Tris抗原修复液(10×,pH9.0)

产品概述

Tris抗原修复液(10×,pH9.0)采用进口高纯度、高品质原料进行配制，可用于生命科学研究相关实验。 Tris抗原修复液(10×,pH9.0)可以有效去除醛类固定试剂导致的蛋白之间的交联，充分暴露石蜡切片等样品中的抗原表位，可以用于石蜡切片、冰冻切片等样品使用多聚甲醛、甲醛或其它醛类试剂固定后的抗原修复。抗原修复可以提高石蜡切片的免疫染色效果，亦可以不同程度的提高冰冻切片的染色效果。当冰冻切片免疫染色效果不理想时，可考虑进行抗原修复。 按照每个片子需要10ml抗原修复液(1×)计算，100ml抗原修复液(10×)可以用于100个样本的抗原修复。 组织在制作过程中，由于化学试剂的作用封闭了抗原，又由于热的作用致使部分抗原的肽链发生扭曲，致使在免疫组化的染色过程中不能将其显示出来，为了解决上述的问题，利用化学试剂和热的作用将这些抗原重新暴露出来或修正过来的过程称为抗原修复。柠檬酸盐、EDTA或Tris等缓冲液在热的条件下可以使被福尔马林屏蔽的抗原重新暴露出来，同时又不会对抗原表位造成破坏，从而提高抗原的检出率，降低背景染色，提高诊断的准确率。可以提供细胞凋亡、增殖、毒性、活性氧、细胞代谢、氧化应激、细胞膜流动性、膜通透性转换孔、细胞耗氧率、细胞内pH、细胞粘附、细胞自噬等数百种检测试剂盒产品。可以为您提供各种颜色的M系列、N系列、L系列、E系列、G系列等细胞膜、细胞质、细胞核、溶酶体、线粒体、内质网、高尔基体、骨架、微管等细胞、细胞亚结构荧光染色试剂盒产品，以及钙离子、钠离子、氩离子等各种荧光染色试剂盒产品。

保存温度

室温保存

注意事项

1.开盖后组份按要求条件保存。

2.拆封后请尽快使用完！

有效期

6个月

适用样本

石蜡切片 冰冻切片

仪器准备

1.加热设备

试剂准备

1.系列乙醇

2.纯水

3.免疫染色洗涤液

耗材准备

1.一次性手套

使用注意事项

1. 以下实验步骤仅供参考。

2. 抗原修复液恢复至室温后再使用。

3. 浸泡在抗原修复液中，最jia孵育时间需根据不同的样品和目的蛋白自行摸索。

使用方法

一、石蜡切片

1、脱蜡至水

①二甲苯3次，每次3～5min。

②无水乙醇脱水2次，每次3～5min。

③95%的乙醇，3～5min。

④90%的乙醇，3～5min。

⑤80%的乙醇，3～5min。

⑥70%的乙醇，3～5min。

⑦纯水冲洗2次，每次3～5min。

2、抗原修复

①用纯水稀释Tris抗原修复液(10×,pH9.0)至1×。

②将切片浸泡在Tris抗原修复液(1×)中，95℃或沸水加热约10～30min。

③抗原修复液(1×)使用前需预热到95～100℃。如果使用微波炉加热，避免暴沸和过多的水分蒸发。随后大约在20～30min内冷却至室温。

3、免疫染色洗涤液洗涤1～2次，每次3～5min。

4、封闭等后续的免疫染色步骤。

二、冰冻切片：

1、用纯水稀释Tri抗原修复液(10×,pH9.0)至1×。

2、免疫染色洗涤液洗涤切片5min。

3、将切片浸泡在抗原修复液(1×)中，95℃或沸水加热约10～30min。

4、抗原修复液(1×)使用前预热至95～100℃。如果使用微波炉加热，避免暴沸和过多的水分蒸发。随后大约在20～30min内冷却至室温。

5、免疫染色洗涤液洗涤1～2次，每次3～5min。

6、进行封闭等后续的免疫染色步骤。

三、其它样品：

其它样品参考石蜡切片或冰冻切片进行操作。

特别提示：本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！