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RISTRON 微流控芯片恒温灌流仪
—— Make your microfluidic-based cell experiments simple
RISTRON微流控芯片恒温灌流仪集成了精密的微量液体操控系统和透明的显微镜恒温平台，通过计算机精确控制液体的流量、流速、时间及温度，在培养箱外重塑细胞体内生长微环境条件，适合于微流控芯片上的细胞灌注培养及分析，结合常规倒置显微镜，实现细胞培养的实时监控和功能分析。
系统组成
微流注射泵系统、透明的显微镜恒温平台、软件系统
系统参数
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适配显微镜 |
所有倒置显微镜 |
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注射泵通道数量 |
1、2、4、8 |
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流量范围 |
0-681.73ml/min |
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注射器类型 |
0.5ml-200ml |
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工作模式 |
吸液模式、注射模式、推拉交替工作模式 |
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控制方式 |
触摸屏或PC电脑双式可控 |
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流量控制精度 |
当>30%满行程时，控制误差≤±0.1% |
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系统接口 |
USB |
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控温范围 |
室温-45℃ |
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控温精度 |
±0.2℃ |
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升温时间(25℃至37℃) |
<5min |
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仪器主机尺寸 |
330mm×280mm×185mm |
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恒温平台尺寸 |
160mm×126mm×100mm |
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恒温平台加热面积 |
100mm×80mm |
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恒温平台温度均匀性 |
±0.1℃ |
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适宜的微流控芯片材料 |
玻璃-玻璃、玻璃-PDMS、PDMS-PDMS |
产品主要性能特点：
n 精确控制液体流速和温度，为培养箱外细胞灌流式培养提供合适条件，微流控芯片上细胞持续灌流培养达3天以上；
n 根据实验需要编写任务（每个任务可设定8个步骤），每个步骤可精确控制流量、流速、时间及温度，便于实现微流控芯片预处理及自动化细胞培养、换药操作；
n 培养过程可同时进行相关加药、染色等处理，能实现细胞功能分析研究；
n 配合倒置显微镜，实现细胞长时间的实时动态监控成像；
n 恒温平台加热面积大且温度分布均匀，适合常规的培养皿恒温，也适合多片微流控芯片并行实验。
产品应用方向：
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微流控芯片上细胞灌注式3D培养：将细胞/琼脂糖混合液加载在微流控芯片上，设置培养液灌流速度和恒温平台温度，连续灌流培养3天，用荧光染料检测细胞的活性，绿色表示存活的细胞。 |
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动态研究细胞-细胞间相互作用：在微流控芯片微通道进行血管内皮细胞培养，研究不同培养条件下（剪切力、血清浓度、炎症因子、糖浓度）的血管内皮细胞与单核细胞、或肿瘤细胞相互作用。 |
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细胞粘附力研究：在微流控芯片微通道中加载细胞悬液，设定不同的剪切力环境，通过显微镜高速摄像机动态获取细胞形变图像，研究细胞贴壁时间、材料、细胞外基质、温度等对细胞粘度力的影响。 |
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流体剪切力对细胞形态及功能的影响：微流控芯片上培养细胞，培养过程设定不同的剪切力环境，不同时间点后观察细胞应力纤维的形成和形态，研究流体剪切力对细胞形态及功能的影响。右图a、b、c分别为三个不同等级的流体剪切力对细胞应力纤维形成的影响。 |
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定量研究细胞与不同材料间的粘附力大小：将细胞导入不同材料修饰后的平板流动腔，设定不同的剪切力环境，以能够冲掉50%粘附细胞代表细胞粘附临界剪切力，定量研究不同细胞与不同材料间的粘附力大小。 |
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细胞吞噬和外排药物动力学研究：将细胞加载在微流控芯片上，设置合适的温度值以维持细胞正常生理状态，在芯片上加载或替换荧光性药物，用荧光显微镜实时记录细胞内荧光强度的变化，分析细胞吞噬和外排药物动力学。左图为肝癌细胞吞噬道诺霉素的荧光图像，右图为2h后肝癌细胞的荧光图像。 |
技术参考文献：
[1] Christophis C, Grunze M, Rosenhahn A. Quantification of the adhesion strength of fibroblast cells on ethylene glycol terminated self-assembled monolayers by a microfluidic shear force assay[J]. Physical Chemistry Chemical Physics, 2010, 12(17): 4498-4504.
[2]Avraham-Chakim L, Elad D, Zaretsky U, et al. Fluid-Flow Induced Wall Shear Stress and Epithelial Ovarian Cancer Peritoneal Spreading[J]. PloS one, 2013, 8(4): e60965.
[3] Christ K V, Williamson K B, Masters K S, et al. Measurement of single-cell adhesion strength using a microfluidic assay[J]. Biomedical microdevices, 2010, 12(3): 443-455.
[4]Tsai M, Kita A, Leach J, et al. In vitro modeling of the microvascular occlusion and thrombosis that occur in hematologic diseases using microfluidic technology[J]. The Journal of clinical investigation, 2012, 122(1): 408.
[5]Wu M H, Chang Y H, Liu Y T, et al. Development of high throughput microfluidic cell culture chip for perfusion 3-dimensional cell culture-based chemosensitivity assay[J]. Sensors and Actuators B: Chemical, 2011, 155(1): 397-407.
[6]Li X J, Chen Y, Li P C H. A simple and fast microfluidic approach of same-single-cell analysis (SASCA) for the study of multidrug resistance modulation in cancer cells[J]. Lab on a chip, 2011, 11(7): 1378-1384.
