][size=16px]，[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像又将研究尺度进一步拓展到细胞、亚细胞水平。叶绿素荧光技术发展出了很多不同的测量程序，以慢诱导荧光动力学曲线为例，通过测量光（[/size][size=16px]ML[/size][size=16px]）、作用光（[/size][size=16px]AL[/size][size=16px]）、饱和脉冲光（[/size][size=16px]SP[/size][size=16px]）激发样品，记录动力学曲线并计算叶绿素荧光参数[/size][size=16px]，[/size][size=16px]可以用于反映植物光合作用机理和光合生理状况（[/size][size=16px]朱新广[/size][size=16px]，[/size][size=16px]2021[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光成像技术能记录整个叶片、植株等样品不同区域的荧光动力学分布变化，实现从宏观到微观的光合机理研究。叶绿素荧光成像由于其无损、高通量的技术特征，在光合作用相关突变体筛选领域成为了广泛应用的重要技术，为光合作用机理及抗[/size][size=16px]逆研究[/size][size=16px]提供了强大的技术支持。叶绿素荧光显微成像技术最早出现于[/size][size=16px]2000[/size][size=16px]年，[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px]等人将叶绿素荧光脉冲调制式激发光源与显微镜结合，首次获得了显微尺度的叶绿素荧光图像（[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2000[/size][size=16px]）。叶绿素荧光显微成像技术在国外已经展开多方面研究应用，[/size][size=16px]目前国内的叶绿素荧光成像显微研究尚处于起步阶段，多个课题组都[/size][size=16px]正[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索[/size][size=16px]这项技术[/size][size=16px]在[/size][size=16px]不同研究领域中[/size][size=16px]的[/size][size=16px]应用。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光技术[/size][size=16px]适用研究样品微观结构上光[/size][size=16px]合功能[/size][size=16px]的空间差异，例如叶片横截面栅栏组织与海绵组织的差异，[/size][size=16px]C[/size][size=16px]4[/size][size=16px]植物花环结构[/size][size=16px]中维管束鞘细胞与叶肉细胞的差异[/size][size=16px]，藻类中有差异的单个细胞、异形胞[/size][size=16px]等。我们多年来与[/size][size=16px]吉林师范大学、四川省农业科学研究院[/size][size=16px]等[/size][size=16px]单位[/size][size=16px]合作[/size][size=16px]，[/size][size=16px]目前已合作发表的[/size][size=16px]3[/size][size=16px]篇相关论文是国内该领域[/size][size=16px]开创性[/size][size=16px]的应用成果，[/size][size=16px]以叶绿素荧光显微成像的特色优势技术[/size][size=16px]为光合作用的微观[/size][size=16px]探究提供有力支撑[/size][size=16px]。[/size][size=16px][/size][size=16px] Yu[/size][size=16px]等[/size][size=16px]发现[/size][size=16px]狗枣猕猴桃[/size][size=16px]（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia [/size][size=16px]kolomikta[/size][size=16px]）[/size][size=16px]的白化[/size][size=16px]叶片[/size][size=16px]通过调整叶片结构及基因表达调控，仍然保持了相对较高的光合能力[/size][size=16px]。[/size][size=16px]应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像技术[/size][size=16px]比较了[/size][size=16px]白化和绿色叶片栅栏组织、海绵组织的叶绿素荧光参数，[/size][size=16px]揭示了白化叶片海绵组织光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强的机理[/size][size=16px]。[/size][size=16px]绿叶中栅栏组织[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（最大光化学效率）[/size][size=16px]更高，而白叶中海绵组织[/size][size=16px]显著增厚，[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更高[/size][size=16px]，[/size][size=16px]光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强，补偿[/size][size=16px]了[/size][size=16px]白化的影响，成为叶片光合作用主力组织[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Yu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）[/size][size=16px]。[/size][size=16px]接下来[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px]等又比较了两种猕猴桃白化叶片的光保护策略差异[/size][size=16px]，狗枣猕猴桃的白叶[/size][size=16px]主要通过反射实现光保护，强光下花青素[/size][size=16px]积累，叶片[/size][size=16px]转变为粉色[/size][size=16px]，更有效地保护叶片[/size][size=16px]；[/size][size=16px]而[/size][size=16px]葛[/size][size=16px]枣猕猴桃（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia[/size][size=16px] [/size][size=16px]polygama[/size][size=16px]）[/size][size=16px]强光下[/size][size=16px]仍为白色[/size][size=16px]，[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有更[/size][size=16px]强[/size][size=16px]的叶绿[/size][size=16px]素荧光参数，说明[/size][size=16px]它[/size][size=16px]具有更高的强光适应能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 202[/size][size=16px]3[/size][size=16px]）。[/size][size=16px]Liu[/size][size=16px]等比较了干旱处理下的玉米叶肉细胞和维管束鞘细胞，发现这两种细胞具有不同的不同光保护策略[/size][size=16px]。对玉米[/size][size=16px]完整叶片的分析显示，[/size][size=16px]随着干旱处理程度增强，[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（实际光化学效率）[/size][size=16px]降低，[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]（非光化学猝灭[/size][size=16px]系数[/size][size=16px]）[/size][size=16px]显著升高[/size][size=16px]。进一步应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像[/size][size=16px]的分析结果[/size][size=16px]与完整叶片[/size][size=16px]相符合，并且发现[/size][size=16px]与叶肉细胞相比，维管束鞘细胞[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更低，干旱胁迫后[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]升高更显著[/size][size=16px]，[/size][size=16px]不同细胞的变化趋势[/size][size=16px]差异[/size][size=16px]表明它们[/size][size=16px]具有不同的光保护策略[/size][size=16px]，[/size][size=16px]维管束鞘细胞中可能具有更强的热耗散能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Liu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿[/size][size=16px]素[/size][size=16px]荧光显微成像技术在光合作用的微观研究领域具有独特的技术优势，在[/size][size=16px]光合作用机理研究、环境及毒理胁迫与抗性筛选、优良品系选育等领域[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有广阔的应用前景。目前多家单位的科研人员[/size][size=16px]都[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索该技术[/size][size=14px][size=16px]的新应用，我们也正在[/size][size=16px]将该技术拓展到[/size][size=16px]多个新的领域，例如对[/size][size=16px]原生质体[/size][size=16px]以及[/size][size=16px]种子、茎秆等非叶片器官的[/size][size=16px]研究[/size][size=16px]。[/size][/size][font='黑体']参考文献：[/font][font='calibri'][size=13px][1] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]朱新广[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]许大全主编[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]光合作用研究技术[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]上海科学技术出版社[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2021[/size][/font][font='calibri'][size=13px][2] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Küpper[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]I[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]?etlík[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Trtílek[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Photosynthetica[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2000, 38, s553-570 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][3] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Yu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]D[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 856732 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][4] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] D[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Q[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Wen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] G[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Shi[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]et al.[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Physiol. Plant.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2023, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]175:[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]e13880[/size][/font][font='calibri'][size=13px][5] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]W[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] J[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Y[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] E[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 885781[/size][/font]

  • 经典光合速率测定方法

    经典光合速率测定方法

    光合速率是指单位时间、单位叶面积吸收CO2的量或放出O2的量。一般测定光合速率的方法都没有把叶片的呼吸作用考虑在内，所以测定的结果实际是光合作用减去呼吸作用的差数，称为表观光合速率或净光合速率。如果把表观光合速率加上呼吸速率，则得到总(真正)光合速率。本文介绍一种经典的光合作用的测定方法：气体测量法。[b]气体测量法[/b]：通过测量单位CO2量的变化，或O2 量的变化来确定光合作用速率。CO2量的变化：红外气体分析仪测定 。O2 量的变化：电化学。我们应该设计遮阴和不遮阴两种情况下CO2或O2 的变化量。采用气体交换法测定光合作用原理YX-306BGH光合作用测定仪采用气体交换法来测量植物光合作用，通过测量流经叶室的空气中的CO2浓度的变化来计算叶室内植物叶片光合速率，其测量CO2浓度的变化的方法也是采用红外CO2气体法。其原理是利用CO2对于红外线在4.26μm处的吸收特性来直接测得气体CO2浓度开路系统的净光合速率P（μmolm-2s-1）闭路系统的净光合速率Pn（μmolm-2s-1）W：空气的质量流量(molm-2s-1) Ci：初始时CO2浓度(μL/L,待测)Co：终止时CO2浓度(μL/L,待测) V：体积流速(0.6 L/min)Ta：空气温度(K,待测) A：叶面积（叶室面积）(6.5 cm2)P：大气压力 (bar,一般认为1标压即1.013 bar) (1 bar=105 Pa)除同时测量流经气室的CO2浓度外，还测量流经气室O2的浓度，光照强度，温度，湿度。[b]测量气路图[/b][img=342,321]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/201211030928_401043_1912882_3.jpg[/img]

  • 【分享】目前最流行的测定光合速率的方法

    [b][size=3]目前最流行的测定光合速率的方法[/size][/b][size=2]光合作用是地球上最重要的生命现象，它是唯一能把太阳能转化为稳定的化学能贮藏在有机物中的过程，是维持地球上物质循环的关键环节，也是农作物产量形成的决定性因素。因此，提高光合作用对于提高作物产量具有十分重要的意义。在植物生理学、生态学、作物栽培学、育种学等研究工作中，经常需要测定光合速率，研究者们总想创造出一种快速、准确而又简便的光合速率测定方法，以满足研究工作的要求。[/size][size=2] 根据光合作用的总反应式 [/size][size=2] [b]CO[sub]2[/sub] [/b]+ 2H[sub]2[/sub]O[sup]* [/sup]+ 4.69kJ → (CH[sub]2[/sub]O) +[b] O[sup]*[/sup][sub]2 [/sub][/b]+ H[sub]2[/sub]O[sup][/sup][/size][align=left][size=2] [/size][/align][align=left][size=2] 原则上我们可以测定任一反应物的消耗速率或产物的生成速率来表示光合速率。常用方法的是测定CO[sub]2[/sub]的吸收、O[sub]2[/sub]的释放和有机物的积累三个方面，即通过测定干物质的积累表示光合速率的改良半叶法、通过测定CO[sub]2[/sub]吸收的红外线CO[sub]2[/sub]气体分析仪法（光合仪）以及通过测定O[sub]2[/sub]释放的氧电极法。[/size][/align][align=left][size=2] 改良半叶法只能测得植物叶片的光合速率，而无法测得与光合速率有关的其它参数，如气孔导度、蒸腾速率、细胞间隙CO[sub]2[/sub]浓度、CO[sub]2[/sub]补偿点、光补偿点等，并且该方法所用的实验时间较长（4～5h），如果遇到阴雨天气，则无法进行测定。因此，该方法用于科学研究有很大的局限性，已经慢慢退出了历史舞台。因此，现在最流行的测定光合速率的方法是通过[b]测定CO[sub]2[/sub]吸收的红外线CO[sub]2[/sub]气体分析仪法（光合仪）[/b]以及[b]通过测定O[sub]2[/sub]释放的氧电极法（氧电极）[/b]。[/size][/align]

  • 便携式光合仪有哪些功能

    [img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405280926503608_6367_5604214_3.jpg!w690x690.jpg[/img]　　便携式光合仪是一种先进的科学仪器，主要用于测定植物叶片的光合作用、蒸腾作用、呼吸作用等生理过程。它不仅能够提供关于植物生理状态的重要数据，而且有助于科研人员深入理解植物的生长机制，进而优化农业生产和生态环境管理。　　首先，便携式光合仪的核心功能之一是测量植物叶片的光合速率。通过精确测量叶片在一定时间内对二氧化碳的吸收量，仪器能够计算出光合速率，从而评估植物的光合作用效率。此外，光合仪还能够测量叶片的蒸腾速率，即植物通过叶片散失水分的速度，这对于了解植物的水分利用效率和抗旱性具有重要意义。　　除了基本的生理参数测量，便携式光合仪还具有多项扩展功能。例如，它能够测量环境温湿度、叶片温度以及光合有效辐射强度等环境因素，这些因素对植物的光合作用过程具有显著影响。通过综合考虑这些因素，科研人员可以更准确地分析植物的光合作用响应机制。　　此外，现代便携式光合仪通常配备先进的数据处理和分析功能。仪器能够自动记录并保存测量数据，支持数据导出和可视化展示。用户可以通过电脑或手机等终端设备远程查看和管理数据，进行实时分析和比较。这大大提高了科研工作的效率和准确性，使得科研人员能够更便捷地获取和分析植物生理数据。　　总的来说，便携式光合仪是一种功能强大、操作简便的科学仪器。它在农业、生态和环境科学等领域具有广泛的应用前景，对于推动相关领域的科学研究和技术创新具有重要意义。

  • 便携式光合测定仪准确率多少

    [font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=16px]　　便携式光合测定仪准确率多少，便携式光合测定仪的准确率主要取决于其技术指标和测量方式。以下是关于便携式光合测定仪准确率的详细说明：　　一、技术指标　　CO?分析器：　　类型：绝对开路式非色散红外分析器　　量程：0~3100 μmol/mol　　准确度：最大误差为±5 μmol/mol(在0~1500 μmol/mol范围内) ±10 μmol/mol(在1500~3100 μmol/mol范围内)　　H?O分析器：　　类型：绝对开路式非色散红外分析器　　量程：0~75 mmol/mol，或40℃露点　　准确度：最大误差为±1.0 mmol/mol　　二、测量方式与准确率　　便携式光合测定仪采用闭路测量方法，这种方法通过创建一个封闭的测量环境，使得气体CO?浓度、空气温湿度、植物叶片温度、光强以及气体流量等要素在测量过程中保持稳定和可控，从而确保测量结果的准确性。　　具体来说，便携式光合测定仪可以准确测定以下要素：　　气体CO?浓度：通过内置的CO?分析仪来测量环境中的CO?浓度，这是评估植物光合作用效率的关键参数之一。　　空气温湿度：仪器配备温湿度传感器，以实时监测和记录环境空气的温度和湿度，这些参数对植物的光合作用和蒸腾作用都有显著影响。　　植物叶片温度：通过红外测温技术或其他温度测量手段，便携式光合测定仪可以准确测定植物叶片的表面温度，这有助于了解植物叶片对环境的热响应。　　光强：仪器配备光强传感器来测量不同波长的光强，从而了解植物对不同光谱的响应。　　气体流量：通过气体流量计，仪器可以测量通过植物叶片的气体流量，这有助于计算光合速率和蒸腾速率等参数。　　三、总结　　便携式光合测定仪的准确率主要取决于其技术指标和闭路测量方法。通过高精度的传感器和精确的测量技术，它能够准确、快速地测定多种与植物光合作用相关的参数，并为植物生理学、生态学、农业生产和环境科学等领域的研究提供有力的工具。然而，由于测量环境、操作方式等因素的影响，实际测量中可能存在一定的误差，因此在使用时需要注意操作规范和数据解读的准确性。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406071117138857_8471_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

  • 光合速率测定仪是什么

    [img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405280924434083_7887_5604214_3.jpg!w690x690.jpg[/img]　　光合速率测定仪是一种专门用于测量植物光合作用的仪器，它能够精确、快速地测定植物的光合速率，为植物生理学、生态学以及农业生产等领域的研究提供有力的支持。　　光合速率测定仪基于光合作用的基本原理，通过测量植物叶片在光照条件下的气体交换过程，来推算出光合速率。仪器一般包含光源、叶片夹持器、气体分析器以及数据记录系统等部分。光源用于模拟自然环境中的光照条件，叶片夹持器则负责固定被测叶片，气体分析器则用于测定叶片在光照条件下的二氧化碳吸收和氧气释放量，最后数据记录系统将这些数据记录下来，并经过计算得出光合速率。　　光合速率测定仪的应用范围非常广泛。在植物生理学研究中，它可以用来研究不同植物品种、不同生长环境下光合速率的差异，为优化植物生长条件、提高产量提供理论依据。在生态学研究中，光合速率测定仪有助于了解不同生态系统中的光合作用特性，揭示生态系统的能量流动和物质循环规律。此外，在农业生产中，光合速率测定仪也可以用于评估农作物的生长状况，指导农民合理施肥、灌溉和修剪，提高农作物的产量和品质。　　随着科学技术的不断发展，光合速率测定仪的性能也在不断提高。未来，我们可以期待更加精确、便携、智能化的光合速率测定仪问世，为植物科学研究和农业生产带来更多的便利和突破。

  • 便携式光合仪如何同化CO2的叶片面积

    [font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=18px]　　便携式光合仪如何同化CO2的叶片面积，便携式光合仪在测定同化CO?的叶片面积时，主要是通过测量植物光合速率，并结合叶片面积来估算的。以下是一个清晰的步骤说明和归纳：　　步骤说明　　植物光合速率的测定：　　使用便携式光合仪，在精确控制环境因子的条件下，通过红外线气体分析仪检测二氧化碳的消耗速率来测定植物的光合速率。　　这个过程基于红外光被二氧化碳分子吸收的原理，通过测量透射光能量的减少来推算二氧化碳的消耗速率。　　叶片面积的测量：　　可以使用标准方格纸或其他测量工具来测量叶片的实际面积。对于大于或等于半格的部分算作一格，小于半格的部分可以舍去。　　例如，如果使用边长为1厘米的透明方格纸来测量，可以计算出叶片的近似面积。　　同化CO?的叶片面积估算：　　根据测定的光合速率和叶片面积，可以估算出同化CO?的叶片面积。这通常是一个相对值，表示在给定的时间和条件下，叶片同化CO?的能力。　　需要注意的是，这个估算值受到多种因素的影响，如光照、温度、水分等环境因子以及植物本身的生理状态等。　　归纳　　便携式光合仪通过测量植物的光合速率和叶片面积，可以估算出同化CO?的叶片面积。这个过程结合了光合作用的基本原理和叶片面积的测量方法，提供了一种方便、快捷的方式来评估植物的光合作用效率。然而，需要注意的是，这个估算值受到多种因素的影响，因此在实际应用中需要结合具体情况进行综合考虑。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405301144376028_9059_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

  • 植物冠层分析仪的重要性

    植物冠层分析仪的重要性

    [size=16px]　　植物冠层分析仪的重要性　　植物冠层分析仪是一种用于研究植物冠层结构和功能的工具，具有重要性的多个方面：　　生态研究：植物冠层是生态系统中的关键组成部分，影响着能量流、物质循环和生物多样性。植物冠层分析仪可用于研究植物群落的结构和功能，帮助科学家了解生态系统的生态学过程。　　气候变化研究：植物冠层分析仪可以用来监测植物的生长、光合作用和蒸腾等生理过程。这对于研究气候变化对植物生态系统的影响以及植物对气候变化的响应至关重要。　　农业和林业管理：在农业和林业领域，植物冠层分析仪可以用来评估作物或森林的生长情况、叶片面积、叶片光合效率等重要参数，有助于提高农作物产量和森林管理效率。　　生态系统管理：植物冠层分析仪还可用于监测自然生态系统的健康状况，例如森林、湿地和草原。这有助于保护和管理这些生态系统，以维持生物多样性和生态平衡。　　水资源管理：植物冠层分析仪可以用来估算植物的蒸腾率，从而帮助管理地下水和地表水资源。这对于水资源管理和干旱监测非常重要。　　城市规划：在城市规划中，植物冠层分析仪可以用来评估城市绿化程度、城市热岛效应和城市空[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/bp][color=#3333ff]气质[/color][/url]量，以改善城市环境和居民生活质量。　　总之，云唐植物冠层分析仪在生态学、气候研究、农业、林业、城市规划等领域都有着重要的应用价值，可以提供关键的数据和信息，帮助人们更好地理解和管理植物冠层及其与周围环境的互动关系。这有助于维护生态平衡、应对气候变化和改善生活质量。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/09/202309151009031666_868_6098850_3.png!w690x690.jpg[/img][/size]

  • 【原创大赛】AOA在线藻类分析仪比对结果和误差来源分析

    【原创大赛】AOA在线藻类分析仪比对结果和误差来源分析

    地表水体的富营养化引起藻类及其它浮游生物迅速繁殖，导致溶解氧下降，水质恶化，鱼类和其它生物大量死亡，甚至引发供水危机。色素是藻类光合作用时吸收、转化和传递光能的主要物质，叶绿素以多种形式存在于藻类植物中，大约占有机物干重的1-2%，是估算其生物量的重要指标，快速准确测定水体中叶绿素a浓度对于评价水体营养状态和水质管理具有重要意义。 叶绿素测定方法有很多，大致分为萃取测定、荧光活体测定及水华遥感监测。萃取分析利用有机溶剂萃取植物细胞叶绿素进行光谱光度测定，根据分析技术的不同分为分光光度法、荧光法和高效液相色谱法。萃取分析只要操作准确，提取完全，可以得到准确和重复性好的结果，但是过程繁琐，不方便用于连续监测。 AOA在线藻类分析仪利用叶绿素荧光特性进行分类定量分析，活体测量，无需样品预处理，仪器操作简单，可以快速地获得大量叶绿素数据，广泛运用在在线监测。为保证在线分析仪的有效运行，需要用标准样品来校准、性能考核和日常数据质量控制，但国内还未开发叶绿素的标准样品和质控样品，已知叶绿素含量（用萃取方法测定）的浮游植物悬浮液被认为是最好的标样替代品。当水体发生水华，生物多样性下降，往往是一种藻类成为绝对优势，可作为纯种藻类标准样品，本文将几个代表性的比对实验整理分析，探讨误差原因。[b]1.比对方法[/b]1.1清洗AOA在线藻类分析仪蠕动泵、测量室及其底盖，检查纯水透光率值。1.2水样不经任何处理，测量叶绿素浓度值。1.3剩余水样酌量加入1%碳酸镁悬浊液(按1升水量加入1ml)，防止酸化。1.4带回实验室，尽快分析，实验室分析方法依据《无水乙醇热浴超声法测定淡水中的叶绿素a》[sup][/sup]。[b]2实验2.1微囊藻水样2.1.1样品来源[/b] 2014年8-10月某水库出现铜绿微囊藻水华，采集水华“浓密”处水样作为标准储备液，分别取0、2、5、10、15、20、25、50、100ml，用纯水稀释成500ml，检查两种方法叶绿素a和藻密度线性。取水库水华严重区、进水口、湖心和出水口四个水样，做实际水样比对分析。[img=,690,690]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011537059882_3331_3247383_3.jpg!w690x690.jpg[/img][b]2.1.2实验结果[img=,690,361]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011538312332_220_3247383_3.png!w690x361.jpg[/img][/b]表1微囊藻稀释水样比对结果[b][img=,622,352]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011539397062_938_3247383_3.png!w622x352.jpg[/img][/b]图2微囊藻水样线性比对[img=,690,215]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011611492722_7678_3247383_3.png!w690x215.jpg[/img]表2含微囊藻实际水样比对表1、表2和图2表明，两种测量方法的结果与藻类数量之间存在非常显著的相关性，但AOA在线分析仪测量结果低于分光光度法，浓度越高，差异性越大。[b]2.1.3结果分析[/b]2.1.3.1分光光度法误差分析 萃取后叶绿素，对光照和氧气很敏感，极易造成不可逆的分解，因此，节时高效是分光光度法的质量保证，而温度是质控措施的关键。在超声波萃取过程，提高温度加快叶绿素溶出速度，同时，叶绿素降解的速度也是加快的，最佳超声波萃取条件：60℃萃取25分钟，2小时内完成测定。另外，实验室遮光也是必要。[img=,690,690]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011541253150_3659_3247383_3.jpg!w690x690.jpg[/img]2.1.3.2AOA荧光法误差来源 AOA在线藻类分析仪原理：叶绿素具有荧光特性，一定的激励光，任何一种藻产生的荧光强度与其所含叶绿素a成正比，几种不同藻混合体产生的荧光强度等于各自荧光的总和。采用325纳米、450纳米、525纳米、570纳米、590纳米和610纳米作为激励光,其中325纳米是用来补偿黄色物质（有机物），测定685nm的光强，计算总叶绿素a值和不同藻的浓度。（1）水样原始性状发生变化暗室环境下，激励光照到藻上，能量分成三部分：光合作用、叶绿素自发荧光和热能辐射。如果藻的活性强，光合作用消耗的能量就越多，产生荧光的强度越小，反之，如果藻的活性弱，荧光强度就强。荧光能量和光合作用的能量是相互竞争的，叶绿素荧光常常被认为光合作用无效指标的依据。比对实验的样品，从采样经实验室样品处理，到水质自动监测站仪器分析，剩余样品送回实验室做分光光度法比对，再紧凑也需要3-4天完成，运输、保存过程，叶绿素在活体内也和其它物质处于不断更新变化中，可能衰老、也可能分解破坏，比对实验要求的同步水平也不可能实现，这是比对误差不可忽视的部分。（2）微囊藻特殊的细胞结构使水样分布不均匀微囊藻群体有胶鞘和伪空泡，可以自由漂浮在水中，水样在实验室静置一天后，出现明显的分层，测量过程难以保证均匀分布。[img=,690,690]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011542423667_4598_3247383_3.jpg!w690x690.jpg[/img]（3）工作温度与校准温度不一致参考各类荧光法仪器说明书，浮游生物悬浊液的荧光反应受温度的影响很大，有些仪器的温度补偿2%⁄ ℃,但这种经验补偿不能保证准确的现场测量，因为每一种浮游植物的荧光强度随温度变化程度不同。这台AOA藻类分析仪安装测试在冬季，这次比对实验在9月份进行，温差亦有影响。（4）浊度的影响 实验室分光光度法经过0.8um滤纸过滤，比色扣除750nm吸光度值，只要操作正确，浊度的影响很小。水中的悬浮颗粒物对激励光和产生的荧光有反射、散射和阻挡的作用，造成激励光和荧光产量的下降，YSI3026传感器检测结果：1NTU的 浊度影响大约是0.03ug/L叶绿素。 除色素以外的细胞结构（细胞壁、胶被、储藏物质）以溶解有机碳为主要成分，对紫外光和蓝光具有强烈的吸收，也可视为影响测定的悬浮物，AOA在线藻类分析仪称之为黄色物质，用325纳米补偿。铜绿微囊藻细胞壁分为两层，内层是纤维素，外有胶鞘，有相当的厚度，互相溶合形成多细胞群体。图5显示黄色物质与叶绿素含量相关，AOA的测量结果反映了铜绿微囊藻细胞群体特征。分光光度法和AOA扣除浊度方法各有不同，是否有可比性，有待进一步了解。[img=,586,305]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011543564741_5446_3247383_3.png!w586x305.jpg[/img]图5（5）水样镜检微囊藻绝对优势，视野内不见其它藻类，AOA分析结果有少量绿藻、硅藻，其它的比对实验也出现藻类识别错误。[b]2.2薄甲藻水样[img=,690,920]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011545089042_4958_3247383_3.jpg!w690x920.jpg[/img][/b]图6[b]2.2.1实验结果[/b][img=,690,289]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011547036798_1735_3247383_3.png!w690x289.jpg[/img]表3薄甲藻水样比对结果2.2.2结果分析2.2.2.1镜检视野内为单一薄甲藻，与AOA定性结果相差较大。从图7可知，绿藻和硅甲藻的光谱图很相似，从光谱图识别绿藻和硅甲藻是困难的，AOA的藻类分类和藻密度估量值仅能作为参考，要将监测数据做水体生态评估的依据，必须结合实验室镜检和萃取分析方法。[img=,690,496]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011547417547_4700_3247383_3.png!w690x496.jpg[/img]图72.2.2.2薄甲藻AOA测量值约为光度法的1/3，薄甲藻有鞭毛，可以自由游动，离开有利的生活条件则很快失去活性，沉入水底不再活动，且细胞内容物溶出。不能保证水样原始性状，是叶绿素a比对测定误差的主要来源。[img=,690,690]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011548482013_3683_3247383_3.jpg!w690x690.jpg[/img][color=#423B3B]2.2.2[/color][color=#423B3B].3[/color][color=#423B3B]薄甲藻细胞内容物溶出后，显微镜照片清楚看到细胞壁很薄，AOA测量结果印证黄色物质影响极小。[/color][b]2.3小球藻[img=,690,920]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011550015246_3694_3247383_3.jpg!w690x920.jpg[/img]图9 小球藻[/b]垃圾渗滤液水样，实验室放置几周，变绿，镜检结果：小球藻绝对优势，少量硅藻。[b]2.3.1实验结果[/b][img=,690,367]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011551332128_4472_3247383_3.png!w690x367.jpg[/img]表4小球藻水样比对[b]2.3.2结果分析[img=,537,303]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011552368052_2948_3247383_3.png!w537x303.jpg[/img][/b]图10小球藻水样线性分析2.3.2.1藻类分类与实验室镜检结果基本吻合；2.3.2.2低浓度出现少量蓝藻，因为仪器刚做完微囊藻样品，检测室可能有少量残留，比对实验之前彻底清洗检测室很有必要；2.3.2.3分光光度法相关系数小于AOA，并非方法不可行，而是叶绿素萃取太依赖分析人员的操作，稍有疏忽就会造成萃取损失，相比之下仪器要稳定可靠些。2.3.2.4小球藻叶绿素a测量结果AOA/分光光度法比值0.7-1.5，高于铜绿微囊藻和薄甲藻。两种方法测量结果比较接近的原因是因为小球藻不会运动，活体样品保持比较稳定的悬浮液状态，而AOA测量结果高于分光光度法的误差，一方面来自叶绿素和藻密度系数的确定，一方面来自萃取的损失。[img=,601,407]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011554177672_7731_3247383_3.png!w601x407.jpg[/img]图11AOA仪器校正界面 荧光测定仪校准即确定叶绿素和藻密度相关系数，可以给活体叶绿素传感器提供的最好标准物是浮游植物悬浮液，此悬浮液亦有部分用萃取方法测定叶绿素含量，并且应该从监测地点获得，这样的标准物质产生的荧光可以尽可能接近现场的生物体。荧光测定同时受浊度、温度、细胞活性、不同藻的种类、大小、形状、和叶绿素种类的影响，这些都大大限制活体测量的准确度。2.4不同水体样品分析[img=,690,267]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011555277271_2806_3247383_3.png!w690x267.jpg[/img]表5不同水体样品分析2.4.1与单一藻类样品结果一致，绿藻含量高的水样AOA测量值偏高，微囊藻水样上浮分层、甲藻和裸藻活性降低下沉造成水样不均匀分布，是比对结果偏低的一个因素。而在线监测时，水样中的藻类足够鲜活，吻合度会好些。2.4.2按照AOA提供的分类方法（图12），绿藻和蓝藻分类结果与镜检匹配，单一种类薄甲藻检测结果显示为绿藻、隐藻、蓝藻、极少量甲藻，镜检中数量可观的硅藻、裸藻在AOA测量结果中未见。[img=,600,350]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011602453540_1118_3247383_3.jpg!w600x350.jpg[/img]图122.4.3水库水质良好，杂质少，其它水体有机杂质含量相对高，AOA黄色物质测量结果与水体洁净程度吻合。[b]小结[/b]：萃取分析耗时长，不方便用于连续监测，需要有经验、高效率的分析人员才能得到准确、重复性好的结果。活体荧光法简便易操作，但准确度受更多因素的限制。两种方法不可互相替代，而应该取长补短，互为参照。参考文献 王丽娟，章岳蓬，郭步平等. 无水乙醇热浴超声法测定淡水中的叶绿素a.当代环保，2010，2（4）：14-17.

  • 便携式光合测定仪适用于什么植物

    [font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=16px]　　便携式光合测定仪适用于什么植物，便携式光合测定仪是一种现代化的科研工具，因其小巧轻便、易于携带、智能化程度高以及稳定性强等特点，在植物生理生态学研究中有着广泛的应用。以下是关于便携式光合测定仪适用的植物类型及相关信息：　　适用植物类型：　　便携式光合测定仪可广泛应用于各种植物，包括但不限于大田作物、果蔬、蔬菜、牧草、观赏植物等。该仪器主要用于测量不同植物的叶片光合速率、蒸腾速率、气孔导度等关键参数。　　具体应用场景：　　农林业：科研人员可利用该仪器对农作物叶片的光合速率、气孔导度、胞间二氧化碳浓度等参数进行精确测量，评估不同品种的适应性、抗逆性以及产量潜力。同时，通过测定不同生长环境下的光合参数，为优化农作物的种植管理提供科学依据。　　生态学：生态学家可利用该仪器研究不同生态系统中植物的光合作用特性，了解生态系统对气候变化的响应机制。例如，通过测定不同海拔、纬度或土壤类型下的植物叶片光合参数，揭示生态系统结构、功能以及生物多样性的变化规律。　　园艺和草地科学：该仪器可用于研究观赏植物和牧草的光合作用特性，为品种改良和种植管理提供理论依据。　　测量参数：　　便携式光合测定仪能够测量的参数非常丰富，包括但不限于CO2浓度、H2O浓度、空气温度、叶片温度、相对湿度、蒸汽压亏缺、露点温度、大气压、内置光强、外置光强、净光合速率、蒸腾速率、胞间CO2浓度、气孔导度等。这些参数能够全面反映植物的光合作用状况，为科研工作者提供宝贵的数据支持。　　特点：　　该仪器具有便携性、智能化程度高、稳定性强等特点，适用于野外试验、现场监测等多种环境。同时，它支持活体、离体测量，并且室内外两用，满足了科研工作的多样化需求。　　综上所述，便携式光合测定仪适用于多种类型的植物，包括但不限于大田作物、果蔬、蔬菜、牧草等，能够为科研人员提供全面、准确的光合作用相关参数数据，对于植物生理生态学研究具有重要意义。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406131145594548_7165_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

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    【原创大赛】高温热胁对Achnanthes sp.光合影响再探

    高温热胁对Achnanthes sp.光合影响再探 在11月的原创中，我已经对Achnanthes sp.的高温热胁的响应进行了初步分析，感谢各位专家对本人作品的肯定。本文为此作品的续作，仍以春秋季常见的水华种Achnanthes sp.为受试生物，深入研究高温热胁对藻类光系统影响的作用机制（之前没人说是这个影响主要是作用于哪个亚显微结构的）1.实验材料和仪器http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/12/201212311715_417720_1653274_3.jpg Achnanthes sp.（2012.5.4采自宁波某水库），这个是实验用的藻种，纯度在99%以上吧。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/12/201212311715_417721_1653274_3.jpg PHYYTO-PAM调制叶绿素荧光仪（德国WALZ公司）， 光照培养箱（宁波江南仪器厂），用于藻类的扩培和温度光照条件控制。PS：藻液培养条件20℃，2000LX光照强度，光暗比16:8。 ☆还是这台仪器，还是这个藻。培养条件也一致。这样有可比性。2.实验方法： 实验主要以有效光量子产量Fv/Fm’与最大光量子产量Fv/Fm为分析指标，具体的操作步骤我在这里就不赘述了，上一个原创中有图文介绍 废话不说，直接看实验结果吧。3.实验结果与讨论http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/12/201212311715_417723_1653274_3.jpg 如图所示，当温度高于35℃时，实际光量子产量Fv/Fm’与有效光量子产量Fv/Fm存在较大差异，测量Fv/Fm得出的T50要高于Fv/Fm’。 暗适应样品光系统II不受参与Calvin循环的酶被热破坏的影响，因此Fv/Fm反映的是光系统II的状态，而不受整个光合作用影响。测量Fv/Fm得出的T50要高于Fv/Fm’，因为热胁对光合作用的破坏首先发生在暗反应所需的酶，而开始光系统II不受影响。 Ps:T50是实际光量子产量Fv/Fm’[

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    以色列PhyTechs PTM-48A植物光合生理及环境监测系统是目前正常环境条件下植物状态分析中更复杂的系统。系统可以利用叶片温度、茎流速率、茎杆微变化、茎杆与果实生长传感器等，来连续监测并记录完整的植物光合与蒸腾速率。 PTM-48M植物光合生理及环境监测系统的特点:12传感器通道设计 1）其中四个输入通道用于自动开合的叶室，测量叶片的光合与蒸腾速率； 2）另外的八个通道用于其他传感器，用于环境(PAR、空气温湿度、土壤湿度)与植物(叶片温度、茎流速率、茎杆微变化、果实生长、茎杆测量仪)监测。植物光合生理及环境监测系统特点： ·可长期、自动循环、同时测量四个叶片的CO2交换情况与光合速率 ·可长期、自动循环、同时测量四个叶片的H2O交换情况与蒸腾速率 ·可长期同时测量植株不同茎杆的茎流量 ·可长期同时测量植物所处的环境因子(空气温湿度、土壤湿度、PAR) ·可长期同时测量植物或者果实的微变化(茎杆微变化、果实生长、茎杆测量仪)植物光合生理及环境监测系统应用： ·4通道植物光合作用与蒸腾作用研究 ·作物的长期监测：实验室、温室和植物生长室中的植物生理学研究 ·野外长期生态监测研究，作物环境条件的变化与CO2的气体交换过程的相互关系等 PTM-48A植物光合生理及环境监测系统系统配置： 下面是系统的一些参数、用户可以根据自己的研究需要可选的传感器以及一般的系统构成可选传感器 ·PIR-1 光合作用辐射传感器 ·TIR-4 总辐射传感器 ·ATH-2 空气温湿度传感器 ·SMS-2 土壤湿度传感器 ·LT-2M 叶片温度传感器 ·SF-4M SF-5M 茎流速率传感器 ·SD-5M 或 SD-6M 茎杆微变化传感器 ·DE-1M 树木生长计 ·FI-LM,FI-MM,FI-SM和FI-XSM果实生长传感器 ·SA-20 茎杆生长计PTM-48A植物光合生理及环境监测系统性能参数 ·叶室数: 4个 ·叶室面积: 20 cm2 ·连接气体管路的标准长度: 6m ·叶室通道的正常空气流速范围: 0.8－1.0L/Min ·CO2浓度测量范围: 0－1000ppm ·CO2交换的额定测量范围: -20到20 μmolCO2m-2s-1 ·H2O交换的额定测量范围: 0－50mgH20m-2s-1 ·可选输入传感器数: 11 ·可选传感器输入范围: 0－10Vdc(12 bit) ·电源需求: 可选 220/110/100 VAC ; 50/60 Hz,150W ·连接串口: RS232 和 RS485(可选) ·终端软件要求系统为 Windows 98, 2000,ME 和 XP ·环境保护指标: IP51

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    [b][url=http://www.f-lab.cn/biosensors/mx96.html]生物分子相互作用分析仪[/url][/b]是采用[b]阵列成像SPR[/b]技术的[b]生物分子相互作用传感仪[/b]器和[b]成像SPR仪[/b],是全球领先的多重[b]生物分子相互作用分析[/b]的[b]SPR成像系统[/b]。生物分子相互作用分析仪mx96可监测传感器表面上高达96个配点，使用生物分子相互作用分析仪mx96温度控制96位微孔板自动进样，样品在芯片系列注射，每次注产生96个相互作用。它是可以无人执行的从96孔板在一个完整的运行多达10000个传感由此产生以及包括控制的任务。生物分子相互作用分析仪具有样品注射的来回流动，只有100µ L的样品也能检测由生物分子相互作用分析仪与CFM标准生物传感器相结合，可以从较低的吞吐量机转换成更高的吞吐量阵列系统。对于多路复用非常重要的应用程序，阵列可能非常强大，因为随着实验规模的增大，在其他平台上的采样消耗和仪器运行时间可以迅速扩展。例如，数组可以两两竞争96单克隆抗体的-几乎10000个人相互作用-只使用200每个单抗µ L和一个24小时运行的几天到几个月持续运行的平台。[img=生物分子相互作用分析仪]http://www.f-lab.cn/Upload/MX96.jpg[/img]生物分子相互作用分析仪：[url]http://www.f-lab.cn/biosensors/mx96.html[/url]

  • 碳硫分析仪的分析作用

    碳、硫是确定钢铁产品规格和质量的重要元素碳硫仪。碳含量高于1.70%以上的叫铸铁，低于1.70%的叫钢。通常把碳含量高于0.60%的钢叫高碳钢，碳含量在0.25%～0.60%之间的钢叫中碳钢，碳含量小于0.25%的钢叫低碳钢，碳含量小于0.04%的叫工业纯铁。 碳对钢铁钢铁分析仪的性能起着重要的作用:随着碳含量的增加，钢的硬度和强度提高，其韧性和塑性下降；反之，碳含量减少，则硬度和强度下降，而韧性和塑性增加。碳硫分析仪是企业理化分析室中的一种常用计量器具，用于对金属和非金属材料中的碳和硫元素含量进行定量分析，广泛应用于冶金、铸造、机械、车辆、泵阀、矿石、环保、质检等行业和领域，可以方便快捷的进行原料验收、炉前分析、成品检验等阶段的分析测试。 硫存在于钢铁中，会恶化钢铁的质量，降低其力学性能及耐蚀性、可焊性。特别是钢中的硫，若以硫化铁的状态存在时，由于它的熔点低（1000℃左右），会引起钢的“热脆”现象，即热变形，高温时工作产生裂纹，影响产品的质量和使用寿命。所以，钢中的硫含量越低越好。一般要求，普通钢中的硫含量小于0.050%,工具钢中的硫含量小于0.045%，而优质钢中的硫含量要小于0.020%。 鉴于碳硫含量对钢铁质量和性能的重要作用，因此检测钢铁中的碳硫含量，即碳硫分析具有重要意义。 钢铁不锈钢分析仪中的碳硫元素在高温下（1200℃～1400℃）通氧燃烧。均能转化为气体，生成CO2和SO2，这就是燃烧法分析碳硫的基础。 碳硫元素分析仪分析的原理，就是将试样在高温炉中（如电阻炉也称管式炉、电弧炉、高频感应燃烧炉等）通氧燃烧，生成并逸出CO2和SO2气体，用此法实现碳硫元素与金属元素及其化合物的分离，然后测定CO2和SO2的含量，再换算出试样中的碳硫含量。一般的测定方法有以下几种： 1. 红外光度法：试样中的碳、硫经过富氧条件下的高温加热，氧化为二氧化碳、二氧化硫气体。该气体经处理后进入相应的吸收池，对相应的红外辐射进行吸收，由探测器转发为信号，经计算机处理输出结果。此方法具有准确、快速、灵敏度高的特点，高低碳硫含量均使用，采用此方法的红外碳硫分析仪，自动化程度较高，价格也比较高，适用于分析精度要求较高的场合。 2. 容量法：常用的有测碳为气体容量法和非水滴定法，测硫为碘量法、酸碱滴定法。特别是气体容量法测碳、碘量法定硫，既快速又准确，是我国碳、硫联合测定最常用的方法，采用此方法的碳硫分析仪的精度，碳含量下限为0.050%，硫含量下限为0.005%，可满足大多数场合的需要。 3. 重量法：常用碱石棉吸收二氧化碳，由“增量”求出碳含量。硫的测定常用湿法，试样用酸分解氧化，转变为硫酸盐，然后在盐酸介质中加入氯化钡，生成硫酸钡，经沉淀、过滤、洗涤、灼烧，称量最后计算得出硫的含量。重量法的缺点是分析速度慢，所以不可能用于企业现场碳硫分析，优点是具有较高的准确度，至今仍被国内外作为标准方法推荐，适用于标准实验室和研究机构。 4. 电导法：用电导法测定碳、硫，其特点是准确，快速、灵敏,缺点是测量范围窄，耗用试剂多。多用于低碳、低硫的测定。 5. 测定金属中的碳、硫含量，还有ICP法、直读光谱法、X光荧光法、质谱法、色谱法、活化分析法等，各有其优点和适用范围。 目前国内大量使用碳硫分析仪主要有以下几类： 红外碳硫分析仪、高速碳硫分析仪、非水碳硫分析仪,用户可以根据自己的需要和各类碳硫分析仪的优缺点进行选择。

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