菌落测定仪

一固体样品作菌落总数测定，其中10-1平板菌落数多不可计，10-2平板菌落数为271,10-3平板菌落数为60，则该样品菌落总数( )个/g。 A、27000 B、27100 C、60000 D、43550

菌落总数的快速测定方法1 适用范围：可用于各类食品及原料中菌落总数的测定。也可用于与食品接触的容器、操作台和其他设备表面的卫生检测。2 方法原理：将营养培养基、凝胶和氯化三苯基四氮唑（TTC）显色剂等加载在试纸片，经加样、培养后，细菌菌落在测试片上显现出红色菌斑，通过计数报告结果。3 操作方法3.1样品处理：无菌称取样品25g（或25mL）放入含有225mL无菌生理盐水的采样瓶或均质杯内，经充分振摇（均质）做成1:10的稀释液。用1mL灭菌吸管吸取1:10稀释液1mL，注入含有9mL灭菌生理盐水的试管内，用1mL灭菌吸管反复吸吹制成1:100的稀释液。以此类推，做出1:1000等稀释度的稀释液，每个稀释度更换一支灭菌吸管。3.2接种：一般食品选2～3个稀释度进行检测，含菌量少的液体样品（如食用纯水和矿泉水等）可直接用原液检测。将测试片放在水平台面上，揭开上面的透明薄膜，用灭菌吸管吸取样品原液或稀释液1mL，均匀加到中央的纸片上，轻轻将上盖膜放下，静置5 min使培养基凝固，最后用手轻轻地压一下。每个稀释度接种两片。3.3培养：将测试片叠在一起放回原自封袋中，透明面朝上水平置于恒温培养箱内，堆叠片数不超过12片。培养温度为36℃±1℃，培养15～24h。4 结果判断与计数：4.1细菌在纸片上生长后会显示红色斑点，选择菌落数适中（10个～100个）的纸片进行计数，乘以稀释倍数后即为每克（或毫升）样品中所含的细菌菌落总数。菌落数在100以内时，按实有数报告。大于100时，用二位有效数字，二位有效数字后面的数字，以四舍五入方法计算，并以10的指数来表示。4.2计数原则与报告方式4.2.1通常选择菌落在10个～100个之间的纸片进行计数，乘以稀释倍数报告之（见下表中例次1）。国家标准菌落总数报告方式术语为cfu/g或mL，cfu的含义为菌落形成单位。4.2.2若有两个稀释度的菌落数在10个～100个之内，两者的比值小于2，则取其平均数，若大于2，则采用稀释度小者报告（见下表中例次2和例次3）。4.2.3若三个稀释度的菌落数都有在10个～100个之内时，应选择二个低数值的平均数（见下表中例次4）。4.2.4若三个稀释度的菌落数均小于10个或大于100个时，应重新试用更低或更高的稀释度进行菌落计数；或采用均小于数量标准的最小值，或采用均大于数量标准的最大值（见下表中例次5和例次6）。 例次稀释度两稀释 度之比选定计数 稀释度报告方式 （个/g或 个/mL）10-110-210-31 2 3 4 5 6158 208 265 98 8 295

菌落总数，在菌落总数测定中，有了均质机和涡旋混合仪，还需要振荡器吗？望老师不吝赐教

1．菌落总数的测定：是以检样中的细菌细胞和营养琼脂混合后，每个细菌细胞都能形成一个可见的单独菌落的假定为基础的。由于检验中采用37℃于有氧条件下培养(空气中含氧约20％)，因而并不能测出每g或mL检样中实际的总活菌数，厌氧菌、微嗜氧菌和冷营菌在此条件下不生长，有特殊营养要求的一些细菌也受到了限制，因此所得结果，只包括一群能在普通营养琼脂中发育、嗜中温的、需氧和兼性厌氧的细菌菌落的总数。2．鉴于食品检样中的细菌细胞是以单个，成双、链状、葡萄状或成堆的形式存在，因而在营养琼脂平板上出现的菌落可以来源于细胞块，也可以来源于单个细胞，因此平板上所得需氧和兼性厌氧菌菌落的数字不应报告活菌数，而应以单位重量、容量或表面积内的菌落数或菌落形成单位数(colony forming units，CFU)报告之。3．每种细菌都有它一定的生理特性，培养时，应用不同的营养条件及其他生理条件(如温度、培养时间、pH、需氧性质等)去满足其要求，才能分别将各种细菌都培养出来。因此，要得到较全面的细菌菌落总数，应将检样接种到几种不同的非选择性培养基上，并培养在不同条件下，如温度，氧气供应等。但国家颁发的食品卫生标准对不同食品的菌落总数的规定，都是根据用普通营养琼脂进行需氧培养所得的结果确定的，因此在食品的一般卫生学评价中并不要用几种不同的非选择性培养基培养。

一、菌落总数介绍：　　菌落是指细菌在固体培养基上生长繁殖而形成的能被肉眼识别的生长物，它是由数以万计相同的细菌集合而成。当样品被稀释到一定程度，与培养基混合，在一定培养条件下，每个能够生长繁殖的细菌细胞都可以在平板上形成一个可见的菌落。　　菌落总数就是指在一定条件下（如需氧情况、营养条件、pH、培养温度和时间等）每克（每毫升）检样所生长出来的细菌菌落总数。按国家标准方法规定，即在需氧情况下，37℃培养48h，能在普通营养琼脂平板上生长的细菌菌落总数，所以厌氧或微需氧菌、有特殊营养要求的以及非嗜中温的细菌，由于现有条件不能满足其生理需求，故难以繁殖生长。因此菌落总数并不表示实际中的所有细菌总数，菌落总数并不能区分其中细菌的种类，所以有时被称为杂菌数，需氧菌数等。　　菌落总数测定是用来判定食品被细菌污染的程度及卫生质量，它反映食品在生产过程中是否符合卫生要求，以便对被检样品做出适当的卫生学评价。菌落总数的多少在一定程度上标志着食品卫生质量的优劣。二、检验方法　　菌落总数的测定，一般将被检样品制成几个不同的10倍递增稀释液，然后从每个稀释液中分别取出1mL置于灭菌平皿中与营养琼脂培养基混合，在一定温度下，培养一定时间后（一般为48小时），记录每个平皿中形成的菌落数量，依据稀释倍数，计算出每克（或每ml）原始样品中所含细菌菌落总数。　　基本操作一般包括：样品的稀释－－倾注平皿－－培养48小时－－计数报告。　　国内外菌落总数测定方法基本一致，从检样处理、稀释、倾注平皿到计数报告无何明显不同，只是在某些具体要求方面稍有差别，如有的国家在样品稀释和倾注培养进，对吸管内液体的流速，稀释液的振荡幅度、时间和次数以及放置时间等均作了比较具体的规定。　　检验方法参见：　　GB4789.2-94 《中华人民共和国国家标准 食品卫生微生物学检验 菌落总数测定》　　SN0168-92 《中华人民共和国进出口商品检验行业标准 出口食品菌落计数》三、说明（一）样品的处理和稀释：　　1．操作方法：以无菌操作取检样25g（或25ml)，放于225mL灭菌生理盐水或其他稀释液的灭菌玻璃瓶内（瓶内预置适当数量的玻璃珠)或灭菌乳钵内，经充分振要或研磨制成1：10的均匀稀释液。　　固体检样在加入稀释液后，最好置灭菌均质器中以8000~10000r/min的速度处理1min，制成1：10的均匀稀释液。　　用1ml灭菌吸管吸取1：10稀释液1ml，沿管壁徐徐注入含有9ml灭菌生理盐水或其他稀释液的试管内，振摇试管混合均匀，制成1：100的稀释液。　　另取1ml灭菌吸管，按上项操作顺序，制10倍递增稀释液，如此每递增稀释一次即换用1支1ml灭菌吸管。　　2．无菌操作：操作中必须有“无菌操作”的概念，所用玻璃器皿必须是完全灭菌的，不得残留有细菌或抑菌物质。所用剪刀、镊子等器具也必须进行消毒处理。样品如果有包装，应用75%乙醇在包装开口处擦拭后取样。　　操作应当在超净工作台或经过消毒处理的无菌室进行。琼脂平板在工作台暴露15分钟，每个平板不得超过15个菌落。　　3．采样的代表性：如系固体样品，取样时不应集中一点，宜多采几个部位。固体样品必须经过均质或研磨，液体样品须经过振摇，以获得均匀稀释液。　　4．样品稀释误差：为减少样品稀释误差，在连续递次稀释时，每一稀释液应充分振摇，使其均匀，同时每一稀释度应更换一支吸管。　　在进行连续稀释时，应将吸管内液体沿管壁流入，勿使吸管尖端伸入稀释液内，以免吸管外部粘附的检液溶于其内。　　为减少稀释误差，SN标准采用取10mL稀释液，注入90mL缓冲液中。　　5．稀释液：样品稀释液主要是灭菌生理盐水，有的采用磷酸盐缓冲液（或0.1％蛋白胨水），后者对食品已受损伤的细菌细胞有一定的保护作用。如对含盐量较高的食品（如酱油）进行稀释，可以采用灭菌蒸馏水。（二）倾注培养　　1．操作方法：根据标准要求或对污染情况的估计，选择2~3个适宜稀释度，分别在制10倍递增稀释的同时，以吸取该稀释度的吸管移取1ml稀释液于灭菌平皿中，每个稀释度做两个平皿。　　将凉至46℃营养琼脂培养基注入平皿约15ml，并转动平皿，混合均匀。同时将营养琼脂培养基倾入加有1ml稀释液（不含样品）的灭菌平皿内作空白对照。　　待琼脂凝固后，翻转平板，置36±1℃温箱内培养48±2h，取出计算平板内菌落数目，乘以稀释倍数，即得每克（每毫升）样品所含菌落总数。　　2．倾注用培养基应在46℃水浴内保温，温度过高会影响细菌生长，过低琼脂易于凝因而不能与菌液充分混匀。如无水浴，应以皮肤感受较热而不烫为宜。　　倾注培养基的量规定不一，从12~20ml不等，一般以15ml较为适宜，平板过厚可影响观察，太薄又易于干裂。倾注时，培基底部如有沉淀物，应将底部弃去，以免与菌落混淆而影响计数观察。　　3．为使菌落能在平板上均匀分布，检液加入平皿后，应尽快倾注培养基并旋转混匀，可正反两个方向旋转，检样从开始稀释到倾注最后一个平皿所用时间不宜超过[

本课内容：菌落总数测定的一些要点根据食品卫生标准要求和对样品污染情况的估计，选择2~3个稀释度。加入样品时要注意外来的污染。培养基倾注的温度与厚度是实验正确与否的关键。（倾注的温度：一般35~45℃，温度过高会造成已受损伤的菌细胞死亡。厚度：直径9cm的平皿一般要求15~20mL培养基，若培养基太薄，在培养过程中可能因水分蒸发而影响细菌的生长）。为防止细菌增殖及产生片状菌落，在加入样液后，应在15min内倾注培养基。检样与培养基混匀时，可先向一个方向旋转，然后再向相反方向旋转。旋转中应防止混合物溅到皿边的上方。l培养基凝固后，应在尽快将平皿翻转培养，保持琼脂表面干燥，尽量避免菌落蔓延生长，影响计数。l为控制污染，在实验过程中，应在工作台上打开一块琼脂平板，其暴露时间应与检样从制备、稀释到加入平皿时所暴露的最长时间相当，然后与检样一同培养，以了解检样在操作过程中有无受到来自外界的污染。培养温度:每种不同样品中的细菌都有一定的生理特性，培养时应用不同的营养条件及生理条件可能得出不同的结果，因而应根据检测标准的要求选择适当的培养温度和培养时间。l食品：36±１℃，48±2h 。l饮用水：36±１℃，48h 。l水产品：30±１℃，72±3h。(36℃培养和30℃培养结果差别较大，同样水产品48h结果和72h也有差别。对照试验：l检样的稀释液中往往带有食品颗粒，在这种情况下，为避免与细菌菌落混淆，可作一检样对照，不经培养，置4℃环境放置，在计数时用于对照。l或可选用TTC营养琼脂作培养基。菌落计数：l如果高稀释度平板上的菌落数比低稀释度平板上的菌落数高，则说明检验过程中可能出现差错或样品中含抑菌物质，这样的结果不可用于结果报告。l如果平板上出现链状菌落，菌落间没有明显的界限，这可能是琼脂与检样混匀时，一个细菌块被分散所造成的。一条链作为一个菌落计。若培养过程中遭遇昆虫侵入，在昆虫爬行过的地方也会出现链状菌落，也不应分开计数。l如果平板上菌落太多，不能计数时，不能用多不可计作报告。应在最高稀释度平板上任意选取2个1cm2的面积，计算菌落数，除2求出每cm2面积内平均菌落数，乘以63.6(皿底面积cm2数)。l如果检样是微生物类制剂（酸牛奶、酵母制酸性饮料等），在进行菌落计数时应将有关微生物（乳酸菌、酵母菌）排除，不可并入检样的菌落总数内作报告。每个样品从开始稀释到倾注最后一个平板的时间不得超过15min,目的是为了使菌落能在平板上均匀分布，否则，时间放长了，样液可能由于干燥而贴在平板上，倾注琼脂后不易摇开，容易产生片状菌落，影响菌落计数。另外，琼脂凝固后不要在室温长时间放置，应及时将平皿倒置培养，可避免菌落的蔓延生长。检验过程中应用稀释液做空白对照，用以判定稀释液、培养基、平皿或吸管可能存在的污染。同时，检验过程中应在工作台上打开一块空白的平板计数琼脂，其暴露时间应与检验时间相当，以了解检样在检验过程中有无受到来自空气的污染。检样稀释液有时带有食品颗粒，为避免与细菌发生混淆，可以作一检样稀释液与平板计数琼脂混合的平皿，不经培养，于4℃冰箱放置，以便在计数时用作对照。另外也可以在已熔化而保温在45℃水浴内的平板计数琼脂中，按100ml加1ml0.5%氯化三苯四氮唑（TTC）水溶液，培养后食品颗粒不变色，细菌为红色。

各位高手，请问做菌落总数测定时，若出现有霉菌，该不该一并计数！？说出各位答案的同时，也请附上您的依据和理由，谢谢！

在做空气中菌落总数的测定时,配置培养基时怎样调节培养基的PH在规定的范围内?做培养皿时,用什么东西往培养皿内加琼脂?有本书上说用"半自动平皿琼脂加液器",这东西是不是必须的?[em23]

菌落总数测定过程哪些步骤需要在无菌室操作？培养基的配制和灭菌要不要再无菌条件下？还是倒平板去无菌室就行了？

粪大肠 菌群的测定中滤膜法，HJ247.1-2018关于滤膜法的计算方法，我对标准的理解是：应该取粪大肠菌落数在20-60个的接种量为正确菌落数，其他接种量只是作为参考，不知道这样对不对，希望做过的朋友和我探讨研究研究。谢谢

请问大神，在做菌落总数的测定实验中，按1：10，1比100，1比1000三个稀释度培养，结果计算是最后的菌落数乘以其稀释倍数，那么请问这样的话，最后的结果岂不是全是整10的倍数吗，但是我看网上有人做的结果有36，39的，请问是如何计算的呢

做菌落总数测定的时候，所有培养基都多覆盖了一层培养基，空白组没长菌，12个平板但是大部分接种的培养基菌落表面还是长了菌，很多几乎是全部覆盖了，但是也有2个表面没长弥漫性菌落的 是怎么回事

菌落总数测定的不确定度乍么评定？

食品安全国家标准食品微生物学检验 菌落总数测定

我们想买一台菌落计数仪,查了一下,有SC-2010型系列全自动彩色菌落计数仪和SCAN-500型自动影像分析菌落计数仪以及手动菌落计数器等.有没有谁用过这些仪器?感觉如何?价格大概多少呢?谢谢.

细菌：湿润，粘稠，易挑起放线菌：干燥，多皱，难挑起，菌落较小，多有色素酵母菌：湿润，粘稠，易挑起，表面光华，比细菌的菌落大而厚霉菌：菌丝细长，菌落疏松，成绒毛状、蜘蛛网状、棉絮状，无固定大小，多有光泽，不易挑起细菌：一般形成较小的圆形菌落，颜色有白色、黄色等，表面光滑或不光滑放线菌：菌落背面有同心圆形纹路。这点可以和细菌菌落区分。酵母菌：菌落为淡黄色，光滑，半透明，比细菌菌落大。霉菌：菌落大型，肉眼可见许多毛状物，棕色、青色等，可见黑色的分生孢子群。转

咨询一下和大肠杆菌菌落形态相似的杂菌有哪些？培养条件是不是也相似？做总数测定的时候是不是真的什么情况都可能发生啊？

[align=center][/align][font=Tahoma, Helvetica, SimSun, sans-serif][size=18px][color=#444444]菌落总数就是指在一定条件下（如需氧情况、营养条件、pH、培养温度和时间等）每克（每毫升）检样所生长出来的菌落数。菌落总数测定是用来判定食品被细菌污染的程度及卫生质量，它反映食品在生产过程中是否符合卫生要求，以便对被检样品做出适当的卫生学评价。菌落总数的多少在一定程度上标志着食品卫生质量的优劣。菌落总数超标的食品，可能会引起急性中毒、呕吐、腹泻等症状，危害人体健康安全。那么，菌落总数超标的原因及其解决方案有哪些呢？下面我们就从六个方面角度来逐个分析。人员食品生产运输销售的各个环节员工的不正确行为都有可能导致菌落总数超标，而其中较为普遍的可能为：1、负责清洗消毒工作的人员对清洗消毒的频率及要求执行不到位或不了解，可能出现生产环境卫生状况不良，生产设备连续使用未进行清洗消毒，对生产设备清洗不干净或消毒不严，产生微生物滞留和滋生等情况造成食品污染，进而导致菌落总数超标。2、生产操作人员不按生产要求进行操作。如负责杀菌工序的人员对杀菌的参数及要求执行不到位或不了解，可能导致杀菌不彻底.03、员工培训不到位，缺乏卫生意识。如加工过程中生熟不分发生交叉污染，进而导致菌落总数超标。设备设备设施的能力和状态也可能与菌落总数超标有关。此处我们以杀菌设备和包装机为例。包装后需进行杀菌的产品，若杀菌设备性能不足、温度计未校准导致杀菌不彻底都有可能引起菌落总数超标。针对杀菌设备，我们可以通过做热力分布和热穿透测试，验证杀菌釜的性能以及定期使用温度记录仪，跟踪杀菌过程产品温度的变化、做好温度计的校准等工作来避免菌落总数超标。同样的，包装机若密封性能不足，可能导致产品在杀菌和后期的贮存过程中出现被污染的情况。针对包装机，我们可以通过建立包装机性能验证，确保密封性良好，同时做好内包车间和包装机的清洁卫生来减少菌落总数超标的可能。物料物料主要包括各种原辅料、内包材、生产用水和冰等，若各种料原始微生物含量较高，还是有增加后期产品菌落总数超标的风险；因此我们应有针对性的对原辅料包材进行评估，制定一定的验收要求并对原辅料包材进行对应的检测，并在贮存和加工过程中做好温湿度控制和环境管理。另外，内包材在使用前还可考虑采取紫外灯或臭氧进行消毒。对于生产用水和冰，可以采取每周一次的频率对其微生物状况进行验证。方法方法主要指的各种有关微生物措施制定的合理性。如，设备设施、环境、人员清洗消毒的频率及方法是否合理？杀菌公式的设定是否合理？生产过程中环境温湿度的控制是否合理？食品储存和运输中设定的条件（如冷链）是否合理等。这种情况，可以采取的措施就是验证。通过对事前事后进行微生物实验，将得出的数据进行比对，确认方法是否可行。除此之外，我们还可以通过调整一定的参数并采集实验数据来对方法进行优化，进而确定最合适的方法。环境从原辅料的运输、贮存、加工成成品以及销售等各个环节场所的不当，都有可能导致产品菌落总数超标。如包装车间卫生不当、生产环境温湿度控制不当、废料间卫生间位置设施不当等等。针对环境，我们可以采取的措施是合理考虑各个场所的布局、严格控制各个环节的温湿度以及持续保持各个场所的卫生等。流通若在流通环节检出多种食品存在菌落总数超标的情况，则问题极有可能是销售方未按照规定要求存储、摆放食品，比如个别超市不具备低温冷藏设施却销售需冷藏的食品，有的食品标签标注储存条件为避光，销售者却将食品置于阳光直射条件下等。[/color][/size][/font]

食品卫生微生物学检测菌落总数测定测量结果的不确定度评定依据JJF1059－1999《测量不确定度评定与表示》、CNAL/AG06《测量不确定度政策实施指南》和CNAL/AR11《测量不确定度政策》分析一、测量方法按照国家标准GB/T4789.2-2003《食品卫生微生物学检验菌落总数测定》规定的检测程序进行。检测过程为：1） 以无菌操作将检样25g（mL）剪碎放于含有225mL灭菌生理盐水或其它稀释液灭菌玻璃瓶内（瓶内预置适当数量的玻璃珠）或灭菌乳钵内，经充分振摇或研磨做出1：10的均匀稀释液。固体检样在加入稀释液后，最好置均置器中以8000r/min～10000r/min的速度处理1min，做出1：10的均匀稀释液。2） 用1mL灭菌吸管吸取1：10稀释液1mL，沿管壁徐徐注入含有9mL灭菌生理盐水或其它稀释液的试管内（注意吸管尖端不要触及管内稀释液），振摇试管，混合均匀，做出1：100的稀释液。3） 另取1mL灭菌吸管，按上条操作方法，做10倍递增稀释，如此每递增稀释一次，即换用1支1mL灭菌吸管。4） 根据食品卫生标准要求或对标本污染情况的估计，选择2个～3个适宜稀释度，分别在做10倍递增稀释的同时，即以吸取该稀释度的吸管移1mL稀释液于灭菌培养皿内，每个稀释度做两个培养皿。5） 稀释液移入培养皿后，应及时将凉至46℃营养琼脂培养基（可放置于46℃±1℃水浴保温）注入培养皿约15mL，并转动培养皿使混合均匀。同时将营养琼脂培养基倾入加有1mL稀释液灭菌培养皿内作空白对照。6） 待琼脂凝固后，翻转平板，置36℃±1℃温箱内培养48h±2h。7） 作平板菌落计数时，可用肉眼观察，必要时用放大镜检查，以防遗漏。在记下各平板的菌落数后，求出同稀释度的各平板平均菌落总数。8） 选取菌落数在30～300之间的平板作为菌落总数测定标准。一个稀释度使用两个平板，应采用两个平板平均数，其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数，若片状菌落不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又很均匀，即可计算半个平板后乘2以代表全皿菌落数。平板内如有链状菌落生长时（菌落之间无明显界线），若仅有一条链，可视为一个菌落；如果有不同来源的几条链，则应将每条链作为一个菌落计。同一样品重复测量10次,取其平均值作为测量结果。10次重复测量的结果见表1。表1 单一样品重复测量的计算过程序号测量结果xilgxilgxi－ (lgxi－ )21350004.5441-0.030670.0009412880004.94450.369730.136731000005.00000.425230.18082142000005.30100.726230.527415650004.81290.238130.056706696003.9823-0.592470.3510217500004.69900.124230.015433898003.9912-0.583570.340554990003.9542-0.620570.38510710330004.5185-0.056270.003166平均值599404.5748二、数学模型从数据看，由于测量结果发散极大，与之相比其它不确定度来源（人员、标准、设备、环境、方法等）无疑均可以忽略不计，这也是微生物测量的特点。因此仅考虑由测量结果发散引入的不确定度分量。于是数学模型可以简单地写为y=x三、测量不确定度评定由于重复测量结果中最大值和最小值相差20倍。因此用常规的直接根据平均值得到标准偏差的方法显得有些不合理。通常的做法是取对数以后在用常规的贝塞尔方法进行计算。具体计算过程如下：1） 测量结果xi（表1第2列）；2） 取对数lgxi，得到对数lgxi的平均值为： =4.5748（表1第3列）；3） 求残差lgxi－ （表1第4列）4） 求残差的平方（lgxi－ ）（表1第5列），得到残差平方和为 ＝1.9978595） 合成标准不确定度测量结果为10次重复测量的平均值，故平均值的标准不确定度为 =0.14906） 扩展不确定度由于置信概率p=95%，自由度ν=10-1=9，由t分布表可得k=2.26。于是 7） 取反对数，由lgx坐标回到x坐标由于lgx与x之间的非线性关系，不能直接求扩展不确定度U的反对数，只能给出微生物含量的可能区间。因此首先确定lgx的取值范围为：lgx=4.5748±0.3367，或写成4.2381≤lgx≤4.9115取反对数后可得 1.7×104≤x≤8.2×104四、不确定度报告由于微生物测量结果的特殊性，所以其测量结果的不确定度表示也与其他专业不同。按照国家标准GB/T4789.2-2003《食品卫生微生物学检验菌落总数测定》规定的检测程序进行，被测样品微生物菌落总数（十次测量平均值）在1.7×104和8.2×104之间。[img]http://bbs.instrument.com.cn//images/affix.gif[/img][url=http://bbs.instrument.com.cn/download.asp?ID=194237]食品卫生微生物学检测菌落总数测定测量结果的不确定度评定.doc[/url][color=#DC143C][size=4][font=黑体]应疯子哥的要求，把公式及图片贴上来，在5楼-7楼有版主ROGERSW的完整佳作。[/font][/size][/color]

一、实验原理稀释平板测数是根据微生物在高度稀释条件下固体培养基上所形成的单个菌落是由一个单细胞繁殖而成这一培养特征设计的计数方法，即一个菌落代表一个单细胞。计数时，首先将待测样品制成均匀的繁殖稀释液，尽量使样品中的微生物细胞分散开，使其成单个细胞存在，否则一个菌落就不只是代表一个细胞，再取一定稀释度、一定量的稀释液接种到平板中，使其均匀分布于平板中的培养基内。经培养后，由单个细胞生长繁殖形成菌落，统计菌落数目，即可计算出样品中的含菌数。此记数方法所计算的菌数是培养基上长出来的菌落数，故又称活菌计数。一般用于某些产品检定，如根瘤菌剂等产品检定，生物制品检验，土壤含菌量测定及食品、水源的污染程度的检验。自然条件下，微生物常以群落状态存在，这种群落往往是不同种类微生物的混合体。为了研究某种微生物的特性或者要大量培养和使用某种微生物，必须从这些混杂的微生物群落中获得纯培养，这种获得纯培养的方法称为微生物的分离与纯化。在自然界中，土壤是微生物生活的良好环境，其中生活的微生物数量和种类都是极其丰富的，因此土壤是人类开发利用微生物资源的重要基地。土壤中的微生物数量、种类与土壤肥力有关，肥沃的土壤中多，贫瘠土壤中少。其生理类群则与土壤的其它理化性质，如通气、pH有关，例如在通气良好的菜园土中，好气性微生物占有绝对优势。本实验以菜园土为材料分离土壤中的好气性细菌，并进行数量测定。分离微生物时，一般是根据该微生物对营养、pH、氧气等要求的不同，供给它们适宜的生活条件，或加入某种抑制剂造成只利于该菌种生长，不利于其它菌种生长的环境，从而淘汰不需要的菌种。分离微生物常用的方法有稀释平板分离法和划线分离法，根据不同的材料，可以采用不同方法，其最终目的是要在培养基上出现欲分离微生物的单个菌落，必要时再对单个菌落进一步分离纯化。在用稀释平板分离微生物时，还可以同时测定待分离的微生物的数量。放线菌与细菌同属原核微生物，是重要的抗生素产生菌，在土壤中的数量仅次于细菌，尤其是在有机质丰富、透气性好的中性到微碱性土壤中的数量较多。本实验采用高氏一号琼脂培养基分离和计数菜园土中的放线菌。真菌在土壤中的数量次于细菌和放线菌，主要在有机质丰富、透气性好的偏酸性土壤中较多。分离土壤中的真菌并不难，但由于其菌落大，容易扩展，计数准确性较低。本实验采用加有氯霉素或庆大霉素和孟加拉红的马丁氏培养基分离及计数菜园土中的真菌。按一般资料介绍为链霉素，但此种抗生素要先配成一定浓度的溶液，且应于倒平板前才加入培养基中。在此培养基上，放线菌和细菌被氯霉素或庆大霉素和孟加拉红所抑制，但大多数真菌能够生存，且其菌落受孟加拉红的抑制而较小，从而避免了某些真菌的扩散蔓延而带来的数量上的误差。

最近试做了几个样，全部无菌落，已恒温控制了培养基的温度为48度，甚至试做了一个没有添加防腐剂的样品，还是无菌落，有没有可能是因为刚灭完菌的培养皿和生理盐水温度太高烫死了，摸着都烫手，培养基应该没变质，在保质期内，在无菌落的皿上按手印培养后有菌落生成

目的： 通过对生活饮用水中菌落总数测定方法进行验证，证明我公司采用标准GB/T 5750.12-2006《生活饮用水标准检验方法微生物指标 菌落总数测定》规定的方法对生活饮用水中菌落总数的测定满足检测要求。[b]1 实验室基本情况[/b][align=center]表1-1参加验证的人员情况表[/align] [table][tr][td] [align=center]姓名[/align] [/td][td] [align=center]性别[/align] [/td][td] [align=center]职务[/align] [/td][td] [align=center]所学专业[/align] [/td][td] [align=center]从事相关分析工作年限[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]A[/align] [/td][td] [align=center]女[/align] [/td][td] [align=center]微生物组长[/align] [/td][td] [align=center]食品科学与工程[/align] [/td][td] [align=center]5年[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]B[/align] [/td][td] [align=center]女[/align] [/td][td] [align=center]实验员[/align] [/td][td] [align=center]食品科学与工程[/align] [/td][td] [align=center]0.5年[/align] [/td][/tr][/table][align=center]表1-2使用仪器情况登记表[/align] [table][tr][td] [align=center]仪器名称[/align] [/td][td] [align=center]仪器型号[/align] [/td][td] [align=center]制造厂商[/align] [/td][td] [align=center]备注[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]生化培养箱[/align] [/td][td] [align=center]SPX-250B-Z[/align] [/td][td] [align=center]上海博迅实业有限公司医疗设备厂[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]立式压力蒸汽灭菌器[/align] [/td][td] [align=center]YXQ-LS-75SⅡ[/align] [/td][td] [align=center]上海博迅实业有限公司医疗设备厂[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]净化工作台[/align] [/td][td] [align=center]SW-CJ-1F[/align] [/td][td] [align=center]苏州博莱尔净化设备有限公司[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][/tr][/table][align=center]表1-3使用试剂登记表[/align] [table][tr][td] [align=center]试剂名称[/align] [/td][td] [align=center]批号[/align] [/td][td] [align=center]生厂商[/align] [/td][td] [align=center]备注[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]氯化钠[/align] [/td][td] [align=center]160913[/align] [/td][td]西陇科学股份有限公司[/td][td] [align=center] [/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]营养琼脂（NA）[/align] [/td][td] [align=center]171223[/align] [/td][td]北京陆桥技术股份有限公司[/td][td] [align=center] [/align] [/td][/tr][/table][b]2 方法验证过程[/b]2.1 菌液制备：挑取一粒大肠埃希氏菌（ATCC25922）磁珠置于BHI液体培养基中，24h过夜培养，使之菌悬液浓度在10[sup]9[/sup] CFU/mL，用无菌生理盐水按照10倍系列稀释法，稀释至10[sup]-6[/sup]~10[sup]-7[/sup]。2.2 样品制备：2.2.1 试验组：取25 mL2.1中制备的菌液，加入到225 mL无菌盐水中，制成每毫升10 CFU~100 CFU的样品原液，作为试验组。2.2.2 供试品组：不添加任何菌的相同样品。2.3 培养基/试剂制备：2.3.1按GB4789.28-2013食品微生物学检验 培养基和试剂的质量要求配制。2.3.2根据供应商提供的配制说明进行配制。2.4 实验操作：2.4.1 接种及培养：选择3个稀释度的样品匀液，在进行10倍递增稀释时，每个稀释度分别吸取1 mL样品匀液于无菌平皿中，每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸取1 mL空白稀释液加入两个无菌平皿内做空白对照。及时将15-20 mL冷却至46℃的NA倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。待琼脂凝固后，36℃±1℃倒置培养48 h±2 h。为防止蔓延，可在琼脂凝固后在表面覆盖一层约4 mL的琼脂。2.4.2验证试验采用空白对照、人员比对进行试验，并分别计算实验结果及人员比对结果。2.5 测试数据： [table][tr][td=1,2] [align=center]人员[/align] [/td][td=1,2] [align=center]实验组别[/align] [/td][td=4,1] [align=center]稀释度[/align] [/td][td] [align=center]检测结果[/align] [/td][td] [align=center]平均结果[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1] [align=center]10[sup]0[/sup][/align] [/td][td=2,1] [align=center]10[sup]-1[/sup][/align] [/td][td] [align=center]CFU/mL[/align] [/td][td] [align=center]CFU/mL[/align] [/td][/tr][tr][td=1,4] [align=center]B[/align] [/td][td] [align=center]试验组-1[/align] [/td][td] [align=center]39[/align] [/td][td] [align=center]33[/align] [/td][td] [align=center]3[/align] [/td][td] [align=center]4[/align] [/td][td] [align=center]36[/align] [/td][td=1,2] [align=center]36[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]试验组-2[/align] [/td][td] [align=center]35[/align] [/td][td] [align=center]37[/align] [/td][td] [align=center]4[/align] [/td][td] [align=center]3[/align] [/td][td] [align=center]36[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]供试品组-1[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]＜1[/align] [/td][td=1,2] [align=center]＜1[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]供试品组-2[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]＜1[/align] [/td][/tr][tr][td=1,4] [align=center]A[/align] [/td][td] [align=center]试验组-1[/align] [/td][td] [align=center]42[/align] [/td][td] [align=center]36[/align] [/td][td] [align=center]4[/align] [/td][td] [align=center]4[/align] [/td][td] [align=center]39[/align] [/td][td=1,2] [align=center]40[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]试验组-2[/align] [/td][td] [align=center]38[/align] [/td][td] [align=center]41[/align] [/td][td] [align=center]4[/align] [/td][td] [align=center]4[/align] [/td][td] [align=center]40[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]供试品组-1[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]＜1[/align] [/td][td=1,2] [align=center]＜1[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]供试品组-2[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]0[/align] [/td][td] [align=center]＜1[/align] [/td][/tr][/table][align=center] [/align][align=center]r（B）=log[sup]36[/sup]—log[sup]36[/sup]=0.00＜0.25[/align][align=center]r（A）=log[sup]40[/sup]—log[sup]39[/sup]=0.01＜0.25[/align]重复性：单人两次独立的单次实验结果的绝对差值，不应大于重复性限r=0.25，以10为底每g（或ml）中微生物计数的对数。[align=center]R=log[sup]40[/sup]—log[sup]36[/sup]=0.05＜0.45[/align]复现性：人员比对结果符合标准要求，两人单次试验结果的绝对差值，不应大于复现性限R=0.45，以10为底每g（或ml）中微生物计数的对数。2.7是否对方法偏离？ □是 ■否2.8 结论根据GB/T 5750.12-2006 《生活饮用水 菌落总数测定》要求依法检测，试验人员比对结果符合规定。故我公司对食品中菌落总数的测定符合标准GB/T 5750.12-2006 《生活饮用水菌落总数测定》的要求。

空白菌落总数总是有针尖大小的菌落，是怎么回事？但是倒不加生理盐水，只加培养基是没有菌落的

测定菌落总数便于判明样品被污染的程度，是对化妆品进行卫生学总评价的综合依据。化妆品菌落总数检测所用到的培养基是卵磷脂、吐温80——营养琼脂培养基，并且需要在培养基里添加TTC（2,3,5-三苯基氯化四氮唑）。首先我们先聊聊为什么要用到卵磷脂、吐温80——营养琼脂培养基，而不是营养琼脂NA（培养细菌用的培养基），化妆品中一般含有防腐剂，防腐剂能够抑制细菌的生长，而卵磷脂能够中和防腐剂，能将潜在的被抑制的细菌复苏，这样才能真正体现化妆品被污染程度。另外我们还需要添加显色剂TTC（2,3,5-三苯基氯化四氮唑），因为很多化妆品本身就带有颜色，不加TTC的话很难看出是否有菌生长，便于区别化妆品中的颗粒与菌落，一般每100ml卵磷脂、吐温80——营养琼脂培养基加入1ml 0.5%的TTC溶液，如有细菌存在，培养后菌落呈红色，而化妆品的颗粒颜色无变化。注意的是，添加TTC溶液的时候不能过多，过多可抑制细菌生长。对于要做菌种鉴定的，尽可能不使用含有TTC的菌落来进行鉴定。

[em61] 全自动菌落计数仪是利用光学成像系统获得培养皿或者一次性培养测试纸片（如3M菌落测试纸）的图像。 图像显示的作用首先是放大，放大后看菌落就轻松许多； 图像的第二个好处是可点击鼠标进行标记； 图像的第三个好处是可以借助软件自动统计，几百个菌落在1秒内数完。 所谓的全自动菌落是指菌落计数的自动完成，成像还是要手动完成的。另外，软件的自动统计准确率受各种因素的影响，一般情况下，都不能完成100％计数。但是，在菌落生长正常，大小基本一致，无大面积粘连的情况下，可实现95％左右的识别。此准确度完全满足一般的菌落计数统计要求，可用于微生物培养研究，食品卫生检测等。 博黛生物科技 BioDit 专业开发全自动菌落计数仪

一、填空（1）菌落总数是指水样在营养琼脂上有氧条件下37℃培养(48)小时后,所得(1)mL水样所含菌落的总数。（2）若所有稀释度的平板上均无菌落生长，则以（未检出）报告之。第二题,大家是报告0还是未检出?

谈一谈对菌落总数的理解菌落总数是指中温，需氧或兼性厌氧的菌吗？培养后平皿上有一种菌类似针尖状，比较细小，老师说是厌氧菌，读数的时候不用读，是吗？有的长毛了，是霉菌，，菌落总数应该也是包含霉菌的吧？大家怎么看？欢迎您的讨论http://simg.instrument.com.cn/bbs/images/default/em09505.gifhttp://simg.instrument.com.cn/bbs/images/default/em09505.gif

一般我们做液体样品的菌落总数检测，菌落在平板上都很细小，有时一眼看上去根本没有，非常仔细看才能看到很小的小点点在培养够48h的情况下，这样的算不算到有效菌落的统计里？如果要计数的话，很难判断是菌落还是别的什么，而且即使用菌落计数器数也很伤眼睛如果不计数的话，多培养几天后有些菌落会长大一点点，感觉的确是菌落那这些细小的点点算不算到菌落总数里呢