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C-Trap 是世界上第一款将光镊、共聚焦显微镜或 STED 纳米显微镜(超级 C-Trap)和一个先进的微流控系统真正紧密结合的单分子操纵仪器。C-Trap 能够同时以亚皮牛顿及亚纳米级别的分辨率实时同步进行单分子操纵及观察。
原理
光镊可以通过高度聚焦激光束产生的力来操作纳米或微米级的介电质颗粒。高度聚焦激光束通常是激光通过显微镜物镜得到的。聚焦后的激光光束最窄的部分(光束腰)会存在非常强的电场梯度。介电质颗粒会被吸引至电场梯度最高的区域,也就是光束的中心。同时,电场还会在光束传播方向上对颗粒产生力。光束中的介电质颗粒会吸收并散射光子,于是就会产生相应的动量变化。如果颗粒不在光束腰上,由于光场光强梯度(即不同区域的光强差异)的影响,颗粒各个方向上会受到不均匀的力将其拉向光强最强的区域。
C-Trap 独特技术特点
多重连续激光光阱捕获无与伦比的刚性
范围和较低的力学噪声
绝对的 3D 捕获定位
超稳定负压驱动微流体
自动控制的微流控芯片
高度相关的力学-荧光数据采集
多重共聚焦扫描荧光显微镜
单光子灵敏度
可升级到STED 超分辨率
应用
利用 CTFM(Correlative Tweezers – Fluorescence Microscopy)前所未有地揭示了大量分子相互作用机制的详细信息,主要包括:
DNA修复 DNA/RNA结构动力学 核糖体翻译
DNA组织化和染色质化 DNA发夹结构动力学 中间纤维
DNA复制和转录 生物分子马达和酶 细胞膜相互作用
DNA-DNA相互作用 蛋白质折叠(解折叠) 细胞运动机制
标准配置参数
软件
C-Trap 简便直观的双屏显示界面给您的实验操作带 来极大 的方便。您可以通过手动的点击操纵杆或者 通 过简单的命令来自动控制诸如光阱位置,平台位置,微流体以及数据记录等过程。以用户为中心的 软件操作界面以及简易的操作流程使复杂的单分子 实验过程(微球捕获,分子的连接,随后的操纵以 及成像整个过程)在数分钟之内即可完成。
u-Flux 微流控
微流控流动系统? 负压系统可以在层流环境下检测到亚纳米 级别的位移
? 用于远程操控的自动阀
? 无位移偏差
? 单分子测量零干扰
? 多达 11 个注射器可以接到流动池上来实现 复杂的多重蛋白分析
光镊
检测范围 | 50μ m×50μ m×10μ m(x,y,z) |
独立光阱数目* | 2-4 |
光阱类型 | 持续的激光提供稳定精确的高强度捕获 |
力学检测分辨率 | <0.2pN @100Hz, 2μ m 聚苯乙烯微球(由生物样品决定) |
力学稳定性 | <1pN /分钟 |
最大逃逸力 | >1000 pN , 4.5μ m 聚苯乙烯微球 |
光阱转角频率 | 0.1kHz-15kHz |
光阱距离分辨率 | <0.5nm@100Hz |
最小步移 | <0.2nm |
光阱移动特性 | 所有光阱可在 x,y 平面独立移动。1+2,3+4 可在三维空间成对 移动 |
运动微球追踪精确度 | <3nm @ 100Hz 视频分析 |
共聚焦显微镜
可视范围 | 50μ m×35μ m(x,y) |
共聚焦颜色* | 最多可三色共用,从 488nm 到 647nm 之间的十种波长中选择 |
共聚焦分辨率 | 衍射极限之内 |
STED 分辨率* | <50nm, 25Mw 功率 |
扫描速度 | 线性扫描速度 100Hz |
定位精度 | <15nm |
光斑定位精确度 | <5nm |
背景抑制极限 | 100nM @1ms 积分时间 |
敏感度 | 极低的亮度检测极限以及单光子计数。可检测单个 eGFP |
其他值得注意的特点 | 和光镊完美的结合,交互式体验 |
可选配置
光镊 |
双重光镊升级到四重光镊(包括双重力学探测器) |
四光阱能量控制 |
双光阱Z轴定位 |
四光阱Z轴定位 |
双光镊串联扫描 |
功率控制动态范围扩展 |
光阱二维移动范围(X,Y)扩展 |
Z轴移动控制 |
标准盖玻片固定器 |
共聚焦荧光显微镜 |
标准单色共焦荧光扫描系统(520,不可扩展) |
单色共焦荧光扫描系统(488nm,532nm,638nm) |
双色共焦荧光扫描(488nm,532nm,638nm,两两搭配) |
DPSS激光器(激发绿色荧光,532nm或561nm) |
升级到1D STED超高分辨率纳米显微镜 |
升级到STED附加费 |
微流控 |
额外一套微流控流动池(6个) |
自定义流道布局模板 |
熔融石英连接装置 |
附件 |
温度传感 |
高端多核计算机,包含两个24显示器 |
防震装置 |
操作员桌椅 |
主动防震台 |
隔音室 |
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