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第三届国际植物与藻类表型组学会议(IPAP 2018)

第三届国际植物与藻类表型组学会议将于2018年8月26日至29日在欧洲历史名城布拉格召开!(会议链接:www.psi.cz/ipap2018)会议将聚焦于由各种成像传感器及环境传感器获取的表型大数据综合处理面临的挑战,以预测植物及藻类对变化的环境条件的响应,及在控制环境条件下(温室、生长箱)表型数据的采集处理以预测野外作物/植物的生长模式。实验程序协议(protocols)、图像获取、环境传感与环境控制、数据处理分析、性状阐释等与植物表型相关的议题将加以研讨,以加快重要农作物育种项目及具有重要商业价值的藻类品系选育等。    会议主要议题包括:l   新一代表型分析设备的设计l   高通量藻类表型分析概念l   表型大数据分析程序协议标准化l   从可控环境到大田:表型分析程序协议与规划设计l   基因组学与表型组学数据综合分析l   原位根系成像分析方法l   生物胁迫与非生物胁迫及过程与恢复监测分析l   植物组织、器官、植株3D模型重建会后将组织参观由PSI公司设计创建的植物与藻类表型研究中心(中心位于布尔诺市——孟德尔在此通过豌豆杂交实验发现并发表著名的孟德尔遗传定律),中心提供全套植物表型分析服务,可接受访问学者进行实验研究等。北京易科泰生态技术公司为您提供植物与藻类表型分析全面技术方案。    易科泰生态技术公司Ecolab实验室致力于引进、消化、吸收和创新国际先进生物生态科研技术,提供植物表型分析、作物胁迫敏感性与抗性检测、FluorCam叶绿素荧光成像分析、高光谱与红外热成像分析、PhenoUAS无人机遥感表型分析、光养生物反应器/藻类培养与在线监测、生态毒理学检测技术方案和实验服务与合作。目前实验室配备有FluorCam封闭式荧光成像系统、FluorCam便携式荧光成像仪、FL3500叶绿素荧光仪、AquaPen藻类荧光仪、PlantPen手持式荧光仪、FMT150光养生物反应器、MicroMac1000全自动营养盐分析监测系统、FMS CO2/O2呼吸测量分析系统等,欢迎联系实验合作等。作为PSI植物表型研究中心在中国的合作伙伴,欢迎国内研究人员联系到中心进行植物表型分析实验研究或参观学习。

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2018.01.24

我公司动物呼吸代谢系统用于医药研究

医药的研发离不开动物实验,整个研发过程要使用大量的实验动物比如小鼠大鼠,进行各种实验,研究药物作用于动物体时动物体的反应,比如对能量代谢的影响,就是很重要的一个方面,这一点对于抗肿瘤药物的研究尤为重要,因为肿瘤细胞的能量代谢机理和正常体细胞有很大的差异,这个差异可以从整个活体的呼吸代谢速率(耗氧率与CO2产生率)上显现出来。我公司代理的美国Sable公司(SSI, Sable Systems International)研发的动物呼吸代谢测量系统,精确测量各种动物呼出的二氧化碳量及耗氧量等,并可计算呼吸商,配置灵活,使用简便,数据精准可靠,广泛应用于与动物呼吸代谢有关的如动物生理、病虫害防治、预防医学研究实验等各方面研究。河南大学药学院此次引入呼吸代谢测量系统,测量大小鼠等实验动物,用于抗肿瘤中草药的研究。2通道测量系统代谢测量笼 安装调试时因为时间和条件有限,只做了简单对比测试,测试了大鼠清醒状态时和睡眠状态时的呼吸速率差异(开放式气路,pull模式)。注:测试时为了查看气体实际浓度变化情况,baseline气体和样本气体的测量时长都设置得比较长,实际测量时不需要这么长时间的。大鼠清醒时的测量数据曲线,红线为CO2,绿线为O2,计算出来呼吸速率(CO2产生速率)为0.762umol/g/min。同时可以看到因为大鼠处于清醒状态,比较活跃,所以CO2变化较大。大鼠睡眠时的测量数据曲线,红线为CO2,绿线为O2,计算出来呼吸速率(CO2产生速率)为0.449umol/g/min。同时可以看到因为大鼠处于睡眠状态,很安静,所以CO2曲线比较平直。

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2018.01.24

EcoTech植物表型成像分析全面解决方案

FluorCam叶绿素荧光成像技术红外热成像技术高光谱成像技术PlantScreen植物高通量表型成像分析技术    北京易科泰生态技术有限公司         FluorCam叶绿素荧光成像技术方案 作物产量的提高需要同步化综合评估作物形态性状和生理性状,高通量定量化作物生理状态测量分析技术尤为重要,而叶绿素荧光成像技术是监测作物生理性状表型的最适合的技术——引自IPK Henning Tschiersch、Thomas Altmann等:Establishment of integrated protocols for automated high throughput kinetic chlorophyll fluorescence analyses. Plant Methods, 2017.PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起,研制成功了FluorCam叶绿素荧光成像技术(Nedbal等,2000),并于1997年为美国华盛顿大学提供了第一台商业FluorCam系统。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破,使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界(Kupper等,2000;Sumava,2000),并成为高通量测量分析植物生理性状表型的有力工具。目前FluorCam叶绿素荧光成像技术已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的植物生理生态与表型分析研究仪器。易科泰生态技术公司从2007年代理PSI公司中国市场以来,先后安装调试了FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪、FluorCam便携式Chl/GFP荧光成像仪、FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统、FluorCam Chl/GFP封闭式荧光成像系统、FluorCam标准版开放式叶绿素荧光成像系统、FluorCam开放式大型版叶绿素荧光成像系统、FluorCam开放式多光谱荧光成像系统、FKM多光谱荧光动态显微成像系统、FluorCam移动式大型版叶绿素荧光成像系统等,并在Ecolab实验室装备了2台便携式叶绿素荧光成像仪、1台封闭式荧光成像系统、1台开放式叶绿素荧光成像系统及其它PAM调制叶绿素荧光仪。           FluorCam叶绿素荧光成像技术主要优势特点:1)          应用最广、发表论文最多、最权威,是植物表型分析、生物技术、遗传育种等领域的最先进、最重要的研究工具2)          种类最全面:a)    成像面积有31.5x41.5mm、13x13cm、20x20cm、35x35cm乃至超大型70x70cm不同规格b)    有便携式、封闭式、开放式、大型台式、样带扫描式、XYZ三维扫描式、光合连用式、FKM荧光显微成像与光谱分析等不同类型c)    可应用于实验室、温室及野外(有专用于野外的便携式、移动式等) 3)          功能最全:a)          最全面的叶绿素荧光成像Protocols,包括Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、光响应曲线、QA再氧化(适于封闭式)、OJIP快速荧光动力学(适于封闭式)等Protocolsb)          可扩展GFP、YFP等稳态荧光成像c)          可扩展UV-MCF多光谱荧光成像d)         可扩展PAR吸收与NDVI成像e)          可选择Protocols自动运行模式(用于无人值守监测等)f)           可选配不同智能LED光源及相应滤波器等 4)          在同等解析度条件下,灵敏度最高,可达50fps@720x560pixels,是分辨率和灵敏度最优的专业叶绿素荧光镜头;可选配其它高分辨率或超高灵敏度镜头 5)          智能LED、荧光成像镜头等全部有PSI公司自主生产,兼容性、稳定性强,维护成本低(几乎是免维护),性价比最高 6)          橙红色测量光源比蓝色更深入进到叶肉细胞并被叶绿素吸收,从而测量叶绿素荧光参数更准确稳定(Red photons reach the deeper mesophyll layers than blue ones which are more readily absorbed by chlorophylls closer to the surface——引自Zuzana Benediktyova and Ladislav Nedbal: Imaging of multi-color fluorescence emission from leaf tissues, Photosynth Res, 2009) 7)          标配为红、兰或红、白双色光化学光,白色可以模拟自然光照,红、兰组合可以实验不同光质组合的光合效率实验研究(参见Hogewoning等,2010,Blue light dose-responses of leaf photosynthesis, morphology, and chemical composition of Cucumis sativus grown under different combinations of red and blue light, Journal of Experimental Botany, 2010),比其它单一激发光源产品有更大的优势 8)          FluorCam叶绿素荧光专业分析软件(参见《FluorCam叶绿素荧光成像技术及其应用》专辑)红外热成像技术方案     植物必须在吸收更多CO2以进行光合作用及降低因蒸腾作用而导致的水分消耗之间保持平衡,而气孔则是这个过程的关键所在,以至于植物气孔及其行为深刻影响着全球CO2和水分通量。鉴于气孔在植物水分利用效率(WUE)乃至水循环、及植物光合作用乃至生产力(农业中表现为作物产量)中扮演的重要角色,植物气孔成为生物技术、遗传育种、基因组学与表型组学、及生态学研究的重要目标。植物对各种环境胁迫因素的响应特别是干旱胁迫、热胁迫等都会引起气孔导度等行为变化,而气孔行为比如关闭或开放程度(气孔导度)的任何变化,都会表现为植物温度的变化,因此,植物叶片、冠层温度的时空变化成为科学家观测研究“诊断”植物生理生态、光合作用、遗传育种、WUE、植物胁迫与抗逆性等的最重要的数据源之一,红外热成像技术则成为最重要的研究工具。    易科泰生态技术公司提供全球最先进的植     物红外热成像技术方案:1)    From Ground-based to UAV-based, from a leave to plant canopy to a landscape2)    高空间分辨率:640x512比特3)    高温度分辨率:0.03°C4)    传感器经过校准并具校准证书 5)  每个像素点都具备多维数据:位置信息、时间信息和温度信息,可将每个像素的数据信息下载到excel表中 6)  点、线、面可自由选择并显示最高温度、最低温度、平均温度、温度分布 7)  具备实验室、野外大田地面观测及无人机红外热成像遥感全面解决方案 8)  可与FluorCam叶绿素荧光成像技术组成集成技术方案,以全面成像测量分析植物光合效 率与气孔导度及WUE的关系,并分析计算植物内源性水分利用效率。高光谱成像技术方案     太阳光辐射照射到植物上,一部分被反射回大气中,一部分被吸收进行光合作用,一部分产生热散失。通过FluorCam叶绿素荧光成像技术可以成像测量分析植物吸收太阳能的光合利用效率等,通过红外热成像技术可以成像测量植物热时空分布进而分析气孔导度及水分利用效率等,而利用高光谱技术对植物反射光谱进行成像测量分析,可以得到植物特征光谱反射曲线,分析得出各种植物光谱反射指数如NDVI植被归一化指数(与叶绿素含量相关)、光化学反射指数PRI(可反应光利用效率)、SIPI(用于植物健康监测)、归一化氮指数NDNI、归一化木质素指数NDLI、植被衰减指数PSRI、类胡萝卜素指数CRI、花青素反射指数ARI等等。易科泰生态技术公司积多年植物科学、农业科学技术研究服务经验,与国际合作伙伴合作,提供植物高光谱技术应用全面解决方案:1)  基于地面机器人技术与空中无人机遥感技术平台,可以对叶片、冠层、样方或大面积景观高光谱遥感影像分析2)  手持式、便携式、样带扫描式、无人机遥感等不同技术方案3)  从多光谱到高光谱,不同光谱范围、不同波段数量、不同分辨率、各种价位方案供选配型号成像光谱范围波段数分辨率UAV地面ET-F推扫式400-1000nm60,120,240800x扫描长度??ET-SWIR推扫式900-1700nm80250x扫描长度??ET-1000推扫式600-1000nm1002048x扫描长度??ET-2000框幅式600-1000nm25256x256/400x200手持式或UAVET-D2000框幅式450-970nm40500x270??ET-B150推扫式450-1000nm1502000x扫描长度??4)  可与FluorCam叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术等组成技术集成方案,全面进行植物表型成像测量分析PlantScreen高通量植物表型成像分析技术     PlantScreen高通量植物表型成像分析平台由国际知名公司PSI公司研制生产,整合了LED植物智能培养、自动化控制系统与机器人技术、叶绿素荧光成像测量分析、植物热成像分析、植物近红外成像分析、植物高光谱分析、自动条码识别管理、RGB真彩3D成像、激光扫描分析、自动称重与浇灌系统等多项先进技术,以最优化的方式实现大量植物样品——从拟南芥、玉米到各种其它植物的全方位生理功能与形态结构成像分析,用于高通量植物表型成像分析测量、植物胁迫响应成像分析测量、植物生长分析测量、生态毒理学研究、性状识别、作物抗性筛选、作物遗传育种及植物生理生态分析研究等。作为全球第一家研制生产植物叶绿素荧光成像系统的厂家,PSI公司在植物表型成像分析领域处于全球的技术前列,大面积叶绿素荧光成像分析功能使PlantScreen成为植物表型分析与功能成像分析的最为先进的仪器设备。主要技术特点:1)          From FluorCam to PlantScreen,多样化选配方案满足不同实验研究需求、不同预算要求2)          台式、样带式、XYZ三维扫描式、传送带式,实验室、温室、野外移动式各种安装使用条件 3)          模块式结构,灵活配置,可扩展:a)          智能LED光源及生长箱、温室b)          智能LED光源光适应室,保障不同光辐射强度的均一光适应或暗适应c)          不同容量大小、不同安装设计规格的植物自动传送系统d)         基于机器人技术、不同规格大小的XYZ三维自动扫描系统e)          FluorCam叶绿素荧光成像技术,35x35cm成像面积或80x80cm成像面积,满足不同大小植物叶绿素荧光成像分析f)           3D RGB彩色成像分析技术g)          VNIR或NIR高光谱成像分析,0.8nm光谱分辨率,全面分析植物各种光谱反射指数h)          NIR近红外成像分析技术,三维成像分析植物水分时空分布i)            红外热成像分析技术j)            激光扫描成像分析技术k)          自动称重与浇灌技术 4)          无与伦比的FluorCam叶绿素荧光成像技术,是植物生理功能表型组学研究、生物技术、胁迫敏感性与抗性检测分析、光合效率高通量表型分析等最先进也是唯一的选择。在表型分析领域,这一技术在国际上仍然没有其它产品可以替代。其它商业化表型分析系统尽管列出可以有叶绿素荧光成像,但根据非常有限的资料介绍看,勉强可做的是Kautsky诱导效应,然后给出一个近似的参数ΔF/Fm,由于技术不够成熟,至今仍难以找到有影响力的参考文献(用于表型分析) 5)          PlantScreen采用的是校准的红外热成像传感器,得到的不仅是影像,还有大量数据——实际温度;而且PlantScreen红外热成像有专门的智能LED可控光源(气孔动态与光照关系密切),没有可控光源,成像室内的温度变动噪音会大于植物生理生态变化造成的温度差异;另外,还可以通过RGB“面具”技术,得到边境清晰精准的红外热成像。这些性能特点是其它同类产品所不具备的 6)          PlantScreen NIR成像采用多滤波器技术,不仅测量水分吸收峰值1450nm,还可进行reference测量如植物对1000nm反射,从而得到高反差水分分布信息。而其它产品近红外成像只有一个滤波器得到1400nm的反射影像,没有reference测量(对照参考测量),得到的数据很大程度上缺乏量化、信噪比非常低 7)          PSI不仅是FluorCam叶绿素荧光成像技术的研发生产者,应用于PlantScreen的传感器(包括高光谱、近红外、红外热成像等)、智能LED光控技术、FytoScope生长室等都由自己生产,从而保障了产品技术的稳定性、可靠性、兼容性及性能指标和价格的实在性,有效避免了维护费用高、兼容性差、容易出问题、性价比低等缺陷 8)          PlantScreen所测量的所有数据都是透明的、可以追溯的,而不像其它同类产品只是一个“黑箱”,缺乏原数据的透明性等 9)          PSI的表型大数据软件功能全面先进,具备强大的分析能力、可视化、数据库等,如对叶片跟踪监测功能(leaf tracking),可以持续跟踪监测叶片的生长、变化等等,这是其它同类产品所不具备的 10)          PlantScreen不仅可以通过高分辨率RGB镜头 或激光扫描构建3D模型,而且还可以通过投射技术,将与其它传感器所得数据如叶绿素荧光、红外热成像温度数据、近红外数据、高光谱数据等投射在3D模型上一起进行对比分析等,其它同类产品完全不具备,甚至不能创建真正的3D模型 11)          PSI公司建有植物表型分析研究中心,中心有首席科学家带队的技术团队,并发表多篇学术论文,与中国易科泰生态技术公司有着长达10年的合作,设有技术支持中心和EcoLab实验室,售后服务和技术支持有着充分的保障上图为RGB二维形态成像分析;下图为不同表型成像分析技术(2D RGB成像、FluorCam叶绿素荧光成像、高光谱成像)同步分析,结果表明,Rfd最为敏感,实验一小时后就可以检测到实验组(干旱胁迫)与对照组的明显差别(左图为RGB彩色成像分析(叶面积),中图为FluorCam叶绿素荧光成像分析(荧光衰减指数),右图为高光谱成像分析(植被归一化指数)) 根窗技术高通量根系表型分析近期部分参考文献:1)          Celine Rousseau etc. High throughput quantitative phenotyping of plant resistance using chlorophyll fluorescence image analysis. Plant Methods 20132)          Anna Rusaczonek etc. Role of phytochromes A and B in the regulation of cell death and acclamatory responses to UV stress in Arabidopsis thaliana. Journal of Experimental Botany 20153)          Celine Rousseau etc. Phenoplant: a web resource for the exploration of large chlorophyll fluorescence image datasets. Plant Methods 20154)          Fildas Bourdais etc. Large-scale Phenomics identifies primary and fine-tuning roles for CRKs in responses related to oxidative stress. PLOS Genetics 20155)          Katarzyna Mozdzen etc. Effect of drought stress induced by mannitol on physiological parameters of Maize(Zea mays L.) seedlings and plants. Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences 20156)          Jan F Humplik etc. Automated integrative high-throughput phenotyping of plant shoots: a case study of the cold-tolerance of pea. Plant Methods 20157)          Jan F Humplik etc. Automated phenotyping of plant shoots using imaging methods for analysis of plant stress responses – a review. Plant Methods 20158)          Maria L. Perez-bueno etc. Multicolor fluorescence imaging as a candidate for disease detection in plant phenotyping. Frontiers in Plant Science 2016.9)          Mariam Awlia etc. High-throughput non-destructive phenotyping of traits that contribute to salinity tolerance in Arabidopsis thaliana. Frontiers in Plant Science 201610)      Tepsuda Rungrat etc. Using phenomic analysis of photosynthetic function for abiotic stress response of gene discovery. BioOne 201611)      Matthew Jacobs etc. Photonic multilayer structure of Begonia chloroplasts enhances photosynthetic efficiency. Nature Plants 201612)      Carmen M. Ortiz-Bustos etc. Fluorescence imaging in the red and far-red region during growth of Sunflower Plantlets diagnosis of the early infection by the parasite Orobanche Cumana. Frontiers in Plant Science 201613)      Henning Tschiersch etc. Establishment of integrated protocols for automated high throughput kinetic chlorophyll fluorescence analyses. Plant Methods 2017.14)      Joao Serodio etc. A chlorophyll fluorescence-based method for the integrated characterization of the photophysiological response to light stress. Journal of Experimental Botany 201715)      Monica Pineda etc. Use of multicolour fluorescence imaging for diagnosis of bacterial and fungal infection on zucchini by implementing machine learning. Functional Plant Biology 2017

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2017.12.04

NASA利用 FluorPen 研究太空植物生长适应性

nasa  利用 fluorpen  叶绿素荧光成像仪研究太空植物生长适应性,详情请链接:https://blogs.nasa.gov/kennedy/2017/08/john “jc” carver, a payload integration engineer with nasa kennedy space center’s test and operations support contract, uses a fluorpen to measure the chlorophyll fluorescence of arabidopsis thaliana plants inside the growth chamber of the advanced plant habitat (aph) flight unit no. 1. half the plants were then harvested. photo credit: nasa/leif heimboldfluorpen 手持式叶绿素荧光仪集成了 pam(脉冲调制)荧光测量技术及 ojip 快速荧光 动力学测量技术等,是目前世界上便携性最强、集成度最高、功能最全面、性价比最高的 叶绿素荧光测量仪器!体积最小,仅手机大小;种类最全:有固定叶夹式、分离叶夹式、探头式及适用于野外长期监测的 monitoring fluorpen,还有适于藻类测量监测的 aquapen 等功能最全:内置光合有效辐射、即时叶绿素荧光、光量子产量、kautsky 诱导效应、 2 套荧光淬灭、3 套光响应曲线及 ojip-test 等共 10 种测量程序协议(protocols)参数最多:测量参数达 60 余个,其中 ojip-test 在 1 秒时间内测量记录近 500 个 叶绿素荧光数据并通过软件即使计算出 26 个叶绿素荧光参数;时空信息:可选配即插式 gps(最新版本内置 gps),输出带时间戳和经纬度的“三 维”数据fluorpen 可以应用于生长箱(气候室)、实验室、野外及各种极端条件下的植物(包括 藻类等低等植物)生理生态学研究测量,成为目前最方便、最流行的叶绿素荧光测量仪器。科学家在北极地区应用 fluorpen  监测研究地衣类植物对气候变化的响应 近期部分参考文献: ajigboye o. o., lu ch., murchie e. h., et al. (2017). altered gene expression by sedaxane increases psii efficiency, photosynthesis and growth and improves tolerance to drought in wheat seedlings. pesticide biochemistry and physiology. volume 137. pages 49-61. doi: 10.1016/j.pestbp.2016.09.008 chekanov к., schastnaya e., solovchenko a., et al. (2017). effects of co2 enrichment onprimary photochemistry, growth and astaxanthin accumulation in the chlorophyte haematococcus pluvialis. journal of photochemistry and photobiology b: biology. volume 171. doi 10.1016/j.jphotobiol.2017.04.028 duarte b., pedro s., marques j. c., et al. (2017). zostera noltii development probing using chlorophyll a transient analysis (jip-test) under field conditions: integrating physiological insights into a photochemical stress index. ecological indicators. volume 76. doi: 10.1016/j.ecolind.2017.01.023 hernández-clemente r., north p.r.j., hornero a., et al. 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(2016). impact of microbial inoculation on biomass accumulation by sulla carnosa provenances, and in regulating nutrition, physiological and antioxidant activities of this species under non-saline and saline conditions. journal of plant physiology. volume 201, pages 28–41. doi: 10.1016/j.jplph.2016.06.013kanechi m., maekawa a., nishida y. and miyashita, e. (2016). effects of pulsed lighting based light-emitting diodes on the growth and photosynthesis of lettuce leaves. acta hortic. volume 1134. doi:  10.17660/actahortic.2016.1134.28lv dw., zhu gr., zhu d. et al. (2016). proteomic and phosphoproteomic analysis reveals the response and defense mechanism in leaves of diploid wheat t. monococcum under salt stress and recovery. journal of proteomics. volume 143, pages 93–105. doi: 10.1016/j.jprot.2016.04.013lópez-lópez m., calderón r., gonzález-dugo v., et l . 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(2016). arbuscular mycorrhizalsymbiosis regulates physiology and performance of digitaria eriantha plants subjected to abiotic stresses by modulating antioxidant and jasmonate levels. mycorrhiza. volume 26, issue 2, pages 141–152. doi: 10.1007/s00572-015-0653-4ptushenko v. v. and solovchenko a. e. (2016). tolerance of the photosynthetic apparatus to acidification of the growth medium as a possible determinant of co2-tolerance of the symbiotic microalga desmodesmus sp. ippas-2014. biochemistry moscow. volume 81.doi:10.1134/s0006297916120142ruiz-lozano j. m., aroca r., zamarre?o á. m. et al. (2016. arbuscular mycorrhizal symbiosis induces strigolactone biosynthesis under drought and improves drought tolerance in lettuce and tomato. plant, cell and environment. volume 39, pages 441–452. doi: 10.1111/pce.12631watanabe t., orikasa t, shono h. et al. (2016). the influence of inhibit avoid water defect responses by heat pretreatment on hot air drying rate of spinach, journal of food engineering, volume 168. doi: 10.1016/j.jfoodeng.2015.07.014solovchenko a.,gorelova o., selyakh i., et al. (2016). nitrogen availability modulates co2 tolerance in a symbiotic chlorophyte. algal research. 2016. 16. 177-188. doi 10.1016/j.algal.2016.03.002timm c. m., pelletier d. a., jawdy s. s. et al. (2016.) two poplar-associated bacterial isolates induce additive favorable responses in a constructed plant-microbiome system. frontiers in plant science. volume 7. doi: 10.3389/fpls.2016.00497watanabe t., orikasa t, shono h. et al. (2016). the influence of inhibit avoid water defect responses by heat pretreatment on hot air drying rate of spinach, journal of food engineering, volume 168. doi: 10.1016/j.jfoodeng.2015.07.014wei j., yang h., cao h. and tan t. (2016) using polyaspartic acid hydro-gel as water retaining agent and its effect on plants under drought stress. saudi journal of biological sciences. volume 23, pages 654–659. doi: 10.1016/j.sjbs.2015.08.016zandalinas s. i., rivero r. m., martínez v., et al. (2016). tolerance of citrus plants to the combination of high temperatures and drought is associated to the increase in transpiration modulated by a reduction in abscisic acid levels. bmc plant biologybmc.volume 16. doi: 10.1186/s12870-016-0791-7zarco-tejada p.j., gonzález-dugo m.v. and fereres e. (2016). seasonal stability ofchlorophyll fluorescence quantified from airborne hyperspectral imagery as an indicator of net photosynthesis in the context of precision agriculture. remote sensing of environment. volume 179. pages 89–103. doi: 10.1016/j.rse.2016.03.024anderson l. g., dunn a. m. , rosewarne p. j. and stebbing p. d. (2015). invaders in hot water:a simple decontamination method to prevent the accidental spread of aquatic invasive non-native species. biological invasions. volume 17, issue 8, pages 2287–2297. doi:10.1007/s10530-015-0875-6armada e., barea j.m., castillo p. et al. (2015). characterization and management of autochthonous bacterial strains from semiarid soils of spain and their interactions with fermented agrowastes to improve drought tolerance in native shrub species. applied soil ecology. volume 96, pages 306–318. doi: 10.1016/j.apsoil.2015.08.008armada e., azcón r., lópez-castillo o. m. et al. (2015). autochthonous arbuscular mycorrhizal fungi and bacillus thuringiensis from a degraded mediterranean area can be used to improve physiological traits and performance of a plant of agronomic interest under drought conditions. plant physiology and biochemistry. volume 90, pages 64–74. doi: 10.1016/j.plaphy.2015.03.004barták m., trnková k., hansen e. s. et al. 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(2015). photosynthetic capacity of canola (brassica napus l.) plants as affected by glycinebetaine under salt stress. journal of applied botany and food quality. volume 88, pages 78- 86. doi:10.5073/jabfq.2015.088.011jiménez j. d. l. c., cardoso j. a., dominguez m. et al. (2015). morpho-anatomical traits of root and non-enzymatic antioxidant system of leaf tissue contribute to waterlogging tolerance in brachiaria grasses. grassland science. volume 61, pages 243–252. doi:10.1111/grs.12095marquez-garcia b., shaw d., cooper j. w. et al. (2015). redox markers for drought-induced nodule senescence, a process occurring after drought-induced senescence of the lowest leaves in soybean (glycine max). annals of botany. volume 116, pages 497–510. doi: 10.1093/aob/mcv030dyakov m.y., insarova i.d., kharabadze, d.e., ptushenko v. v., and shtaer, o. v. (2015).influence of extreme ambient temperatures and anaerobic conditions on peltigera aphthosa (l.) willd. viability. life sciences in space research 7: pp. 66-72, doi:10.1016/j.lssr.2015.10.002kosová k., vítámvás p., hlavá?ková i. et al. (2015). responses of two barley cultivars differing in their salt tolerance to moderate and high salinities and subsequent recovery. biologia plantarum. volume 59, pages 106-114. doi: 10.1007/s10535-014-0465-ysolovchenko a., gorelova o., selyakh i., et al. (2015). a novel co2-tolerant symbioticdesmodesmus (chlorophyceae, desmodesmaceae): acclimation to and performance at a high carbon dioxide level. algal research. volume 11. doi 10.1016/j.algal.2015.04.011ptushenko v. v., avercheva o. v., bassarskaya e. m., berkovich y. a., erokhin, a. n.,smolyanina s. o., and zhigalova, t. v. (2015). possible reasons of a decline in growth of chinese cabbage under a combined narrowband red and blue light in comparison with illumination byhigh-pressure sodium lamp. scientia horticulturae, 194: pp. 267-277, doi:10.1016/j.scienta.2015.08.021orekhov d.i., v., yakovleva s. n., goryachev f. f., protopopov f.f., and alekseev, a.a.(2015). the use of parameters of chlorophyll a fluorescence induction to evaluate the state of plants under anthropogenic load. biophysics, 2015, vol. 60, no. 2, pp. 263–268, doi: 10.1134/s0006350915020128fesenko i. a., arapidi g. p., skripnikov a. y., et al. (2015). specific pools of endogenous peptides are present in gametophore, protonema, and protoplast cells of the moss physcomitrella patens. pesticide biochemistry and physiology. volume 15, pages 1-16. doi10.1186/s12870-015-0468-7humplík j. f., lazár d., fürst t. et al. (2015). automated integrative high-throughput phenotyping of plant shoots: a case study of the cold-tolerance of pea (pisum sativuml.). plant methods. volume 11, pages 1-11. doi 10.1186/s13007-015-0063-9tripathi d. k., singh v. p., prasad s. m. et al. (2015). silicon-mediated alleviation of cr(vi) toxicity in wheat seedlings as evidenced by chlorophyll florescence, laser induced breakdown spectroscopy and anatomical changes. ecotoxicology and environmental safety, volume 113, pages 133-144.   doi:10.1016/j.ecoenv.2014.09.029wu x., tang y., li c. et al. (2015.) chlorophyll fluorescence and yield responses of winter wheat to waterlogging at different growth stages. plant production science. volume 18, issue 3. doi:  10.1626/pps.18.284zmienko a., goralski m., samelak-czajka a. et al. (2015). time course transcriptional profiling of senescing barley leaves. genomics data. volume 4, pages 78–81. doi: 10.1016/j.gdata.2015.03.0063

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2017.11.16

植物表型组学研究技术巡讲活动

2017年10月13日至18日,欧洲PSI公司总裁Martin Trtilek博士将应邀来华,开展“植物表型组学研究技术”巡讲活动。       PSI是世界知名FluorCam叶绿素荧光成像技术与PlantScreen植物表型成像分析技术研发生产企业,其研制生产的FluorCam叶绿素荧光成像技术、传送带式PlantScreen植物表型成像分析技术、XYZ三维扫描式PlantScreen植物表型成像分析技术、样带式及台式植物表型成像分析技术等,集成了世界最为先进的FluroCam叶绿素荧光成像技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、近红外成像技术、激光扫描技术、RGB成像技术、机器人技术、表型大数据技术等,成为世界上应用最广泛、发表论文最多、技术最先进的植物(包括藻类)表型组学研究技术;PSI植物/藻类表型组学研究中心每年都在美国和欧洲举办国际表型组学研讨会,中心配备有各种大型表型组学研究设备和平台,成为国际表型组学研究、交流、博士培养的重要基地。       Martin Trtilek博士及其领导的团队先后承担了欧盟等机构多项科研和技术研发项目,发表了诸如“High-troughput non-destructive phenotyping of traits that contribute to salinity tolerance in Arabidopsis thaliana”等近50篇学术论文、多项欧盟等发明奖励。易科泰植物表型组学研究技术巡讲活动——南京农业大学表型组学研究技术报告会 10月14日,北京易科泰生态技术公司与南京农业大学合作,在生科楼会议室举办了“作物表型组学研究技术”学术报告会,报告会由南京农业大学科学研究院常务副院长姜东教授主持,PSI公司总裁、PSI植物表型研究中心负责人Martin Trtilek博士做了“PlantScreen Phenotyping Technology and Its Application”的报告,详细介绍了当前植物表型分析技术现状、近期国际上购买安装的PlantScreen植物表型分析平台及其技术要点,包括传送带式高通量全自动植物表型分析平台、XYZ三维移动扫描式植物成像分析平台、台式植物表型分析平台、野外植物表型分析平台等。报告会对大家关心的表型分析技术问题进行了详细的解答及会后座谈。

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2017.10.30

BTC-100微根窗根系观测技术参考文献

美国BARTZ公司最早研制生产微根窗根系观测仪器,BTC-100成为国际上应用最广、发表论文最多的根系研究仪器技术,其学术研究论文涵盖几十种世界知名学术期刊和专著,包括Science、Nature、Global change biology(影响因子8.502)、New Phytologist(影响因子:7.330)等等,研究内容包括农业科学、林业科学、气候变化、植物表型分析与表型组学研究(根系表型分析经典仪器技术)、植物生理生态等领域。       以下为应用BTC-100微根窗根系观测技术研究发表的部分文献名录:2017年(至9月20日)1.       Sharma, Sat Pal, et al. "Root growth dynamics and fruit yield of melon (Cucumis melo L) genotypes at two locations with sandy loam and clay soils." Soil and Tillage Research 168 (2017): 50-62. (3.401)2.       Black, Christopher K., et al. "Root volume distribution of maturing perennial grasses revealed by correcting for minirhizotron surface effects." Plant and Soil (2017): 1-14. (3.052)3.       Schwieger, Sarah, et al. "Autumnal warming does not change root phenology in two contrasting vegetation types of subarctic tundra." Plant and Soil (2017): 1-12. (3.052)4.       Gu, Jiacun, et al. "Effects of root diameter, branch order, soil depth and season of birth on fine root life span in five temperate tree species." European Journal of Forest Research 136.4 (2017): 727-738.5.       Iversen, Colleen M., et al. "Fine-root growth in a forested bog is seasonally dynamic, but shallowly distributed in nutrient-poor peat." Plant and Soil (2017): 1-21. (3.052)6.       Jerszurki, Daniela, et al. "Impact of root growth and hydraulic conductance on canopy carbon-water relations of young walnut trees (Juglans regia L.) under drought." Scientia Horticulturae 226 (2017): 342-352. (1.624)7.       Zhang, Hao, et al. "Root Development of Transplanted Cotton and Simulation of Soil Water Movement under Different Irrigation Methods." Water 9.7 (2017): 503. (1.832)8.       Aidoo, Moses Kwame, et al. "Grafting as a method to increase the tolerance response of bell pepper to extreme temperatures." Vadose Zone Journal (2017). (1.932)9.       McCormack, M. Luke, et al. "Production dynamics of Cenococcum geophilum ectomycorrhizas in response to long-term elevated CO 2 and N fertilization." Fungal Ecology 26 (2017): 11-19. (3.219)10.   Berry, Ryan S., and Andrew Kulmatiski. "A savanna response to precipitation intensity." PloS one 12.4 (2017): e0175402. (2.806)11.   Blume-Werry, Gesche, et al. “Root phenology unresponsive to earlier snowmelt despite advanced above-ground phenology in two subarctic plant communities” Eundtional Ecology 201712.   史顺增, et al. "土壤增温, 氮添加及其交互作用对杉木幼苗细根生产的影响." 植物生态学报 41.2 (2017): 186-195. 2016年13.   ?eleznik, Peter, et al. "Fine root dynamics in Slovenian beech forests in relation to soil temperature and water availability." Trees 30.2 (2016): 375-384. (1.842)14.   Dong, Xuejun, et al. "Effect of irrigation timing on root zone soil temperature, root growth and grain yield and chemical composition in corn." Agronomy 6.2 (2016): 34.15.   Abramoff, Rose Z., and Adrien C. Finzi. "Seasonality and partitioning of root allocation to rhizosphere soils in a midlatitude forest." Ecosphere 7.11 (2016). (2.490)16.   Black, Christopher Kyle. Plant root contributions to the carbon balance of a changing agricultural Midwest. Diss. University of Illinois at Urbana-Champaign, 2016.17.   Saleska, Scott, et al. Partitioning CO2 fluxes with isotopologue measurements and modeling to understand mechanisms of forest carbon sequestration. No. DOE-BU--0006916. Boston Univ., MA (United States), 2016.18.   Gray, Sharon B., et al. "Intensifying drought eliminates the expected benefits of elevated carbon dioxide for soybean." Nature plants 2 (2016): 16132. (10.300)19.   Hernandez, Pauline, and Catherine Picon-Cochard. "Presence of trifolium repens promotes complementarity of water use and n facilitation in diverse grass mixtures." Frontiers in plant science 7 (2016). (4.298)20.   Tr?ger, Sabrina, and S. D. Wilson. "Root heterogeneity along an arctic elevational gradient: the importance of resolution." Functional Ecology (2016). (5.630)21.   陈建文, 史建伟, and 王孟本. "不同林龄柠条细根现存量比较." 生 态 学 报 36.13 (2016).22.   Berry, Ryan S. Rapid savanna response to changing precipitation intensity. Utah State University, 2016. 2015年23.   Hulugalle, Nilantha R., Katrina J. Broughton, and Daniel KY Tan. "Fine root production and mortality in irrigated cotton, maize and sorghum sown in vertisols of northern New South Wales, Australia." Soil and Tillage Research 146 (2015): 313-322. (3.401)24.   Gluszek, Slawomir, Sas Paszt, and B. Sumorok. "Fine root lifespan dynamics in four sour cherry (Prunus cerasus) cultivars grown in Central Poland using the minirhizotron technique." Dendrobiology 73 (2015). (0.776)25.   Contador, Maria Loreto, et al. "Root growth dynamics linked to above-ground growth in walnut (Juglans regia)." Annals of botany 116.1 (2015): 49-60. (4.041)26.   Tracy, S. R., et al. "Laboratory and field techniques for measuring root distribution and architecture." Tree-Crop Interactions: Agroforestry in a Changing Climate. CABI (2015): 258-277.27.   Hulugalle, N. R., K. J. Broughton, and D. K. Y. Tan. "Root growth of irrigated summer crops in cotton-based farming systems sown in Vertosols of northern New South Wales." Crop and Pasture Science 66.2 (2015): 158-167. (1.804)28.   Fukuzawa, Karibu, et al. "Roles of dominant understory Sasa bamboo in carbon and nitrogen dynamics following canopy tree removal in a cool‐temperate forest in northern Japan." Plant species biology 30.2 (2015): 104-115. (1.250)29.   Aryal, Sudarshan K., et al. "Effects of Infection by Belonolaimus longicaudatus on Rooting Dynamics among St. Augustinegrass and Bermudagrass Genotypes." Journal of nematology 47.4 (2015): 322. (1.087)      30.   史建伟, 秦晴, and 陈建文. "柠条人工林细根不同分枝根序寿命估计." 生态学报 35.12 (2015): 4045-4052.31.   胡双成, et al. "福建三明米槠次生林在不同更新方式下的初期细根产量." 应用生态学报 26.11 (2015): 3259-3267.32.   Aryal, Sudarshan K. Integrated pest management of plant-parasitic sting nematode (Belonolaimus longicaudatus) on bermudagrass. Diss. University of Florida, 2015.33.   Abramoff, Rose Z. Phenology and allocation of belowground plant carbon at local to global scales. Diss. Boston University, 2015. 2014年34.   Carrillo, Yolima, et al. "Disentangling root responses to climate change in a semiarid grassland." Oecologia 175.2 (2014): 699-711. (3.130)35.   Sirkka, Sutinen, et al. "Simulated snowmelt and infiltration into frozen soil affected root growth, needle structure and physiology of Scots pine saplings." Boreal Environment Research 19.4(2014):281-294. (1.805)36.   Repo, Tapani, et al. "Effects of frozen soil on growth and longevity of fine roots of Norway spruce." Forest ecology and management 313 (2014): 112-122. (3.064)37.   Taylor, Benton N., et al. 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2017.09.27

北京易科泰受邀独家赞助参加第七届动物生理生态学学术会议并合作创办第一届动物生理生态研究技术和方法技术

2017年9月15-18日,由中国生态学会动物生态学专业委员会主办、北京师范大学生命科学学院承办的“第七届动物生理生态学学术会议暨孙儒泳院士学术思想研讨会”在北京师范大学成功召开。来自全国的动物生态相关研究的科研工作者齐聚一堂,围绕动物生理生态研究的相关课题进行了深入的探讨。北京易科泰生态技术有限公司作为国内知名的动物生理生态研究高新技术专业公司,应邀独家赞助此次会议,并在会议上展示了一系列国际前沿上的动物呼吸代谢测量技术仪器,受到了研究人员的广泛关注。北京易科泰生态技术有限公司作为美国Sable Systems International公司在中国指定的唯一技术推广与售后服务的高新技术专业公司,领航国内最先进的动物能量代谢测量技术,占据国内动物能量代谢测量市场80%以上的份额。培训班现场:中科院动物所王德华教授做能量代谢技术理论及应用报告会议期间,易科泰公司与动物生理生态学术会议联合举办了第一届动物生理生态学研究技术和方法讲座。邀请中国科学院动物研究所的王德华研究员做了题为《能量代谢测量技术理论及应用》的报告,并特别邀请Sable公司总裁兼首席科学家John R.B. Lighton教授做了题为《Constraints and Solutions in Metabolic Measurement》的精彩报告;另外杜卫国研究员做了《两栖爬行类生理生态研究技术与方法》、北京师范大学牛翠娟教授做了《水生动物研究方法》、迟庆生博士做了《代谢仪器测定使用中的一些问题》等报告。本次培训班受到了大家的热烈响应,到场参加的人达到100人左右。易科泰生态技术公司从事动物能量代谢仪器技术服务已有十余年,为国内科研院校提供了上百套动物能量代谢仪器设备和相应技术服务,包括大小鼠等实验动物能量代谢与行为观测系统、牛羊等家畜家禽能量代谢测量系统、两爬类能量代谢测量系统、果蝇及昆虫能量代谢测量系统、斑马鱼及水生动物能量代谢与行为观测系统、人类能量代谢测量系统等,应用领域涵盖动物生理生态学研究、生物医学、家畜家禽营养与能量代谢研究、动物遗传与生物技术(能量代谢表型分析)、生态毒理学等,仪器设备采用国际先进的间接测热法( indirectcalorimetry),并结合行为观测、环境调控(如温度调控等)、体温心率监测、红外热成像等技术;除实验室测量仪器外,还提供了大量FMS、FoxBox等便携式能量代谢测量仪器。公司还通过Ecolab 生态实验室平台,与中科院动物所(动物生理生态与能量代谢)、农科院畜牧所(家禽呼吸代谢)、农科院植保所(蚜虫呼吸代谢)、疾控中心、北京实验动物中心等保持密切合作关系。易科泰展台易科泰展台前科研人员与我司技术人员热烈讨论                                中科院动物所杜卫国教授做两栖爬行类技术方法报告John R.B. Lighton教授做学术报告 易科泰展台及能量代谢技术团队

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2017.09.25

动物能量代谢测量技术宣传推广周

北京易科泰生态技术公司动物能量代谢实验室,将于2017年9月15日至19日,举办动物能量代谢宣传推广周活动,期间特邀美国sable systems international公司首席科学家john lighton教授来华做报告和培训。具体活动安排如下:一、2017年9月15日下午动物能量代谢与生理生态研究测量技术报告会报告人:王德华研究员(中科院动物研究所)john lighton博士(美国sable公司首席科学家)等地点:北京师范大学京师大厦二、2017年9月16日参加由中国生态学会动物生态学专业委员会主办、北京师范大学生命科学学院承办的“第七届动物生理生态学学术会议暨孙儒泳院士学术思想研讨会”,john lighton博士将做“constraints and solutions in metabolic measurement”的会议报告三、2017年9月17-18日动物能量代谢测量技术报告与座谈会(根据需求反馈信息确定具体日程)主讲人:john lighton博士四、2017年9月19日活动汇总反馈及后续合作与技术支持安排john lighton教授30多年来致力于动物能量代谢测量技术的研究,先后在 nature、pnas及the journal of experimental biology等世界著名学术期刊上发表了90多篇学术论文,其于2008年编著出版的“measuring metabolic rates: a manual for scientists. oxford university press”一书,截止目前已达5514次引用。作为美国ssi公司(sable systems international)在中国的唯一指定代理和售后服务中心,易科泰生态技术公司从事动物能量代谢仪器技术服务已有十余年,为国内科研院校提供了上百套动物能量代谢仪器设备和相应技术服务,包括大小鼠等实验动物能量代谢与行为观测系统、牛羊等家畜家禽能量代谢测量系统、两爬类能量代谢测量系统、果蝇及昆虫能量代谢测量系统、斑马鱼及水生动物能量代谢与行为观测系统、人类能量代谢测量系统等,应用领域涵盖动物生理生态学研究、生物医学、家畜家禽营养与能量代谢研究、动物遗传与生物技术(能量代谢表型分析)、生态毒理学等,仪器设备采用国际先进的间接测热法(indirect calorimetry),并结合行为观测、环境调控(如温度调控等)、体温心率监测、红外热成像等技术;除实验室测量仪器外,还提供了大量fms、foxbox等便携式能量代谢测量仪器。公司还通过ecolab生态实验室平台,与中科院动物所(动物生理生态与能量代谢)、农科院畜牧所(家禽呼吸代谢)、农科院植保所(蚜虫呼吸代谢)、疾控中心、北京实验动物中心等保持密切合作关系。公司概况:易科泰自02年至今,已走过了15个年头。我们致力于从不同视角,不同尺度,不同技术平台研究测量生态系统结构、功能及其动态变化过程,引进、消化、吸收和创新国际先进生物生态科研技术,致力于植物表型分析技术的研究与开发,实验室植物表型分析平台目前配备有封闭式叶绿素荧光成像系统、便携式叶绿素荧光成像系统、叶绿素荧光仪、藻类荧光仪、植物高光谱仪、光合仪、co2/o2分析仪、植物光合生理生态监测系统、藻类培养与在线监测系统(光养生物反应器)、根系测量仪器等,具备500余平米温室,计划引进大型叶绿素荧光与rgb成像平台。ecolab实验室表型分析平台可以为用户提供作物抗性检测、胁迫生理生态研究检测、植物表型分析、优良品种及遗传育种检测等技术服务,并可承担植物表型分析技术培训、fluorcam叶绿素荧光成像技术培训、植物表型分析实验方案与仪器技术方案设计等,欢迎联系。公司优势:公司技术团队80%以上具备硕士或硕士以上学位,并与中国科学院研究生院、中科院植物研究所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学等建立了长期的技术合作交流关系。

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2017.09.05

From FluorCam to PlantScreen-植物表型组学研究技术报告会

2017年8月19-22日,第十八届全国植物基因组学大会在甘肃兰州召开,国内外植物基因组学相关领域取得突出成果且具有重要学术影响的专家和优秀青年科学家,汇聚一堂,进行学术交流。    fluorcam叶绿素荧光成像技术及多光谱荧光成像技术已成为表型组学研究及生物技术研究最重要的先进技术手段和工具;而plantscreen高通量植物表型成像分析技术,则集成了叶绿素荧光成像技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、激光扫描技术、rgb成像色彩与形态分析技术,及自动化技术、表型大数据分析技术等,成为基因组学、表型组学及生物技术研究和生物信息学研究的重要高通量大数据平台!    北京易科泰生态技术公司将与中科院植物所及第十八届植物基因组学大会合作,举办植物表型组学研究技术报告会,并现场展示fluorcam叶绿素荧光成像等先进仪器设备,欢迎参加!报告时间:2017年8月20日20:10-21:10报告地点:兰州飞天大酒店 报告内容:fluorcam 叶绿素荧光成像技术及其在植物表型组学研究中的应用报告人:卢从明,中国科学院植物研究所研究员,中国科学院光生物学重点实验室主任plantscreen 高通量植物表型成像分析技术报告人:李川,北京易科泰生态技术有限公司,叶绿素荧光成像技术与植物表型分析技术高级工程师 报告会涉及的重要产品及技术:1、fluorcam 植物叶绿素荧光成像系统fluorcam叶绿素荧光成像与多光谱荧光成像技术,由便携式、一体式、模块式、大型平台、野外移动式平台、样带扫描平台、光合作用与叶绿素荧光成像连用系统等约20种选配方案2、plantscreen 植物表型成像分析系统plantscreen高通量植物表型成像分析平台,有实验室/温室传送带版、xyz三维扫描版、野外版,有叶绿素荧光成像模块、红外热成像模块、rgb彩色成像分析模块、高光谱成像分析模块、激光扫描分析模块及3d构建等不同成像模块供选配,最大成像面积80cm x 80cm。 现场还有小礼物相送哟,期待您与我们沟通交流

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2017.07.26

易科泰首次参加北京实验动物科学国际论坛

易科泰首次以赞助商的身份参加北京实验动物科学国际论坛,2017年度北京实验动物科学国际论坛由北京市实验动物管理办公室、首都医科大学、中国科学院实验动物科学平台、中国农业科学院哈尔滨兽医研究所、中国实验动物学会、中国兽医会实验动物兽医分会和北京实验动物学学会主办,北京实验动物行业协会承办。以“创新与发展—实验动物科学的新机遇”为主题,以促进国家科技创新中心建设中实验动物领域出现的新技术、新资源、新机制为交流的重点内容,深入探讨实验动物科学面临的新机遇和新挑战,以期为实验动物领域的创新与发展,以及如何更好的发挥实验动物行业对生命科学领域的支撑作用指明方向。易科泰动物能量代谢实验室以“能量代谢测量技术”为主题,为众学者介绍能量代谢测量方面最前沿的科学进展及测量方法。本次展会,我们得到了会务组李根平主任,刘新艺主任的大力支持,使得参展能够顺利进行,为大会提供最先进的实验方法,与与会者进行学术交流,共同进步。参展展位现场工作人员为学者讲解数据能量代谢专家为学者讲解能量代谢原理与系统我们所介绍的实验方法依赖于国际先进的能量代谢测量系统——Promethion能量代谢测量系统,Promethion动物行为与能量代谢监测系统由动物行为监测、能量代谢测量及其它选配生理指数监测模块组成,其中动物行为监测由笼舍和各种动物行为监测装置组成,能量代谢测量由笼舍、气体分析仪和气体流量控制单元组成。Promethion用于小型动物如小鼠、大鼠等的生理生态和行为监测、能量代谢研究等,可同步化监测动物的能量代谢、动物采食与饮水活动及摄取量、动物活动与行为谱、动物位移时空分布格局,及动物体重、体温、心率等多项生理学参数,定性定量测量分析动物行为活动及其与呼吸代谢的相互关系等,广泛应用于动物生理生态学、动物Phenotyping、实验动物学、药理学、生态毒理学、生物医学等研究领域。易科泰作为美国SSI公司(Sable Systems International)在中国的唯一指定代理和售后服务中心,易科泰生态技术公司从事动物能量代谢仪器技术服务已有十余年,为国内科研院校提供了上百套动物能量代谢仪器设备和相应技术服务,包括:1)   牛羊等家畜呼吸代谢测量系统2)   家禽呼吸代谢测量系统3)   实验动物(大鼠、小鼠等)呼吸代谢测量系统4)   两爬类呼吸代谢测量系统5)   蚜虫及昆虫呼吸代谢测量系统6)   斑马鱼及鱼类呼吸代谢测量系统等易科泰生态技术有限公司致力于引进、消化、吸收和创新国际先进生物生态科研技术,提供动物呼吸测热、基础代谢率、能量代谢率、代谢表型、动物体温心律测量等检测技术方案和试验服务与合作。目前Ecolab实验室配备有便携式动物呼吸测量系统,动物体温心律监测系统以及荧光氧气测量系统等,欢迎联系实验合作。

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2017.06.27

易科泰藻类培养与测量研究技术系列培训班成功举办

为更好地服务中国藻类科研工作者,保障全国高校、研究所的科研工作技术需求,让藻类领域研究人员更深入地了解国际最新的仪器及研究技术,北京易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室与捷克PSI植物表型研究中心,于2017年6月在武汉、青岛、宝鸡、北京等多地开展藻类培养与测量研究技术系列培训班。来自中国科学院水生生物所、中国科学院海洋所、中国科学院植物所、中国科学院微生物所、中国科学院过程所、中国农科院系统各相关院所、武汉大学、重庆大学、湖北师范大学、华中农业大学、中国海洋大学、黄海水产研究所、宝鸡文理学院、中国检验检疫科学研究院、北京师范大学、山西农业大学等科研单位的老师和同学参加了本次系列培训班,参加人数达500人次以上。培训班包括两方面内容:学术报告和仪器技术演示、使用培训。我们邀请了国内外多名专家学者介绍了FluorCam叶绿素荧光成像技术、FKM多光谱荧光动态显微成像技术、TL植物热释光技术、FMT150/MC1000藻类培养与生理生态综合在线监测技术、FL3500双调制叶绿素荧光技术等国际先进藻类研究技术的原理、功能和应用。同时结合老师们在科研中遇到的具体问题,对实验设计、仪器技术国际最新进展、仪器的实验操作技巧等进行了热烈讨论。具体报告内容如下:?   微藻响应工业烟气NOX的机理与实践报告人:王强研究员,中国科学院水生生物研究所藻类生物学重点实验室?   热释光原理及其在光合作用机理研究中的应用报告人:卢从明研究员,中国科学院植物研究所光生物学重点实验室主任?   FluorCam叶绿素荧光成像技术在藻类研究中的应用报告人:李川,易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室技术总监?   Algae cultivation and measurement, technologies/instrumentation and applications报告人:KaterinaPerutkova博士,捷克PSI植物表型研究中心在仪器技术演示、使用培训环节,易科泰为各位老师和同学展示了FluorCam叶绿素荧光成像系统、FKM多光谱荧光动态显微成像系统、TL植物热释光系统、FMT150藻类培养与生理生态综合在线监测系统、FL3500双调制叶绿素荧光系统、GMS150气体组分精确控制系统、AP100掌上藻类叶绿素荧光仪等仪器设备,详细讲解了仪器的操作和实验方法,并解答老师同学在使用中的问题,讨论国际上使用这些仪器发表的最新文献和如何进行实验设计。培训班涉及的仪器技术: 关于本文涉及到的仪器技术详细信息请访问北京易科泰生态技术有限公司官网,或者与我们联系获取技术快讯与文献原文。易科泰生态技术致力于引进、消化、吸收和创新国际先进生物生态科研技术,提供植物表型分析、作物胁迫敏感性与抗性检测、光养生物反应器/藻类培养与在线监测、生态毒理学检测技术方案和实验服务与合作。旗下的Ecolab实验室目前配备有FluorCam封闭式荧光成像系统、FluorCam封闭式荧光成像系统、FluorCam便携式荧光成像仪、FL3500叶绿素荧光仪、FluorPen手持式叶绿素荧光仪、AquaPen藻类荧光仪、PolyPen手持式植物光谱测量仪、SpectraPen LM500手持式光谱仪、PlantPen手持式光谱仪、FMT150藻类培养与在线监测系统、MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统、MicroMac1000全自动营养盐分析监测系统、FMS CO2/O2呼吸测量分析系统等,并与中科院植物所、中科院水生所、中国农科院、陕西师范大学等建立了长期技术合作交流关系。欢迎联系开展实验合作与技术培训。

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2017.06.16

藻类培养与测量研究技术系列培训班

北京易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室与捷克PSI植物表型研究中心,将于2017年6月5日-13日开展藻类培养与测量研究技术系列培训班,将由PSI植物表型研究中心专家重点介绍国际先进的藻类叶绿素荧光、热释光、培养与生理生态综合在线监测等表型研究技术。诚邀从事藻类表型、光合作用、藻类胁迫与抗性以及生物能源等领域的科研工作者参加本次系列培训班。日程: 6月5日:武汉 ? 中国科学院水生生物研究所 2号实验楼102会议室6月7日:青岛 ? 中国科学院海洋研究所6月9日:宝鸡 ? 宝鸡文理学院6月13日:北京 ? 中国科学院植物研究所内容:上午9点:学术报告武汉、青岛:微藻响应工业烟气NOX的机理与实践报告人:王强 研究员,中国科学院水生生物研究所 藻类生物学重点实验室北京:热致发光原理及其在光合作用机理研究中的应用报告人:卢从明 研究员,中国科学院植物研究所 光生物学重点实验室主任武汉、青岛、北京:FluorCam叶绿素荧光成像技术在藻类研究中的应用报告人:李川,易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室技术总监武汉、青岛、北京:Algae cultivation and measurement, technologies/instrumentation and applications报告人:Katerina Perutkova 博士,捷克PSI植物表型研究中心下午:武汉、青岛、北京、宝鸡:藻类培养与测量仪器技术演示、使用培训与会者将在培训班所在实地实验室参观并操作藻类培养与测量仪器设备,可带各种藻类样品现场实验测量(需提前联系安排) 系列培训班涉及以下仪器及技术FL3500双调制叶绿素荧光测量仪TL植物热释光测量系统FMT150藻类培养与在线监测系统MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统FluorCam叶绿素荧光成像系统FKM多光谱荧光动态显微成像系统有意参加者请回复邮件并注明您要参加在哪个城市举办的培训班,如有疑问请联系我们。联系人:曹洋 邮箱:info@eco-tech.com.cn 电话:010-82611269/1572

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2017.06.01

易科泰祝贺2017年度北京实验动物科技学术年会胜利召开

3月23日,由北京实验动物学学会、北京市实验动物管理办公室、北京实验动物行业协会共同主办的2017年北京实验动物科技学术年会在北京门头沟区龙泉会议中心开幕,三家主办单位的领导、来自北京地区以及上海、天津、河北、山东、广东、黑龙江、甘肃、辽宁、云南等省、市的实验动物科技工作者、管理及生产人员,北京实验动物学学会理事、理事代表、会员单位代表及个人会员,《实验动物科学》编委会委员,实验动物行业老专家、老科技工作者等约150多人参加了年会。北京市实验动物管理办公室李根平主任代表主办单位作开幕致辞,对大家踊跃参加学术活动表示赞赏,对兄弟省、市同仁的积极参与和大力支持表示欢迎和感谢。北京易科泰生态技术有限公司作为动物呼吸测热仪器参展商,应邀参加此次盛会。会议期间,易科泰展览仪器包括:Promethion代谢笼:Promethion系列仪器设备由数字化代谢笼、三参数气体分析单元、气流发生调控单元等组成,特别适合于生物医学实验研究,如肥胖症、糖尿病、心血管病等代谢异常病症的实验动物研究。  SSI动物能量代谢测量系统:该系统为模块式、间接法(indirect calorimetry)动物能量代谢测量系统,包括高精度气体分析仪(CO2分析仪、O2分析仪、水汽分析仪、甲烷分析仪等)、数据采集分析系统、气流发生控制抽样系统等。可根据研究对象和研究内容配置不同的实验测量系统,还可选配单通道、多通道等配置系统,而且可以采用开放式、封闭式等测量技术,并可配置DST植入式动物体温与心率记录仪。FMS便携式呼吸测量系统:配置有高精度CO2分析仪、O2分析仪、水汽分析仪、Baseline单元、气体二次抽样单元和数据采集系统等。FMS既可方便带到野外现场实验,也可在实验室内组成更复杂的多通道系统等,适用于从昆虫、啮齿类动物、两爬类、鸟类及中大型兽类乃至人类的能量代谢快速测量。RF-O2荧光光纤氧气测量技术:是基于REDFLASH光极传感器技术的最先进的氧气测量技术,由欧洲Pyroscience公司及Graz大学等科学家研制生产,由光极氧气传感器、测量仪及软件组成,广泛应用于环境科学、生态科学、植物科学、动物科学、海洋科学、生物医学、生物技术、食品科学等各个领域。DST动物植入式实时温度监测系统:DST植入式温度监测器是生物医学研究领域中的佼佼者产品,致力于符合动物福利并经过专业设计的温度传感器产品,该记录器能够很好的用于临床前研究和方便用于实验室动物监测温度。它既可靠又实用,具备实时遥测与数据自动储存双重功能,是要求完整性与重复性研究的理想选择。易科泰生态技术有限公司致力于引进、消化、吸收和创新国际先进生物生态科研技术,提供动物呼吸测热、基础代谢率、能量代谢率、代谢表型、动物体温心律测量等检测技术方案和试验服务与合作。目前Ecolab实验室配备有便携式动物呼吸测量系统,动物体温心律监测系统以及荧光氧气测量系统等,欢迎联系实验合作。

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2017.03.30

FluorCam 叶绿素荧光成像技术讲座及操作培训班邀请函

为了进一步促进FluorCam叶绿素荧光成像技术在光合作用、植物发育生物学、植物抗逆生物学以及作物育种研究领域的应用,北京易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室与中国科学院植物研究所光生物学重点实验室,将于2017年4月中旬在植物所举办FluorCam叶绿素荧光成像技术专题讲座与仪器操作培训,将由相关领域的专家重点介绍FluorCam技术及其操作,详细讲解FluorCam技术在植物相关研究领域的应用。诚邀从事植物表型、光合作用、植物胁迫与抗性以及作物育种等领域的科研工作者参加本次培训班。一、会议组织·  主办单位:北京易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室,中国科学院光生物学重点实验室 ·  会议地点:北京市海淀区香山南辛村20号 中国科学院植物研究所 ·  会议时间:2017年4月(具体时间请见后续通知) 二、会议主题·  FluorCam叶绿素荧光技术介绍·  FluorCam叶绿素荧光技术在植物相关研究领域中的应用·  FluorCam叶绿素荧光技术操作与示范  三、报告人(持续更新中) ·  卢从明研究员(中国科学院植物研究所,中国科学院光生物学重点实验室主任)·  彭连伟教授(上海师范大学生命与环境学院)·  李川技术总监(易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室)四、仪器操作培训与会者将在植物所光生物学重点实验室和ECOLAB实验室实地参观并操作FluorCam仪器设备。16年培训班-FluorCam野外移动式叶绿素荧光成像系统16年培训班-FluorCam封闭式荧光成像系统农科院购置FluorCam大型叶绿素荧光成像平台FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统有意参加者可直接回复联系人邮件,后续会有专人跟您联系联系人:曹洋 邮箱:info@eco-tech.com.cn 电话:010-82611269/1572

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2017.02.23

中科院植物所张琳博士荣获 易科泰FluorCam叶绿素荧光成像优秀论文一等奖

 在“2016全国光合作用学术研讨会”上,易科泰生态技术公司正式宣告设立“易科泰FluorCam叶绿素荧光成像优秀论文奖”,以鼓励和奖励科研人员利用FluorCam叶绿素荧光技术,发表高水平、高质量的学术研究论文。中科院植物所光生物学国家重点实验室张琳博士荣获2016年度易科泰FluorCam叶绿素荧光成像优秀论文一等奖。FluorCam叶绿素荧光成像技术由Ladislav Nedbal教授与欧洲PSI公司发明并研制生产(Heck,1999;Nedbal等,2000;Kupper等,2000),成为植物(包括藻类)光合机理、光合生理生态、植物(包括藻类)胁迫生理生态、生物技术、作物遗传育种、植物表型分析等最先进、最为广泛使用的研究监测技术,具体主要包括下列仪器技术:1.         FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像仪2.         FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪(Handy FluorCam)与便携式Chl/GFP荧光成像仪(Handy GFPCam)3.         FluorCam 封闭式叶绿素荧光成像系统与Chl/GFP荧光成像系统4.         FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统(包括20x20cm大型版)5.         FluorCam实验室大型叶绿素荧光成像平台(标准版、密封式、XYZ移动扫描式、Step-in 培养室版等,最大成像面积可达80x80cm)6.         FluorCam移动式大型叶绿素荧光成像系统(成像面积达35x35cm)7.         FluorCam样带扫描式叶绿素荧光成像系统(Transect FluorCam,分野外版和实验室版)8.         FluorCam多光谱荧光成像系统(多激发光多光谱荧光成像分析,包括标准配置和可扩展配置等)9.         FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统目前,FluorCam叶绿素荧光成像技术还与智能LED多激发光技术(不同光质波段激发光)、多光谱荧光技术、FytoScope智能LED培养技术、植物RGB可见光成像分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、大数据技术等结合,通过对植物结构形态功能的数字化,全面研究分析植物生理生态、遗传表型、生物技术与作物遗传育种等。中国科学院植物研究所光生物学国家重点实验室是国内最早应用FluorCam叶绿素荧光成像技术开展植物光合作用研究的机构,也是目前叶绿素荧光技术装备最为先进齐全的实验室,包括FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统、FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统、FL3500双调制叶绿素荧光测量系统、TL植物光合热释光测量系统、PlantScreen大型高通量植物表型成像分析平台等等,并发表了大量有国际影响力的论文。张琳博士利用 FluorCam封闭式荧光成像系统,从 T-DNA插入或EMS诱变的拟南芥突变体库中筛选光合电子传递调控的突变体,并重点研究了bfa3的功能,相关结果于 2016 年 4 月发表在国际学术期刊 Plant Physiology, 171, 1291-1306上(Biogenesis factor required fro ATP synthase3 facilitates assembly of the Chloroplast ATP synthase complex)。        在此热烈祝贺张琳博士取得的研究成就,并预祝她利用FluorCam叶绿素荧光成像技术取得更多更大的研究成果!

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2017.02.06

陕西省自然保护区无人机遥感技术培训

2016年7月下旬,陕西师范大学-易科泰无人机遥感研究中心与陕西林业厅等合作,在陕西秦岭长青国家级自然保护区,对陕西省自然保护区进行了无人机遥感技术培训,并现场进行了无人机遥感作业演示。陕西师范大学叶新平老师介绍无人机遥感技术及其在自然保护区管理中的应用易科泰无人机遥感事业部现场进行无人机遥感飞行作业演示培训中演示的EcoDroneTM无人机遥感平台,系易科泰生态技术公司自主研发集成的 UAS-8八旋翼专业无人机生态遥感系统,具备模块式结构、强大的可扩展性,可搭载多光谱、高光谱、LiDAR、红外热成像等多种传感器,有效作业时间20-30分钟(搭载多光谱镜头),飞行速度10m/s,高精度GPS定位,地面站在线监测,遥控器在线图传,具备航点导航、定点、绕航、盘旋(绕圈)及follow-me等飞行模式。可应用于野生动物栖息地调查评估、湿地调查评估、森林调查评估、森林管护、生态旅游规划管理、生态恢复调查评估、样线调查监测、高精度高分辨率地理信息系统构建等。在长青保护区华阳保护站工作人员的指引下,北京易科泰无人机遥感事业部利用EcoDrone UAS-8无人机遥感系统对保护区局部地区开展了试验性生态遥感调查作业,通过一次 约20分钟遥感飞行作业,采集了作业区内蓝、绿、红、近红外、红边5个波段的多光谱数据和RGB可见光数据,利用专业分析软件,当天对光谱数据进行了分析处理(参见下图)。可见光图像处理后的彩色正射影像和DSM多光谱图像红外波段正射影像图 易科泰生态技术公司无人机遥感事业部

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2016.08.14

易科泰与陕西师范大学共建“无人机遥感研究中心”

     易科泰生态技术公司与陕西师范大学共建“无人机遥感研究中心”,6月29日,易科泰公司董事长于长青博士出席在陕西师范大学举办的签约仪式,并与陕西师范大学校领导签署了《共建协议》,并被陕西师范大学聘为兼职教授。新闻链接:http://www.snnu.edu.cn/newshow.php?id=14901     易科泰生态技术公司致力于从不同视角、不同尺度、不同技术平台研究测量生态系统结构、功能及其动态变化过程,积十几年手持式(如FluorPen叶绿素荧光仪及SpectraPen植物光谱仪等)、便携式(如iFL植物叶绿素荧光与光合作用测量系统、FluorPen便携式叶绿素荧光成像仪)、台式(如FluorCam植物多光谱荧光成像系统、大型叶绿素荧光成像平台、PlantScreen植物表型成像分析平台等)、固定式(如EMS-ET植物生理生态监测系统等)等国际先进仪器设备引进、推广、集成、研发与技术服务经验,厚积薄发,自主研发设计了EcoDrone无人机遥感平台等,使生物与环境的研究监测跃升到更大的范围、更高的视野!    易科泰无人机遥感技术事业部荟萃了顶尖的生态学家、遥感专家、无人机技术高级工程师,利用自主设计生产的UAS-4 四旋翼无人机平台和UAS-8 八旋翼无人机平台,集成国际先进的遥感传感器包括多光谱成像传感器、高光谱成像传感器、NDVI成像传感器等,为农业、生态环境、水资源管理、生物多样性保护等提供最先进的无人机遥感技术方案和技术服务。易科泰无人机遥感事业部先后与甘肃省苏干湖保护区、甘肃阿克塞自然保护管理办公室、新疆阿勒泰山国有林管理局、新疆阿勒泰两河源保护区、新疆布尔根河狸保护区、阿拉善荒漠草原生态研究所等合作,对苏干湖湿地、阿尔金山盘羊、河狸栖息地、阿拉善荒漠草原、敦煌丹霞地貌等进行了无人机遥感作业调查。公司还专门在陕西杨凌国家农业高新技术产业示范区设立了易科泰农业高新技术服务中心,负责无人机遥感技术在农业领域的技术研发生产(基地)、技术推广、技术服务、试验示范、技术培训等。

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2016.07.13

第八届中科院土壤生态学培训班圆满成功

        2016年4月15日,我们迎来了第八届中科院土壤生态学培训班,这是北京易科泰生态技术有限公司与中科院大学的合作项目,每年一届,今年已经第八个年头。来自中科院20多个所的研究生参加了培训。新技术——LIBS元素分析系统成了本年度培训班上的亮点。Sci-Trace LIBS元素分析系统由欧洲工程技术中心(CEITEC)研制生产,用于岩矿、材料、塑料、土壤及植物等的元素分析和元素分布2D成像,可广泛应用于地质科学、材料科学、土壤科学、生物科学、环境科学、考古学、生物医学等领域样品分析。中科院老师对新技术非常感兴趣,提了很多问题,与我们工程师热烈探讨 仪器演示环节,我们展示了SoilBox便携式土壤呼吸测量系统、Soilbox-343便携式土壤呼吸测量系统和TRIME-PICO-IPH TDR剖面土壤水分测量系统, SoilBox便携式土壤呼吸测量系统可同时测量土壤O2和CO2,从而更加精确、客观、全面地反映土壤呼吸和碳排放。 Soilbox-343便携式土壤呼吸测量系统最大的优势是简单轻便,可随身携带去野外考察,适应于各种恶劣的地形地貌,下图是ECOLAB实验室在沙漠进行实验。TRIME-PICO土壤水分测量系统可方便、快速地测量土壤表层含水量,与延长杆联合使用也可以测量深层土壤含水量。基于FAO2006的标准,TRIME-PICO探头可用于对高盐土壤情况进行普查;也可以通过测量土壤电导率的大小,间接地反映土壤含盐量,从而对施肥管理提供指导。     同学们之前只是从课堂上学过理论知识,这次有机会见到实物,都非常兴奋,非常踊跃,摩拳擦掌地说要试试。团团围住工程师,认真听工程师的介绍并提出很多问题,然后还自己动手进行操作。培训班进行得非常顺利,我们离开的时候得到了同学们热烈的掌声。 

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2016.04.18

EcoDrone 无人机遥测系统在陕西杨凌成功试飞

近日,易科泰生态技术公司Ecolab 实验室无人机遥测技术部研制生产的EcoDrone 无人机遥测系统,在易科泰陕西杨凌农业生态技术服务中心成功试飞!EcoDrone 无人机遥测系统为8 旋翼UAS 平台,除配备有GoPro4 镜头外,还搭载有国际最先进的基于棱镜分光技术的多光谱遥测成像镜头,遥测目标通过一个高质量光学镜头、经棱镜分光、多个CCD 同步化成像,真正做到图像100%的时空一致性,避免了多镜头技术由于多个光学镜头造成的视野偏差及滤波轮技术造成的时相偏差等问题。附配软件可以下载、浏览和图像处理,不同波段图像、GRB 图像及NDVI 等植被指数可以一览无余!EcoDrone 无人机遥测系统可用于农业、生态环境等领域,如农业生态系统监测评价农作物播种面积与长势监测和农情监测、农业灾害监测评估与预测预报、水资源调查与规划管理、生态与植被调查监测、栖息地评估、土壤侵蚀调查监测、湿地调查监测、草原与森林调查监测、自然保护区管理等。可根据不同需求选配不同类型的多光谱或高光谱成像传感器(如高灵敏度多光谱传感器可在夜视情况下采集信息)、红外热成像传感器等。详情可咨询info@eco-lab.cn, info@eco-tech.com.cn.

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2016.04.17

易科泰应邀参加第四届“模式生物与人类健康” 发育遗传学全国学术研讨会

        2016年4月7-9日,恰逢上海交通大学120周年校庆,由中国遗传学会、中国遗传学会发育遗传专业委员会主办,上海交通大学生命科学学院承办的第四届“模式生物与人类健康”发育遗传学全国学术研讨会在上海市举行。孟安明院士等三百余位科学家齐聚一堂,围绕动物及植物模式生物研究的前沿课题进行了深入热烈的探讨。北京易科泰生态技术有限公司作为国内知名的生态研究仪器及技术公司,应邀参加了本次盛会。易科泰在会议上展示了一系列国际上最前沿的动物及植物模式生物实验仪器,得到了与会人员一致关注。       本次会议分两个方向——动物模式生物和植物模式生物。针对动物模式生物,易科泰主要展示的仪器技术有Ptomethion动物行为与能量代谢监测系统。Promethion用于小型动物如小鼠、大鼠等或人类的生理生态和行为监测、能量代谢研究等,可同步化监测动物的能量代谢、动物采食与饮水活动及摄取量、动物活动与行为谱、动物位移时空分布格局,及动物体重、体温、心率等多项生理学参数,定性定量测量分析动物行为活动及其与呼吸代谢的相互关系等,广泛应用于动物生理生态学、动物Phenotyping、实验动物学、药理学、生态毒理学、生物医学等研究领域。        针对植物模式生物,易科泰主要展示的仪器技术有FluorCam叶绿素/GFP荧光成像技术。这项技术不仅可用于叶绿素荧光成像,还可用于植物、动物、藻类乃至菌落等样品的GFP绿色荧光蛋白(GFP)分布异质性成像分析研究。叶绿素荧光成像可以反映不同基因对植物光合系统表型的影响,而GFP成像则给研究者提供了对模式生物转基因样品进行快速便捷筛选的最有效手段,因此受到与会科学家的广泛关注。GFP成像图,图中发出明亮颜色的植株即为表达了GFP的植株,其颜色越偏向红色,则表明其表达的GFP更多,暗蓝色的植株即为没有表达GFP的植     除了展示设备,我们的PlantScreen植物表型成像分析系统也受到了许多参会人员的关注。植物表型组学研究技术已成为当今遗传育种、植物生理生态、生物技术等领域的热点,PlantScreen植物表型成像分析系统是由研发世界上第一台FluorCam叶绿素荧光成像技术的PSI公司,与著名科学家合作研制生产的新型植物表型组学研究平台,是植物表型分析与功能成像分析的最为先进的技术平台。基因组学和表型组学研究是互为表里的关系,基因组学的研究结果必须通过表型组学的进一步验证才能完整解释生物的深层规律和发育机理。作为PSI植物表型研究中心的合作伙伴,我们的eco-lab实验室拥有叶绿素荧光成像系统、土壤呼吸系统等设备,一直致力于应用我们的实验室平台和技术方案,来帮助科研工作者们进行科学研究,欢迎感兴趣的科研人员来与我们实验合作、实验检测、技术咨询包括到欧洲PSI植物表型中心参观交流。我们会不断努力,用我们的解决方案和技术案例来服务于科研工作者的科研工作。          最后,易科泰生态技术公司感谢上海交大师生的支持与帮助,热烈庆祝上海交通大学120周年校庆,并祝贺第四届“模式生物与人类健康”发育遗传学全国学术研讨会圆满成功!  

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2016.04.17

EcoDron无人机遥感系统闪亮登场农业遥感论坛

    “2016农业遥感论坛”于4月7日-8日在武汉隆重召开,易科泰生态技术公司研制生产的EcoDrone无人机遥感系统在论坛上闪亮登场,并应邀作报告“无人机遥感技术及其在农业中的应用”。会议期间还应部分与会专家的要求进行了现场试飞。     这次易科泰生态技术公司展出的EcoDrone无人机遥感系统为8旋翼UAS平台,配备有棱镜分光技术多光谱镜头、红外热成像镜头及高分辨率彩色成像镜头,垂直起降、任意规划航线、精准定位导航、自动安全返航,中文界面PAD地面站可在线Google Earth或高德地图,只需在欲监测范围选取任意形状(多边形或圆形),地面站即自动规划出最佳航线并自动完成遥感飞行;在没有手机信号不能在线地图的情况下,还可以预存计划遥感的区域地图,然后现场轻松规划监测范围。多光谱镜头自动采集的光谱信号可通过随机软件显示区域RGB彩色图像及红边、红外等光谱波段成像,并给出NDVI、EVI等植被指数图像和数值,还可通过红外热成像分析植物的干旱胁迫指数等。

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2016.04.12

易科泰应邀参加中国海洋湖沼学会藻类分会第九届会员大会并成功举办藻类学前沿热点专题研讨会

2015年11月28-30日,由中国海洋湖沼学会藻类学分会主办,厦门大学承办的中国海洋湖沼学会藻类分会第九届会员大会暨第十八次学术研讨会在福建省厦门市举行。来自全国的七百余位进行藻类相关研究的科学家齐聚一堂,围绕藻类研究的前沿课题进行了深入热烈的探讨。北京易科泰生态技术有限公司作为国内知名的生态研究仪器及技术公司,应邀参加了本次大会。易科泰在会议上展示了一系列国际上最前沿的藻类生理生态研究技术和仪器,因而也成为本次展会上最为亮眼的参展厂家。不但有大批老师来展台参观了解仪器技术,更有以前购买过相关仪器的老师来与易科泰工程师交流仪器使用心得。易科泰为本次会议携带的各种技术宣传资料更是一抢而空。易科泰在会议期间又举办了藻类学前沿热点专题研讨会,邀请中科院水生所王强研究员做了题为《能源微藻用于工业烟气减排的筛选、应用和生理机制》的报告。在报告中,王强研究员系统介绍了他使用AquaPen手持式藻类叶绿素荧光仪、FL3500多功能叶绿素荧光仪和TL300/400植物光合热释光系统进行微藻减排的研究成果。之后,易科泰Ecolab实验室技术总监李川则系统介绍了国际最前沿的藻类培养与研究技术,为参加研讨会的老师展示了这些技术在国际上的应用和最新的文献。研讨会获得了参会老师的极大认可,会后不断有老师来和王强研究员、李川进行更深入的学术交流。 本次会议中,易科泰主要展示的仪器技术有MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统、FMT150藻类培养与在线监测技术、AquaPen 手持式藻类荧光测量技术、RF-O2 荧光光纤氧气测量技术和FL3500多功能叶绿素荧光技术等。MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统是本次会议当之无愧的明星仪器。它可以进行8通道藻类的同步裴炎培养;配备LEDs光源,可对每个培养试管独立调节控制和设置光强度和时间;OD680和OD720光密度在线监测;设置不同的程序模式控制温度、光照;还可选配溶解氧、藻类荧光测量,通入气体组分与含量控制。本次会议是MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统在国内的第一次公开展示,立即获得了参会专家学者的极大关注,在会场上即有多家单位表达了购买意向。FMT150藻类培养与在线监测技术则可以说是MC1000的功能加强版。FMT150可以通过控制单元中用户自定义程序动态自动改变培养条件(光照、温度、pH值等)并实时在线监测培养条件与测量参数如温度、光照强度、pH、DO(溶解氧)、OD(光密度)、CO2、O2及反映藻类生理生态状况的叶绿素荧光参数。光强、光质、温度和通入气体的组分与流速都可以精确调控,配置恒浊和恒化模块后还可以调控培养基的pH值和浊度。FMT150可连接多达7个蠕动泵进行不同恒化与pH条件培养。培养条件可以根据用户自定义方案动态变化,既可以进行恒定条件下的培养,也可以一定的周期自动变化(如模拟昼夜节律变化)培养。OD680、OD720及叶绿素荧光参数Ft可以反映藻类浓度,而Fv/Fm等可反映藻类光合生理状态。控制单元可同时控制多台FMT150进行同步实验,保证不同处理实验间的一致性。作为世界上首款将光养生物反应器技术与叶绿素荧光技术等有机结合的高端藻类培养与在线监测仪器,FMT150从2009年推出后就获得了国际科学界的极大关注,广泛应用于藻类新能源研发、藻类环境工程及食品工程、气候变化响应对策研究等;系统有400ml、1000ml、3000ml等不同规格,还可定制25L、120L等大型系统。参考文献可点击:文献列表下载。蓝藻的次昼夜代谢节律(Cerveny,PNAS,2013)FL3500多功能叶绿素荧光系统是目前国际上公认的时间分辨率最高(可达1μs)、功能最为全面的叶绿素荧光系统,采用双调制技术,可进行STF(单周转光闪)、TTF(双周转光闪)和MTF(多周转光闪)及定制FRR技术(Fast Repetition Rate)测量。内置叶绿素荧光诱导测量、PAM(脉冲调制)测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换、叶绿素荧光淬灭等测量程序。其中QA–再氧化动力学和S状态转换更是FL3500独有的测量程序,可以进行光反应中心快慢组分和有活性部分的比例等测量分析,深入揭示光合机理。    AquaPen 手持式藻类荧光测量技术则是最新电子、光学技术与叶绿素荧光技术的高度结晶产品。它将叶绿素瞬时荧光(Ft)、量子产额(QY)、光密度 OD680/OD720、OJIP快速荧光动力学曲线及26个叶绿素荧光参数、叶绿素荧光淬灭分析、光响应曲线等几乎所有国际主流的荧光测量功能集成到手机大小的主机中,堪称藻类叶绿素荧光测量仪器中的“瑞士军刀”。正因为其超高的性价比,本次会议中有近十位老师在现场就签订了购买意向。RF-O2荧光光纤氧气测量技术是基于 REDFLASH 光极传感器技术的最先进的氧气测量技术,具有高精确度、高稳定性、高时空解析度、低能耗、无耗氧、无交叉敏感性等特点。  传感器类型灵活多样,有探头式、探针式、非接触式(sensor spot)及纳米微粒式等,适应于液体、气体乃至土壤、植物、动物、食品等不同条件和样品的 O2测量。同时,它也可以与MC1000、FMT150、FL3500等仪器联合使用,在培养或者测量荧光时同步测量藻类的光合作用。 易科泰生态技术Ecolab实验室致力于引进、消化、吸收和创新国际先进生物生态科研技术,提供土壤呼吸、动物呼吸代谢、植物表型分析、作物胁迫敏感性与抗性检测、光养生物反应器/藻类培养与在线监测、生态毒理学检测技术方案和实验服务与合作。目前实验室配备有FluorCam封闭式荧光成像系统、FluorCam便携式荧光成像仪、FL3500叶绿素荧光仪、AquaPen藻类荧光仪、PlantPen手持式荧光仪、FMT150光养生物反应器、MicroMac1000全自动营养盐分析监测系统、FMS动物/土壤呼吸测量分析系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox-343便携式土壤呼吸测量仪等,欢迎联系实验合作等。(邮箱:info@eco-lab.cn; 电话:010 62615899) 

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2016.01.06

International Plant&Animal Genome The Plant & Animal Genome Conference (PAG) XXIV

International Plant&Animal GenomeThe Plant & Animal Genome Conference (PAG) XXIV     第XXIV届植物与动物基因组学会议将于2016年元月9-13日在美国圣地亚哥召开,会议官方网站:http://intlpag.org/.世界著名FluorCam叶绿素荧光成像技术与PlantScreen植物高通量表型成像分析技术公司PSI(总部位于孟德尔遗传实验发明地捷克布鲁诺),将在会议上举办植物表型分析技术专题研讨会。    作为PSI公司在中国的合作伙伴和服务中心,易科泰生态技术公司为植物表型分析提供全面解决方案:1.    FluorPen手持式叶绿素荧光仪——叶绿素荧光技术尽在掌握中2.    FluorCam叶绿素荧光成像技术——叶绿素荧光成像全面解决方案3.    PlantScreen植物表型成像分析技术——植物高通量表型分析全面解决方案4.    植物生理生态测量监测全面解决方案5.    EcoDrone无人机生态遥测技术6.    根系观测分析全面解决方案 易科泰生态技术公司EcoLab实验室拥有FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪、FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统、FluorPen手持式叶绿素荧光仪、LCPro+光合仪、微根窗根系观测系统、EcoDrone无人机多光谱遥测平台等各种仪器设备,欢迎联系合作或参观(info@eco-lab.cn)。

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2015.12.14

最新可视化根系分析软件——BTC Visual Root System Analyzer

       美国Bartz公司是世界上最早专业生产微根窗(MiniRhizotron)根系观测仪器的厂商,几十年只专业生产BTC微根窗根系观测仪器。BTC-100是世界上应用最广、发表论文最多、具备100倍放大功能的根系观测研究经典仪器!适用于植物根系特别是细根、菌根长期跟踪定位观测研究。Bartz公司最新推出一款全新的可视化根系分析软件(BTC Visual Root System Analyzer),该软件将是BTC套件中的新成员。        该软件基于图片的色彩信息与像素特征,通过数字匹配算法等计算机编程,专门用于BTC根系动态监测系统的I-CAP图片抓取系统拍摄的根系图片进行专业分析,能快速的识别图像中的根,进行自动拟合,计算出细根的长度,能够支持多种图片格式,如jpg,bmp,png等。            软件有四个主窗口,按相关的步骤提示,编辑图像中根的色彩信息,分析过程操作简单,容易掌握。分析拟合的结果可由编辑好的单色线条显示在图像中,每一段识别的细根有唯一标号,同时可以通过软件的关联功能,将不同标号的多段细根,合成一条长的细根。软件参数可调,可以迎合任何类型的图像。这点很重要,因为大量I-CAP拍摄的图像,会受到背景土壤的影响,例如沙地或非均匀质地的土壤类型,背景值和根的颜色差异很小的情况。        软件将自动对图像处理,不再需要人为的对图像中的根进行逐一描绘,减少人工时间,提高工作效率。对计算机的要求,需英特酷睿I5以上的CPU,8GB的内存和500G的硬盘。易科泰生态技术公司为您提供根系与根际生态学观测研究全面技术方案:1、RhizoTron根窗技术观测方案:种子萌发与生长观测、根系在线观测2、BTC-100微根窗根系观测,100x放大倍数、精确定位3、SoilTron-Rhizo蒸渗仪技术根系观测方案,包括SoilTron多功能小型蒸渗仪技术及根系观测蒸渗仪技术方案4、根际呼吸测量与监测技术方案5、树木茎流与根系液流监测技术方案

厂商

2015.11.17

易科泰应邀参加“第六届亚大神经科学联合会学术会议暨中国神经科学学会第十一届全国学术会议”

易科泰应邀参加“第六届亚大神经科学联合会学术会议暨中国神经科学学会第十一届全国学术会议” 第六届亚太神经科学联合会学术会议暨中国神经科学学会第十一届全国学术会议于2015年9月20日-23日在浙江桐乡召开。北京易科泰生态技术有限公司联合美国sable 公司共同参加了此次盛会,现场为中外科研人员提供了动物呼吸代谢行为监测等科研方面全套的解决方案,并受到参会人员的热切关注。我公司不仅可为常见实验动物,如果蝇、大小鼠、家兔、猕猴提供实验方案,同时也可对土壤动物、昆虫、鱼类、两爬类、鸟类、野生动物乃至海洋动物、牛羊等家畜及家禽提供科学研究方案,甚至对人体医学领域呼吸代谢测量提供相应的系统方案。 本次会议携带参展仪器——Promethion呼吸代谢行为监测系统小鼠代谢笼,Pyroscience荧光光纤氧气测量仪等。Promethion呼吸代谢行为监测系统受到参会人员的热切关注,呼吸代谢是测量动物新陈代谢的主要研究手段,也是动物生理生态研究的主要手段,为日益严峻的环境问题提供基础实验平台。  Pyroscience荧光光纤氧气测量仪以其轻便,精准著称。应用最先进的REDFLASH光极传感器技术,其传感器样式精确灵活多变,可广泛应用于环境科学、生态科学、植物科学、动物科学、海洋科学、生物医学、生物技术、食品科学等各个领域。

会展

2015.10.12

年轮元素分析系统在中科院寒旱所安装运行

日前,由北京易科泰生态技术有限公司独家代理的Multiscanner年轮元素分析系统在寒旱所公共实验室平台完成安装调试和使用培训,这是目前国际上功能最为强大的集X-光密度成像(CT)和XRF元素分析的年轮分析平台。  MultiScanner年轮元素分析系统同时采用了XRF元素分析技术和X-射线数码成像技术(CT),用于树木年轮密度和元素分析。可测量的元素有Al、Si、P、S、Cl、K、Ca、Ti、Cr、Mn、Fe、Ni、Cu、Zn、As、Rb、Sr、Hg、Pb等。其著名的同类产品为用于岩石样芯、沉积样芯密度与元素分析的CoreScanner。下图是对某一年轮样品CT/XRF分析结果,包括光学成像、X-光密度成像(CT,中间的高分辨率黑白图像)及Ca在不同年轮中的浓度分布(蓝色曲线)。MultiScanner不仅用于一般的年轮分析和古气候、环境变迁等研究分析,Yvonne Fors等在2014年的《Nature》上还发表了应用于海洋考古学研究的论文“Sulfur and iron accumulation in three marine-archaeological shipwrecks in the Baltic Sea: The Ghost, the Crown and the Sword ”Colette等(2013)利用MultiScanner对加拿大不列颠哥伦比亚中西部河流不同树木年轮宽度和密度进行了分析,并据此重建了到AD1660年的年轮水文气候,研究成果发表在《Hydrological Processes》(Dendrohydroclimate reconstructions of July–August runoff for two nival-regime rivers in west central British Columbia)。Charlotte等(2006)利用MultiScanner对森林树木样品年轮密度及Mn元素和Bi元素进行了分析,以揭示气候变化对树木生长的影响。研究成果发表在《Applied Geochemistry》(A dendrochemical study of Pinus sylvestris from Siljansfors Experimental Forest, central Sweden)。 下面这则案例则利用Multiscanner研究分析重金属污染对树木生长的影响。参考文献1.Wood L.J., Smith D.J., Climate and glacier mass balance trends from ad 1780 to present in the Columbia Mountains, British Columbia, Canada. The Holocene, DOI: 10.1177/09596836124654502.Frühwald K., Hasenstab A., Osterloh K., Detection of Incipient Decay of Wood with Non- and Minor-Destructive Testing Methods. Nondestructive Testing of Materials and Structures; O. Büyük?ztürk et al. (eds.), DOI 10.1007/978-94-007-0723-8_513.Luostarinen K., Her?j?rvi H., Relation of arabinogalactans to density, growth rate and shear strength in wood of cultivated Siberian larch. Eur. J. Wood Prod. (2013) 71: p29–36, DOI 10.1007/s00107-012-0651-64.Zubizarreta-Gerendiain A., Gort-Oromi J., Meht?talo L., Peltola H., Ven?l?inen A., Pulkkinen P., Effects of cambial age, clone and climatic factors on ring width and ring density in Norway spruce (Picea abies) in. southeastern Finland. Forest Ecology and Management (2012) v263 p9-165.Starheim C.C.A., Smith D.J., Prowse T.D., Dendrohydroclimate reconstructions of July–August runoff for two nival-regime rivers in west central British Columbia. Hydrol. Process. 27, 405–420 (2013) (2012), DOI: 10.1002/hyp.92576.Helama S., Bégin Y., Vartiainen M., Peltola H., Kolstr?m T., Meril?inen J., Quantifications of dendrochronological information from contrasting microdensitometric measuring circumstances of experimental wood samples. Applied Radiation and Isotopes v70 p1014–1023 (2012)7.Fries A., Genetic parameters, genetic gain and correlated responses in growth, fibre dimensions and wood density in a Scots pine. breeding population. Annals of Forest Science (2012), DOI 10.1007/s13595-012-0202-78.Luostarinen, K., Tracheid Wall Thickness and Lumen Diameter in Different Axial and Radial Locations in Cultivated Larix sibirica Trunks. Silva Fennica 46(5) p707-7169.M?kinen H., Hynynen J., Predicting wood and tracheid properties of Scots pine. Forest Ecology and Management 279 (2012) p11–2010.Bj?rklund J.A., Gunnarson B.E., Krusic P.J., Grudd H., Josefsson T., ?stlund L., Linderholm H.W., Advances towards improved low-frequency tree-ring reconstructions, using an updated Pinus sylvestris L. MXD network from the Scandinavian Mountains. Theor Appl Climatol DOI 10.1007/s00704-012-0787-711.Balouet J.C., Burken J.G., Karg F., Vroblesky D., Smith K.T., Grudd H., Rindby A., Beaujard F., Chalot M., Dendrochemistry of Multiple Releases of Chlorinated Solvents at a Former Industrial Site. Environ. Sci. Technol. 2012, 46, p9541?954712.Routa J., Kellom?ki S. , Strandman H., Bergh J., Pulkkinen P., Peltola H., The timber and energy biomass potential of intensively managed cloned Norway spruce stands. GCB Bioenergy (2013) 5, p43–52, doi: 10.1111/gcbb.1200213.Melvin T.M., Grudd H., Briffa K.R., Potential bias in ‘updating’ tree-ring chronologies using regional curve standardisation: Re-processing 1500 years of Tornetr?sk density and ring-width data. The Holocene 23(3) p364–373 DOI: 10.1177/095968361246079114.Gunnarson B.E., Josefsson T., Linderholm H.W., ?stlund L., Legacies of pre-industrial land use can bias modern tree-ring climate calibrations. CR Vol. 53, No. 1. Online publication date: May 24, 2012 ISSN: 0936-577X; Online ISSN: 1616-157215.Starheim C.C.A., Smith D.J., Prowse T.D., Multi-century reconstructions of Pacific salmon abundance from climate-sensitive tree rings in west central British Columbia, Canada. Ecohydrology DOI: 10.1002/eco.126116.Puentes Rodriguez Y.*, Morales L., Willf?r S., Pulkkinen P.,, Peltola H., Pappinena A., Wood decay caused by Heterobasidion parviporum in juvenile wood specimens from normal- and narrow-crowned Norway spruce. Scandinavian Journal of Forest Research DOI:10.1080/02827581.2012.746387……

商机

2015.09.09

国际植物与藻类表型组学会议(IPAP 2015)

正值“遗传学之父”孟德尔在捷克布尔诺发表其著名的豌豆杂交实验《植物杂交试验》论文150周年之际,“国际植物与藻类表型组学会议”(International Plant and Algal Phenomics Meeting)(IPAP 2015)于2015年6月27日至30日在捷克召开。会议首先在布拉格进行了3天的学术交流,然后到布尔诺市孟德尔博物馆、PSI植物表型研究中心进行了参观考察,7月1日部分与会人员留在布尔诺 PSI 植物表型研究中心进一步考察学习。北京易科泰生态技术Ecolab实验室参加了这次盛会,并到PSI植物表型研究中心进行了两天的参观学习和交流。PSI公司总裁、布尔诺植物表型研究中心主任Martin Trtilek博士致辞。作主题发言的专家主要有:1.德国 Forschungszentrum Julich研究中心Ecosystem Dynamics Group负责人Uwe Rascher教授,报告题目:Quantitative Plant Phenotyping from the Gene to the Field: Scientific Challenges beyond Sensors and Higher Throughput;2.澳大利亚联邦科学与工业研究组织(CSIRO)High Resolution Plant Phenomics Centre主任Xavier Sirault教授,报告题目为:New Frontiers in Plant Phenomics for Breeding Higher Yield Potential in Plants and Crops;3.韩国大邱庆北科学技术研究院院长Hong Gil Nam教授,报告题目:Molecular, System, and Phenome Analysis of Plant Life History and Senescence;4.荷兰Horticulture & Products Physiology Group, Wageningen University 负责人Jeremy Harbinson 教授,报告题目:Phenotyping and Gene Localisation, Can We Make This Work?5.美国International Center for Advanced Renewable Energy & Sustainability 主任 Himadri Pakrasi 教授,报告题目:High Throughput Phenotyping for Systems Level Analysis of Cyanobacterial Physiology and Productivity.会议由欧洲工程技术中心(CEITEC)、捷克科学院CzechGlobe全球变化研究中心、PSI公司、Masarykova大学及孟德尔博物馆等赞助召开。PSI大型PlantScreen植物表型成像分析平台(左为植物表型分析平台,右为藻类平台)PlantScreen大型植物表型成像分析平台,包括顶部LED自动调控光源、自动传送带、成像室、控制系统及数据处理分析系统等表型研究中心实验室人员为大家介绍 PlantScreen三维移动植物表型成像分析平台Katerina Sukacova博士为大家介绍藻类表型分析系统,包括LED控光摇床(右图)、FluorCam 荧光成像等,多孔板可直接放在摇床上进行培养,光线可调控预设,可对藻类进行叶绿素荧光和光密度成像分析等左图、中图为藻类培养与在线监测系统,右图为 Martin  Trtilek 博士介绍无人机叶绿素荧光成像分析技术PSI植物表型研究中心最新发表论文;Katerina Sukacova, Martin Trtilek and Tomas Rataj. Phosphorus removal using a microalgal biofilm in a new biofilm photobioreactor for tertiary wastewater treatment. Water Research,71(2015)55-63.易科泰生态技术 Ecolab 实验室致力于引进、消化、吸收和创新国际先进生物生态科研技术,提供植物表型分析、作物胁迫敏感性与抗性检测、光养生物反应器/藻类培养与在线监测、生态毒理学检测技术方案和实验服务与合作。目前实验室配备有FluorCam 封闭式荧光成像系统、FluorCam便携式荧光成像仪、FL3500叶绿素荧光仪、AquaPen 藻类荧光仪、 PlantPen手持式荧光仪、FMT150光养生物反应器、MicroMac1000全自动营养盐分析监测系统、FMSCO2/O2呼吸测量分析系统等,欢迎联系实验合作等。作为PSI植物表型研究中心在中国的合作伙伴,欢迎国内研究人员联系到中心进行植物表型分析实验研究或参观学习(邮箱:info@eco-lab.cn; 电话:010 62615899)。

会展

2015.07.16

International Plant and Algal Phenomics Meeting 2015

International Plant and Algal Phenomics Meeting 2015 IntroductionWe are proud to invite you to the inaugural International Plant and Algal Phenomics Meeting (IPAP), to be held this year in the beautiful and historic city of Prague between June 27th and 30th 2015. All academic and industrial researchers who wish to learn more about the latest techniques for high throughput phenotyping are encouraged to attend.Advances in imaging technology, standardisation of experimental protocols, environmental sensing and control, data analysis and trait elucidation will be considered in relation to the development of agronomically important crops, and the selection of algal strains for high yielding commercial culture.SymposiumIPAP will feature a host of keynote speakers from around the world, including Professors Bob Furbank (Australia), Hong Gil Nam (South Korea) and Richard Sayre (USA), all of whom bring unique perspectives to the expanding science of plant and algal phenotyping.WorkshopIPAP includes a one day workshop (with an optional one day extension) at the new PSI Phenotyping Research Center located in the beautiful Moravian countryside. Here, delegates will have the opportunity for hands-on operation of novel technologies for numerous aspects of plant and algal phenotyping. Growth room, greenhouse and field phenotyping systems will be featured. Large and small scale photobioreactors will be in operation. The new center offers complete phenotyping services, as well as allowing visiting scientists to conduct proof-of-concept experiments.Topics Include?     Design of next generation plant phenotyping equipment?     Standardisation of protocols for comprehensive analysis of meta-data?     From controlled environment to the field: protocols and projections?     Integration of genomic and phenomic data analysis?     Methods for in situ root imaging?     Novel approaches in cyanobacteria biotechnology - High-throughput CyanoScreenKeynote Speakers?     Dr. Jeremy Harbinson, Wageningen University, Netherlands?     Dr. Robert Furbank, CSIRO, Australia?     Prof. Hong Gil Nam, DGIST, South Korea?     Dr. Xavier Sirault, CSIRO, Australia?     Dr. Richard Sayre, Los Alamos National Laboratories, USA?     Prof. Himadri Pakrasi, Washington University in St. Louis, USA?     Associate Prof. Erik Murchie, University of Nottingham, UK?     Prof. David Hanson, University of New Mexico, USA?     Dr. Kristiina Himanen, University of Helsinki, Finland?     Dr. Tracy Valentine, The James Hutton Institute, UK?     Dr. Lukas Spichal, University Palackeho Olomouc, Czech Republic?     Dr. Antoine Harfouche, University of Tuscia, Italy?     Prof. Dr. Uwe Rascher, Forschungszentrum Jülich, Germany Please join us for what promises to be a stimulating conference in one of Europe's most exciting cities.With kind regards,IPAP 2015, Organizing CommitteePlease click here to see PRELIMINARY PROGRAM 

会展

2015.04.30

我公司工程师参加美国Sable公司Promethion系统技术培训

2015年1月5日-9日,应美国Sable公司(SABLE SYSTEMS INTERNATIONAL, INC.)的邀请,我公司派技术工程师赴美参加了Sable公司的” Revolutionary Metabolic Phenotyping screen & behavior analysis” 暨Promethion动物行为与能量代谢监测系统的技术培训。Sable公司是从事呼吸测量、能量代谢测量方面仪器研发和相关科研的专业公司,公司于1987年由著名的代谢研究专家John Lighton博士成立。2007年开始,易科泰生态技术公司作为Sable公司中国区域总代理和技术服务中心,先后在中国科学院动物所、中国农科院畜牧所、中国林科院、中国农业大学、复旦大学、疾控中心等等引进安装了昆虫呼吸代谢测量系统、牛羊等大型动物呼吸代谢测量系统、爬行类呼吸代谢测量系统、实验动物呼吸代谢测量系统、Promethion动物呼吸代谢与行为观测系统等一系列呼吸代谢测量仪器设备,为我国的动物生理生态研究、生物医学研究、生态毒理学研究等发挥了重要作用。Promethion动物行为与能量代谢监测系统,由动物行为监测、能量代谢测量及其它选配生理指数监测模块组成,其中动物行为监测由笼舍和各种动物行为监测装置组成,能量代谢测量由笼舍、气体分析仪和气体流量控制单元组成。Promethion系统可以全面、同步化监测动物的能量代谢、动物采食与饮水活动及摄取量、动物活动与行为谱、动物位移时空分布格局,及动物体重、体温、心率等多项生理学参数,定性定量测量分析动物行为活动及其与呼吸代谢的相互关系等,广泛应用于动物生理生态学、动物表型筛选、实验动物学、药理学、生态毒理学、生物医学等研究领域。Promethion系列产品分小鼠系统、大鼠系统、大动物系统以及人类测量室系统。该系列产品技术先进、尖端,功能全面而强大,对代理该产品的公司有较高的技术要求,因此Sable公司特意举办了该产品的技术培训,旨在提高全球各国代理商的技术水平,以便能为广大科研工作者提供更有力的支持。北京易科泰公司作为Sable产品在中国的代理,接到邀请后派出两位工程师赴美参加。5天的培训期间,Sable公司的首席科学家John Lighton博士,公司CEO Robbin女士,技术部应用科学家Barbara博士、Thomas博士、Jeffrey博士,市场总监Todd先生等对Promethion系统进行了全面的讲解培训,内容涉及呼吸能量代谢背景知识,测量原理,Promethion 产品总览,系统组成,硬件安装、软件设置(其中涉及软硬件的各种更新升级),调试校准,实际测量,宏命令数据分析等等。我公司两位工程师认真学习,仔细操作,和厂家工程师进行了全面深入的交流与沟通,同时也和来自其他国家的参与者(加拿大、德国、韩国、澳大利亚等)进行了沟通。 我公司工程师虚心请教我公司工程师与厂家的Thomas博士讨论数据分析试戴呼吸罩即将分别,来张合影   

厂商

2015.01.14

FluorCam叶绿素荧光成像技术应用案例——上海生命科学研究院

近日,易科泰生态技术有限公司为上海生命科学研究院调试安装一套FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统,该系统具备叶绿素荧光成像分析、GFP绿色荧光蛋白成像分析、PAR吸收与NDVI成像测量分析、实验程序自动运行监测等多项功能模块。上海生命科学研究院青年研究组长、博士生导师Chanhong Kim在苏黎世联邦理工学院(ETH-Zurich)、康奈尔大学博伊斯汤普森研究所(Boyce Thompson Institute at Cornell University)工作期间就已经使用FluorCam叶绿素荧光成像技术进行了大量的研究工作,并先后发表了“1O2-mediated retrograde signaling during late embryogenesis predetermines plastid differentiation in seedlings by recruiting abscisic acid”(PNAS(美国科学院院报),2009)、“Chloroplasts of Arabidopsis are the source and a primary target of a plant-speci?c programmed cell death signaling pathway”(The Plant Cell,2012)等学术论文。2014年,Chanhong Kim博士到上海生命科学研究院工作后,立刻就联系我公司购买了FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统,计划率领他的青年科学家团队运用FluorCam叶绿素荧光成像技术结合特定胁迫因子来筛选拟南芥突变体,并通过Quenching实验程序进一步研究这些突变体光系统中的具体表型变化(Phenotyping)和生理机制,对植物光合作用和抗逆机理进行深入的探索;同时利用该系统绿色荧光蛋白成像分析功能,来定量鉴别检测分析转基因表达。图1. FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统在实验室的工作状态图2. 拟南芥叶绿素荧光Fm(左图)、Fv/Fm(右图)成像分析,图中上半部分为拟南芥野生型,下半部分为突变株,上部选择了3个植株Area 1、2、3,下部选择了3个植株Area 4、5、6,野生型的Fv/Fm远高于突变株图3. GFP成像图,图中发出明亮颜色的植株即为表达了GFP的植株,其颜色越偏向红色,则表明其表达的GFP更多图4:PAR absorptivity/NDVI成像分析(由Ecolab实验室提供)FluorCam叶绿素荧光成像技术由全球知名叶绿素荧光技术专业公司PSI生产,PSI公司最先研制成功并生产叶绿素荧光成像仪器。PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起,研制成功了叶绿素荧光成像技术(Nedbal等,2000),并于1997年为美国华盛顿大学提供了第一台商业FluorCam系统。Nedbal教授也是权威著作《Chlorophyll a Fluorescence, a Signature of Photosynthesis》(Springer, 2009)叶绿素荧光成像技术的作者。Fluorcam叶绿素荧光成像系统是世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像仪器,目前易科泰生态技术公司Ecolab实验室有近400篇参考文献供参考查阅。易科泰生态技术公司作为PSI在中国区域的独家代理和技术咨询服务中心,致力于FluorCam叶绿素荧光成像技术的引进推广,以助力于我国植物生理生态与胁迫生理生态研究、植物育种与优良品种筛选、植物表型分析(Phenotyping)、藻类生理生态学研究、污染生态学及生态毒理学研究等,先后引进了FluorCam便携式荧光成像、封闭式荧光成像、开放式荧光成像、移动式大型叶绿素荧光成像系统、FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统、多光谱荧光成像技术、PlantScreen高通量植物表型成像分析系统等;Ecolab生态实验室配备了便携式叶绿素荧光成像系统、FL3500多功能叶绿素荧光仪、FluorPen手持式叶绿素荧光仪、AquaPen手持式水体藻类荧光仪等,并与中科院植物所、中科院海洋所、中科院微生物所、中国农业大学、中国林科院林木遗传育种国家重点实验室等科研单位进行了一系列合作研究实验。欢迎合作研究或来我公司Ecolab实验室做实验。Ecolab实验室联系方式:电话:62615899;邮箱:info@eco-lab.cn, eco-lab@eco-tech.com.cn. 

厂商

2014.12.15

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