Daudi细胞
细胞名称:人Burkkit淋巴瘤细胞;Daudi
规格:T25培养瓶,1×106cells
形态特征: 淋巴细胞样
生长特性:悬浮
Daudi细胞描述:
培养条件:RPMI 1640(改良型)(CellCook cat:CM2006) 10%澳洲胎牛血清(CellCook cat:CM1003)
传代方法:不高于1:3传代。维持细胞浓度在0.3*10^6-3*10^6cells/ml,2-3天换液一次。
冻存液配方:基础培养基+5%DMSO+10%FBS
Daudi细胞特征特性:1967年,该细胞系Klein E和Klein G建系,源于一名16岁患有Burkitt’s淋巴瘤的黑人男性,beta-2-微球蛋白阴性,表达EBNA, VCA,sIg。该细胞携带EB病毒,是一个典型的B淋巴母细胞系,可用于白血病发病机制的研究。
Daudi细胞STR位点信息:
STR Profile | AMEL | CSF1PO | D13S317 | D16S539 | D5S818 | D7S820 | TH01 | TPOX | vWA |
Daudi | X, Y | 12 | 11,12 | 10,12 | 8,13 | 8,10 | 6,7 | 8,11 | 15,17 |
支原体感染会造成什么后果?
1、改变细胞膜状态
2、改变细胞生长习性
3、破坏细胞染色质
4、改变细胞表型
5、降低转染/转导效率
6、交叉感染其他细胞系
以上所有都会导致实验结果不可靠,重复性低!
Daudi细胞准备:
培养Daudi细胞之前必须有充足的思想准备,这株细胞非常好养,而且不能偷懒,必须勤快。细胞对氧气、密度和养分非常敏感,稍微偷懒拖一天不换液,可能就会导致细胞全部死亡的后果。只要保持换液和传代频率,多注意细胞密度,这株细胞还是可以征服的!
Daudi细胞培养技巧:
建议平躺着培养该细胞,以增大空气交换面积,且液体高度最好不要超过3mm,一般T25培养瓶加6-8ml培养基,T75培养瓶加15ml左右培养基即可。培养基尽量现配,配好的培养基最好两周内用完,因为叶酸不稳定易分解。
一般情况下细胞2-3天换液一次,即使培养基没有变黄。换液时轻轻侧过培养瓶/皿,不要使细胞飘起来,用巴氏吸管轻轻吸取部分上清弃去,补加等体积的新鲜培养基继续培养。或者将全部培养液转移至离心管中,1000rpm离心5min,吸去上清后用新鲜培养轻轻重悬后重新种瓶,重悬时不可吹打过度。细胞对离心和吹打比较敏感,离心和反复吹打会影响细胞状态,建议只在细胞产生大量碎片时才离心清洗。平常换液建议半换,传代可直接补加足够新鲜的培养基后直接分瓶。
细胞团长至肉眼可见,且T25瓶子有几十上百个小团时,细胞数量已经比较多,此时应该2天换液一次。当一个20倍视野有4-5个大细胞团时应该进行传代。传代时加入两倍体积的新鲜培养基后,轻轻吹打细胞团,将大的细胞团打散成小团,但不要剧烈吹打成单细胞悬液,因为单个的细胞是基本没有增殖活力的细胞,然后将混匀的细胞悬液转移至新的培养瓶中。或者将细胞悬液转移至离心管中,1000rpm离心5min后,弃去上清,加入三倍体积的新鲜培养基轻轻重悬后转移至三个新的培养瓶中。
冻存液用50%血清+40%完全培养基+10%DMSO。细胞数量应在0.5-1.0×106/ml为宜。复苏时可适当加大胎牛血清的含量,以使细胞尽快长起来。复苏后细胞需要重新聚团及较长的潜伏期,故复苏时间较长,期间应多加观察,并注意更换培养基,频率为3天一换(半换)。
特别提示:本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
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