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浮游植物荧光仪

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浮游植物荧光仪相关的仪器

  • 世界上第一台活体浮游植物分类和生物量在线测量系统 与市场上常见的测量快速荧光,通过经验标定曲线得到浮游植物的分析和生物量不同,延迟荧光技术已成为研究热点。延迟荧光是在PS II 黑暗中的电子逆流过程中,电子和洞穴共同释放的。只有具备光合功能的细胞才能释放延迟荧光,而快速荧光技术测量的是所有能释放荧光的物质,包括死的浮游植物和腐殖质。)、硅藻(包括硅藻门、金藻门、黄藻门等)和隐藻类,增强型配置可以分到六类,从而把潜在的有害藻类蓝藻区分开来,精确地检测水华的爆发和消失。下图为2003年在欧洲Balaton湖监测到的数据。DF浮游植物延迟荧光测量单元主要特点如下:具触延迟荧光技术可有效屏蔽再悬浮、死的生物和腐殖质对测量精度的干扰,其它荧光测量技术无法实现。延迟荧光仪可精确探测藻类和水华的形成和消亡。延迟荧光技术和普通快速荧光技术的这一不同对浅水湖或河流能起到决定性的作用,特别是那些经常发生再悬浮和洪浪,从而将一定量的退化藻类或没有光合功能的藻类带入水体的区域。 功能: l 测量藻类浓度l 标准配置可识别蓝包括蓝藻、绿藻(包括绿藻、裸藻等)、硅藻(包括硅藻、金藻、黄藻等)和隐藻类 4种藻类,可扩展到6中藻类。l HAB 识别l 野外自动测量光合速率动态变化 技术指标:测量参数:4种浮游植物及生物量,可选增强型群落识别及光合速率-光曲线测量频率:每小时6-10次生物量分辨率:1-5ug CHl-al-1 (3-4个数量级)种类检测分辨率:4种藻类(可扩展到6种)精度±5%采样: 12VDC 采样泵工作模式:自动/手动用户界面:触摸屏,可以显示所有运行参数通信:USB口,可以很方便地用USB盘下载数据。也可通过英特网远程控制、数据下载乃至 硬件诊断,对Windows操作系统和苹果Mac操作系统都兼容其它:带GPS卫星定位系统,可以方便地定位,从而实现定位、定性和定量监测 2003年在欧洲Balaton湖的监测数据参考文献: Istvánovics V., Honti M., Osztoics A., H. M. Shafik, Padisák J., Y. Yacobi and W. Eckert (2005) On-line delayed fluorescence excitation spectroscopy,as a tool for continuous monitoring of phytoplankton dynamics and itsapplication in shallow Lake Balaton (Hungary). Freshwater Biology 50:1950-1970.Honti M., Istvánovics V. and Osztoics A. (2005) Measuring and modelling in situ dynamic photosynthesis of various phytoplankton groups. Verh. Internat. Verein. Limnol. 29: 194-196.Honti M., Istvánovics V. and Osztoics A. (2007) Stability and change of phytoplankton communities in a highly dynamic environment ? the case of large, shallow Lake Balaton (Hungary). Hydrobiologia 581: 225-240.Honti M., Istvánovics V. and Kozma Zs. (2008) Assessing phytoplankton growth in River Tisza (Hungary). Verh. Internat. Verein. Limnol. 30 (1):87-89.Istvánovics V. and Honti M. (2008) Longitudinal variability in phytoplankton and basic environmental drivers along Tisza River, Hungary.Verh. Internat. Verein. Limnol. 30 (1): 105-108.
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  • mini-FIRe浮游植物荧光仪在实验室和海洋中构建用于测量浮游植物生物量、生理学和光合作用的高级荧光系统1. 研究目的和内容 研究目的 该项目的目的是建造一种小型的台式仪器,称为F荧光I诱导和R驰预(mini-FIRe)系统,用于离散样品分析和连续测量浮游植物在海洋中的丰度和生理状况。与Rutgers团队发明和开发的前代FRRF和FIRe荧光仪不同,新仪器将表现出增强的灵敏度(约10倍),可实时提供更多生理参数。新仪器的极端灵敏度使得它们对于在公海的实地工作有巨大价值。 研究内容 使用可变荧光技术对浮游植物和其他光合作用生物的光合作用活性的评估 - 光合作用生物的生理状态的快速和无损评估依赖于使用快速重复率荧光学 (FRRF) 及其技术后续荧光感应和放松 (FIRE) 技术。这项技术是由Rutgers团队发明和开发的。评估光合作用生物生存能力的基本方法依赖于叶绿素"可变荧光"剖面的测量和分析,叶绿素是光合作用机构特有的特性(Falkowski等人于2005年对此进行了审查)。"可变荧光"技术依赖于叶绿素荧光与光合作用过程效率之间的关系,并提供了一套全面的荧光和光合作用参数的有机体。光学测量是灵敏的,快速的,无损的,可以实时和原位完成。 这种专利方法和已实现的仪器学原理是在同行评审文献中确立的(Falkowski and Kolber 1995 Kolber at al., 1998 Gorbunov et al., 2000, 2001 Gorbunov and Falkowski 2004)。最初是为研究水柱中的浮游植物而开发的,FRR技术提供了前所未有的信息,说明浮游植物群落的运作以及控制海洋初级生产力的环境因素的影响(e.g., Falkowski and Kolber 1995 Falkowski and Raven 2007 Behrenfeld et al., 1996 Coale et al, 2004 Falkowski et al, 2004)。使用台式和潜水式FRR和FIRe荧光仪成为美国和世界上大多数生物海洋学项目不可分割的一部分。 已开发出F荧光I诱导和R驰预(FIRe)技术 ,以测量光合作用生物的一套全面的光合作用和生理特征(Gorbunov and Falkowski 2005)。 FIRe 技术基于对由一系列激发闪光引起的荧光瞬态的记录和分析,这些闪光的强度、持续时间和间隔精确控制(图 1 和 Gorbunov and Falkowski 2005)。 该技术提供了一套全面的参数,这些参数的特点是光合作用采光过程、光系统 II (PSII) 中的光化学以及光合作用电子传输到碳固定。由于这些过程对环境因素特别敏感,FIRe 技术为识别和诊断自然(营养限制、光化学和光刺激、热应力等)和人为应激因素(如污染)提供了基础。图1。FIRe 荧光瞬时的例子。荧光产量的动力学记录为微秒时间分辨率,包括四个阶段:(第一阶段,100 ms)100 ms的强短脉冲(称为单周转闪光,STF)适用于累积饱和PSII,并测量从Fo到Fm(STF)的荧光感应:(第二阶段,500ms)弱调制光用于记录500ms时间尺度上荧光产量的放松动能:(第三阶段,50 ms)50ms 持续时间的强长脉冲(称为多周转闪光,MTF)用于饱和 PSII 和 PQ 库:(第 4 阶段,1 s) 弱调制光用于记录 PQ 库在 1s 的时间尺度内再氧化的动力学。 第 1 阶段的分析提供:最低和最大荧光产量(Fo,Fm);PSII光化学电荷分离的量子效率Fv/Fm(STF);PSII 的功能横截面,σPSII 和连接因子(p)。第 2 阶段为 PSII 接收方的电子传输提供时间常数(即Qa 受体侧再氧化)。第 3 阶段提供 Fm(MTF)和 Fv/Fm(MTF)。第 4 阶段揭示了 PSII 和 PSI 之间的电子传输时间常数(PQ 库的再氧化)。 可变荧光技术的生物物理背景- 在室温下,叶绿素荧光主要产生于PSII。当PSII反应中心处于开放状态(Qa氧化)时,荧光产量极小,Fo。当 Qa 还原(例如,通过暴露在强光下)时,反应中心关闭,荧光产量增加到其最高水平 Fm。为了检测Fo和Fm,FIRe技术记录了由强烈的饱和脉冲光(~100 μs,称为单周转闪光,STF)引起的荧光感应(图1第1阶段)。荧光感应率与PSII的功能吸收横截面成正比,而荧光上升的相对幅度Fv/Fm则由PSII光化学的量子效率来定义。荧光感应的形状由单个光合作用单元之间的激发量转移控制,并由"连接因子"(Kolber et al. 1998)定义。因此,在没有能量转移(p = 0)的情况下,荧光感应呈指数级,当p 增加到 ~0.5 到 0.7 的最大值时,就会变成反曲线。 PSII 受体侧电子传输的动能(即Qa再氧化)是通过 STF 之后的荧光驰预动力学分析(图 1 第 2 阶段)评估的。荧光动力学由几个部分组成,因为Qa再氧化的速度取决于第二个电子受体Q b的状态,Qb作为移动双电子受体工作:Qa- Qb → Qa Qb- (150 - 200 ms) (1)Qa- Qb- → Qa Qb= (600 - 800 ms) (2)Qa- _ → Qa- Qb → Qa Qb- (~ 2000 ms) (3) 反应 (3) 与 Qb 最初脱离 D1 蛋白结合位点时的条件相对应。此外,一小部分电子传输受损的失活反应中心可能有助于驰预动力学中最慢的组件。FIRe 软件使用 3 组件分析处理驰预动力学,以检索电子传输的时间常数(即 Q 氧化 tQa)。 PSII 和 PSI 之间的电子传输的时间常数 tPSII-PSI 是从多周转闪光(MTF,图 1 中的第 3 阶段和第 4 阶段)之后的荧光驰预动力学分析中检索到的。 在大多数生理条件下,这个时间常数是由质体醌(PQ)库再氧化的速度决定的,并且是一个数量级比tQa慢一个数量级。 测量一系列环境光强的FIRe荧光参数,可以重建光合作用电子传输的速率,Pf,作为光强的函数(光合作用与光强曲线)(Kolber and Falkowski, 1993)。Pf 与光照产物和环境光下测量的光化学量子产量成正比(DF' /Fm' )。分析这些光合作用与光强曲线提供了光合作用最大电子传递速率(Pmax)和光饱和系数(Ek)。光合作用与辐射测量使用 FIRe 的光化光源 (ALS) 进行,该光源通过 FIRe 数据采集软件由计算机控制。 研发背景和专业知识 – Rutgers团队的成员在可变荧光技术和方法的研发方面积累了超过 20 年的经验。他们发明并开发了10多项生物物理研究的独特仪器(参见相关专利和同行评审出版物的附录参考清单),包括: ● Pump-and-Probe Fluorometer (Kolber and Falkowski, 1986) ● Pump-and-Probe LIDAR (Gorbunov et al. 1991) ● Fast Repetition Rate (FRR) Fluorometers (Kolber at al. 1993 1998) ● Single-Celled FRR Fluorometer (Gorbunov et al. 1999) ● Diver-operated FRR Fluorometer (Gorbunov et al. 2000) ● Moorable FRR Fluorometer (Gorbunov et al. 2001) ● FIRe System (Gorbunov and Falkowski 2005) ● Diving-FIRe System (Gorbunov 2012) ● Mini-FIRe System (Gorbunov 2013). 2. 仪器介绍 mini-FIRe基于与之前台式FIRe仪器相同的生物物理原理(Gorbunov and Falkowski 2005),但新仪器更紧凑3倍,灵敏度提高10倍。叶绿素浓度的下限低至 ~0.005 mg/m3,这使得mini- FIRe对于在公海进行现场采样非常有价值。 在这里,Rutgers团队提议建造一个mini-FIRe(图2)该仪器将用于离散样品分析(例如,从站点的尼斯金瓶收集的样品)和/或在海洋中持续进行取样。仪器将配备一个流经的样品室,用于连续绘制浮游植物生物量和光合作用特性。以下是mini-FIRe记录的生理参数列表和仪器技术规格mini-FIRe(图2)。该仪器将用于离散样品分析(例如,从站点的尼斯金瓶收集的样品)和/或在海洋中持续进行取样。该仪器将配备一个流经的样品室,用于连续绘制浮游植物生物量和光合作用特性。以下是mini-FIRe记录的生理参数列表和仪器技术规格。图2 mini-FIRe荧光仪,具有增强的灵敏度。测量参数:●暗适应后最小和最大荧光产量(Fo, Fm)●光适应下有效、最小和最大荧光产量(F' , Fo' , Fm' ) *●光系统II、PSII 中光化学最大有效量子产量(Fv/Fm 和DF' /F m))●三波长下功能性PSII吸收截面积(sPSII)●光合作用单元之间的能量转移效率("连接因子")●PSII 受体侧电子传递时间常数(Q a 到Qb,Qa 到 Qb-)●PSII 和 PSI 之间的光合作用电子传输时间常数●电子传递速率,ETR,作为光强的函数 *●光化学淬火系数 (qP)和非光化学淬火系数 (NPQ) *●最大光合速率、初始斜率和光合作用周转时间(从 F 与 E 曲线得到)●这些参数是使用光化光源 (ALS) 测量,并记录为光强曲线。mini-FIRe 系统的技术规格:●极端灵敏度:0.005 - 100 mg/m3叶绿素a(可通过添加中性密度减压过滤器提高采样浓度)●激发光源:蓝色(峰值波长450 nm,30 nm带宽),绿色(峰值波长530 nm,40 nm带宽),橙色(峰值波长590 nm,30 nm带宽),用于选择性激发不同功能组的浮游植物。●发射检测:680 nm(叶绿素a)和880 nm(细菌叶绿素a),其他波长可使用可更换的发射滤光片进行选择。●尺寸: 10 x 5 x 12 英寸 References related to methodology Peer-Reviewed Publications:Behrenfeld, M. J., A. J. Bale, Z. S. Kolber, J. Aiken, and P. G. Falkowski. 1996. Confirmation of iron limitation of phytoplankton photosynthesis in the equatorial Pacific Ocean. Nature 383: 508-511.K.H. Coale, K.S. Johnson, F.P. Chavez, K.O. Buesseler, R.T.. Barber, M.A. Brzezinski, W.P. Cochlan, F.J. Millero, P.G. Falkowski, J.E. Bauer, R.H. Wanninkhof, R.M. Kudela, M.A. Altabet, B.E. Hales, T. Takahashi, M.R. Landry, R.R. Bidigare, X.Wang, Z.Chase., P.G. Strutton, G.E. Friederich, M.Y. Gorbunov, V.P. Lance, A.K. Hilting, M.R. Hiscock, M.Demerest, W.T. Hiscock, K.A. Sullivan, S.J. Tanner, R. M. Gordon, C.L. Hunter, V.A. Elrod, S.E. Fitzwater, S. Tozzi, M. Koblizek, A.E. Roberts, J. Herndon, J. Brewster, N. Ladizinsky, G. Smith, D. Cooper, D. Timothy, S.L. Brown, K.E. Selph, C.C. Sheridan, B.S. Twining, and Z.I. Johnson (2004) - Southern ocean iron enrichment experiment: Carbon cycling in high- and low-Si waters. – Science, 304 (5669): 408-414.Falkowski PG, Koblizek M., Gorbunov M, and Kolber Z., (2004). Development and Application of Variable Chlorophyll Fluorescence Techniques in Marine Ecosystems. In: “Chlorophyll a Fluorescence: A signature of Photosynthesis” (Eds. C.Papageorgiou and Govingjee), Springer, pp. 757-778.Falkowski, P.G., and Z. Kolber. (1995). Variations in the chlorophyll fluorescence yields in the phytoplankton in the world oceans. Aust. J. Plant Physiol. 22: 341–355.Falkowski, P.G. and J.A. Raven. (2007). Aquatic Photosynthesis (2nd edition). Princeton University Press. Princeton, 484 pp.Gorbunov M.Y., Fadeev V.V., and Chekalyuk A.M. (1991) Method of remote laser monitoring of photosynthesis efficiency in phytoplankton. - Moscow University Physics Bulletin. 46(6): 59?65.Gorbunov M.Y., Kolber Z., and Falkowski P.G. (1999) Measuring photosynthetic parameters in individual algal cells by Fast Repetition Rate fluorometry. - Photosynthesis Research, 62(2-3): 141-153.Gorbunov M.Y., Falkowski P.G. and Kolber Z. (2000) Measurement of photosynthetic parameters in benthic organisms in situ using a SCUBA-based fast repetition rate fluorometer. - Limnol. Oceanogr., 45(1):242-245.Gorbunov M.Y., Z. Kolber, M.P. Lesser, and P.G. Falkowski P.G. (2001) Photosynthesis and photoprotection in symbiotic corals. - Limnol. Oceanogr., 46(1):75-85.Gorbunov MY, and Falkowski PG. (2005). Fluorescence Induction and Relaxation (FIRe) Technique and Instrumentation for Monitoring Photosynthetic Processes and Primary Production in Aquatic Ecosystems. In: “Photosynthesis: Fundamental Aspects to Global Perspectives” - Proc. 13th International Congress of Photosynthesis, Montreal, Aug.29 – Sept. 3, 2004. (Eds: A. van der Est and D. Bruce), Allen Press, V.2, pp. 1029-1031.Kolber, Z., and Falkowski, P.G., (1993) Use of active fluorescence to estimate phytoplankton photosynthesis in situ, Limnol. Oceanogr., 38, 1646-1665, 1993.Kolber, Z., O. Prasil, and P.G. Falkowski (1998). Measurements of variable chlorophyll fluorescence using fast repetition rate techniques: defining methodology and experimental protocols. Biochem. Biophys. Acta 1367: 88-106.Lin H., Kuzminov F.I., Park J., Lee S.H., Falkowski P.G., and Gorbunov M.Y. (2016) The fate of photons absorbed by phytoplankton in the global ocean – Science, 351(6270), pp. 264-267. Park J., Bailleul B., Lin H., Kuzminov F.I., Yang E.J., Falkowski P.G., Lee S.H., and Gorbunov M.Y. (2017) Light availability rather than Fe controls the magnitude of massive phytoplankton bloom in the Amundsen Sea polynyas, Antarctica – Limnology and Oceanography, DOI: 10.1002/lno.10565.Thamatrakoln K., Bailleul B., Brown C.M., Gorbunov M.Y., Kustka A.B., Frada M., Joliot P.A., Falkowski P.G., Bidle K.D. (2014) Death-specific protein in a marine diatom regulates photosynthetic responses to iron and light availability - Proc. Natl. Acad. Sci USA, vol. 110, no. 50: 20123-20128. doi:10.1073/pnas.1304727110.
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  • LabSTAF -浮游植物初级生产力评估浮游植物初级生产力(PhytoPP)的单周转量主动荧光法(STAF)LabSTAF是下一代基于STAF的仪器,用于评估浮游植物的初级生产力。该系统具有无与伦比的灵敏度和宽动态范围,允许在所有环境中进行测量:从水库、湖泊到开阔的海洋。 LabSTAF概述根据研究 单通量主动荧光法(STAF)是一种已建立的浮游植物光合作用定量评价方法。重要的是,它允许评估浮游植物的初级生产力(PhytoPP),为我们进一步了解全球碳循环提供有价值的数据。LabSTAF是在nerc资助的OCEANIDS计划中开发的新一代研究级主动荧光计中的第一个。此外,工作人员发展的持续资金是通过欧盟资助的海洋传感技术方案提供的。包含的基于windows的RunSTAF软件提供了广泛的实验设置,手动控制或高度自动化的操作,实时数据分析和方便地访问csv格式的主要数据。 系统控制标准的LabSTAF具有高动态范围,允许从极端少营养到中营养甚至一些富营养条件的测量。LabSTAF的高生物量(HB)版本将动态范围的高端扩展了十倍。这就打开了将STAF应用于例如持续评估藻类生长池内生物量积累的机会。 LabSTAF特性关键特性在大多数情况下,使用高性能硬涂层光学滤光片消除了滤液空白校正的需要。 提供两个荧光检测波段,允许通过双波段测量(DWM)对包装效应进行量化和校正。包含7个荧光激发LED波段,通过生成光化学激发剖面(PEP)实现快速和高度自动化的光谱校正。集成光化光源,提供10至 1600µ mol光子m-2 s-1。光源由直流驱动,以避免与脉宽调制(PWM)相关的测量伪影的可能性。样品室块包括一个循环水套,避免与所有光路相交,以允许使用正在进行的水来控制样品温度。 FLC自动化包括使用连续评估Ek参数的新方法对FLC协议进行动态优化。 除了标准FLC参数外,实时数据分析还提供39个荧光参数,并包括基线荧光校正选项。 广泛的导出功能,提供对主要数据的访问。它们可用于从单个文件或跨多个文件提取数据。 与FastOcean和Act2系统的比较 LabSTAF代表了切尔西建立的FastOcean快速重复率荧光计(FRRf)和Act2实验室系统的重要更新,用于运行flc。一个重要的变化是从FastOcean中采用的2µ s间距上的1µ s FRRf“闪光”切换到LabSTAF中使用的固体激发脉冲。这有助于灵敏度提高十倍以上,并将标准单次转换(ST)脉冲从200µ s减少到100µ s。减少ST脉冲的长度将双击率从27%左右降低到12%左右,这使得在更高的频率上应用ST脉冲成为可能。 应用程序直接测量浮游植物的光合速率,单位体积,单位时间,允许评估PhytoPP。 自主获取高分辨率的STAF数据,有可能有助于核实基于卫星的PhytoPP模型。利用闪烁小瓶对浮游植物样品进行快速光生理筛选。 跟踪藻华的发展和群落结构的变化。 浮游植物光合作用和细胞代谢的日循环分析。 科研船和便利船的自主连续航行测量。实时评估环境变化对浮游植物光合作用的影响,包括环境光、温度、养分富集和污染事件。 LabSTAF深度活性氟量计 用于探测光合作用的两种最常见的基于荧光的方法是单次翻转主动荧光法(STAF)和多次翻转脉冲幅度调制(PAM)方法。迄今为止,STAF方法是对浮游植物的光学薄悬浮液(如在世界海洋和大多数湖泊和河流中发现的)进行测量的最佳选择,而PAM方法适合于光密度高的样品(如大型藻类和海草)。 荧光曲线(FLC)对于许多用户来说,LabSTAF最重要的应用是从培养物或自然样品中全自动获取一致的荧光光曲线(FLC)数据。LabSTAF硬件和RunSTAF软件的结合允许高度自动化的flc采集,具有实时轻步调整,自动样品交换和系统清洗的选项。例如,这些特性已被用于连续运行LabSTAF系统数周,同时在研究船上的供水系统中进行探测。 快速筛选多个样品尽管在FLC自动化的开发上已经付出了大量的努力,但该系统允许运行更短的自动化协议。用户还可以使用手动控制选项。当使用这些功能时,大样品室提供了一系列选择。一种选择是将10至20毫升的样品直接倒入样品室。或者,可以从闪烁小瓶内的较小样品进行快速测量。 LabSTAF,初级生产力和双重孵育法 在全球范围内,浮游植物的初级生产力(PhytoPP)约占光合作用固定碳的一半。虽然海洋颜色的卫星遥感在尽可能广泛的空间尺度上运行,并且可以说是在全球生化循环和气候背景下评估PhytoPP的唯一手段,但用于从卫星数据中估计PhytoPP的算法依赖于大量的原位测量数据集。直接定量PhytoPP的既定参考是基于14C示踪剂的方法,该方法无法提供所需时间和空间分辨率的数据。原位PhytoPP测量的缺乏限制了PhytoPP遥感算法的发展和验证,并阻碍了区域和全球生态系统和气候模型的充分参数化。staff作为一种光学方法,可以以更高的空间和时间分辨率自主评估PhytoPP,成本仅为基于14C示踪剂的方法的一小部分。 虽然基于14C示踪剂的方法直接测量碳固定,但STAF测量的是由光系统II (PSII)光化学提供的碳固定所需的还原力的速率。RunSTAF经过优化,提高了对该速率的估计,并结合了高度自动化的协议,允许通过应用光化学激发剖面(PEP)进行包效应校正(PEC)和光谱校正。RunSTAF中还包括用于校正基线荧光(来自光化学活性PSII复合物以外的来源)的其他数据处理工具。 PSII光化学的STAF衍生值可以通过电子与碳的比率(Φe,C)转化为碳固定率。该比值的测定需要基于STAF的PSII光化学测量和基于14C示踪剂的碳固定测量。并入LabSTAF的大样品室允许使用24 mL闪烁小瓶,使14c加标样品可用于评估碳同化与STAF测量并行。这种“双重孵育”方法的发展消除了许多方法上的不一致性,这些不一致性阻碍了对固定每个碳(通过14c固定评估)所需电子数量的实际评估(通过STAF评估)。虽然这种双孵育不能在高分辨率下进行,但在特定环境中进行的代表性测量将提供提高PSII光化学和碳同化之间转换精度的值。LabSTAF规范LabSTAF单元的基本规格电力供应140 - 400ma 24 V (3.4 - 9.7 W)尺寸(毫米)236(高)× 328(宽)× 429(深)质量(约)8.1Kg样品室样品体积10- 20ml,用闪烁瓶降至4ml激发波段(波长)中心波长:416、452 x2、473、495、534、594、622 nm光化光源蓝色增强,直流输出从10到>1600 μmol光子m-2 s-1检出限是否能以相当于叶绿素a的0.001 mg m-3在452nm激发下产生的荧光信号的振幅来分辨FIP评级IP64(防任何方向的水雾)LabSTAF电源组的基本规格功率要求市电(110 ~ 220v AC)尺寸(毫米)259(宽)× 201(深)× 114(高)质量(约)2Kg关闭时的IP等级IP64(防任何方向的水雾)使用时的IP等级IP40(防止工具进入,但不防潮)LabSTAF备件套件的基本规格尺寸(毫米)424(宽)× 340(深)× 173(高)质量(约)5.2 Kg关闭时的IP等级IP64(防任何方向的水雾) LabSTAF备件包的内容蠕动泵,包括泵机组,泵头带6mm内径安装油管,电源线,接口电缆电磁阀单元,包括电缆流经装置和流经搅拌器装置校准塞样品室盖Surface Go 3,包括键盘和电源线额外的备件,包括油管,O型圈,硅脂
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  • CytoSense&mdash &mdash 全球第一台便携式浮游植物分析流式细胞仪这是全球第一款专业做浮游植物研究的流式细胞仪,可对大小在0.4 mm-4 mm的浮游植物进行分析。仪器整合式设计,结构坚固,适合野外使用,且仪器移动后无需另外校准。1) 可在室内或调查船上使用2) 防溅水设计3) 可升级为CytoSub和CytoBuoy4) 特殊版本CytoSense GV可直接测量带气囊的浮游植物(如微囊藻) 工作原理细胞/颗粒流过流动池(1)的检测区域时,被激光照射(2)。样品被中空针管(3)注入锥状注射器(4)中,被不含任何颗粒的鞘液(样品的滤液,由仪器自动过滤提供)(5)包裹着流过1000 mm2石英毛细管。鞘液包绕着样品高速流动,组成一个圆形的流束,待测细胞在鞘液的包被下单行排列(6),依次通过检测区域。这个过程中,颗粒(7)间的距离被拉开,当颗粒被与之呈90度角的激光束(2)照射(8)时,颗粒的散射光和荧光会被检测系统(9)检测。入射到检测系统的光束(10)被收集物镜(12)、光谱反射镜(13)处理后被检测器(11)检测。流动单元 鞘液的供给量由泵精确控制。特制的鞘液入口大大降低了鞘液的剪切力,有助于保持脆弱细胞(或群体)的完整性。特制的两步注入系统有效防止了由于船或浮标的波动引起的样品流偏移,同时也为空气留了一个通路。鞘液系统是一个自我循环系统,不需额外添加,不需废液收集瓶。过滤生产鞘液的滤膜可以持续工作数月。特制齿轮泵用于为过滤鞘液施加压力。CytoSense GV型&mdash &mdash 可分析带气囊的浮游植物有些浮游植物(如微囊藻)带有气囊。气囊会改变光散射,从而会改变这类浮游植物的&ldquo 光学指纹&rdquo 。通过施加瞬间高压可以打破气囊,从而消除由于气囊引起的光散射变化,修复&ldquo 光学指纹&rdquo 。通过两次测量可以方便的区分出带气囊的种:第一次直接测量,第二次施加高压破坏气囊后测量。那些在施加高压后改变了光散射的种就是带气囊的种。CytoSense的特殊版本&mdash &mdash CytoSense GV型可以满足上述要求。CytoSense GV型就是在CytoSense的基础上增加一个高压模块。这个高压模块可以提供瞬间高压用于破坏气囊。这个过程可以由软件自动完成。CytoSense应用于高浊度水体的对策 针对我国很多水体浊度高、泥沙含量高的特点,根据国内用户需求,泽泉科技有限公司与荷兰CytoBuoy公司合作提出如下解决方案:1)进样筛选 水样被进样器采集后,在进样器内部经过筛选排除空气和砂粒(图1)。进样器内部设计非常独特,从上到下有三个出水口,其中上边的出水口用于排除空气,多数砂粒由于沉降速率较大会经下部出水口排除,只有中间的出水口用于采集浮游植物、浮游动物和与它们密度相差不大的砂粒进行流式细胞计数和其它分析。 如果水中砂粒粒径很大,可以在进样器中增加一个不锈钢筛网,用于滤除粒径大于1 mm的泥沙颗粒。 对于多数粒径大于50-100 um的砂粒而言,它们的沉降速率大于CytoSense的进样流速(1-2 cm/s),因此不会被进样器吸入。2)外置鞘液系统 CytoBuoy系列浮游植物流式细胞仪(包括CytoSense、CytoBuoy和CytoSub)的一个重大创新就是不用外加鞘液,而是直接采用水样的过滤液作为鞘液,这样既节省了用户的成本,也省去了更换鞘液的麻烦,同时还避免了流路发生生物污染的可能。但是由于样品过滤生成的鞘液量不是很大,在测量高浊度水体样品时,就难于避免水体中黄色物质发出的荧光的影响。另外,对于类似我国黄河水体、或者洪水期的长江水体而言,泥沙颗粒非常多,可能每100个颗粒中只有1-5个浮游植物细胞(甚至有可能每1000个颗粒中只有1个浮游植物细胞),其它都是泥沙颗粒,这极大增加了浮游植物计数的难度。但即使是这样的水样,CytoSense也是可以测量的。为了达到更好的分析效果,建议采用如下的外置鞘液系统。 外置鞘液系统的鞘液采用蒸馏水或市场上购买的桶装水皆可。自来水由于含氯,对浮游植物活性有影响,因此不建议使用。其它类似PBS缓冲液等也可作为鞘液,只是比蒸馏水或桶装水的获取更麻烦,成本更高。鞘液桶采用容量20-30升的塑料桶即可。根据工作模式,可分为外置非循环鞘液系统和外置循环鞘液系统。 外置非循环鞘液系统(图2):鞘液一次性使用,用完即排出不在使用。连续工作1小时约需5升鞘液,工作1天约需50升鞘液。 外置循环鞘液系统(图3):鞘液使用后经循环过滤系统可重复利用,大大节省了鞘液用量。由于循环使用鞘液,水体样品中的黄色物质会流入鞘液中,尽管被稀释,但还是会产生微弱的荧光。因此建议鞘液桶足够多(20-30升),以尽量降低黄色物质荧光引起的误差。同时建议每天更换新的鞘液。 通过以上这些设计,CytoSense完全可以直接测量高浊度水体样品(如洪水期的长江水样、长江口水样),可以对水中总颗粒进行计数。通过样品是否发出荧光,可以区分浮游植物和其它颗粒。通过多色荧光,可以对浮游植物进行聚类分析。通过浮游植物专家库,可以对多数非球状西部鉴定到种。当然,如果结合GV模块(自动破碎微囊藻的囊),还可以对微囊藻(不需预处理)直接测量。
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  • 名称:PB200浮游植物培养系统 型号:PB200 产地:德国 介绍:PB200浮游植物培养系统用于专业培养浮游植物(藻类)。培养罐内置照明系统,螺纹式顶盖可轻松开合,整体结实耐用。正常条件下,每天可替换30%体积的培养液。 技术参数容积:12L; 内径:200mm; 高度:520mm 主要配置透明培养罐,磁铁搅拌器,照明单元,充气泵,培养控制器 名称:培养控制器 介绍:对PB200浮游植物培养系统进行自动控制。可对培养器提供电源,按设定时间自动控制照明、添加营养液等功能。 体积:220mm x 80mm x 70mm 电压/ 功率:85-250VAC / 5W
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  • 名称:PB250大型浮游植物培养器 型号:PB250 产地:德国 介绍:PB250大型浮游植物培养器用于专业培养浮游植物(藻类)。培养罐内置照明系统,螺纹式顶盖可轻松开合,整体结实耐用。正常条件下,每天可替换30%体积的培养液。 技术参数容积:12L; 内径:200mm; 高度:520mm 主要配置透明培养罐,磁铁搅拌器,照明单元,充气泵,培养控制器 名称:培养控制器 介绍:对PB200藻类大型培养器进行自动控制。可对培养器提供电源,按设定时间自动控制照明、添加营养液等功能。 体积:220mm x 80mm x 70mm 电压/ 功率:85-250VAC / 5W
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  • PHYTO‑ PAM 全球第一款可自动对浮游植物分类的荧光仪有害藻华(HABs)监测/预警的强大工具主要功能1)对自然水体中的蓝藻、绿藻和硅/甲藻自动分类(定性)2)自动测量水样中蓝藻、绿藻和硅/甲藻的叶绿素a含量(定量)和总叶绿素a含量3)一杯自然水样,同时获得蓝藻、绿藻和硅/甲藻的光合活性:* 光合效率和光合速率(相对电子传递速率)* 快速光曲线并进行拟合* 藻类的潜在最大光合效率(&ldquo 生长潜能&rdquo )* 藻类的光保护能力* 藻类耐受强光的能力4)用户可做自己的参考光谱应用领域主要用于水生生物学、水域生态学、海洋学、湖沼学、水质预警、微藻生理学、微藻抗逆性等领域,对于了解自然水体中藻类种群的动态变化、水华预警、野外水体中光合作用的时空变化、校正初级生产力的计算等有较大帮助。特别适于浮游植物动力学研究和有害藻华(HABs)的早期预警。测量参数Fo, Fm, F, Fm' , Fv/Fm, Y(II)=&Delta F/Fm' , ETR, a, Ik, Pm, PAR、蓝藻Chla含量、绿藻Chla含量、硅/甲藻Chla含量、总Chla含量等特点1) 全世界第一台可对浮游植物自动分类的调制叶绿素荧光仪2) 4波长光源:470、520、645和665 nm3) 对蓝藻、绿藻和硅/甲藻进行分类4) 可选配室内系统(I)、野外系统(II)和测附着藻类/大型藻类的系统(III)5) 灵敏度高,检测限为0.1 &mu g L-1 Chl6) 专业PhytoWin操作软件,数据收集、分析和存贮功能强大7) 用户可利用培养的微藻做参考光谱,非&ldquo 黑匣子&rdquo 8) 可在野外测量后根据水体藻类组成利用优势种(一种或多种)的参考光谱校对实验结果利用PHYTO-PAM进行水华预警的原理藻类的生长靠光合作用,藻华的爆发是在特定的环境条件下(富营养、高光、高温)由藻类短期快速暴增造成的,这其间藻类必须具备极强的光合作用才能快速生长。监测叶绿素a含量可以了解目前水体中的藻类生物量,但这只代表历史(如果营养盐很低,即使当前藻类生物量高,也不具备发生藻华的可能);而监测藻类的光合作用活性可以了解藻类的&ldquo 生长潜能&rdquo ,结合其它环境条件可以预测未来(富营养条件且高光高温下,即使当前藻类生物量不高,但只要光合作用活性强,就具有极大的发生藻华的可能)。由于PHYTO-PAM可以测量自然水样中蓝藻、绿藻和硅/甲藻各自的光合作用,就可以对藻华发生时不同藻类类群进行分析。利用PHYTO-PAM测量不同藻类叶绿素a含量和光合作用活性的功能,可以长期监测自然水体中浮游植物种群生物量的动力学变化和不同类群光合作用潜力的变化趋势,这对于藻华的预警具有重要参考价值。推荐阅读:有害藻华(HABs)监测/预警的新解决方案PHYTO-PAM最常用的光合作用参数 Fv/Fm,浮游植物的潜在最大光合效率(&ldquo 生长潜能&rdquo ) Y,给定光强下浮游植物的实际光合效率 NPQ,浮游植物将过剩光能耗散为热的能力,即光保护能力 ETR,给定光强下浮游植物的实际光合速率 ETRmax,浮游植物的潜在最大光合速率 a,浮游植物对光强的利用能力 Ik,浮游植物耐受强光的能力 快速光曲线,结合水体光场可用于计算水体初级生产力利用PHYTO-PAM对水体长期监测的方法设计为大时间尺度,采样频率为每月一次,频率越高越好。采样时可设计多个样点,每个样点都分层采样测量。这样就可测量蓝藻Chla、绿藻Chla、硅/甲藻Chla、总Chla、Fv/Fm、Ik、NPQ等的时间和空间动态变化,获知三大类群的浮游植物生物量、&ldquo 生长潜能&rdquo 、耐受强光的能力、光保护能力等的时空动态变化,提前预判其变化趋势,结合其它水质气象指标,进行早期的藻华预警。应用实例一:太湖蓝藻水华成因分析2007年,太湖发生了严重的蓝藻水华,在国内外引起广泛关注。蓝藻水华爆发的一个重要原因是周边地区往太湖中排污过多,造成湖泊严重富营养化,在适宜的光照和温度条件下藻类疯长形成水华。但是太湖中的藻类不仅仅包括蓝藻,也有绿藻、硅藻、甲藻等,为什么总是爆发蓝藻水华,其它藻并不形成水华呢?中国科学院南京地理与湖泊研究所湖泊与环境国家重点实验室科研人员利用可对自然水体中的藻类定性、定量并测量光合作用活性的浮游植物荧光仪PHYTO-PAM,探讨了蓝藻在太湖中爆发水华的原因。主要研究结果如下:光作为藻类生长的重要能量来源,浮游藻类光利用效率的不同对水体中浮游藻类初级生产力、群落组成以及种群演替具有重要影响。本研究发现蓝藻、绿藻、硅/甲藻三种具有不同的对光照和垂直混合的响应策略,蓝藻的强光耐受能力以及对过剩光能的耗散能力均超过其他两种藻;同时蓝藻主要聚集在表层到0.3 m的深度,而在此深度藻类具有更高的生长速率,绿藻和硅/甲藻则由于垂直混合和自身调节等作用的作用下,不具备蓝藻这一优势,这可能是富营养化水体中蓝藻占据优势的原因之一。(Zhang M, Kong FX, Wu X, Xing P. Different photochemical responses of phytoplankters from the large shallow Taihu Lake of subtropical China in relation to light and mixing. Hydrobiologia 2008, 603:267-278.)应用实例二:微囊藻低温弱光环境下过冬机理经常发生水华的微囊藻在冬天会沉降到底泥中进行越冬。底泥属于低温弱光环境,在这么苛刻的环境下微囊藻是怎么越冬的,目前了解的不多。中国科学院水生生物研究所淡水生态与生物技术国家重点实验室科研人员利用人工培养的单细胞铜绿微囊藻、群体铜绿微囊藻和斯尾栅藻进行了低温弱光环境下的耐受力和复壮实验,其中光合作用活性的测量利用浮游植物荧光仪PHYTO-PAM进行。结果发现经过30天的低温弱光环境处理后,栅藻的光合活力受到显著抑制,而微囊藻仅受到轻微影响,且群体微囊藻细胞比单细胞微囊藻的耐受力更强。复壮培养后,栅藻的回复速度和生长潜力明显低于微囊藻。这对于分析微囊藻的越冬机理和水华机理具有重要参考意义。(Wu Z, Song L, Li R. Different tolerances and responses to low temperature and darkness between waterbloom forming cyanobacterium Microcystis and a green alga Scenedesmus Hydrobiologia 2008, 596:47-55.)选购指南● 基础配置○ 可选配置系统I(实验室版) 系统II(野外版) 系统III(光纤版) 主机PHYTO-C●●●测量光LED阵列PHYTO-ML● 光化光LED阵列PHYTO-AL● 光电倍增管PM-101P● 光学单元ED-101US/MP● 工作台ST-101● 激发-检测单元PHYTO-ED ● 光纤型激发-检测单元PHYTO-EDF ●微型磁力搅拌器PHYTO-MS○ 球状微型光量子探头US-SQS○○○温度控制器US-T○ 搅拌器WATER-S ○ 主要技术参数测量光:波长470、520、645和665 nm的测量光LED。光化光:波长655 nm的LED;光化光强度0~2000 &mu mol m-2 s-1 PAR(系统I和II)或0~1300 &mu mol m-2 s-1 PAR(系统III)。饱和脉冲:波长655 nm的LED;饱和脉冲强度4000 &mu mol m-2 s-1 PAR(系统I和II)或2600 &mu mol m-2 s-1 PAR(系统III)。信号检测:光电倍增管,带短波截止滤光片(&lambda 710 nm);选择性锁相放大器。测量参数:Ft, F(或Fo), Fm(或 Fm&rsquo ), &Delta F, Y(&Delta F/ Fm&rsquo 或Fv/Fm), ETR和Chl浓度等。环境温度:-5~+45 ℃,已在极地成功应用。部分文献1.Guasch H, Atli G, Bonet B, Corcoll N, Leira M, Serra A: Discharge and the response of biofilms to metal exposure in Mediterranean rivers. Hydrobiologia2010:in press.[PHYTO-PAM]2.Liu Y, Wang W, Zhang M, Xing P, Yang Z: PSII-efficiency, polysaccharide production, and phenotypic plasticity of Scenedesmus obliquus in response to changes in metabolic carbon flux Biochemical Systematics and Ecology2010:in press.[PHYTO-PAM]3.Pesce S, Margoum C, Montuelle B: In situ relationships between spatio-temporal variations in diuron concentrations and phototrophic biofilm tolerance in a contaminated river. Water Research2010, 44:1941-1949.[PHYTO-PAM]4.Soares MCS, Lü rling M, Huszar VLM: Responses of the rotifer Brachionus calyciflorus to two tropical toxic cyanobacteria (Cylindrospermopsis raciborskii and Microcystis aeruginosa) in pure and mixed diets with green algae. Journal of Plankton Research2010:in press.[PHYTO-PAM]5.van Ruth PD, Ganf GG, Ward iM: The influence of mixing on primary productivity: A unique application of classical critical depth theory Progress In Oceanography2010:in press.[PHYTO-PAM]6.Wang H, Liu L, Liu ZP, Qin S: Investigations of the characteristics and mode of action of an algalytic bacterium isolated from Tai Lake. Journal of Applied Phycology2010:in press.[PHYTO-PAM]7.Zhu J, Liu B, Wang J, Gao Y, Wu Z: Study on the mechanism of allelopathic influence on cyanobacteria and chlorophytes by submerged macrophyte (Myriophyllum spicatum) and its secretion Aquatic Toxicology2010:in press.[PHYTO-PAM]8.任秋芳, 阿依巧丽, 智朱, 张义方, 波曾: 三峡库区季节及养分对铜绿微囊藻生长的影响&mdash &mdash 模拟乌江回水区水环境的研究. 重庆师范大学学报2010, 27(1):1-4.[PHYTO-PAM]9.Aikawa S, Hattori H, Gomi Y, Watanabe K, Kudoh S, Kashino Y, Satoh K: Diel tuning of photosynthetic systems in ice algae at Saroma-ko Lagoon, Hokkaido, Japan Polar Science2009, 3(1):57-72.[PHYTO-PAM]10.Dimier C, Brunet C, Geider R, Raven J: Growth and photoregulation dynamics of the picoeukaryote Pelagomonas calceolata in fluctuating light Limnology and Oceanography2009, 59(3):823-836.[PHYTO-PAM]11.Franklin D, Choi CJ, Hughes C, Malin G, Berges JA: Effect of dead phytoplankton cells on the apparent efficiency of photosystem II. Marine Ecology Progress Series2009, 382:35-40.[PHYTO-PAM]12.Hall SR, Becker CR, Simonis JL, Duffy MA, Tessier AJ, Cá ceres CE: Friendly competition: evidence for a dilution effect among competitors in a planktonic host&ndash parasite system. Ecology2009, 90(6):1441-1448.[PHYTO-PAM]13.Izagirre O, Serra A, Guasch H, Elosegi A: Effects of sediment deposition on periphytic biomass, photosynthetic activity and algal community structure. Science of The Total Environment2009, 407(21):5694-5700.[PHYTO-PAM]14.Lee Y, Kang C, Kwon K, Kim S: Organic and inorganic matter increase related to eutrophication in Gamak Bay, South Korea Journal of Environmental Biology 2009, 30(3):373-380.[PHYTO-PAM]15.Lee YS, Kim JD, Lim WA, Lee SG: Survival and growth of Cochlodinium polykrikoides red tide after addition of yellow loess. Journal of Environmental Biology2009, 30(6):929-932.[PHYTO-PAM]16.Marchetti A, Parker MS, Moccia LP, Lin EO, Arrieta AL, Ribalet F, Murphy MEP, Maldonado MT, Armbrust EV: Ferritin is used for iron storage in bloom-forming marine pennate diatoms. Nature2009, 457:467-470.[PHYTO-PAM]17.Morin S, Pesce S, Tlili A, Coste M, Montuelle B: Recovery potential of periphytic communities in a river impacted by a vineyard watershed Ecological Indicators2009, 10(2):419-426.[PHYTO-PAM]18.Nymark M, Valle KC, Brembu T, Hancke K, Winge P, Andresen K, Johnsen G, Bones AM: An Integrated Analysis of Molecular Acclimation to High Light in the Marine Diatom Phaeodactylum tricornutum. PLoS ONE2009, 4(11):e7743. doi:7710.1371/journal.pone.0007743.[PHYTO-PAM]19.Pesce S, Margoum C, Montuelle B: In situ relationships between spatio-temporal variations in diuron concentrations and phototrophic biofilm tolerance in a contaminated river. Water Research2009, 44(6):1941-1949.[PHYTO-PAM]20.Serra A, Corcoll N, Guasch H: Copper accumulation and toxicity in fluvial periphyton: The influence of exposure history Chemosphere2009, 74(5):633-641.[PHYTO-PAM]21.Serra A, Guasch H: Effects of chronic copper exposure on fluvial systems: Linking structural and physiological changes of fluvial biofilms with the in-stream copper retention. Science of The Total Environment2009, 407(19):5274-5282.[PHYTO-PAM]22.Serra A, Guasch H, Martí E, Geiszinger A: Measuring in-stream retention of copper by means of constant-rate additions Science of The Total Environment2009, 407(12):3847-3854.[PHYTO-PAM]23.Shi S, Tang D, Liu Y: Effects of an Algicidal Bacterium Pseudomonas mendocina on the Growth and Antioxidant System of Aphanizomenon flos-aquae Current Microbiology 2009, 59(2):107-112.[PHYTO-PAM]24.Wu Z, Shi J, Li R: Comparative studies on photosynthesis and phosphate metabolism of Cylindrospermopsis raciborskii with Microcystis aeruginosa and Aphanizomenon flos-aquae Harmful Algae 2009, 8(6):910-915.[PHYTO-PAM]25.Yang Z, Kong F, Yang Z, Zhang M, Yu Y, Qian S: Benefits and costs of the grazer-induced colony formation in Microcystis aeruginosa. Ann Limnol - Int J Lim2009, 45(3):203-208.[PHYTO-PAM]26.陈元, 赵洋甬, 潘双叶, 徐运, 蒋蕾蕾: PHYTO-PAM对浮游植物中叶绿素的分类测定. 现代科学仪器2009(4):100-104.[PHYTO-PAM]27.朱晓敏, 黄清辉, 李建华: 咸水藻水华期溶解有机质光谱特征变化的模拟. 中国环境科学2009, 29(1):68-72.[PHYTO-PAM]28.Brussaard CPD, Timmermans KR, Uitz J, Veldhuis MJW: Virioplankton dynamics and virally induced phytoplankton lysis versus microzooplankton grazing southeast of the Kerguelen (Southern Ocean) Deep Sea Research2008, 55(5-7):752-765.[PHYTO-PAM]29.Howeth JG, Leibold MA: Planktonic dispersal dampens temporal trophic cascades in pond metacommunities. Ecology Letters2008, 11(3):245-257.[PHYTO-PAM]30.Ingleton T, Kobayashi T, Sanderson B, Patra R, Macinnis-Ng CMO, Hindmarsh B, Bowling LC: Investigations of the temporal variation of cyanobacterial and other phytoplanktonic cells at the offtake of a large reservoir, and their survival following passage through it. Hydrobiologia2008, 603(1):221-240.[PHYTO-PAM]31.Schmitt-Jansen M, Altenburger R: Community-level microalgal toxicity assessment by multiwavelength-excitation PAM fluorometry Aquatic Toxicology2008, 86(1):49-58.[PHYTO-PAM]32.Timmermans KR, Veldhuis MJW, Laan P, Brussaard CPD: Probing natural iron fertilization near the Kerguelen (Southern Ocean) using natural phytoplankton assemblages and diatom cultures. DeepSeaResearch2008, 55(5-7):693-705.[PHYTO-PAM]33.Wang G, Chen K, Chen L, Hu C, Zhang D, Liu Y: The involvement of the antioxidant system in protection of desert cyanobacterium Nostoc sp. against UV-B radiation and the effects of exogenous antioxidants Ecotoxicology and Environmental Safety2008, 69(1):150-157.[PHYTO-PAM]34.Wu Z, Song L, Li R: Different tolerances and responses to low temperature and darkness between waterbloom forming cyanobacterium Microcystis and a green alga Scenedesmus Hydrobiologia 2008, 596(1):47-55.[PHYTO-PAM]35.Wu Z-X, Song L-R: Physiological comparison between colonial and unicellular forms of Microcystis aeruginosa Kutz. (Cyanobacteria). Phycologia2008, 47(1):98-104.[PHYTO-PAM]36.Zhang M, Kong FX, Wu X, Xing P: Different photochemical responses of phytoplankters from the large shallow Taihu Lake of subtropical China in relation to light and mixing. In: Hydrobiologia. vol. 603 2008: 267-278.37.胡智泉, 刘永定, 肖波: 微囊藻毒素对几种淡水微藻的生长和光合活性的影响. 生态环境2008, 17(3):885-890.[PHYTO-PAM]38.康丽娟, 潘晓洁, 常锋毅, 李敦, 沈银武, 刘永定: HCO3-碱度增加对铜绿微囊藻光合活性和超微结构的影响. 武汉植物学研究2008, 26(1):70-75.[PHYTO-PAM]39.康丽娟, 潘晓洁, 常锋毅, 李敦海, 沈银武, 刘永定: 碱度增加对蛋白核小球藻光合活性与胞外多糖的影响. 湖泊科学2008, 20(2):251-256.[PHYTO-PAM]40.林燊, 彭欣, 吴忠兴, 李仁辉: 我国水华蓝藻的新类群&mdash &mdash 阿氏浮丝藻(Planktothrix agardhii)生理特性. 湖泊科学2008, 20(4):437-442.[PHYTO-PAM]41.苏彦平, 李敦海, 王坎, 刘永定: 念珠藻葛仙米生理生化特性对不同低温胁迫的响应. 武汉植物学研究2008, 26(3):310-314.[PHYTO-PAM]42.Alsterberg C, Sundbä ck K, Larson F: Direct and indirect effects of an antifouling biocide on benthic microalgae and meiofauna Journal of Experimental Marine Biology and Ecology2007, 351(1-2):56-72.[PHYTO-PAM]43.Dimier C, Corato F, Saviello G, Brunet C: Photophysiological properties of the marine picoeukaryotePicochlorum RCC237 (Trebouxiophyceae, Chlorophyta). Journal of Phycology2007, 43(2):275-283.[PHYTO-PAM]44.Dimier C, Corato F, Tramontano F, Brunet C: Photoprotection and xanthophyll-cycle activity in three marine diatoms. Journal of Phycology2007, 43(5):937-947.[PHYTO-PAM]45.Domis LNDS, Mooij WM, Huisman J: Climate-induced shifts in an experimental phytoplankton community: a mechanistic approach. Hydrobiologia2007, 584:403-413.[PHYTO-PAM]46.Kim MK, Park JW, Park CS, Kim SJ, Jeune KH, Chang MU, Acreman J: Enhanced production of Scenedesmus spp. (green microalgae) using a new medium containing fermented swine wastewater. Bioresource Technology2007, 98(11):2220-2228.[PHYTO-PAM]47.Schmitt-Jansen M, Altenburger R: The use of pulse-amplitude modulated (PAM) fluorescence-based methods to evaluate effects of herbicides in microalgal systems of different complexity Toxicological and Environmental Chemistry2007, 89(4):665-681.[PHYTO-PAM, WATER-PAM, MICROSCOPY-PAM]48.Shen H, Song L-R: Comparative studies on physiological responses to phosphorus in two phenotypes of bloom-forming Microcystis. Hydrobiologia2007, 592:475-486.[PHYTO-PAM]49.Tang D, Shi S, Li D, Hu C, Liu Y: Physiological and biochemical responses of Scytonema javanicum (cyanobacterium) to salt stress Journal of Arid Environments2007, 71(3):312-320.[PHYTO-PAM]50.Wu Z-X, Gan N-Q, Huang Q, Song L-R: Response of Microcystis to copper stress - Do phenotypes of Microcystis make a difference in stress tolerance? Environmental Pollution2007, 147:324-330.[PHYTO-PAM]51.Xing W, Huang W-M, Li D-H, Liu Y-D: Effects of Iron on Growth, Pigment Content, Photosystem II Efficiency, and Siderophores Production of Microcystis aeruginosa and Microcystis wesenbergii Current Microbiology 2007, 55:94-98.[PHYTO-PAM]52.Zhang M, Kong F, Xing P, Tan X: Effects of Interspecific Interactions between Microcystis aeruginosa and Chlorella pyrenoidosa on Their Growth and Physiology. International Review of Hydrobiology2007, 92(3):281-290.[PHYTO-PAM]53.陈丽芬, 郑锋: 叶绿素荧光技术快速测定水体藻类生物量的应用. 城镇供水2007(6):51-52.[PHYTO-PAM]54.康丽娟, 刘永梅, 李敦海, 刘永定: 不同盐度下水华束丝藻对CO2浓度倍增的生理响应. 水生生物学报2007, 31(5):671-674.[PHYTO-PAM]55.刘永梅, 刘永定, 李敦海, 沈银武: 氮磷对水华束丝藻生长及生理特性的影响. 水生生物学报2007, 31(6):774-779.[PHYTO-PAM]56.吴晓东, 孔繁翔, 曹焕生, 张民, 刘桂民, 赵巧华: 越冬浮游植物光合作用活性的原位研究. 湖泊科学2007, 19(2):139-145.[PHYTO-PAM]57.张曼, 曾波: PhytoPAM浮游植物分析仪用于微藻光合作用研究中几种参数设定的优化. 植物生理学通讯2007, 43(1):148-152.[PHYTO-PAM]58.张曼, 曾波, 王明书, 吴国平, 任秋芳: 温度升高对高光强环境下蛋白核小球藻(Chlolorella pyrenoidosa)光能利用和生长的阻抑效应. 生态学报2007, 27(2):662-667.[PHYTO-PAM]59.Ban A, Aikawa S, Hattori H, Sasaki H, Sampei M, Kudoh S, Fukuchi M, Satoh K, Kashino Y: Comparative analysis of photosynthetic properties in ice algae and phytoplankton inhabiting Franklin Bay, the Canadian Arctic, with those in mesophilic diatoms during CASES 03-04. Polar Biosciences2006, 19:11-28.[PHYTO-PAM]60.Bontes BM, Pel R, Ibelings BW, Boschker HTS, Middelburg JJ, Donk EV: The effects of biomanipulation on the biogeochemistry, carbon isotopic composition and pelagic food web relations of a shallow lake. Biogeosciences2006, 3:69-83.[PHYTO-PAM]61.Hilt S, Ghobrial MGN, Gross EM: In situ allelopathic potential of Myriophyllum verticillatum (Haloragaceae) against selected phytoplankton species. Journal of Phycology2006, 42(6):1189-1198.[PHYTO-PAM]62.Liang Y, Beardall J, Heraud P: Changes in growth, chlorophyll fluorescence and fatty acid composition with culture age in batch cultures of Phaeodactylum tricornutum and Chaetoceros muelleri (Bacillariophyceae). Botanica Marina2006, 49(2):165-173.[PHYTO-PAM]63.Lü rling M, Geest Gv, Scheffer M: Importance of Nutrient Competition and Allelopathic Effects in Suppression of the Green Alga Scenedesmus obliquus by the Macrophytes Chara, Elodea and Myriophyllum Hydrobiologia 2006, 556(1):209-220.[PHYTO-PAM]64.Mulderij G, Smolders AJP, van Donk E: Allelopathic effect of the aquatic macrophyte, Stratiotes aloides, on natural phytoplankton. Freshwater Biology2006, 51(3):554-561.[PHYTO-PAM]65.Quigg A, Kevekordes K, Raven JA, Beardall J: Limitations on microalgal growth at very low photon fluence rates: the role of energy slippage Photosynthesis Research2006, 88(3):299-310.[PAM-2000, PHYTO-PAM]66.Roessink I, Belgers JDM, Crum SJH, van den Brink PJ, Brock TCM: Impact of triphenyltin acetate in microcosms simulating floodplain lakes. II. Comparison of species sensitivity distributions between laboratory and semi-field. Ecotoxicology2006, 15(5):411-424.[MINI-PAM, PHYTO-PAM]67.Bontes BM, Pel R, Ibelings BW, Boschker HTS, Middelburg JJ, Donk Ev: The effects of biomanipulation on the biogeochemistry, carbon isotopic composition and pelagic food web relations of a shallow turf lake. Biogeosciences Discussions2005, 2:997-1031.[PHYTO-PAM]68.Casotti R, Mazza S, Brunet C, Vantrepotte V, Ianora A, Miralto A: Growth inhibition and toxicity of the diatom aldehyde 2-trans, 4-trans-decadienal on Thalassiosira weissflogii (Bacillariophyceae). Journal of Phycology2005, 41(1):7-20.[PHYTO-PAM]69.Fietz S, Bleiß W, Hepperle D, Koppitz H, Krienitz L, Nicklisch A: First record of Nannochloropsis limnetica (Eustigmatophyceae) in the autotrophic picoplankton from lake Baikal. Journal of Phycology2005, 41(4):780-790.[PHYTO-PAM]70.Heraud P, Roberts S, Shelly K, Beardall J: Interations between UV-B exposure and phosphorus nutrition. II. Effects on rates of damage and repair. Journal of Phycology2005, 41(6):1212-1218.[PHYTO-PAM]71.Jakob T, Schreiber U, Kirchesch V, Langner U, Wilhelm C: Estimation of chlorophyll content and daily primary production of the major algal groups by means of multiwavelength-excitation PAM chlorophyll fluorometry: performance and methodological limits. Photosynthesis Research2005, 83:343&ndash 361.[PHYTO-PAM]72.Shelly K, Roberts S, Heraud P, Beardall J: Interactions between UV-B exposure and phosphorus nutrition. I. Effects on growth, phosphate uptake, and chlorophyll fluorescence. Journal of Phycology2005, 41(6):1204-1211.[PAM-2000, PHYTO-PAM]73.van derGrinten E, Janssen APHM, Mutsert Kd, Barranguet C, Admiraal W: Temperature- and light-dependent performance of the cyanobacterium Leptolyngbya foveolarum and the diatom Nitzschia perminuta in mixed biofilms. Hydrobiologia2005, 548(1):267-278.[PHYTO-PAM]74.Wang G, Chen L, Li G, Li D, Hu C, Chen H, Liu Y, Song L: Improving photosynthesis of microalgae by changing the ratio of light-harvesting pigments. Chinese Science Bulletin2005, 50(15):1622-1626.[PHYTO-PAM]75.Hu Z-Q, Liu Y-D, Li D-H: Physiological and biochemical analyses of microcystin-RR toxicity to the cyanobacterium Synechococcus elongatus. Environmental Toxicology2004, 19(6):571-577.[PHYTO-PAM]76.van der Grinten E, Janssen M, Simis SGH, Barranguet C, Admiraal W: Phosphate regime structures species composition in cultured phototrophic biofilms. Freshwater Biology2004, 49:369-381.[PHYTO-PAM]77.van der Grinten E, Simis S, Barranguet C, Admiraal W: Dominance of diatoms over cyanobacterial species in nitrogen-limited biofilms Archiv fuer Hydrobiologie 2004, 161(1):98-111.[PHYTO-PAM]78.Verspagen JMH, Snelder EOFM, Visser PM, Huisman J, Mur LR, Ibelings BW: Recruitment of benthic Microcystis (Cyanophyceae) to the water column: internal buoyancy changes or resuspension? Journal of Phycology2004, 40(2):260-270.[PHYTO-PAM]79.李阔宇, 宋立荣, 万能: 底泥中微囊藻复苏和生长特性的研究. 水生生物学报2004, 28(2):113-118.[PHYTO-PAM]80.Lurling M: Daphnia growth on microcystin-producing and microcystin-free Microcystis aeruginosa in different mixtures with the green alga Scenedesmus obliquus. Limnology and Oceanography2003, 48(6):2214-2220.[PHYTO-PAM]81.Lü rling M, Verschoor AM: Fo-spectra of chlorophyll fluorescence for the determination of zooplankton grazing. Hydrobiologia2003, 491:145-157.[PHYTO-PAM]82.Mulderij G, Van Donk E, Roelofs2 GM: Differential sensitivity of green algae to allelopathic substances from Chara. Hydrobiologia2003, 491:261-271.[PHYTO-PAM]83.Verschoor AM, Takken J, Massieux B, Vijverberg J: The Limnotrons: a facility for experimental community and food web research. Hydrobiologia2003, 491:357-377.[PHYTO-PAM]84.Young EB, Beardall J: Photosynthetic function in Dunaliella tertiolecta (Chlorophyta) during a nitrogen starvation and recovery cycle. Journal of Phycology2003, 39(5):897-905.[PHYTO-PAM]85.Kö rner S, Nicklisch A: Allelopathic growth inhibition of selected phyplankton species by submerged macrophytes. Journal of Phycology2002, 38:862-871.[PHYTO-PAM]86.Schreiber U, Gademann R, Bird P, Ralph PJ, Larkum AWD, Kü hl M: Apparent light requirement for activation of photosynthesis upon rehydration of desiccated beachrock microbial mats. Journal of Phycology2002, 38:125-134.[PHYTO-PAM]87.Nicklisch A, Kö hler J: Estimatin of primary production with Phyto-PAM-fluorometry. Ann Report Inst Freshw Ecol Inland Fish Berlin2001, 13:47-60.[PHYTO-PAM]88.Varotto C, Pesaresi P, Maiwald D, Kurth J, Salamini F, Leister D: Identification of Photosynthetic mutants of Arabidopsis by automatic screening for altered effective quantum yield of photosystem 2. Photosynthetica2000, 38(4):497-504.[PAM-100, PHYTO-PAM]89.Schreiber U: Chlorophyll fluorescence: new instruments for special applications. In: Photosynthesis: Mechanisms and Effects. Edited by Garab G, vol. V. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers 1998.90.Kolbowski J, Schreiber U: Computer-controlled phytoplankton analyzer based on 4-wavelengths PAM chlorophyll fluorometer. In: Photosynthesis: from light to Biosphere. Edited by Mathis P, vol. V. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers 1995: 825-828.
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  • 荧光显微镜在海洋生态环境监测中有广泛的应用。由于海洋中的生物和物质成分复杂,荧光显微镜能够提供高灵敏度和特异性的检测,对于海洋生态环境的评估和保护具有重要意义。荧光显微镜可以用于检测海洋中的微小浮游植物,包括浮游植物的种类、数量、生长状况等,这些信息对于评估海洋生态系统的健康状况和环境变化具有重要意义。此外,荧光显微镜还可以用于检测海洋中的有机物、重金属等污染物,以及生物体内的污染物含量和分布情况,这些信息对于研究污染物的来源、扩散和影响也具有重要意义。对于某些深海生物和微小颗粒可能难以观察,对于不同种类的生物和物质成分可能需要不同的荧光标记和激发波长。荧光显微镜的优点在于其高灵敏度和特异性,能够检测出较低浓度的生物和物质成分,而且可以通过荧光标记等技术手段对特定目标进行选择性观察和检测。此外,荧光显微镜还可以与其他技术手段结合使用,例如与流式细胞术结合,可以实现高通量和自动化检测。倒置荧光显微镜MHIF2000广泛使用于医疗检验、病理诊断、免疫荧光、细胞观察等领域,用来观察生物切片、生物细胞、细菌以及活体组织培养、流质沉淀等的观察和研究,同时可以观察其他透明或者半透明物体以及粉末、细小颗粒等物体,应用于科研院所、高等院校、医疗卫生、检验检疫、农牧乳业等部门,在食品检验、水质鉴定、晶体结构分析及化学反应沉淀物分析等领域充分发挥其作用。本款产品可根据客户需求增加荧光附件来实现荧光观察功能,通过拉杆或者转盘即可轻松实现明场和荧光观察方式之间的切换,同时还可以通过接口适配器连接相机实现显微成像的目的。倒置荧光显微镜MHIF2000参数配置表:MHIF2000倒置荧光显微镜配置表型号MHIF2000数量光学系统UCIS无限远色差独立校正光学系统配置类型荧光目镜高眼点平场目镜10X/Φ20mm2调焦机构使用粗/微调焦旋钮控制物镜转盘垂直移动,行程:14mm,配有限位装置和锁紧装置1低手位粗微调同轴调焦手轮,每圈调焦旋钮行程:20mm(粗调),0.1mm(微调)物镜转盘五孔物镜转盘1载物台平板式载物台:200mm(L) x 266mm(W),配有可替换的水滴载物片(φ110)1水滴载物片+压片组相衬装置相衬环板推拉组1聚光镜长工作距离聚光镜,转盘式调制相衬装置,调制相衬观察适应1数值孔径:0.30;工作距离:72mm适用物镜:2倍至60倍,带有孔径光阑观察镜筒三目观察筒,30°倾斜,360°旋转,瞳距48-75mm,±5视度调节1光路:目镜/成像端口=0:100/100:0,通过拉杆切换物镜无穷远长距平场消色差110X NA 0.25 W.D. 9.5mm20X NA 0.40 W.D. 7.97mm20X PH NA 0.40 W.D. 7.97mm40X NA 0.60 W.D. 3.77mm荧光照明器LED光源,亮度连续可调,可数显强度,12V/2A电源适配器1标配三组激发块,其他种类可定制紫外(UV): EX360/50nm DM:400nm EM:410nmLP蓝色(B): EX475/35nm DM:500nm EM:530/50nm绿色(G): EX530/40nm DM:560nm EM:575nmLP成像端口C型接口;TV1XC-U1上光源5W LED光源,连续可调1附件防尘罩1额定电压/电流AC 100-240V 50/60Hz 0.4A1荧光显微镜用于海洋生态环境监测 检测海洋中的微小浮游植物
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  • 浮游生物培养器 400-860-5168转2703
    名称:浮游植物培养器 | 浮游动物培养器型号:PLR | PR产地:欧洲介绍:PLR培养器用于在实验室内培育藻类等浮游植物。当光照、CO2和营养等条件持续充沛,培养器内的微藻生长迅速,24小时内总量可扩增四倍。淡水和海水类浮游植物都可以在PLR培养器中进行培养。PR培养器可进行海水或淡水类浮游动物的培养。在最佳条件的藻类养料供应下,轮虫(Brachionus)等浮游动物的生物量在4天中可增长一倍。PLR和PR配置相同,唯一区别在于PLR培养器拥有照明系统。培养器使用时需固定在墙上。技术参数容积:2.5L内径:80mm长度:80cm管接口:6mm照明单元:18W荧光灯(PLR浮游植物培养器配备)主要配置:培养器,墙托,气泵接口,固定夹,充气泵,照明系统(PLR培养器专属)
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  • FlowCamMacro采用先进的流体分析、显微成像、荧光监测、智能数据分析技术,实现水体中浮游生物的半自动识别及分类、计数功能。全球有超过300套FlowCam系统在为用户提供服务,进行测定、识别和研究浮游植物以及小型的浮游动物样品。新的FlowCam Macro浮游动物自动分类系统采用了前沿的颗粒成像技术,更新、更高分辨率的镜头(1200*1920像素),具有更快的帧率(高达100fps),更加适合于浮游动物或其它大颗粒的研究(最大5mm)。仪器可以实现浮游动物的数量统计及种类统计。应用:浮游动物分类浮游动物计数颗粒物分析水生态研究海洋生态监测
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  • 浮游生物计数框 400-860-5168转2703
    名称:浮游生物计数框 | 藻类计数框型号:CC-F制造商:北京普力特仪器有限公司介绍:用于光学显微镜下鉴定和统计水样中的浮游植物(藻类)和小型浮游动物。技术参数材质:玻璃规格:0.1mL,1mL0.1mL计数框:样品池20mm x 20mm,底部均分100正方格,模具做线,线粗度0.02mm;样品池围边为不锈钢。1mL计数框:样品池50mm x 20mm,底部均分40正方格,激光做线;样品池围边为玻璃对接。--------------------------------------------------------------------------------名称:大型浮游生物计数框型号:CC-S制造商:北京普力特仪器有限公司介绍:用于立体显微镜或体视镜下鉴定和统计水样中的大型浮游生物(多为大型浮游动物)。技术参数材质:玻璃规格:5mL,10mL样品池:凹槽回路结构,精细切磨工艺。
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  • 名称:PB250浮游生物培养器 型号:PB250 产地:德国 介绍:PB250微藻培养器用于专业培养浮游植物(藻类)。培养罐内置照明系统,螺纹式顶盖可轻松开合,整体结实耐用。正常条件下,每天可替换30%体积的培养液。 技术参数容积:12L; 内径:200mm; 高度:520mm 浮游生物培养器主要配置透明培养罐,磁铁搅拌器,照明单元,充气泵,培养控制器 名称:培养控制器 浮游生物培养器介绍:对PB200藻类大型培养器进行自动控制。可对培养器提供电源,按设定时间自动控制照明、添加营养液等功能。 体积:220mm x 80mm x 70mm 电压/ 功率:85-250VAC / 5W
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  • Coastal Ocean Vision公司生产的水下浮游生物连续彩色成像及分类系统(CPICS)是先进的水下显微成像仪器,用于海水、淡水和实验室样品中微小的浮游植物和浮游动物及其他颗粒物的连续彩色成像及分类。CPICS采用先进的暗场显微成像技术(DarkfieldIllumination),可以捕捉浮游生物特征小至40μm,大至1.2cm。科学界发现,彩色图像是对生物进行高准确度分类的关键,同时也提供了重要的生理信息,比如因吃了某种浮游植物而留存在体内的色素。CPICS具备开放的视野,在水下直接成像,水中生物处于自由游动的状态,所以能够完整的捕捉到浮游动物的细微的生体结构及原始的生活状态,比如捕食过程。CPICS获取的ROIsCPICS应用:1.扫描浮游动物、浮游植物、微小颗粒物;2.连续彩色成像、自动分类、计数、时间序列丰度分析;3.海洋、湖泊、河流、水库、饮用水源;4.可安装于:剖面仪、多瓶采水器、海底观测网、浮标、潜标、变水层拖体、AUV、ROV、载人潜水器、深海Lander;5.科学研究、环境监测。CPICS主要特点:1、先进的成像技术:CPICS采用先进的暗场显微成像技术(DarkfieldIllumination),与传统的明场成像和全息成像相比,可生成更高对比度、更高分辨率的彩色图像;2、高性能光源:CPICS配备高输出、高寿命的LED环形阵列,对聚焦区域进行完全照明,不会产生任何阴影;3、高性能镜头:CPICS配备的是远心镜头,可在全景深范围(DOF)内保持恒定的放大倍率,并对聚焦采样体积(FOV视野)内所有生物体进行拍照;4、CPICS具有高达1.5L的开放式流动区域,在水下直接成像,无需像实验室仪器或流式细胞仪那样将水样抽到仪器内部进行拍照,不破坏水中生物的自由游动状态,所以能够完整的捕捉到浮游动物的细微的生体结构及原始的生活状态;5、自动化程度高: CPICS内置高性能图像处理器及大容量存储器,可现场对ROI进行自动提取、处理并保存。此外,CPICS带有WiFi功能,无需打开仪器外壳,即可以通过电脑直接连接WiFi,对CPICS进行各种参数的设置;6、灵活性高:多种配置及放大倍率的镜头可供用户选择,以便对感兴趣尺寸大小的浮游生物进行高质量的成像拍照。比如:超微型、微型、小型、中型或大型浮游生物;7、适用海域广:不但适用于水质较清水域,还可以用于高浊度水体(大于100NTU);8、使用范围广:不但可用于海底观测网进行定点长期观测,还可用于CTD,拖体,锚系,剖面测量或者搭载到无人潜水器(ROV,AUV,Glider等);9、基于浏览器的分类软件:ROI-Manage手动和ROI-Class自动分类软件运行在美国COV厂家的服务器上,特征提取和分类解码程序可以自动更新,免除了用户大量的维护工作。只要用户能够上网,就可以通过浏览器来登陆分类软件进行分类和数据显示;10、CPICS的另一个优势是:对浮游生物和颗粒物进行自动分类,结合我们提供的OceanCube海底多传感器平台上的其他传感器和ROI-CLASS分析软件,CPICS能让科学家更好的观察并了解水生生物的生态和生理,比如不同的浮游生物种类在不同的环境参数影响(水温、深度、盐度、光照、溶解氧等)下的空间分布,以及随时间而变化。CPICS案列图片安装在海底观测网平台上的CPICS(通过光纤远程控制,图像数据实时传输到岸上)CPICS安装在HabCam V5水下拖曳式立体成像扫描系统中CPICS获得的图像分类示例图像11个分类类别:a海雪,b束毛藻属,c硅藻类,d放射虫,e有孔虫,f挠足类,g等足类,h刺胞动物,其它浮游动物(i成年海星,j毛鳄类动物),k糖虾,l鱼类。尺寸条代表500μm,j、k和l代表1000μm。
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  • 深水型浮游生物网 400-860-5168转2703
    名称:深水型浮游生物网型号:PTN-DW制造商:北京普力特仪器有限公司介绍:适用于海洋、水库、湖泊等水深超过30m,垂直或分段采集各类浮游生物。可配备沉锤和钢丝吊绳。深水大型浮游生物网型号:PTN-DW1介绍:适用于水深超过30m,垂直或分段采集大中型浮游动物和鱼卵、仔稚鱼等。可配备沉锤和钢丝吊绳。技术参数网长:280cm网口内径:80cm网圈:不锈钢制网衣:孔径0.505mm网底管:不锈钢制,铜制底阀深水中型浮游生物网型号:PTN-DW2介绍:适用于水深超过30m,垂直或分段采集中小型浮游动物和夜光藻。可配备沉锤和钢丝吊绳。技术参数网长:280cm网口内径:50cm头锥部:帆布制。上圈内径50cm,下圈内径72cm网圈:不锈钢制网衣:孔径0.160mm网底管:不锈钢制,铜制底阀深水小型浮游生物网型号:PTN-DW3介绍:适用于水深超过30m,垂直或分段采集浮游植物(藻类)。可配备沉锤和钢丝吊绳。技术参数网长:280cm网口内径:37cm头锥部:帆布制。上圈内径37cm,下圈内径50cm网圈:不锈钢制网衣:孔径0.077mm网底管:不锈钢制,铜制底阀
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  • 13号|25号浮游生物网 400-860-5168转2703
    名称:13号浮游生物网型号:PTN-13制造商:北京普力特仪器有限公司介绍:13号浮游生物网用于水中枝角类和挠足类等浮游动物样品的采集。可配备钢丝吊绳。技术参数网长:50cm网圈内径:20cm网衣:125目尼龙(孔径0.112mm)底管:铝合金,铜制阀门--------------------------------------------------------------------------------名称:25号浮游生物网型号:PTN-25制造商:北京普力特仪器有限公司介绍:25号浮游生物网用于水中浮游植物、原生动物和轮虫等样品的采集。可配备钢丝吊绳。技术参数网长:50cm网圈内径:20cm网衣:200目尼龙(孔径0.064mm)底管:铝合金,铜制阀门--------------------------------------------------------------------------------钢丝吊绳(选配)功能:用于系吊浮游生物小型网。技术参数吊绳:ø 3mm钢丝绳,塑料包膜锁扣:ø 4mm不锈钢,卡扣锁闭
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  • 迅数AlgaeAI 500浮游藻类智能监测系统,由奥林巴斯科研级生物显微镜BX53、工业数字相机和AlgaeAI人工智能系统构成。可高质量显微观察、拍照、智能识别浮游植物、分类计数、生物量测定、计算藻细胞密度,自动生成并导出数据报表,实现对浮游植物的电子化记录,确保电子数据的完整性。人工智能,触手可及AlgaeAI 500采用机器学习的藻类AI模型来开展浮游植物分类识别、计数分析,—— 无需具备深厚的藻类生物学专业知识。 简单,一键完成识别、分类、计数、百分比、藻密度计算、优势藻排序、报告输出 快速,单视野分类识别计数藻细胞不到3秒 精确,可识别经过神经网络训练的85种常见藻,识别精度达90%以上 适应实验中常见的复杂显微图像:藻细胞的交叉重叠、藻类细胞形体不完整等一键式操作,全过程透明 分析识别和统计过程,完整显示在屏幕上,操作员可以清楚观察每一张图片的分析过程与处理结果。 点击“AI启动”,主窗口图片一张张闪过,藻细胞被一个个框出来,框的上边是这个藻的名称 右侧上方的绿色滚动条,告知样本正在检测中…… 右侧是实时跳动更新的数据:门类、藻名称、藻数量、百分比、藻密度……检测完毕,点击左下边的图片队列,可以方便的检视每张图片上的藻类计数情况:个别名称不对?个别藻没检测出来?个别藻需要删除? 简单,点击工具箱,2-3秒即可修正。AI轻松解决藻细胞分类计数 AlgaeAI 500经过大数据模型训练、调试、优化,可以高精度自动分类计数藻细胞。藻细胞分布均匀,但浓度较高时(单视野出现30-150个),常出现细胞交叠、粘连,AlgaeAI 500能轻松处理。只需拍摄20-50个视野就能计算出每升细胞浓度,无需配置昂贵的电动平台,尤其是在发生水华时,不用稀释,直接快捷智能计数。藻类自动分类计数:藻细胞分布均匀,结构轮廓深浅不一藻类自动分类计数:梭状细胞相互重叠、轮廓模糊、有的只显示局部体型 藻类自动分类计数:长杆状细胞纵横交错科研级显微镜,完美演绎画质 高质量显微成像是观察浮游植物形态细节,提高识别计数精度的基础。AlgaeAI 500是由奥林巴斯BX53生物显微镜和高灵敏全局快门相机构成完美的数字成像系统。BX53采用最新的UIS2无限远光学系统,高质量的镜组镀膜消除了内表面的杂散光,从而获得良好的灵敏度和色彩分离,整个视场宽大、明亮、均匀。 系统配置了4X、10X、20X、40X、100X物镜,适合观察不同大小的浮游生物。最为常用的40倍物镜采用平场半复消色差物镜,结合大靶面全局快门相机,在快速移动玻片时拍摄,成像依旧锐利、无拖尾,很好展现藻细胞的色泽、形态、花纹结构,为精准识别提供优质的画面。主要功能与技术指标1. 分析规范符合《SL733-2016内陆水域浮游植物监测技术规程》、《水生态监测技术要求-淡水浮游植物》、《HJ1216-2021水质浮游植物的测定0.1mL计数框-显微镜计数法》和《HJ1215-2021水质浮游植物的测定滤膜-显微镜计数法》、《水和废水监测分析方法》(第四版),及《GB17378-2007海洋监测规范》对应的藻类分析要求。2. 奥林巴斯BX53数字显微成像系统 光学系统:UIS2无限远光学系统 照明器:内置透射光科勒照明器、光强预设按钮、光强LED显示器 聚焦:垂直移动载物台,行程25mm,带有粗调限位器,粗调旋钮可以调节扭矩。载物台安装位置可变,具有高敏感度的微调旋钮(最小调焦精度:1微米) 物镜转盘:6孔位物镜转换器 机械式载物台:陶瓷表面,带有左手或右手低位驱动装置 带有旋转装置和扭矩调节装置。 摇摆式聚光镜:N.A. 0.9-0.16 物镜:PLN4X、PLN10X、PLN20X、UPLFLN40X、PLN100XO 宽视场三目观察筒(视场数22),10X屈光度可调目镜 1英寸全局快门相机(SONY芯片)3. AlgaeAI 500 基于深度学习的迅数藻类AI系统迅数AlgaeAI 500藻类AI自动分类计数系统,由资深专家团队组,在对藻类特征深入研究的基础上,结合机器学习理论,创新性地研究建立了具有极高鲁棒性的人工智能算法模型,实现藻类自动分类计数、大小测量以及生物量测定。 可自动识别3~1000μm的藻类,包含绿藻门、蓝藻门、硅藻门、隐藻门、甲藻门、黄藻门、金藻门、裸藻门等85种常见藻,藻密度检测范围9.2×102 -1011 cells/L 单视野自动识别分析时间≤3秒,实现准确的藻类识别、分类计数,同步完成优势藻排序、生物量计算。 当地分类识别库的优势物种识别率≥90%,自动分析的重复性误差≤8% 一键式操作,全程动态可视化:主窗口图片列队疾行,藻细胞瞬间识别、原位标注名称;检测数据(门类、名称、数量、百分比、藻密度等)实时跳动更新;绿色滚动条展示图片集检测进度。全程透明化操作,方便质量监控。可鼠标交互增加、删减、修改识别物种信息,实时更新样品分析结果。 统计数据按优势种排序,展现浮游植物类别、中文名、拉丁名、藻数量,藻占比、藻密度,统计物种平均单细胞长度、单细胞宽度、单细胞高度、单细胞直径、单细胞面积、单细胞体积,自动计算生物量、总生物量、Shannon指数、物种均匀度指数、生物多样性指数、丰度、优势度。 电子记录、数据追溯与报告:自动保存数据,一键化生成统计报表。已完成的分析结果永久保存,采集图像上原位标记藻类名称,任何时候打开文件,都可重新回审每张图片的统计精度。 重叠/粘连藻的分离识别:对高度重叠在一起的藻细胞,AlgaeAI 500基于智能粘连分离技术,能从一堆粘连在一起的细胞中,把一个个藻细胞准确的捕捉出来。 残缺/局部藻的智判识别:对视野边缘的不完整藻细胞,AlgaeAI 500基于智能形态推理技术,能根据局部信息准确识别出其是什么藻类,从而实现无漏检测。4. 配置清单 迅数AlgaeAI 500藻类智能分析系统1套 奥林巴斯BX53数字成像系统一套 数据分析工作站1台:第12代智能英特尔酷睿i9-12900 16核,32G DDR4内存,4G独立显卡,512G 固态硬盘,4T 硬盘,27英寸显示器, Windows 10 专业版操作系统
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  • 万深 藻类和浮游动物自动分类计数仪(AlgaeAC+ZooCC-22PF4型)Automatic identification and classification counter for Algae & Zooplankton, Model AlgaeAC+ZooCC-22PF4 1、分析规范▲1)符合《水生态监测技术指南 河流水生生物监测与评价(试行)》HJ 1295-2023、《水生态监测技术指南 湖泊和水库水生生物监测与评价(试行)》HJ 1296—2023、《海洋监测规范》GB17378-2007、《海洋调查规范》GB/T12763-2007中关于藻类和浮游动物的监测规范和要求,及HJ 1216-2021《水质 浮游植物的测定0.1mL计数框-显微镜计数法》和HJ 1215-2021《水质 浮游植物的测定 滤膜-显微镜计数法》的要求。水样经前处理而置于计数框后,一键化自动完成藻类和浮游动物识别与分类计数分析全过程(自动移动视野对焦扫描拍照、自动分类识别计数、自动生成统计报表)。2)模仿人工显微镜检测藻类的过程,可按全片计数法、对角线计数法、行格计数法、随机视野计数法等5种计数方式做自动成像分类计数。2、藻类和浮游动物自动分类计数▲1)成像通量≥4个0.1mL藻类计数框或4个1mL浮游动物计数框,4片0.1mL藻类计数框的的自动对焦拍照时间≤10分钟(20X物镜、各100个视野、3200万像素高分辨率相机,可同时进行2组平行样品测试)。成像支持50X或40X、20X、10X、4X等全系列物镜。具有不少于20层景深融合连续自动扫描特性,拍摄层数和层间距可调设定。可自动无缝拼接400个拍照视野以上成30亿像素以上超视野大图,有效避免藻类或浮游动物被各视野的边缘切碎。电动XYZ显微自动平台由获产品质量管理体系ISO13485认证书的企业生产。▲2)系统内含常见的140+个属种淡水藻类的自动分类识别库,可勾选去掉识别库中在当地没有的藻属,以确保最大识别涵盖能力的前提下,有效避免混淆误判。内含57个以上淡水浮游动物大类或属的自动分类识别库。▲3)用户可根据当地水样自行学习扩展识别库属种。支持识别库在线更新。4)一键操作到底直接出报告的全自动识别分析系统。可自动分类分析3~1000μm的藻类,4片藻类计数框各100个视野的自动识别分析时间≤20分钟,检测范围为10^4-1.25*10^11个细胞/升(cells/L)。可自动分类分析20~2000μm的浮游动物,4个1mL浮游动物计数框的自动扫描成像+自动拼超视野大图+自动分析时间约40分钟(视野数可选)。2个平行样本的计数结果相对偏差≤10%。当地水样分类识别优势种自动识别率≥90%,综合自动识别率≥80%,可按形状或面积自动排序后做目标的多选快速交互修正来获得更高最终识别率。3、大水量的浮游动物自动分类计数模块1)、成像系统:以6400dpi扫描获得高分辨率的透扫正片图像,能包含上千个完整的浮游动物。具有浮游动物清晰度自动增强功能。自动存储高分辨率浮游动物扫描原稿。2)、自动分析指标:(1)一键化自动完成浮游动物的目标提取、人工智能Ai增强深度学习分类识别35个大类150um以上的浮游动物(目前可分海水的大类较多些)、计数分析全过程。内置淡水常见浮游动物等分类识别库,用户可自建当地标准识别库,支持识别库在线更新。(2)可自动分类分析≥150μm以上、水样量≥35mL的浮游动物。综合自动识别率≥80%,重复性误差≤5%,具有辅助目标分割、分类修正特性。(3)能自动计算香农-威纳指数、均匀性指数、丰富度指数、个体密度、生物量等。3)、数据报表:自动给出分类计数统计报告,标示优势类别和优势度,并按优势种排序。可根据采集地地理坐标在地图上定位及标注,支持高德地图、高德卫星地图、谷歌地图、谷歌卫星地图等多种地图源。4、藻类和浮游动物智能鉴定系统▲1)中文、拉丁文双语显示的浮游生物专家图库:藻类共15个门、1719个属、15832个种;浮游动物共26大类、2002个属、9846个种。涵盖中国各流域、海域的常见藻类、浮游动物。已有有效图库量29.305万张以上,各图库属种和内容可自行扩充。▲2)一键化以图搜图方式按相似度从高到低排列展示相近物种。能按P5胸足以图搜图搜索鉴定桡足类。物种智能鉴定模块与全自动分类计数系统为同家企业产品,以实现系统之间无缝衔接的便捷操作。能以图搜图智能搜索鉴定藻类、浮游动物、以及花粉、真菌等一些易出现在样品中的非浮游生物。5、供货配置清单1、万深藻类和浮游动物自动分类计数仪软件(含浮游生物智能鉴定系统) 1套2、自动数字显微影像扫描系统(研究级三目生物显微镜(含机架、三目观察筒、物镜转盘、镜臂、上海光学50X复消色差物镜或奥林巴斯40X平场半复消色差物镜、10倍宽视场可调目镜,舜宇20X、10X和4X平场半复消色差物镜)、4片通量的高精度电控XYZ自动扫描平台+控制器+2000万像素相机(对应50X物镜)或3200万像素相机)1套3、超高分辨率、高性能A4幅面影像扫描仪 1套4、高透明大容量水样盘 2个5、分析工作站(13代酷睿i7 CPU /32G内存/含支持CUDA的8G及以上GPU卡/ 1T硬盘以上/ 23”彩显,1个USB3.0口+3个USB2.0口,运行环境Windows 10或11专业版) 1台6、服务1)、厂家提供协助免费建立1个当地分类初始识别库服务。2)、免费提供远程协助指导服务。注:本技术标书中打▲款项必须响应,否则为重大偏离。
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  • Algacount F210集藻类智能鉴定与计数、浮游动物计数于一体,是专门为水环境与海洋环境生物监测提供的智能图像分析工具。全新设计的软件架构,简洁、好用,融入更多图形界面,浮游生物数据库不仅增加品种和图片,而且重新校验、编辑,更为精细化。首次采用“迅搜”藻类智能鉴定模块,包含“多维渐进相似藻搜索”、易混淆藻鉴别、“典型组合联想”形态学检索三大技术,并具备三维景深融合、超视野图像拼接、生物量分析、胶被群体/链状体分析等多种高级功能。 全新扩容的浮游生物数据库全面扩充的2017版浮游植物数据库 覆盖了中国七大水系、28个重点湖库的常见淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的常见海洋藻。 对检索的架构进行重新设计,建立“门”、“目”、“属”、“种”四级检索,既遵循浮游植物分类学,又兼顾了软件界面展开的便捷性。以精细、直观、实用的原则,对浮游藻简介进行重点编辑、分栏介绍,突显不同门类浮游植物的特点,使得 形态、结构、生殖、生态 一目了然。每个具体藻种,精选能反应其形态特点的一组图片,避免用户陷入大量冗余图像信息中。全新的浮游生物计数仪由丰硕的数据库与简易的操作程序组成,大量的浮游动物图片和中文、拉丁文双语文字,辅以真实的显微照片、手绘图结构和详尽的形态文字描述资料,能有效地帮助专家进行鉴定工作。在计数的同时也可以利用数字测微尺进行一系列精确测量工作。多维渐进相似藻搜索“多维渐进相似藻搜索”是迅数科技独创的藻类智能鉴定工具,能瞬间实现:侦测未知藻细胞的轮廓、提取特征信息、大数据匹配,从几万张图库中找出形态最相近的一组藻类,同时优先展现常见藻类。此功能特点鲜明,实用性强,既满足图像搜索的效率,又兼顾了图形匹配的精度。简:操作简单,容易上手,即使非专业人员也能快速掌握。精:采用国际领先的图像识别与分割算法,从多维空间角度缜密抓取藻类影像,真实全面细致地捕捉、勾勒、反映藻类的形态特征。快:搜索过程只需3-5秒,即能从海量的显微图库中筛选出与需鉴定藻形态特征相似的浮游植物。易混淆藻鉴别初学者常有这样的苦恼:显微观察到的藻细胞与大脑记忆中的很多藻在形态上极为相似,可以猜测是那个门的某些属,但无法准确判定其种类。 “易混淆藻鉴别”系统就是针对此类问题。使用者可以选择2、4、6个或更多形态相似的藻类,在同一界面上展开快速比较,通过典型的组合特征图、概要性文字,迅速掌握它们之间的区别要点,指导自己从差异化的细节特征进行重点观察。“典型组合联想”形态学检索全新设计的图文形态学检索系统,抛弃了老版本通过一二级形态等繁琐文字与卡通图结合的形态学检索方式,抛弃了大型藻类,重点细化需镜下观察、鉴定、计数的浮游微藻。依据形态相似性、渐变性,选取真实典型藻细胞图像,组合归类, 并结合细胞或群体的结构特征,如鞭毛、色素体、花纹、胶被等 ,实现精确、快捷的形态学检索。图形语言、组合联想、特征多选、淡水、海洋分库、浏览方便等特点,使得初学者能快速掌握。 综合的计数工具1.浮游生物流程式计数:连续获取200个视野图像,编辑计数表,点击标记不同种类,多视野相同属种自动累计,不同物种分类计数、总数累计、优势种自动排序和优势类群所占比例分析。2. 胶被群体子细胞分析:专用于子细胞数量自动估算,适合由数量众多、球卵形子细胞构成的定形或无定型群体。3. 链状体分析:适用于营养细胞形态较为一致的不分枝丝状体; 或由壳面紧密相连结成的链状体。三维景深融合通过对不同聚焦层面图像的融合,解决焦平面不同造成的局部模糊问题,实现浮游动物结构的高清晰展现。超视野图像拼接通过对不同视野图像的水平或垂直拼接,完整展现高倍分辨率的超视野藻细胞图片。显微测量、生物量分析系统提供了专门的显微分析工具。透明数字标尺可在不同物镜倍率下实现显微测量;生物量分析模块则汇聚了大量浮游生物几何模型,通过显微测量数据,自动计算浮游生物的生物量。数据安全与管理为保证环境监测数据的真实、安全,新设计的账户管理系统能实现多账户分级管理,赋予管理员(实验室负责人)最大的权限,可以监督、查看不同实验员的试验数据;而实验员之间无法查看、篡改各自的数据。浮游生物统计信息以电子记录的方式保存,确保数据的完整性,有助于藻类监测的规范化、无纸化,极大地提高工作效率,符合实验室检测发展趋势。统计数据按优势藻排序,包含:计数总数、单细胞体积、百分比、藻密度、丰度、优势度、藻总体积、Shannon指数、物种均匀度指数、碳生物量、氮生物量、总碳生物量。主要功能与技术指标 一、系统组成 ■ F210 浮游生物计数软件;软件加密器1个 ■ 联想一体电脑:双核四线程CPU/4G内存/1T硬盘/23"高清屏,Windows 10系统 ■ 专业显微摄像头、C型转接口二、F210摄像头参数 ■ 科研级彩色CMOS相机 ■ 传感器型号/尺寸:SONY Exmor传感器 6.3M/IMX178(C) ;1/1.8"英寸 ■ 像素:2.4x2.4μm ■ G光灵敏度;动态范围信噪比:425mv with 1/30s;0.15mv with 1/30s ■ FPS/分辨率:15@3072x2048;26@1536x1024 ■ 曝光时间:0.244ms~2000ms ■ 数据接口:USB3.0三、浮游生物智能鉴定/计数软件1.数字图像采集 ■ 显微成像:相机连接,白平衡、曝光时间调节,实现超大视场显微图像实时动态观察、快速捕获,批量图片保存 ■ 三维景深融合:快速融合不同焦平面,解决藻细胞分布在不同液层造成的局部模糊问题,获取全景深、高清晰藻细胞图像 ■ 超视野拼接:多视野横向、纵向自动拼接2.浮游生物数据库 ■ 藻类专家数据库:由精美的彩色显微照片、手绘图、文字介绍构成淡水、海洋藻库;覆盖中国七大水系、28个重点湖库的淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的海洋藻。 ■ 浮游动物数据库:由原生动物鞭毛虫类、原生动物肉足虫类、原生动物纤毛虫类、轮虫类、枝角类、桡足类等24大类组成,以中文、拉丁文双语显示,附浮游动物文字介绍、手绘图、大量显微照片。3.藻类智能鉴定--“迅搜”模块 ■ 多维渐进相似藻搜索:自动、智能的藻细胞图形识别工具,3-5秒即实现:侦测未知藻细胞轮廓、提取特征信息、大数据匹配,精确找出形态相近的可能藻类,“优先选择”项同步展现最相近的常见藻类。 ■ 易混淆藻鉴别:针对经验欠缺的实验员设计,筛选多个因形态相似而易混淆的藻类,在同一界面上展开快速比较,通过典型的特征拼图、概要性文字,迅速掌握区别要点。 ■ “典型组合联想”形态学检索:用图形语言、组合联想、并结合细胞或群体的结构特征,实现精确、快捷的形态学检索。具备:特征多选、淡水、海洋分库、浏览方便等特点,使得初学者能快速掌握。 ■ 四级分类学检索:由精美的彩色显微照片、手绘图、文字介绍 构成淡水、海洋藻库;覆盖中国七大水系、28个重点湖库的淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的海洋藻;按“门、目、属、种”四级展开检索。 ■ 分栏编辑:浮游植物名称、分类地位、 形态、结构、生殖生态 ,一目了然。 ■ 通用查询:关键词查询(根据藻细胞文字描述中的特征词进行查询);常见藻查询(水华、赤潮、有毒藻);名称查询(中文名、拉丁名)4.浮游动物辅助鉴定 ■ 按中文名称或拉丁文名称搜索 ■ 选择类、属,展现该类别下的所有浮游动物5.浮游生物流程式计数 ■ 浮游生物分类统计:采用不同颜色、不同大小的色圈标记各种浮游生物,按类点击、自动累积计数 ■ 浮游生物总数统计:对样本各种浮游生物的总数进行自动累计,优势种自动排序、按门排序、优势群落组成百分比分析 ■ 自动计算:藻密度、生物量、香农-威纳指数、物种均匀性指数、优势度、丰度 ■ 胶被群体分析:自动识别、计数群体中的子细胞,尤其适合微囊藻的计数分析 ■ 链状体分析:用于估算单条丝状体、链状体的子细胞数6.测量、生物量分析 ■ 显微测量:可选择透明、不透明2种标尺,或直接鼠标点击划线测量生物细胞 ■ 生物量分析:依据浮游生物形态数学模型,自动计算生物量 7.实验数据安全 ■ 多账户分级管理,管理员、实验员具不同权限,避免实验数据篡改 ■ 电子记录方式保存数据库,确保数据的完整性 ■ 数据库:自动保存每批显微照片、统计标识和统计数据 ■ 标注:可在已拍摄的藻细胞图片上,进行任意的文字、尺寸标注 ■ 报告编辑、打印:提供报告编写模板、文本输入、打印预览 ■ 数据导出:浮游生物统计数据、图片导出到EXCEL或PDF
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  • 迅数AlgaeAI 700浮游生物自动分类计数系统,由迅数最新研发的AlgaeAI系统和全自动扫描显微系统构成。借助高速三轴电动平台,获取高清显微影像,利用基于超级深度学习的AlgaeAI 技术,可对水域中的浮游生物自动识别物种、分类计数、生物量测定、计算细胞密度,自动生成并导出数据报表,实现对浮游生物的电子化记录,确保电子数据的完整性。AlgaeAI 700还配有浮游生物智能鉴定专家模块,为水生态系统浮游生物多样性研究提供重要工具。 人工智能,触手可及AlgaeAI 700是迅数超深机器学习的高级浮游生物智能分析识别计算系统,开展浮游生物分析的人员都能使用先进的数据分析技术—— 无需具备深厚的浮游生物学专业知识。l 简单,一键完成识别、分类、计数、百分比、藻密度计算、优势藻排序、报告输出l 快速,单视野分析仅需0.6秒l 精确,可识别经过神经网络训练的145种常见藻,60种淡水浮游动物,识别精度达95%以上l 高鲁棒性,适应实验中常见的复杂显微图像:较高密度下的藻细胞交叉重叠、景深不足造成的局部结构模糊、混有较多杂质的背景、细胞仅有部分在视野内……。 全程透明化,看得见的真实 分析识别和统计过程,完整显示在屏幕上,操作员可以清楚观察每一张图片的分析过程与处理结果。l 点击“AI启动”,主窗口图片一张张闪过,藻细胞被一个个框出来,框的上边是这个藻的名称l 右侧上方的绿色滚动条,告知样本正在检测中……l 右侧是实时跳动更新的数据:门类、藻名称、藻数量、百分比、藻密度…… 检测完毕,点击左下边的图片队列,可以方便的检视每张图片上的藻类计数情况:个别名称不对?个别藻没检测出来?个别藻需要删除? 简单,点击工具箱,2-3秒即可修正。 解决复杂视野图像检测的困难 浮游植物定量分析过程存在诸多挑战,如采集的定量水样中悬浮杂质较多,浓缩后细胞密度过高,微藻相互交叠、藻细胞在计数框内分层分视野存在、显微镜光学成像的清晰度不够、聚焦不准……AlgaeAI 700利用其超级深度机器学习能力,可以快速、可靠地产生高质量的分析识别结果。不怕藻细胞的交叉与重叠,直接自动解开藻密度超过1010 cells/L 背景杂乱的样本,一样能识别计数光源、聚焦调整不到位,脆杆藻、盘星藻,很浅很淡,照样可识别 浮游动物自动识别藻类智能鉴定的数字化宝库宏大的藻类图文库,覆盖了中国境内江河、湖泊、水库等内陆水域以及周边海域的淡水、海洋物种,精致选编的图片和文字介绍,融合丰富的检索架构,是浮游生物基础教学、水环境监测单位机构普及藻类知识的帮手。 分类学检索,常见藻重点编辑、分栏介绍, 形态、结构、生殖、生态 一目了然。 形态学检索,依据形态相近性、渐变性,组合归类成图形语言,并结合细胞或群体的结构特征,如鞭毛、色素体、花纹、胶被等 ,实现精确、快捷的形态学检索。 高品质显微扫描成像以奥林巴斯科研级生物显微镜BX43为光学成像载体,配置平滑安静的XYZ电动载物台,实现一键式精确操作:自动对焦、自动扫描,图像质量优异。 主要功能与技术指标1. 分析规范符合《SL733-2016内陆水域浮游植物监测技术规程》、《水生态监测技术要求-淡水浮游植物》、《HJ1216-2021水质浮游植物的测定0.1mL计数框-显微镜计数法》和《HJ1215-2021水质浮游植物的测定滤膜-显微镜计数法》、《水和废水监测分析方法》(第四版),及《GB17378-2007海洋监测规范》对应的藻类分析要求。2. 全自动扫描显微系统Ø 奥林巴斯BX43显微镜:物镜规格4、10、20、40倍半复消色差物镜Ø 高精度电控XYZ自动扫描平台:实现X/Y/Z轴方向微米级运动及自动控制Ø 步进电机XY平台:一次装载4片,最小步长≤ 0.1um 双向重复定位精度≤±1um最大速度:20mm/sØ 根据调整后样品浮游植物的密度,可选择全片扫描法、行格扫描法、随机视野扫描等方式进行成像Ø 电动Z轴:闭环分辨率 0.156um;重复定位精度:≤±0.4umØ 高灵敏全局快门相机,多景深连续自动扫描对焦,拍摄层数间距可设定,图像分辨率0.20um/pixel3. AlgaeAI 700 基于超级深度学习的迅数浮游生物AI系统迅数AlgaeAI 700浮游生物AI自动分类计数系统,由资深专家团队组,在对浮游生物特征深入研究的基础上,结合机器学习理论,创新性地研究建立了具有极高鲁棒性的人工智能分析系统,实现藻类、浮游动物自动分类计数、大小测量以及生物量测定。Ø 可自动识别3~1000μm的藻类,包含绿藻门、蓝藻门、硅藻门、隐藻门、甲藻门、黄藻门、金藻门、裸藻门等 超过145种常见藻,藻密度检测范围9.2×102 -1011 cells/LØ 单视野自动识别分析时间≤0.6秒,实现准确的藻类识别、分类计数,同步完成优势藻排序、生物量计算。Ø 当地分类识别库的优势物种识别率≥95%,自动分析的重复性误差≤5%Ø 一键式操作,全程动态可视化:主窗口图片列队疾行,藻细胞瞬间识别、原位标注名称;检测数据(门类、名称、数量、百分比、藻密度等)实时跳动更新;绿色滚动条展示图片集检测进度。全程透明化操作,方便质量监控。可鼠标交互增加、删减、修改识别物种信息,实时更新样品分析结果。Ø 统计数据按优势种排序,展现浮游植物类别、中文名、拉丁名、藻数量,藻占比、藻密度,统计物种平均单细胞长度、单细胞宽度、单细胞高度、单细胞直径、单细胞面积、单细胞体积,自动计算生物量、总生物量、Shannon指数、物种均匀度指数、生物多样性指数、丰度、优势度。Ø 电子记录、数据追溯与报告:自动保存数据,一键化生成统计报表。已完成的分析结果永久保存,采集图像上原位标记藻类名称,任何时候打开文件,都可重新回审每张图片的统计精度。Ø 高鲁棒性:具有极强的抗干扰能力,对于含有大量杂质的视野图片,即便藻细胞处于杂质之中,本系统基于强大的推理能力,也能准确的将其识别出。Ø 重叠/粘连藻的分离识别:对高度重叠在一起的藻细胞,AlgaeAI 700基于智能粘连分离技术,能从一堆粘连在一起的细胞中,把一个个藻细胞准确的捕捉出来。Ø 残缺/局部藻的智判识别:对视野边缘的不完整藻细胞,AlgaeAI 700基于智能形态推理技术,能根据局部信息准确识别出其是什么藻类,从而实现无漏检测。Ø 模糊细胞的推算识别:对视野中因聚焦景深不足,而出现一些淡且不清晰的藻细胞,AlgaeAI 700基于模糊推算技术,能准确的分析识别出其是什么藻细胞。Ø 浮游动物分析模块:依托强大的AI图像识别技术,构建高精度神经网络数学模型,准确识别水体中的65个种属,自动测量浮游动物体长、体宽等指标,计算密度与生物量,出具检测报告,实现数据的无纸化记录。此外,系统提供包含文字、手绘图、显微照片在内的信息数据库,配置分类信息与关键词搜索功能,能够图文并茂的展现浮游动物。4. 经典图像分割计数模块Ø 动态自动计数:七种分割算法,用于预检多视野计数,调整浮游植物密度为107-108个/升Ø 似球形群体细胞自动计数:自动识别、计数群体中的子细胞,尤其适合微囊藻的计数分析 Ø 丝状体细胞估算:用于估算单条丝状体、链状体的子细胞数5. 浮游生物定性分析、智能鉴定模块Ø 浮游生物专家数据库:由精美的彩色显微照片、手绘图、中文、拉丁文双语显示构成淡水、海洋浮游生物库,可按“门、目、属、种”四级展开检索。其中藻类15个门、1700个属;浮游动物26大类、2000个属。覆盖中国东部平原湖区、云贵高原湖区、东北湖区、青藏高原湖区、蒙新高原湖区和七大水系的淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的海洋藻Ø “典型组合联想”形态学检索:用图形语言、组合联想、并结合细胞或群体的结构特征,实现精确、快捷的形态学检索。具备:特征多选、淡水、海洋分库、浏览方便等特点,使得初学者能快速掌握。Ø 多维渐进相似藻搜索鉴定:自动、智能的藻细胞图形识别工具,3-5秒即实现:侦测未知藻细胞轮廓、提取特征信息、大数据匹配,精确找出形态相近的可能藻类,“优先选择”项同步展现最相近的常见藻类。Ø 易混淆藻鉴别:针对经验欠缺的实验员设计,筛选多个因形态相似而易混淆的藻类,在同一界面上展开快速比较,通过典型的特征拼图、概要性文字,迅速掌握区别要点。6. 配置清单Ø 迅数AlgaeAI 700藻类及浮游动物智能分析系统各1套Ø 全自动数字显微影像扫描系统1套:奥林巴斯BX43显微镜,UIS2无限远光学系统 ,4X、10X、40X平场半复消色差物镜、20X全复消色差物镜(数值孔径0.75)、10倍屈光度可调目镜、三目观察筒、5孔位物镜转换器,4片通量高精度电控XYZ自动扫描平台及控制箱、高灵敏全局扫描相机Ø 数据分析工作站1台:第12代智能英特尔酷睿i9-12900 16核,32G DDR4内存,4G独立显卡,512G 固态硬盘,4T 硬盘,27英寸显示器, Windows 10 专业版操作系统7. 服务 Ø 新机上门安装调试、培训,并提供两年保修服务Ø 为用户免费构建本地数据库算法一次Ø 长期提供远程协助指导服务、协助鉴定复杂样本
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  • 水德科技 深水型浮游生物网类别: 中国国家标准采样网型号: WT002210/WT002220/WT002230关键字: 深水型浮游生物网,浮游生物网供应商: 青岛水德科技有限公司产品简介:适用于海洋、水库、湖泊等水深超过30m,垂直或分段采集各类浮游生物。水德科技深水型浮游生物网水德深水型浮游生物网适用于海洋、水库、湖泊等水深超过30m,垂直或分段采集各类浮游生物。 深水大型浮游生物网 深水中型浮游生物网 深水小型浮游生物网 技术参数:深水大型浮游生物网网长:280cm网口内径:80cm网圈:不锈钢制网衣:孔径0.505mm网底管:不锈钢制,铜制底阀采集对象:适用于水深超过30m,垂直或分段采集大、中型浮游动物和鱼卵、仔稚鱼等深水中型浮游生物网网长:280cm网口内径:50cm头锥部:帆布制上圈内径50cm,下圈内径72cm网圈:不锈钢制网衣:孔径0.160mm网底管:不锈钢制,铜制底阀采集对象:适用于水深超过30m,垂直或分段采集中小型浮游动物和夜光藻深水小型浮游生物网 网长:280cm网口内径:37cm头锥部:帆布制上圈内径37cm,下圈内径50cm网圈:不锈钢制网衣:孔径0.077mm网底管:不锈钢制,铜制底阀采集对象:适用于水深超过30m,垂直或分段采集浮游植物(藻类) 订购信息:WT002210 深水大型浮游生物网 网衣(含2个网底管套),网圈,网底管WT002220 深水中型浮游生物网 网衣(含2个网底管套),网圈,网底管WT002230 深水小型浮游生物网 网衣(含2个网底管套),网圈,网底管更多关键字: 深水型浮游生物网,浮游生物网,采样网,国产采样网,国产浮游生物网,深水生物网
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  • Algacount F310是专为“大中型企业、科研和监测机构”设计的高端藻类智能鉴定、浮游生物计数仪。全新设计的软件架构,简洁、好用,融入更多图形界面,浮游生物数据库不仅增加品种和图片,而且重新校验、编辑,更为精细化。 F310还具备:多层聚焦、超视野拼接、生物量分析、链状体和胶被群体的子细胞计数等多种藻类分析功能。在F210的基础上,增加了单细胞微藻自动计数,七种动态自动计数算法。 全新扩容的浮游生物数据库全面扩充的2017版浮游植物数据库 覆盖了中国七大水系、28个重点湖库的常见淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的常见海洋藻。 对检索的架构进行重新设计,建立“门”、“目”、“属”、“种”四级检索,既遵循浮游植物分类学,又兼顾了软件界面展开的便捷性。以精细、直观、实用的原则,对浮游藻简介进行重点编辑、分栏介绍,突显不同门类浮游植物的特点,使得 形态、结构、生殖、生态 一目了然。每个具体藻种,精选能反应其形态特点的一组图片,避免用户陷入大量冗余图像信息中。全新的浮游生物计数仪由丰硕的数据库与简易的操作程序组成,大量的浮游动物图片和中文、拉丁文双语文字,辅以真实的显微照片、手绘图结构和详尽的形态文字描述资料,能有效地帮助专家进行鉴定工作。在计数的同时也可以利用数字测微尺进行一系列精确测量工作。 多维渐进相似藻搜索“多维渐进相似藻搜索”是迅数科技独创的藻类智能鉴定工具,能瞬间实现:侦测未知藻细胞的轮廓、提取特征信息、大数据匹配,从几万张图库中找出形态最相近的一组藻类,同时优先展现常见藻类。此功能特点鲜明,实用性强,既满足图像搜索的效率,又兼顾了图形匹配的精度。简:操作简单,容易上手,即使非专业人员也能快速掌握。精:采用国际领先的图像识别与分割算法,从多维空间角度缜密抓取藻类影像,真实全面细致地捕捉、勾勒、反映藻类的形态特征。快:搜索过程只需3-5秒,即能从海量的显微图库中筛选出与需鉴定藻形态特征相似的浮游植物。 易混淆藻鉴别初学者常有这样的苦恼:显微观察到的藻细胞与大脑记忆中的很多藻在形态上极为相似,可以猜测是那个门的某些属,但无法准确判定其种类。“易混淆藻鉴别”系统就是针对此类问题。使用者可以选择2、4、6个或更多形态相似的藻类,在同一界面上展开快速比较,通过典型的组合特征图、概要性文字,迅速掌握它们之间的区别要点,指导自己从差异化的细节特征进行重点观察。 “典型组合联想”形态学检索全新设计的图文形态学检索系统,抛弃了老版本通过一二级形态等繁琐文字与卡通图结合的形态学检索方式,抛弃了大型藻类,重点细化需镜下观察、鉴定、计数的浮游微藻。依据形态相似性、渐变性,选取真实典型藻细胞图像,组合归类, 并结合细胞或群体的结构特征,如鞭毛、色素体、花纹、胶被等 ,实现精确、快捷的形态学检索。图形语言、组合联想、特征多选、淡水、海洋分库、浏览方便等特点,使得初学者能快速掌握。 综合的计数工具1.浮游生物流程式计数:连续获取200个视野图像,编辑计数表,点击标记不同种类,多视野相同属种自动累计,不同物种分类计数、总数累计、优势种自动排序和优势类群所占比例分析。 2. 单细胞微藻自动计数:包含七种图像分割算法的“动态自动计数”,适合纯培养能源藻、药用或食用微藻的细胞浓度快速测定。(图为衣藻的自动分割计数)3. 胶被群体子细胞分析:专用于子细胞数量自动估算,适合由数量众多、球卵形子细胞构成的定形或无定型群体。4. 链状体分析:适用于营养细胞形态较为一致的不分枝丝状体; 或由壳面紧密相连结成的链状体。 三维景深融合通过对不同聚焦层面图像的融合,解决焦平面不同造成的局部模糊问题,实现浮游动物结构的高清晰展现。超视野图像拼接通过对不同视野图像的水平或垂直拼接,完整展现高倍分辨率的超视野藻细胞图片。显微测量、生物量分析系统提供了专门的显微分析工具。透明数字标尺可在不同物镜倍率下实现显微测量;生物量分析模块则汇聚了大量浮游生物几何模型,通过显微测量数据,自动计算浮游生物的生物量。数据安全与管理为保证环境监测数据的真实、安全,新设计的账户管理系统能实现多账户分级管理,赋予管理员(实验室负责人)最大的权限,可以监督、查看不同实验员的试验数据;而实验员之间无法查看、篡改各自的数据。浮游生物统计信息以电子记录的方式保存,确保数据的完整性,有助于藻类监测的规范化、无纸化,极大地提高工作效率,符合实验室检测发展趋势。统计数据按优势藻排序,包含:计数总数、单细胞体积、百分比、藻密度、丰度、优势度、藻总体积、Shannon指数、物种均匀度指数、碳生物量、氮生物量、总碳生物量。主要功能与技术指标 一、系统组成 ■ F310 浮游生物计数软件;软件加密器1个 ■ 联想一体电脑:双核四线程CPU/4G内存/1T硬盘/23"高清屏,Windows 10系统 ■ 专业显微摄像头、C型转接口二、F310摄像头参数 ■ 科研级彩色CMOS相机 ■ 传感器型号/尺寸:SONY Exmor传感器 12M/IMX226(C) ;1/1.7"英寸 ■ 像素:1.85x1.85μm ■ G光灵敏度;动态范围信噪比:280mv with 1/30s;0.1mv with 1/30s ■ FPS/分辨率:25@4000x3000;50@2048x1080 ■ 曝光时间:0.1ms~15s ■ 数据接口:USB3.0三、浮游生物智能鉴定/计数软件1.数字图像采集 ■ 显微成像:相机连接,白平衡、曝光时间调节,实现超大视场显微图像实时动态观察、快速捕获,批量图片保存 ■ 三维景深融合:快速融合不同焦平面,解决藻细胞分布在不同液层造成的局部模糊问题,获取全景深、高清晰藻细胞图像 ■ 超视野拼接:多视野横向、纵向自动拼接2.浮游生物数据库 ■ 藻类专家数据库:由精美的彩色显微照片、手绘图、文字介绍构成淡水、海洋藻库;覆盖中国七大水系、28个重点湖库的淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的海洋藻。 ■ 浮游动物数据库:由原生动物鞭毛虫类、原生动物肉足虫类、原生动物纤毛虫类、轮虫类、枝角类、桡足类等24大类组成,以中文、拉丁文双语显示,附浮游动物文字介绍、手绘图、大量显微照片。3.藻类智能鉴定--“迅搜”模块 ■ 多维渐进相似藻搜索:自动、智能的藻细胞图形识别工具,3-5秒即实现:侦测未知藻细胞轮廓、提取特征信息、大数据匹配,精确找出形态相近的可能藻类,“优先选择”项同步展现最相近的常见藻类。 ■ 易混淆藻鉴别:针对经验欠缺的实验员设计,筛选多个因形态相似而易混淆的藻类,在同一界面上展开快速比较,通过典型的特征拼图、概要性文字,迅速掌握区别要点。 ■ “典型组合联想”形态学检索:用图形语言、组合联想、并结合细胞或群体的结构特征,实现精确、快捷的形态学检索。具备:特征多选、淡水、海洋分库、浏览方便等特点,使得初学者能快速掌握。 ■ 四级分类学检索:由精美的彩色显微照片、手绘图、文字介绍 构成淡水、海洋藻库;覆盖中国七大水系、28个重点湖库的淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的海洋藻;按“门、目、属、种”四级展开检索。 ■ 分栏编辑:浮游植物名称、分类地位、 形态、结构、生殖生态 ,一目了然。 ■ 通用查询:关键词查询(根据藻细胞文字描述中的特征词进行查询);常见藻查询(水华、赤潮、有毒藻);名称查询(中文名、拉丁名)4.浮游动物辅助鉴定 ■ 按中文名称或拉丁文名称搜索 ■ 选择类、属,展现该类别下的所有浮游动物5.浮游生物流程式计数 ■ 浮游生物分类统计:采用不同颜色、不同大小的色圈标记各种浮游生物,按类点击、自动累积计数 ■ 浮游生物总数统计:对样本各种浮游生物的总数进行自动累计,优势种自动排序、按门排序、优势群落组成百分比分析 ■ 自动计算:藻密度、生物量、香农-威纳指数、物种均匀性指数、优势度、丰度 ■ 胶被群体分析:自动识别、计数群体中的子细胞,尤其适合微囊藻的计数分析 ■ 链状体分析:用于估算单条丝状体、链状体的子细胞数6.浮游生物流程式计数 ■ 动态自动计数:七种分割算法,适应单细胞微藻和成像背景的变化7.测量、生物量分析 ■ 显微测量:可选择透明、不透明2种标尺,或直接鼠标点击划线测量生物细胞 ■ 生物量分析:依据浮游生物形态数学模型,自动计算生物量 8.实验数据安全 ■ 多账户分级管理,管理员、实验员具不同权限,避免实验数据篡改 ■ 电子记录方式保存数据库,确保数据的完整性 ■ 数据库:自动保存每批显微照片、统计标识和统计数据 ■ 标注:可在已拍摄的藻细胞图片上,进行任意的文字、尺寸标注 ■ 报告编辑、打印:提供报告编写模板、文本输入、打印预览 ■ 数据导出:藻类统计数据、图片导出到EXCEL或PDF
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  • MAS-HL生物综合分析联用仪 一、用途 MAS-HL型生物综合分析联用仪集菌落计数分析、浮游植物鉴定计数、浮游动物鉴定计数三大功能于一体,专为水质分析、生态评价、环境检测用户量身定制的智能图像分析检测设备 二、主要性能技术参数1、显微成像装置:u 2000万像素超清CMOS相机u 数据接口:USB3.0u 显微镜转接口u 三目生物显微镜2、主机成像装置v 全封闭暗箱,能够消除外环境杂散光干扰 v 三色LED可见光v 内置254nm紫外灯,可对腔体杀菌消毒v 内置366nm紫外灯,可激发大肠埃希氏菌、大肠菌群荧光、绿色荧光蛋白v 上、下光源亮度、开启关闭可自由切换,采用全触摸式调节按钮v 色温自动控制,接近自然光v 2000万像素超清彩色相机v 500万像素高清镜头 8mm3、软件功能① 浮游生物模块1) 浮游生物图像采集u 相机连接,白平衡、曝光时间调节,可选择手动或自动模式拍摄200张图片u 三维景深融合u 超视野拼接2) 浮游生物数据库u 中文、拉丁文双语显示的藻类专家图库(共11个门、1569个属,13085个种),已有藻类有效图库量168179张以上,各图库属种和内容可自行扩充u 图库内单独分出有毒藻、赤潮藻、水华藻、国内常见淡水藻、国内常见海洋藻u 中文、拉丁文双语显示的浮游动物专家图库(共10个大类、1239个属,4851个种),已有浮游动物有效图库量73928张以上,各图库属种和内容可自行扩充3) 智能鉴定u 采用目前国内先进的深度学习技术自动比对鉴定u 单图放大比对u 多种群图比对4) 藻类分类计数u 采用不同颜色、不同大小的色圈标记各种微藻,按类点击、自动累积计数u 优势种自动排序、按门(类)排序、优势群落组成百分比分析u 可自动计算香农-威纳指数、均匀性指数、藻密度自动换算、浮游动物丰度自动换算u 按大量几何模型来辅助计算浮游生物的生物量5) 浮游动物分类计数u 采用不同颜色、不同大小的色圈标记各种微藻,按类点击、自动累积计数u 优势种自动排序、按门(类)排序、优势群落组成百分比分析6) 辅助功能u 单细胞微藻自动计数u 可测量藻群体面积、浮游生物个体面积,藻类直径,藻丝、鞭毛长度以及分枝角度u 历史计数表记忆功能u 可在已拍摄的藻细胞图片上,进行任意的文字、尺寸标注② 菌落计数模块1) 分类一键统计:v 单色菌一键计数v PetriFilm™ 一键计数v RIDA™ 一键计数v Compact Dry™ 一键计数v 背景相近菌一键计数v 微小菌一键计数v 分散菌一键计数v 粘连菌一键计数v 大菌落一键计数v 多色菌自动叠加计数2) 辅助统计工具:v 人工修正:鼠标单击可添加或删除遗漏菌落v 智能修正:在一键统计基础上可进行智能修正v 测量工具:角度、线段、面积、曲线v 污染菌(杂质)剔除:根据颜色、直径、圆度剔除杂质v 单菌落形态分析:点击单个菌落,可得知这个菌落的圆度、直径、周长、面积等信息v 所有菌落形态:统计完后可得知平板上所有菌落的圆度、直径、周长、面积等信息v 菌落大小分类:统计完后,根据每个菌落轮廓大小,按25档分类显示v 样本菌落总数换算:根据实际培养皿直径、样本稀释度,实现自动换算③ 数据安全及报告u 多用户登录系统,每个账户形成独立数据,数据长期保存u 统计结果以PDF格式输出,原始数据不可更改u 具备审计追踪功能,操作人员在软件上的每一步操作软件自动记录,以便后续结果数据的追溯u 自动保存每批照片、统计标识和统计数据u 与CFR 21 第11部分兼容:系统安全,操作控制,文件管理 三、仪器配置u 专业级2000万像素彩色显微CMOS相机、三目显微镜的相机转接口u 1600万高清CMOS相机u MAS-HL菌落计数主机u Zstream藻类智能鉴定计数分析系统、浮游动物智能鉴定计数系统、菌落计数分析系统u 品牌商务一体机电脑u 研究级三目显微镜(选配)
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  • 浅水型浮游生物网 400-860-5168转2703
    名称:浅水型浮游生物网型号:PTN-SW制造商:北京普力特仪器有限公司介绍:适用于海洋、水库、湖泊等30m以内垂直或分段采集各类浮游生物。可配备沉锤和钢丝吊绳。浅水I型浮游生物网型号:PTN-SW1介绍:适用于30m以内垂直或分段采集大、中型浮游动物和鱼卵、仔稚鱼等。可配备沉锤和钢丝吊绳。技术参数网长:145cm网口内径:50cm网圈:ø 10mm不锈钢条制网衣:孔径0.505mm网底管:长度23cm,不锈钢制,铜制底阀浅水II型浮游生物网型号:PTN-SW2介绍:适用于30m以内垂直或分段采集中、小型浮游动物和夜光藻。可配备沉锤和钢丝吊绳。技术参数网长:140cm网口内径:31.6cm头锥部:帆布制,高度30cm。上圈内径31.6cm,下圈内径50cm网圈:ø 10mm不锈钢条制网衣:孔径0.160mm网底管:长度23cm,不锈钢制,铜制底阀浅水III型浮游生物网型号:PTN-SW3介绍:适用于30m以内垂直或分段采集浮游植物(藻类)。可配备沉锤和钢丝吊绳。技术参数网长:140cm网口内径:37cm网圈:ø 10mm不锈钢条制网衣:孔径0.077mm网底管:长度23cm,不锈钢制,铜制底阀--------------------------------------------------------------------------------沉锤(选配)功能:浮游生物网配重,帮助网具在水中顺利下沉。材质:304不锈钢重量:3~10kg--------------------------------------------------------------------------------钢丝吊绳(选配)功能:用于系吊浮游生物网,承重500kg以上。技术参数吊绳:ø 5mm钢丝绳,塑料包膜锁扣:ø 8mm不锈钢,螺栓型锁闭
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  • 水德科技 浅水型浮游生物网类别: 中国国家标准采样网型号: WT002110/WT002120/WT002130关键字: 浅水型浮游生物网,浮游生物网供应商: 青岛水德科技有限公司产品简介:水德浅水型浮游生物网主要用于水生生物样品的采集。适用于海洋、水库、湖泊等垂直或分段采集各类浮游生物。水德科技——浅水型浮游生物网水德浅水型浮游生物网主要用于水生生物样品的采集。适用于海洋、水库、湖泊等垂直或分段采集各类浮游生物。浅水Ⅰ型浮游生物网 浅水Ⅱ型浮游生物网 浅水Ⅲ型浮游生物网技术参数:浅水Ⅰ型浮游生物网全长145cm,分三部分组成。 网口内径:50cm面积:0.20m2网口圈采用ф10mm圆不锈钢条, 网上部为上口部:长5cm用细帆布,网中部为过滤部:长135cm,用CQ14或JP12筛绢网下部为网底部:直径9cm,长5cm用细帆布采集对象:适合于水深30m内,垂直或分段采集大中型浮游动物和鱼卵、仔稚鱼等。 浅水Ⅱ型浮游生物网全长140cm,分三部分组成。网口内径:31.6cm面积:0.08 m2网口圈采用ф10mm圆不锈钢条头锥部:长35cm用细帆布,网中圈直径50cm,网圈用ф10mm圆不锈钢条。过滤部:长100cm用CB36或JP36筛绢网底部:直径9cm,长5cm用细帆布采集对象:适合于水深30m内,垂直或分段采集中小型浮游动物和夜光藻。 浅水Ⅲ型浮游生物网 全长140cm,分三部分组成。网口内径:37cm,面积0.10 m2,网口圈采用ф10mm圆不锈钢条网上部为上口部:长5cm用细帆布网中部为过滤部:长130cm用JF62或JP80筛绢网下部为网底部:下口直径9cm,长5cm用细帆布采集对象:适合于水深30m内,垂直或分段采集浮游植物(藻类)。 订购信息:WT002110 浅水Ⅰ型浮游生物网 网衣(含2个网底管套),网圈,网底管WT002120 浅水Ⅱ型浮游生物网 网衣(含2个网底管套),网圈,网底管WT002130 浅水Ⅲ型浮游生物网 网衣(含2个网底管套),网圈,网底管更多关键字: 浅水型浮游生物网,浮游生物网,采样网,国产网,国产浮游生物网,国产浅水网,浮游生物采样网
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  • 德国HYDRO-BIOS公司--浮游生物观察组件浮游动物计数框树脂材料制成,底面抛光,具有极佳的透明度,可将其放置到常规显微镜上对浮游动物进行观察435 010 尺寸40×70mm,容纳样品量约9ml 435 011 尺寸80×100mm,容纳样品量约22ml435 011A 尺寸80×100mm,容纳样品量约6×5.4ml435 011B尺寸80×100mm,容纳样品量约12×2.5ml435 011C尺寸80×100mm,容纳样品量约30×0.8ml 435 012 尺寸80×140mm,容纳样品量约70ml435 015 Kolkwitz浮游植物计数框 包含带计数网格的盖片,网格大小 1×1mm,尺寸 33×33mm,盖玻片厚度1.3mm,计数孔直径22mm,样品容量0.5ml(经过精确校准的) 435 016 Kolkwitz浮游植物计数框同上,盖玻片厚度2.6mm,样品容量1.0ml管状浮游植物计数框树脂玻璃制成,带可旋转拆卸的黄铜底座,外加1个盖玻片和50个底玻片 435 021 容量 5ml 435 022 容量10ml 435 023 容量25ml 435 025 Utermohl组合式浮游植物计数框(浮游植物沉降器) 由10ml,50ml,100ml圆管各1个,与3片直径33mm盖玻 片、50片底玻片和其他辅助操作附件组成一套完整的浮游植物沉降计数系统。435 028 盖玻片,适用于管状浮游植物计数框和组合式浮游植物计数框, 直径33mm,厚度2mm, 50片/包435 035 底玻片,适用于管状浮游植物计数框和组合式浮游植物计数框, 直径27.5mm,厚度0.2mm,250片/包Hensen活塞式样品移液管与250ml稀释瓶和一个活塞组成一套完整的样品稀释系统435 090 容量0.1ml435 091 容量0.25ml435 092 容量0.5ml435 093 容量1.0ml435 094 容量2.5ml435 095 容量5.0ml435 098 备用稀释瓶,250ml,Duran玻璃制,10个/包 435 100 Folsom浮游生物分样器 用来将大量的浮游生物分成适合的量,来进行观察研究。一次操作可以将样品平分成两份。重复操作,可以将样品分成的任意所需要的量。透明的塑料滚筒可以容纳最多约100ml样品。底座安装有一个水平器和两个调节水平的螺杆,确保样品分割的精确性。净重1kg。代表文献:1.Manfred Rolke and Jürgen Lenz,1984.Size structure analysis of zooplankton samples by means of an automated image analyzing system.Journal of Plankton Research.6(4): 637-645.2.Austin B.M. Egborge and Prekeyi Tawari,1987.The rotifers of Warri River, Nigeria.Journal of Plankton Research.9(1):1-13.3.J.W. Rijstenbil,1987.Phytoplankton composition of stagnant and tidal ecosystems in relation to salinity, nutrients, light and turbulence.Netherlands Journal of Sea Research.21(2):113–123.4.S. Wagener, C. F. Bardele, N. Pfennig,1990.Functional integration of Methanobacterium formicicum into the anaerobic ciliate Trimyema compressum.Archives of Microbiology.153(5):496-501.5.S. Holler, N. Pfennig,1991.Fermentation products of the anaerobic ciliate Trimyema compressum in monoxenic cultures.Archives of Microbiology.156(4):327-334 .6.J. W. Rijstenbil, C. Bakker, R. H. Jackson, A. G. A. Merks, P. R. M. de Visscher,1993.Spatial and temporal variation in community composition and photosynthetic characteristics of phytoplankton in the upper Westerschelde estuary (Belgium, SW Netherlands).Hydrobiologia.269-270(1):263-273.7.Bettina Meyer-Harms, Falk Pollehne,1998.ALLOXANTHIN IN DINOPHYSIS NORVEGICA (DINOPHYSIALES, DINOPHYCEAE) FROM THE BALTIC SEA.Journal of Phycology.34(2):280–285.8.Catalina Castell Perez, Suzanne Roy, Maurice Levasseur, Donald M. Anderson,1998.CONTROL OF GERMINATION OF ALEXANDRIUM TAMARENSE (DINOPHYCEAE) CYSTS FROM THE LOWER ST. LAWRENCE ESTUARY (CANADA).Journal of Phycology.34(2):242–249.9.Teresa Cruz and Jorge Araújo,1999.Reproductive Patterns of Pollicipes pollicipes (Cirripedia: Scalpellomorpha) on the Southwestern Coast of Portugal.Journal of Crustacean Biology.19(2):260-267.10.Michael Hust, Wolfgang E Krumbein, Erhard Rhiel,1999.An immunochemical in situ approach to detect adaptation processes in the photosynthetic apparatus of diatoms of the Wadden Sea sediment surface layers.Journal of Microbiological Methods.38(1–2):69–80.11.Christine Dupuy, Solange Le Gall, Hans J. Hartmann, Martine Bréret,1999.Retention of ciliates and flagellates by the oyster Crassostrea gigas in French Atlantic coastal ponds: protists as a trophic link between bacterioplankton and benthic suspension-feeders.Marine Ecology Progress Series.177:165-175.12.A. Tewari, H.V. Joshi, R.H. Trivedi, V.G. Sravankumar, C. Raghunathan, Y. Khambhaty, O.S. Kotiwar, S.K. Mandal,2001.The Effect of Ship Scrapping Industry and its Associated Wastes on the Biomass Production and Biodiversity of Biota in in situ Condition at Alang.Marine Pollution Bulletin.42(6):461–468.13.Hera Karayanni, Urania Christaki, France Van Wambeke, Andrew P. Dalby,2004.Evaluation of double formalin—Lugol' s fixation in assessing number and biomass of ciliates: an example of estimations at mesoscale in NE Atlantic.Journal of Microbiological Methods.56(3):349–358.14.EI Ohimain, TOT Imoobe & MO Benka-Coker,2005.The impact of dredging on macrobenthic invertebrates in a tributary of the Warri River, Niger delta.African Journal of Aquatic Science.30(1):49-53.15.Laurent Seuront, Dorothée Vincent, James G. Mitchell,2006.Biologically induced modification of seawater viscosity in the Eastern English Channel during a Phaeocystis globosa spring bloom.Journal of Marine Systems.61(3–4):118–133.16.Wim A.M. Hijnen, Yolanda J. Dullemont, Jack F. Schijven, Anke J. Hanzens-Brouwer, Martine Rosielle, Gertjan Medema,2007.Removal and fate of Cryptosporidium parvum, Clostridium perfringens and small-sized centric diatoms (Stephanodiscus hantzschii) in slow sand filters.Water Research.41(10):2151–2162.17.Géraldine Sarthou, Dorothée Vincent, Urania Christaki, Ingrid Obernosterer, Klaas R. Timmermans, Corina P.D. Brussaard,2008.The fate of biogenic iron during a phytoplankton bloom induced by natural fertilisation: Impact of copepod grazing.Deep Sea Research Part II: Topical Studies in Oceanography.55(5–7):734–751.18.Damir Vili?i?, Tamara Djakovac, Zrinka Buri?, Sun?ica Bosak,2009.Composition and annual cycle of phytoplankton assemblages in the northeastern Adriatic Sea.Botanica Marina.52(4):291–305.19.Fedekar F. Madkour, Mohsen M. El-Sherbiny and Maher A. Aamer,2010.Phytoplankton population along certain Egyptian coastal regions of the Red Sea.Egypt J. Aquat. Biol. & Fish..14(2):95-109.20.Mianrun Chena, Bingzhang Chena, Paul Harrisonb, Hongbin Liu,2011.Dynamics of mesozooplankton assemblages in subtropical coastal waters of Hong Kong: A comparative study between a eutrophic estuarine and a mesotrophic coastal site.Continental Shelf Research.31(10):1075–1086.21.Germán A. Kopprio, Gerhard Kattner, Martin Graeve, R. Hugo Freije, Rubén J. Lara,2012.Exceptional lipid storage mode of the copepod Boeckella poopoensis in a pampean salt lake, Argentina.Aquatic Biology.15:275-281.22.Dongyan Liu, Yajun Shi, Baoping Di, Qianli Sun, Yujue Wang, Zhijun Dong, Hongbing Shao,2012.The impact of different pollution sources on modern dinoflagellate cysts in Sishili Bay, Yellow Sea, China.Marine Micropaleontology.84–85:1–13.23.Daniel Remias, Andreas Holzinger, Siegfried Aigner, Cornelius Lütz,2012.Ecophysiology and ultrastructure of Ancylonema nordenski?ldii (Zygnematales, Streptophyta), causing brown ice on glaciers in Svalbard (high arctic).Polar Biology.35(6):899-908.24.F.S. Tahami, A.G. Mazlan, H. Negarestan, Sh. Najafpour, W.W.M. Lotfi and G.D. Najafpour,2012.Phytoplankton Combination in the Southern Part of Caspian Sea.World Applied Sciences Journal.16(1): 99-105.25.Amir Abbas Bazyar Lakeh, Werner Kloas Rainer Jung, Ra’anan Ariav, Klaus Knopf,2013.Low frequency ultrasound and UV-C for elimination of pathogens in recirculating aquaculture systems.Ultrasonics Sonochemistry.20(5):1211–1216.
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  • M600菌落计数/浮游生物分析联用仪 M600菌落计数/浮游生物分析联用仪是迅数科技2020年推向市场的高端多功能生物监测仪,集平皿自动菌落计数、浮游生物智能鉴定计数、显微细胞分析于一体。为水环境生物监测提供智能图像分析工具。 平皿菌落计数 l “数字影棚”的光源控制专业设计的平皿载样舱,可实现培养皿的雾光漫反射照明、悬浮暗视野照明、彩色凌透背光照明、紫外激发照明,拍出不同寻常的科研级精美照片。光源控制器采用隐藏式吸弹门设计,具6路照明选择开关、4通道无级亮度调节、双通道色温调节、5路彩色背景选择。l 悬浮式暗视野照明悬浮式暗视野由暗域轮廓光与黑色背景构成。柔和的白色LED轮廓光,使平皿中央到边缘的菌落得到均匀的照明,而光线几乎穿透培养基,形成黑色背景下的亮色菌落,菌落与培养基形成高反差,可清晰勾勒菌落轮廓。 l 平皿智能菌落计数 七种快速统计按钮,简单易用,只需鼠标滚轮旋转实现参数连续变化,轻松获取良好的统计效果。八种复杂统计算法,适应平板的多样性、复杂性,如多重粘连、培养基不均匀、杂质与菌落共存、色素扩散、菌落与培养基色泽接近……菌落总数测定营养琼脂,常见细菌菌落特征:菌落较小,边缘整齐,表面光滑,圆形、椭圆形居多 总大肠菌群滤膜计数结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)菌落特征:紫红色,菌落周围有红色的胆盐沉淀环,直径0.5 mm 左右耐热大肠菌群滤膜计数细菌代谢产物与指示剂TTC发生氧化还原反应,菌落细小,显红色 浮游生物分析l 丰富的浮游生物数据库浮游植物数据库 覆盖了中国七大水系、28个重点湖库的常见淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的常见海洋藻。建立“门”、“目”、“属”、“种”四级检索,对浮游藻简介进行重点编辑、分栏介绍,突显不同门类浮游植物的特点,使得 形态、结构、生殖、生态 一目了然。浮游动物数据库由原生动物鞭毛虫类、原生动物肉足虫类、原生动物纤毛虫类、轮虫类、枝角类、桡足类等24大类组成,以中文、拉丁文双语显示,附浮游动物文字介绍、手绘图、大量显微照片。 l 多种模式智能搜索鉴定“多维渐进相似藻搜索”采用Machine DeepFace(机器深脸)技术,通过卷积神经网络,实现对任意图像的深度特征提取。能快速准确实现:侦测未知藻细胞的轮廓、提取特征信息、大数据匹配,从几万张图库中找出形态最相近的一组藻类,同时优先展现常见藻类。“易混淆藻鉴别”:使用者可以选择2、4、6个或更多形态相似的藻类,在同一界面上展开快速比较,通过典型的组合特征图、概要性文字,迅速掌握它们之间的区别要点,指导自己从差异化的细节特征进行重点观察。 “典型组合联想”形态学检索:依据形态相似性、渐变性,选取真实典型藻细胞图像,组合归类, 并结合细胞或群体的结构特征,如鞭毛、色素体、花纹、胶被等 ,实现精确、快捷的形态学检索。l 浮游生物分类计数、优势种自动排序浮游生物流程式计数:连续获取200个视野图像,编辑计数表,点击标记不同种类,多视野相同属种自动累计,不同物种分类计数、总数累计、优势种自动排序和优势类群所占比例分析。浮游生物统计信息以电子记录的方式保存,确保数据的完整性,有助于环境监测的规范化、无纸化,极大地提高工作效率,符合实验室检测发展趋势。统计数据按优势物种排序,包含:计数总数、单细胞体积、百分比、藻密度、丰度、优势度、藻总体积、Shannon指数、物种均匀度指数、碳生物量、氮生物量、总碳生物量。 l 单细胞微藻自动计数包含七种图像分割算法的“动态自动计数”,适合纯培养能源藻、药用或食用微藻的细胞浓度快速测定。图为衣藻的自动分割计数 显微细胞观察、测量、分析系统提供专门的显微分析工具,具备显微动态观察、自动细胞计数、自动形态学分类测量、图像处理、生物量计算等功能,可用于活性污泥生物相分析。M600配置两个不同用途的显微相机,2000万像素大面阵(1英寸)科研级彩色数字相机用于可见光下的大视野观察;高灵敏相机用于贾第鞭毛虫、隐孢子虫的荧光成像分析。活性污泥生物相 隐孢子虫 主要功能与技术指标一、菌落数字成像1. 照明系统? 全封闭钢铝合金机箱(32×34×46cm):精密、坚固,确保光密闭? 平皿载样舱:铝合金框,下拉式隔断窗,消除环境杂散光干扰,阻断紫外泄露、避免灰尘进入? 凌透背光照明:高密度白色LED列阵,形成均匀、高亮的白色透射光,确保培养皿边缘与中间得到均匀照明? 复式悬浮暗视野照明:白光LED与蓝光LED交织混合,宽带逆射,构成宇宙蓝背景? 雾光漫反射照明a) 96颗LED列阵与纳米光反射材料构成嵌入式雾光系统, 360°连续漫反射,突显菌落的色泽和纹理,消除玻璃培养皿折射形成的光斑、光环。b) 色温变化范围:3100K-5800K 照度范围 50-—7000 Lux c) LED寿命≧20000 hr? 紫外光源:254nm 用于腔体消毒、紫外诱变 ? 光源控制器a) 隐形弹吸式控制面板,5路照明选择开关、4通道无级亮度调节、双通道色温调节 b) 可自由切换、选择单一模式照明或组合模式照明2. 数字成像? 标清工业定焦镜头:8mm、 3.0 mega-pixel、1/2"、Distortion 1%、 F1.4~F32、C-Mount? 专业型CMOS相机:芯片尺寸1/2.4";CMOS物理像素850万,3328x2548;单个像素尺寸1.67x1.67μm二、菌落计数模块1. 快速菌落统计? 滚轮参数调节统计(4种):均质平皿、背景不均、微小菌落、彩色背景? 一键响应统计(3种):单色统计、霉菌统计、反式统计2. 高级菌落统计? 动态调节统计:可对统计结果进行动态调节修正,快速获取良好的统计效果。? 偏差预估统计:适用于菌落颜色多且复杂的情况。? 水平集多模型算法:搜索运算,获取良好的图像分割效果,适应培养基背景变换? 特定菌落统计:根据菌落色泽、大小、轮廓特征,识别特定菌落? 反式统计:适合菌落类型极其复杂而培养基背景均匀? 杂菌、杂质剔除:根据形态、尺寸、颜色的区别,进行自动杂菌、杂质剔除3. 基本菌落计数功能? 平皿类型:倾注、涂布、膜滤、3M纸片? 全皿菌落统计:菌落总数统计,并按25档尺寸分类显示? 区域选择统计:可选择圆形、矩形、任意圈定区域进行统计? 多域平行统计:一次性多区域同步统计;多区域“镂空”统计? 直径分类统计:设置直径范围,统计特定大小的菌落? 鼠标点击统计:快速标记、添加菌落,适合培养皿边缘菌落的计数? 菌落粘连分割:自动分割相互粘连的菌落,链状菌落由用户选择分割或不分割4. 网格滤膜与3M测试片? 黑色实线网格一键统计? 3M细菌总数测试片、3M金黄色葡萄球菌测试片:一键统计? 3M大肠菌群测试片、3M大肠杆菌/大肠菌群快速测试片:一键统计+人工选择5. 高级工具? 网格清除:消除滤膜网格背景干扰? 人工计数修正:添加或删除菌落? 排除污染区域:鼠标勾勒任意污染区域,自动剔除污染区域的菌落数? 背景文字消除:自动消除记号笔干扰? 人工粘连分割:手动分割多重粘连菌落? 参数自动换算:培养皿直径、样本稀释度输入,实现自动换算? 文字、图形标注:各类绘图工具和中英文文字嵌入6. 标定与测量? 仪器标定:仪器自带标定、人工修正标定? 一键式快速测量:一键测定大菌落,适合真菌、放线菌的单菌落分析? 全皿自动测量:全皿菌落的等效直径、面积、长短径、周长、圆度分析? 多向标尺测量、手动精确测量:长度、角度、弧度、面积、弧线、任意曲线三、数据安全与管理? “管理、操作、复核”多重架构,分设职能与权限,确保数据安全、完整和真实? 单皿数据记录:实测菌落数、面积换算菌落数、稀释度换算菌落数、各菌落形态参数、大小分级统计数、区域统计数? 电子数据记录:样本来源、编号、稀释度、平皿图片、识别效果、计数值、所用统计工具、参数设置、修正情况? 电子数据自动存储或以PDF或Excell格式打印输出 四、浮游生物显微成像? 大面阵科研级彩色数字相机:SONY 1英寸图像CMOS传感器;2000万像素;G光灵敏度462mv with 1/30s;FPS/分辨率::15@5440x3648;50@2736x1824;60@1824×1216;曝光时间:0.1ms~15s;USB3.0? 高灵敏科研级彩色数字相机:SONY 1/1.2"CMOS传感器;830万像素;G光灵敏度2188mv with 1/30s? 显微成像:超大视场显微图像实时动态观察、快速捕获,批量图片保存? 三维景深融合:快速融合不同焦平面,解决藻细胞分布不同液层造成的局部模糊问题,获取全景深、高清晰藻细胞图像? 超视野拼接:多视野横向、纵向自动拼接五、浮游生物数据库1. 藻类专家数据库? 由精美的彩色显微照片、手绘图、文字介绍构成淡水、海洋藻库;覆盖中国七大水系、28个重点湖库的淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的海洋藻。2. 浮游动物数据库? 由原生动物鞭毛虫类、原生动物肉足虫类、原生动物纤毛虫类、轮虫类、枝角类、桡足类等24大类组成,以中文、拉丁文双语显示,附浮游动物文字介绍、手绘图、大量显微照片。六、浮游生物鉴定1. 藻类智能鉴定--“迅搜”模块? 多维渐进相似藻搜索:自动、智能的藻细胞图形识别工具,3-5秒即实现:侦测未知藻细胞轮廓、提取特征信息、大数据匹配,精确找出形态相近的可能藻类,“优先选择”项同步展现最相近的常见藻类。? 易混淆藻鉴别:针对经验欠缺的实验员设计,筛选多个因形态相似而易混淆的藻类,在同一界面上展开快速比较,通过典型的特征拼图、概要性文字,迅速掌握区别要点。? “典型组合联想”形态学检索:用图形语言、组合联想、并结合细胞或群体的结构特征,实现精确、快捷的形态学检索。具备:特征多选、淡水、海洋分库、浏览方便等特点,使得初学者能快速掌握。? 四级分类学检索:由精美的彩色显微照片、手绘图、文字介绍 构成淡水、海洋藻库;按“门、目、属、种”四级展开检索。? 分栏编辑:浮游植物名称、分类地位、 形态、结构、生殖生态 ,一目了然。? 通用查询:关键词查询(根据藻细胞文字描述中的特征词进行查询);常见藻查询(水华、赤潮、有毒藻);名称查询(中文名、拉丁名)2. 浮游动物辅助鉴定? 按中文名称或拉丁文名称搜索? 选择类、属,展现该类别下的所有浮游动物七、浮游生物计数与分析1. 浮游生物流程式计数? 浮游生物分类统计:采用不同颜色、不同大小的色圈标记各种生物,按类点击、自动累积计数? 浮游藻自动归类识别:通过人工智能学习,一次性实现200个视野特定藻的自动分类识别、计数。? 藻类总数统计:对样本各种生物的总数进行自动累计,优势种自动排序、按门排序、优势群落组成百分比分析? 自动计算:藻密度、生物量、香农-威纳指数、物种均匀性指数、优势度、丰度? 胶被群体分析:自动识别、计数群体中的子细胞,尤其适合微囊藻的计数分析? 链状体分析:用于估算单条丝状体、链状体的子细胞数2. 单细胞微藻自动计数? 动态自动计数:七种分割算法,适应单细胞微藻和成像背景的变化? 多功能细胞计数:基于通用、多通道、同色分割算法,可选择特定颜色、大小、轮廓的细胞进行自动计数,或反向排除细胞、杂质。3. 测量、生物量分析? 显微测量:可选择透明、不透明2种标尺,或直接鼠标点击划线测量生物细胞? 生物量分析:依据浮游生物形态数学模型,自动计算生物量八、图像处理? 自适应增强:分辨增强处理,突显藻细胞显微特征? 图像调整:图像亮度、对比度、饱和度、RGB三色任意调节,灰度图、负相图的转换? 图像补偿:通过线性补偿,对数补偿,贝尔补偿等多种数学方法对图像的失真部分进行补偿,使图像更加清晰? 图像锐化:通过增强图像的高频分量,使藻类边缘变得更清晰? 图像平整:通过图像平整处理,使图像背景均匀? 图像滤波:高斯滤波、低通滤波、中值滤波等6种滤波方式有效提高图像清晰度? 边缘检测:两种检测方式、三种算子结合多种检测选项更精确地提取藻类轮廓? 形态学处理:腐蚀、膨胀、开启、闭合等非线性数学形态学处理九、实验数据安全? 多账户分级管理,管理员、实验员具不同权限,避免实验数据篡改? 电子记录方式保存数据库,确保数据的完整性? 数据库:自动保存每批显微照片、统计标识和统计数据? 标注:可在已拍摄的浮游生物细胞图片上,进行任意的文字、尺寸标注? 报告编辑、打印:提供报告编写模板、文本输入、打印预览? 数据导出:统计数据、图片导出到EXCEL或PDF文件十、仪器规格与配置? M600菌落计数/浮游生物分析联用仪主机1台? 菌落分析软件、藻类分析软件、MIC分析软件、浮游动物分析软件? 联想一体电脑:双核四线程CPU/4G内存/1T硬盘/23"高清屏,Windows 10系统? 显微摄像科研级彩色相机2个? 用户选配:显微镜和摄像转接口 杭州迅数科技有限公司 浙江省杭州市西湖区西湖科技园西园八路11号B座405室 邮编:310030 联系电话:0571-85125132、85124967 传真: 网址: E-mail:
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  • AlgaeAC-22P型藻类和浮游动物自动分类计数仪系统Automatic identification and classification counter for Algae & Zooplankton, Model AlgaeAC-22 plus一、简介水体中的浮游植物和浮游动物的种类和数量,以及颗粒度分布是研究水环境的重要依据,历来采用人工作业判定,相当费时费力。万深AlgaeAC-22P型藻类和浮游动物自动分类计数仪可有效解决用户的该痛点问题,主要用于生态学调查、渔业、水产养殖、教育等行业,对水体中的浮游植物(藻类)和浮游动物样品做自动分类计数、大小测量、种类分类以及生物量测定。AlgaeAC-22P型还带有藻类和浮游动物的智能鉴定模块,帮助减轻以往繁重的鉴定工作量,是生态调查监测的必备工具。二、藻类和浮游动物自动分类计数模块1、成像系统(1)★微单相机+微距镜的3200万像素以上高分辨率大视野自动对焦成像(专利号ZL 2020 2 1444136.9),具有多景深连续自动扫描特性,显微平台在X/Y轴重复定位精度2μm,确保扫描图像清晰。可自动拼接400个自动拍照视野成近30亿像素超视野大图,有效避免藻类或浮游动物被各视野的边缘切碎。(2)支持40X、20X、10X、4X等物镜成像。系统备有藻类和浮游动物自动分类识别库。(3)可自动扫描样本图像并自动存储,可录制样本清晰视频影像。2、分析规范(1)★符合《SL733-2016内陆水域浮游植物监测技术规程》、《水和废水监测分析方法》(第四版)第五篇《水和废水的生物监测方法》、GB17378-2007《海洋监测规范》、GB/T12763-2007《海洋调查规范》中藻类监测的规范,及HJ 1216-2021《水质 浮游植物的测定0.1mL计数框-显微镜计数法》和HJ 1215-2021《水质 浮游植物的测定 滤膜-显微镜计数法》的要求。水样经前处理而置于计数框后,一键化自动完成藻类和浮游动物识别与分类计数分析全过程(自动移动视野对焦扫描拍照、自动分类识别计数、自动生成统计报表)。(2)模仿人工显微镜检测藻类的过程,可按对角线计数法、行格计数法、随机视野计数法、全片计数法等5种计数方式进行成像计数。3、★分析指标(1)系统内含依据人工智能Ai增强深度学习获得的蓝藻门、硅藻门、绿藻门、裸藻门、隐藻门、金藻门、甲藻门、黄藻门常见的122个以上属种淡水藻类的自动分类识别库,可勾选去掉识别库中在当地没有的藻属,以确保最大识别涵盖能力的前提下,有效避免混淆误判。内含57个以上淡水浮游动物大类或属的自动分类识别库。支持识别库在线更新。用户可根据当地水样自行学习扩展到140个属种以上。(2)系统是一键操作到底直接出报告的全自动识别分析系统,并支持拍照与识别分析的双进程同步操作。可自动分类分析3~1000μm的藻类,100个视野的自动扫描成像+自动分析时间约10分钟(视野数25-400个及全片可选),检测范围为10^5-10^10个/升。可自动分类分析20~2000μm的浮游动物,1mL浮游动物计数框的自动扫描成像+自动拼超视野大图+自动分析时间约15分钟(视野数可选)。(3)当地水样分类识别优势种自动识别率≥90%,综合自动识别率≥80%,可按形状或面积自动排序后做目标的多选快速交互修正来获得更高最终识别率;在浓度为10^7-10^8个/升时,自动分析的重复性误差≤5%。(4)可分析获得每个藻体的面积、周长、体积、长、宽、主轴、副轴、等效直径等形态参数。(5)可分析统计各藻类或浮游动物(按门、属种或大类)的数量、面积、体积及其占比;对各分类进行排序及柱状图显示占比情况。(6)自动计算香农-威纳指数、均匀性指数、丰富度指数、藻或浮游动物个体密度、藻细胞或浮游动物密度、生物量等。4、数据报表(1)自动给出分类计数统计报告,标示优势种和优势度,并按优势种排序。(2)数据可导出为Excel,进一步统计分析数据。(3)★可在采集图像上直接标出藻类名称,提取分割每个藻类或浮游动物的图像并自动分类保存,可回溯查看历史数据。(4)★可根据采集地地理坐标在地图上定位及标注,支持高德地图、高德卫星地图、谷歌地图、谷歌卫星地图等多种地图源。三、浮游生物智能鉴定模块1、成像系统(1)可借助自动拍照装置成像或人工控制显微图片的观察、拍摄、存储并连续自动等间隔拍摄多达400张图片。(2)具有实时预览饱和警告、自动背景矫正特性。(3)超强的景深扩展的多聚焦融合3D高清晰成像。(4)多视野图像的自动拼接、剪裁编辑修正特性。2、专家数据库(1)★中文、拉丁文双语显示的浮游生物专家图库:藻类共15个门、1719个属、15832个种;浮游动物共26大类、2002个属、9845个种。涵盖中国各流域、海域的常见藻类、浮游动物。(2)★已有有效图库量29.2471万张以上,各图库属种和内容可自行扩充,扩充图像可即时进行搜索。(3)★包含中国淡水藻类、中国海域常见浮游硅藻、中国近海赤潮藻类、中国淡水枝角类、中国淡水桡足类、四大海域浮游桡足类等子图库。用户可自建或通过计数表来生成其本地流域的子图库。(4)可按门、属、种展开检索,也可按种名、属名、文字描述等关键字检索。3、智能鉴定(1)★人工智能特征提取对比,一键化以图搜图方式按相似度从高到低排列展示相近物种。能以图搜图智能搜索鉴定藻类、浮游动物、以及花粉、真菌等一些易出现在样品中的非浮游生物。能按P5胸足以图搜图搜索鉴定桡足类。(2)具备一键搜索、常规搜索、高级搜索三种搜索模式,可按门、形态特征、子图库进行搜索。(3)搜索结果可按种名、属名、文字描述、图像数量等进行二次筛选过滤。(4)对形态相似的易混淆种属,可在同一界面上展开对比图像、文字描述。4、计数分析(1)采用不同颜色、不同大小的符号标记各种浮游生物,按类点击、自动累积计数。(2)优势种自动排序、按门(类)排序、优势群落组成百分比分析。(3)可自动计算香农-威纳指数、均匀性指数、藻密度自动换算、浮游动物丰度自动换算。(4)按大量形状模型来辅助计算浮游生物的生物量(内置34种几何模型,通过测量少量参数即可计算个体/细胞体积)。(5)★内置常见淡水藻、常见海洋藻等计数表,并可自行编辑、导出、导入计数表。(6)可按子细胞面积、群体面积、层数自动估算团状、块状等多细胞藻类的细胞数;可按分节长度、链长度自动估算链状藻类的细胞数。(7)具备计数器模式,方便目镜下的快速计数。5、其它功能(1)可测量藻面积、浮游动物个体面积,细胞直径、藻丝、鞭毛长度、浮游动物体长,趾爪、枝角角度等。(2)微囊藻分析模块能自动学习与自动分析团状微囊藻群体的细胞数,并可自动计数颗粒性或单细胞微藻、链状微藻细胞、线虫等类的浮游动物。(3)有藻类、浮游动物的颜色、形状自动学习分类特性,可监视修正转换藻类、浮游动物类别,并二次学习和保存分类特征。(4)具有浮游生物细胞的自动抠图特性,可快速提取其主边缘特征图像。具有对模糊、重叠的浮游生物图像的清晰化处理特性。6、数据报表(1)自动保存每批显微照片、统计标识和统计数据。(2)分析结果可导出为Excel、PDF格式。(3)可合并不同倍率计数结果、多个样品计数结果。7、系统安全(1)多用户登录系统,每个账户形成独立数据,数据永久保存。(2)统计结果以PDF格式输出,原始数据不可更改。(3)具备审计追踪功能,操作人员在软件上的操作软件自动记录,以便后续结果数据的追溯。四、标配的配置清单1、万深 藻类和浮游动物自动分类计数仪软件(含浮游生物智能鉴定系统) 1套2、高精度电控X-Y自动扫描平台+控制器1套3、全时自动对焦的高分辨率大视野光学成像系统 1套4、舜宇RX50或奥林巴斯BX53或BX43三目生物显微镜(含机架、三目观察筒、D型物镜转盘、镜臂、平场半复消色差物镜(20X、10X、4X)、10倍宽视场可调目镜、奥林巴斯平场半复消色差物镜40X)1台5、品牌电脑(11代以上酷睿i7 CPU /32G内存/含支持CUDA的8G及以上GPU卡/ 256G固态硬盘+2T硬盘/ 23”彩显,1个USB3.0口+3个USB2.0口,运行环境Windows 10或11专业版) 1台五、服务1、厂家提供协助免费建立1个当地分类初始识别库服务。2、免费提供远程协助指导服务。注:本技术标书中打★款项必须响应,否则为重大偏离。藻类分析过程藻类分析结果藻类数据统计藻类智能搜索鉴定轮虫智能搜索鉴定桡足类P5搜索鉴定
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  • 万深AlgaeC型浮游生物智能鉴定计数分析系统 一、用途:浮游生物(浮游植物、浮游动物)的快速计数、智能化辅助鉴定,以及显微分析等,用于水质等的一体化监测评价。二、主要配置:1) 专业级2000万像素Sony大靶面1"芯片CMOS相机、显微镜转接口2)AlgaeC浮游生物计数分析智能鉴定系统软件(含藻类、浮游动物鉴定计数分析、显微图像分析模块) 1套3)品牌电脑(酷睿i5 CPU/8G内存/500G硬盘/19.5"彩显/无线网卡,完整专业版Windows 10操作系统)1台 三、主要性能指标:1)显微成像:实现手动与自动拍摄。可人工控制显微图片的观察、拍摄、存储并自动拍摄多达200张图片;在自动模式下可实现连续自动等间隔图片拍摄。★具有实时预览饱和警告、自动背景矫正特性。2) ★中文、拉丁文双语显示的浮游生物专家图库:a、浮游藻类类群:蓝藻、绿藻、硅藻、裸藻、黄藻、褐藻、甲藻、隐藻、金藻、红藻、轮藻、灰色藻、定鞭藻、原绿藻、针胞藻共15个门、1603个属、14499个种的藻类;b、浮游动物类群:原生动物鞭毛虫类、原生动物肉足虫类、原生动物纤毛虫类、轮虫类、枝角类、桡足类、腔肠动物、被囊动物、毛颚动物等共24大类、1932个属、9435个种的浮游动物。内容包括浮游生物形态文字介绍、手绘图、显微照片。各图库属种和内容可自行扩充(已有有效图像量达26.1628万张)。3)浮游生物计数:a、浮游生物分类标记:采用不同颜色、不同大小的色圈标记各种浮游生物,并对200张所拍摄图片内的各种浮游生物,按类点击、自动累积计数(可合并不同倍率计数结果、多个样品计数结果);b、优势种自动排序、按门(类)排序、优势群落组成百分比分析;c、可自动计算香农-威纳指数、均匀性指数、藻密度自动换算、浮游动物丰度自动换算;★d、按大量形状模型来辅助计算浮游生物的生物量(内置34种几何模型,通过测量少量参数即可计算个体/细胞体积)。内置常见淡水藻、常见海洋藻等计数表,并可自行编辑、导出、导入计数表。数据管理:自动保存每批显微照片、统计标识和统计数据;提供报告编写模板、文本输入、打印预览。微囊藻分析模块能自动学习与分析团状微囊藻群体含细胞数,实现颗粒或单细胞微藻自动计数。4)★藻类、浮游动物智能鉴定:具有按相似度自动比对浮游生物图像的图像式智能搜索特性。通过形态学搜索、关键词搜索、常见浮游生物搜索、分类学搜索,经图像、文字对比,快速鉴定浮游生物。能自动索引浮游生物的用户计数表成所在流域小图库,使【以图搜图】更快捷。5)浮游生物形态测量功能:a、视野面积、藻群体面积、浮游动物个体面积测量;b、细胞直径、藻丝、鞭毛长度、浮游动物体长及触角测量;c、枝角分枝角度测量等。6)★超强的景深扩展的多聚焦融合3D高清晰成像。多视野图像的自动拼接、剪裁编辑修正特性。有藻类、浮游动物的颜色、形状自动学习分类特性,可监视修正转换藻类、浮游动物类别,并二次学习和保存分类特征。具有在线自主升级特性。7)★按形状特征搜索、模糊关键词搜索、常见藻及浮游动物搜索、分类学搜索,快速获取与显微观察中未知藻形态相似的所有藻类、浮游动物,经图像、文字对比,快速鉴定其分类学归属。其中的一级形态搜索有:单细胞、多细胞群体、管状体、丝状体、链状体、膜状体、网状体;二级形态搜索有:群体形态(不定型群体、球形/椭球形、平板片状、放射状/带状、盘状/星状、栅格/扇状、桃形/心形/多角形、囊状)、子细胞排列(有规律、无规律)、子细胞形态(球形、长形、其它形状)等。其还包含了对常见有毒藻、水华藻等的搜索特性。具有浮游生物细胞的自动抠图特性,可快速提取其主边缘特征图像。可自动测量分析藻类色素的RGB构成;具有对模糊、重叠的浮游生物图像的清晰化处理特性。8)各类统计分析数据可导出到EXCEL表,图像可保存。 注:本技术标书中打★款项必须响应,否则为重大偏离。大量的细小功能特性,没有一一列举在参数上,可直接发图片来测评。
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  • 万深AlgaeC型浮游生物计数及智能鉴定系统 一、用途:浮游生物(浮游植物、浮游动物)的快速计数、智能化辅助鉴定,以及显微分析等,用于水质等的一体化监测评价。二、主要配置:1)专业级2000万像素Sony大靶面1"芯片CMOS相机、显微镜转接口2)AlgaeC浮游生物计数分析智能鉴定系统软件(含藻类、浮游动物鉴定计数分析、显微图像分析模块) 1套3)品牌电脑(13代酷睿i5 CPU/16G内存/500G硬盘/21"彩显/无线网卡,运行环境为完整专业版Windows 10或11操作系统)1台 三、主要性能指标:1)显微成像:实现手动与自动拍摄。可人工控制显微图片的观察、拍摄、存储并自动拍摄多达400张图片;在自动模式下可实现连续自动等间隔图片拍摄。★具有实时预览饱和警告、自动背景矫正特性。2) ★中文、拉丁文双语显示的浮游生物专家图库:a、浮游藻类类群:蓝藻、绿藻、硅藻、裸藻、黄藻、褐藻、甲藻、隐藻、金藻、红藻、轮藻、灰色藻、定鞭藻、原绿藻、针胞藻共15个门、1719个属、15832个种的藻类;b、浮游动物类群:原生动物鞭毛虫类、原生动物肉足虫类、原生动物纤毛虫类、轮虫类、枝角类、桡足类、腔肠动物、被囊动物、毛颚动物等共26大类、2002个属、9845个种的浮游动物。内容包括浮游生物形态文字介绍、手绘图、显微照片。各图库属种和内容可自行扩充(已有有效图像量达29.2471万张)。3)浮游生物计数:a、浮游生物分类标记:采用不同颜色、不同大小的色圈标记各种浮游生物,并对200张所拍摄图片内的各种浮游生物,按类点击、自动累积计数(可合并不同倍率计数结果、多个样品计数结果);b、优势种自动排序、按门(类)排序、优势群落组成百分比分析;c、可自动计算香农-威纳指数、均匀性指数、藻密度自动换算、浮游动物丰度自动换算;★d、按大量形状模型来辅助计算浮游生物的生物量(内置34种几何模型,通过测量少量参数即可计算个体/细胞体积)。内置常见淡水藻、常见海洋藻等计数表,并可自行编辑、导出、导入计数表。数据管理:自动保存每批显微照片、统计标识和统计数据;提供报告编写模板、文本输入、打印预览。微囊藻分析模块能自动学习与分析团状微囊藻群体含细胞数,实现颗粒或单细胞微藻自动计数。4)★藻类、浮游动物智能鉴定:具有按相似度自动比对浮游生物图像的图像式智能搜索特性。通过形态学搜索、关键词搜索、常见浮游生物搜索、分类学搜索,经图像、文字对比,快速鉴定浮游生物。能自动索引浮游生物的用户计数表成所在流域小图库,使【以图搜图】更快捷。5)浮游生物形态测量功能:a、视野面积、藻群体面积、浮游动物个体面积测量;b、细胞直径、藻丝、鞭毛长度、浮游动物体长及触角测量;c、枝角分枝角度测量等。6)★超强的景深扩展的多聚焦融合3D高清晰成像。多视野图像的自动拼接、剪裁编辑修正特性。有藻类、浮游动物的颜色、形状自动学习分类特性,可监视修正转换藻类、浮游动物类别,并二次学习和保存分类特征。具有在线自主升级特性。7)★按形状特征搜索、模糊关键词搜索、常见藻及浮游动物搜索、分类学搜索,快速获取与显微观察中未知藻形态相似的所有藻类、浮游动物,经图像、文字对比,快速鉴定其分类学归属。其中的一级形态搜索有:单细胞、多细胞群体、管状体、丝状体、链状体、膜状体、网状体;二级形态搜索有:群体形态(不定型群体、球形/椭球形、平板片状、放射状/带状、盘状/星状、栅格/扇状、桃形/心形/多角形、囊状)、子细胞排列(有规律、无规律)、子细胞形态(球形、长形、其它形状)等。其还包含了对常见有毒藻、水华藻等的搜索特性。具有浮游生物细胞的自动抠图特性,可快速提取其主边缘特征图像。可自动测量分析藻类色素的RGB构成;具有对模糊、重叠的浮游生物图像的清晰化处理特性。8)各类统计分析数据可导出到EXCEL表,图像可保存。 注:本技术标书中打★款项必须响应,否则为重大偏离。
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  • Algacount M520菌落计数/浮游生物分析联用仪是2017年迅数科技基于M500型全新升级的高端多功能生物监测仪,集菌落计数、浮游动物智能鉴定计数、藻类智能鉴定计数、显微分析四大功能于一体,是专门为淡水、海洋环境生物监测提供的智能图像分析工具。全新设计的软件架构,融入迅数图像科技:“多维渐进相似藻搜索”、“易混淆藻鉴别”、“典型组合联想形态学搜索”,结合精美的浮游生物大数据,满足用户对浮游生物快速智能鉴定、分析、计数的需求。首次采用迅数最新图像技术-“多维渐进相似藻搜索”,仅需3秒即可从海量图库中把最相似的藻找出来。同时具备:多层聚焦、超视野拼接、生物量分析、链状体和胶被群体的子细胞计数、单细胞微藻自动计数等多种浮游生物分析功能。配备大视场1 英寸SONY CMOS图像传感器,拍摄反应速度快、色彩还原佳,单次拍摄的视场范围是传统摄像头的5倍。另加配MIC显微细胞分析软件,满足高端科研用户的精细观察和分析需求。浮游生物分析全新扩容的浮游生物数据库全面扩充的2017版浮游植物数据库 覆盖了中国七大水系、28个重点湖库的常见淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的常见海洋藻。 对检索的架构进行重新设计,建立“门”、“目”、“属”、“种”四级检索,既遵循浮游植物分类学,又兼顾了软件界面展开的便捷性。以精细、直观、实用的原则,对浮游藻简介进行重点编辑、分栏介绍,突显不同门类浮游植物的特点,使得 形态、结构、生殖、生态 一目了然。每个具体藻种,精选能反应其形态特点的一组图片,避免用户陷入大量冗余图像信息中。全新的浮游动物计数仪由丰硕的数据库与简易的操作程序组成,大量的浮游动物图片和中文、拉丁文双语文字资料能有效地辅助专家进行鉴定工作。在计数的同时也可以利用数字测微尺进行一系列精确测量工作。 多种模式智能搜索鉴定“多维渐进相似藻搜索”是迅数科技的藻类智能鉴定工具,采用了"最新的Machine DeepFace(机器深脸)技术,通过当今先进的卷积神经网络,实现对任意图像的深度特征提取。能快速准确实现:侦测未知藻细胞的轮廓、提取特征信息、大数据匹配,从几万张图库中找出形态最相近的一组藻类,同时优先展现常见藻类。此功能特点鲜明,实用性强,既满足图像搜索的效率,又兼顾了图形匹配的精度。 “易混淆藻鉴别”:使用者可以选择2、4、6个或更多形态相似的藻类,在同一界面上展开快速比较,通过典型的组合特征图、概要性文字,迅速掌握它们之间的区别要点,指导自己从差异化的细节特征进行重点观察。 “典型组合联想”形态学检索:依据形态相似性、渐变性,选取真实典型藻细胞图像,组合归类, 并结合细胞或群体的结构特征,如鞭毛、色素体、花纹、胶被等 ,实现精确、快捷的形态学检索。图形语言、组合联想、特征多选、淡水、海洋分库、浏览方便等特点,使得初学者能快速掌握。 浮游生物分类计数、优势种自动排序浮游生物流程式计数:连续获取200个视野图像,编辑计数表,点击标记不同种类,多视野相同属种自动累计,不同物种分类计数、总数累计、优势种自动排序和优势类群所占比例分析。 单细胞微藻自动计数包含七种图像分割算法的“动态自动计数”,适合纯培养能源藻、药用或食用微藻的细胞浓度快速测定。 显微测量、生物量分析系统提供了专门的显微分析工具。透明数字标尺可在不同物镜倍率下实现显微测量;生物量分析模块则汇聚了大量藻类及浮游动物几何模型,通过显微测量数据,自动计算其生物量。数据安全与管理为保证环境监测数据的真实、安全,新设计的账户管理系统能实现多账户分级管理,赋予管理员(实验室负责人)最大的权限,可以监督、查看不同实验员的试验数据;而实验员之间无法查看、篡改各自的数据。浮游生物统计信息以电子记录的方式保存,确保数据的完整性,有助于环境监测的规范化、无纸化,极大地提高工作效率,符合实验室检测发展趋势。统计数据按优势物种排序,包含:计数总数、单细胞体积、百分比、藻密度、丰度、优势度、藻总体积、Shannon指数、物种均匀度指数、碳生物量、氮生物量、总碳生物量。 菌落计数全封闭照明 采用全封闭、宽光带照明技术,符合人体工学的舷窗门设计,隔绝环境光的干扰,彻底消除杂散光在玻璃培养皿折射形成的光斑、光环现象。三色LED光源 采用长寿命、低功耗、环保型三色LED混合光,可以还原真实的菌落色泽,消除白光LED照明成像偏蓝的问题。光照模式自由切换 系统采用双光源设计:上光源采用多维大面阵LED混合光模组,通过柔性导光板,营造出360度环绕漫射柔光;下光源采用晶锐悬浮式暗视野照明。上下光源可自由切换,并根据用户需要,调节亮度。智能菌落计数以国际前沿的图像分割技术“水平集活动轮廓模型”为核心,针对微生物菌落多样性创造性地开发出“快速活动轮廓模型”、“基于RGB约束的彩色水平集活动轮廓模型”、“多相水平集活动轮廓模型”等先进的图像分割技术,具备抗噪性强、数值求解稳定性好、分割边界光滑连续、可以处理拓扑结构等优点,实现了复杂菌落的准确计数。 主要功能与技术指标一、菌落数字成像1. 光源可见光:高亮三色LED结构光254nm紫外:用于腔体消毒、紫外诱变2. 光路与照明控制全封闭暗箱:消除环境杂散光干扰上光源:场景式360°柔性无影光照明下光源:晶锐悬浮式暗视野照明上光、下光、双光、紫外,自由切换,光强可调3. 光电转换标清工业定焦镜头:8mm、 3.0 mega-pixel、1/2"、Distortion 1%、 F1.4~F16专业型CMOS相机:1/2.3"color CMOS sensor、8.5 Mega Pixels、C-Mount二、菌落计数模块1. 基本菌落计数功能平皿类型:倾注、涂布、膜滤、3M纸片一键智能计数(6模式):平面感模式、立体感模式、小菌落优先、大菌落优先、同色菌优先、培养基剔除模式全皿菌落统计:菌落总数统计,并按25档尺寸分类显示区域选择统计:可选择半圆、矩形、扇形、任意圈定区域进行统计直径分类统计:设置直径范围,统计特定大小的菌落鼠标点击统计:快速标记、添加菌落,适合培养皿边缘菌落的计数菌落粘连分割:自动分割相互粘连的菌落,链状菌落由用户选择分割或不分割2. 高级菌落统计功能动态调节统计:可对统计结果进行动态调节修正,快速获取最佳统计效果。偏差预估统计:适用于菌落颜色多且复杂的情况。水平集多模型算法:搜索运算,获取最佳图像分割效果,适应培养基背景变换特定菌落统计:根据菌落色泽、大小、轮廓特征,识别特定菌落反式统计:适合菌落类型极其复杂而培养基背景均匀杂菌、杂质剔除:根据形态、尺寸、颜色的区别,进行自动杂菌、杂质剔除3. 网格滤膜与3M测试片黑色实线网格一键统计3M细菌总数测试片、3M金黄色葡萄球菌测试片:一键统计3M大肠菌群测试片、3M大肠杆菌/大肠菌群快速测试片:一键统计+人工选择4. 微生物限度分析工具培养基适用性检查控制菌检查-菌落形态5. 专项分析防霉检测:定量分析防霉等级6. 高级工具网格清除:消除滤膜网格背景干扰人工计数修正:添加或删除菌落排除污染区域:鼠标勾勒任意污染区域,自动剔除污染区域的菌落数背景文字消除:自动消除记号笔干扰人工粘连分割:手动分割多重粘连菌落参数自动换算:培养皿直径、样本稀释度输入,实现自动换算文字、图形标注7. 标定与测量仪器标定:仪器自带标定、人工修正标定一键式快速测量:一键测定大菌落,适合真菌、放线菌的单菌落分析全皿自动测量:全皿菌落的等效直径、面积、长短径、周长、圆度分析手动精确测量:长度、角度、弧度、面积、弧线、任意曲线8. 数据库模块数据存储、智能查询数据导出:统计结果以Excel表导出数据安全:操作者使用权限,数据修改权限设置三、浮游生物数字成像大面阵科研级彩色数字相机:SONY 1英寸图像CMOS传感器;2000万像素;G光灵敏度462mv with 1/30s;FPS/分辨率::15@5440x3648;50@2736x1824;60@1824×1216;曝光时间:0.1ms~15s;USB3.0显微成像:超大视场显微图像实时动态观察、快速捕获,批量图片保存三维景深融合:快速融合不同焦平面,解决藻细胞分布在不同液层造成的局部模糊问题,获取全景深、高清晰藻细胞图像超视野拼接:多视野横向、纵向自动拼接四、浮游生物数据库1. 藻类专家数据库由精美的彩色显微照片、手绘图、文字介绍构成淡水、海洋藻库;覆盖中国七大水系、28个重点湖库的淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的海洋藻。2. 浮游动物数据库由原生动物鞭毛虫类、原生动物肉足虫类、原生动物纤毛虫类、轮虫类、枝角类、桡足类等24大类组成,以中文、拉丁文双语显示,附浮游动物文字介绍、手绘图、大量显微照片。3. 自定义数据库用户可自行添加需要的属或种的图片及文字资料,建立独立的数据库。五、浮游生物鉴定1. 藻类智能鉴定--“迅搜”模块多维渐进相似藻搜索:自动、智能的藻细胞图形识别工具,3-5秒即实现:侦测未知藻细胞轮廓、提取特征信息、大数据匹配,精确找出形态相近的可能藻类,“优先选择”项同步展现最相近的常见藻类。易混淆藻鉴别:针对经验欠缺的实验员设计,筛选多个因形态相似而易混淆的藻类,在同一界面上展开快速比较,通过典型的特征拼图、概要性文字,迅速掌握区别要点。“典型组合联想”形态学检索:用图形语言、组合联想、并结合细胞或群体的结构特征,实现精确、快捷的形态学检索。具备:特征多选、淡水、海洋分库、浏览方便等特点,使得初学者能快速掌握。四级分类学检索:由精美的彩色显微照片、手绘图、文字介绍 构成淡水、海洋藻库;覆盖中国七大水系、28个重点湖库的淡水藻,以及东海、黄海、渤海、南海周边的海洋藻;按“门、目、属、种”四级展开检索。分栏编辑:浮游植物名称、分类地位、 形态、结构、生殖生态 ,一目了然。通用查询:关键词查询(根据藻细胞文字描述中的特征词进行查询);常见藻查询(水华、赤潮、有毒藻);名称查询(中文名、拉丁名)2. 浮游动物辅助鉴定按中文名称或拉丁文名称搜索选择类、属,展现该类别下的所有浮游动物通用查询:关键词查询(根据浮游动物文字描述中的特征词进行查询);名称查询(中文名、拉丁名)六、浮游生物计数与分析1. 浮游生物流程式计数浮游生物分类统计:采用不同颜色、不同大小的色圈标记各种生物,按类点击、自动累积计数藻类总数统计:对样本各种生物的总数进行自动累计,优势种自动排序、按门排序、优势群落组成百分比分析自动计算:藻密度、生物量、香农-威纳指数、物种均匀性指数、优势度、丰度胶被群体分析:自动识别、计数群体中的子细胞,尤其适合微囊藻的计数分析链状体分析:用于估算单条丝状体、链状体的子细胞数2. 单细胞微藻自动计数动态自动计数:七种分割算法,适应单细胞微藻和成像背景的变化多功能细胞计数:基于通用、多通道、同色分割算法,可选择特定颜色、大小、轮廓的细胞进行自动计数,或反向排除细胞、杂质。3. 测量、生物量分析显微测量:可选择透明、不透明2种标尺,或直接鼠标点击划线测量生物细胞生物量分析:依据浮游生物形态数学模型,自动计算生物量七、图像处理自适应增强:分辨增强处理,突显藻细胞显微特征图像调整:图像亮度、对比度、饱和度、RGB三色任意调节,灰度图、负相图的转换图像补偿:通过线性补偿,对数补偿,贝尔补偿等多种数学方法对图像的失真部分进行补偿,使图像更加清晰图像锐化:通过增强图像的高频分量,使藻类边缘变得更清晰图像平整:通过图像平整处理,使图像背景均匀图像滤波:高斯滤波、低通滤波、中值滤波等6种滤波方式有效提高图像清晰度边缘检测:两种检测方式、三种算子结合多种检测选项更精确地提取藻类轮廓形态学处理:腐蚀、膨胀、开启、闭合等非线性数学形态学处理八、实验数据安全多账户分级管理,管理员、实验员具不同权限,避免实验数据篡改电子记录方式保存数据库,确保数据的完整性数据库:自动保存每批显微照片、统计标识和统计数据标注:可在已拍摄的浮游生物细胞图片上,进行任意的文字、尺寸标注报告编辑、打印:提供报告编写模板、文本输入、打印预览数据导出:统计数据、图片导出到EXCEL或PDF文件九、仪器规格与配置新M520菌落计数/浮游生物分析联用仪主机1台菌落分析软件、藻类分析软件、MIC分析软件、浮游动物分析软件联想一体电脑(全国联保):双核CPU/4G内存/1T硬盘/21.5"彩显,Windows 7或Windows 10显微摄像科研级彩色CMOS用户选配:显微镜和摄像转接口
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