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气相色谱仪的故障诊断和解决措施

2009-05-20 13:43

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气相色谱仪的故障诊断和解决措施 A、所有组分峰变小 可能原因 建议措施 1.进样针缺陷 使用新针或无缺陷的针 2.进样后漏夜 判断漏夜点,维修之 3.MAE UP过大:分流比过大 调整气体流速和分流比 4.分析物质分子量过大,底挥发样品时 提高INJ。OVEN(主要柱子的最高使 样品的汽化温度过低,或柱温度低 用温度) 5 NPD被污染物(二氧化硅)覆盖 更换铷珠 6.NPD温度过高(使用或环境温度),气体不纯 更换铷珠:避免高温使用 7.不分流进样,分流阀关闭快:初始OVEN温高 8 检测器与样品不匹配 9.样品的挥发 调整样品的的浓度或选择合适的溶剂 B、峰伸舌 峰伸舌多由色谱柱过载 减小进样量(可能需提高仪器的sensitivty 使用大容量柱子:提高OVEN,INJ温度: 增大气体流速 C、高峰面积不重复 1.进样不重复,偏差大 自动进样器:加强手动进样的练习 2.其他峰型变化引起的峰错位,干扰 3.基线的干扰 仪器系统参数设定的改变 参数标准化,规范化 D、负 峰 1 Detector有数据处理系统信号极性接反 信号连接倒置 2 TCD中,样品导热系数大于载气导热系数 选择数据处理中的“负峰处理” 3 ECD被污染,可能在正峰后跟随负峰 清洗ECD,更换之(若有必要) E、样品的检测灵敏度下降 1.色谱柱,衬管被污染,使活性物质灵敏度小将 清洗衬管:用溶剂(优级纯甲醇)清洗色谱柱:更换之(如有必要) 2.进样时样品渗漏(对易挥发物质更甚) 查找渗漏点 3 在splite汽化进样中,OVEN初始温度过高 用低于样品溶剂的初始温度;致使样品汽化后扩散加剧,导致撕沸点样品灵敏度下降 使用高沸点溶剂 F 、峰分叉 1 进样过激,不稳定,形成二次进样 练习手动进样:使用自动进样器 2.色谱柱安装失败 重新安装 3 spliteless或柱头进样,样品溶剂的混合 使用相同的溶剂 4.柱子温度波动 修理稳控系统 5 spliteless进样,量大,时间长。希望用“溶剂 在毛细管色谱柱前端安装5米的去 效应“谱带浓缩时,溶剂的固定相的湿润性差 活化,未覆盖固定液的毛细管 溶剂将在柱子中形成几米长,厚度不等的溶剂带 破坏正常的浓缩,使峰拉宽分叉 G 、峰拖尾 1.衬管,色谱柱被污染;有活性点 清洗,更换之 (如有必要) 2.衬管,色谱柱安装不党,存在死体积 注射甲烷,峰若拖尾,则重新安装 3.色谱柱柱头不平 用金刚砂切割,使之平 4.固定相的极性指标与样品分析不匹配 换匹配的柱子 5 样品流通路线中有冷井 消除路线中的过低温度区 6.衬管或色谱柱中有堆积切割碎屑 清洗更换衬管;切除柱头10cm 7 进样时间过长 缩短之 8.分流比低 增大分流比(至少大于20/1) 9.进样量过高 减小进样体积或稀释样品 10 醇胺,伯胺,叔胺和羧酸类易拖尾 用极性大的色谱柱;样品衍生处理 H、保留时间漂移 1 温度变化 检查柱温箱的温度 2.气体流速变化 注射甲烷,测定载气线速度 3.进样口泄露 检查进样垫;判断其他泄露处 4.溶剂条件变化 样品,标准品使用相同的溶剂 5.色谱柱被污染 切除柱头10cm;高温老化,清洗 I、分离度下降 1.色谱柱被污染 方法同上 2 固定相被破坏(柱流失) 更换之 3 进样失败 检查泄露,维修之检查吹扫时间 检查温度的适应性;检查衬管 4.样品浓度过高 稀释;减少进样量;用高分流比 J、溶剂峰拉宽 1.色谱柱安装失败 2.进样渗漏 3.进样量高 提高汽化温度 4.流比低 提高分流比 5OVEN低 6 分流进样时,初始OVEN过高 降低初始柱温,使用高沸点溶剂 7.吹扫时间过长(不分流进样) 定义短时间的吹扫程序 基线问题 K、基线向下漂移 1 新安装的柱子,基线连续向漂移几分钟 继续老化 2 检测器未达到平衡 延长检测器的平衡时间 3 检测器或GC系统中其他部分有沉积物被烤出来 清洗之 L、 基线向上漂移 1.色谱柱固定相被破坏 2 载气流速下降 调整载气压力;清洗压力和流量调节阀 M、噪音 1.毛细管末插入检测器太深 重新安装色谱柱 2 使用ECD,TCD气体泄露引发基线噪音 检查,维修气路 3 FID ,NPD ,FPD燃气流速或燃气选择不当 高纯燃气,调整流速 4.进样口被污染 清洗进样口;更换搁垫;更衬管中的玻璃纤维或硅烷化 5.毛细管色谱柱被污染 切除首端10cm;用溶剂清洗色谱柱;更换之 6.检测器发生故障 维修,更换之 7.检测器电路发生故障 联系生产商或维修机构(专业) N、Offset(基线位置的突然改变 1.电源电压波动 使用稳压器 2 电路接口处连接不好 检查,清洗其接口处,拧紧接口 3.进样口被污染 4.色谱柱被污染 5.毛细管末端插入检测器太深 6 检测器被污染 O、毛刺 1 电磁干扰 关闭电磁干扰源 2.颗粒污染进入检测器 3.气路密封松动,气体泄露 拧紧松动的密封 4.检测器内部电路接口或输入,输出信号接口松动 检查,清洗,拧紧接口,更换之 积尘或被腐蚀 P、Wander(低频率的噪音) 1.温度,压力等环境条件的波动 找到环境因素变化与基线的关系,然后稳定之 2.温度控制漂移 测量检测器的温度 3 载气中含杂质(温度稳定时) 更换载气或气体净化器 4.进样口被污染 5.毛细管被污染 6.气体流速控制失灵 清洗或更换气体

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摘要 目的:采用高效液相色谱法测定盐酸喹那普利片的含量。方法:采用C18色谱柱,甲醇:水:磷酸:二乙胺(160:40:0.13:0.16)为流动相,紫外检测波长为215nm。结果:平均回收率为99.60%,RSD=0.12%符合要求。结论:本方法切实可行。 关键词:盐酸喹那普利;高效液相色谱法;含量测定 高血压为常见的心血管病,多数为原发性,需长期进行降压治疗。近30年来,降压药的新产品不断发展,盐酸喹那普利作为血管紧张素转换酶抑制剂,具有轻至中等强度的降压作用,在临床治疗上得到了广泛的应用。盐酸喹那普利片含量是其质量控制的重要指标,检测方法为高效液相色谱法,具有分离效能高、分析速度快、灵敏度高等特点。 1 仪器与试药 仪器:日本岛津LC-1OA高效液相色谱分析仪:SPD-10AP)检测器,LC-10A TVP高压输液泵,C—R7A plus 数据处理仪。 试药:盐酸喹那普利对照品,中国药品生物制品检定所提供;甲醇.磷酸、二乙胺为色谱纯,水为纯化水。 2 方法与结果 2.1 对照品溶液的制备:精密称取盐酸喹那普利对照品20mg,置50ml容量瓶中,加水溶解并稀释至刻度。 2.2 供试品溶液的制备:取盐酸喹那普利片20片,去包衣,称取约20mg。置50ml容量瓶中。加水并稀释至刻度。摇匀滤过。 2.3 色谱条件、色谱柱:C"色谱柱,十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;甲醇:水:磷酸:二乙胺(160:40:0.13:0.16)为流动相;流速1.1ml/min;柱温40℃ ;紫外检测波长为215nm。 2.4 系统适用性试验:取对照品溶液20μl注入色谱仪,在上述色谱条件下分离,由色谱图得盐酸喹那普利保留时间约为11min;理论塔板数以盐酸喹那普利峰计为2700(≥1000),盐酸喹那普利峰与相邻杂质峰的分离度为4.2。 2.5 精密度试验:精密称取同一批号盐酸喹那普利样品5份,按样品测定方法操作,其基线构成之面积称峰面积。A=×σ×h=2.507σh=1.064 Wh/2h>峰面积测量值的相对标准偏差为0.20%,精密度良好。 2.6 重复性试验:取对照品溶液2μl,在上述色谱条件下重复进样5次,峰面积的RSD=0.12%,重现性好。 2.7 回收率试验:采用加样回收,精密称取已测定含量的盐酸喹那普利样品7份,分别精密加入对照品,按供试品溶液制备方法制备供试液,进样,记录色谱,计算回收率,平均回收率为99.60%。 ’ 2.8 样品测定:精密量取供试液2μl注入色谱仪,在上述色谱条件下测定,记录色谱图;同法测定对照品溶液,按外标法以峰面积计算,本品含盐酸喹那普利为标示量的98.53%。 3 讨论 以上测定表明,该测定方法样品保留时间适宜,理论塔板数能够达到要求,方法简便可行,适于盐酸喹那普利片含量测定。 参考文献 [1]安登魁,药物分析[M].济南,济南出版社,1992.5 [2]周同惠,分析化学手册[M].北京,化学工业出版社,1997.

1. 水样的准备: 1.1 检验之前,在每个培养皿上表明水样号码、稀释度、日期和其它任何应有的说明。每个稀释度至少准备两个重复的培养皿。 1.2 将水样彻底的搅动均匀,方法是上下(左右)摇动25次。摇动的幅度大约0.3米,所花时间为7秒钟。 2. 稀释水和培养基 2.1稀释水:将8.5克氯化钠在1升蒸馏水中。分装的量以蒸压灭菌15分钟之后能维持99±2.0毫升或9±0.2毫升为度。 2.2缓冲水:配置磷酸盐缓冲储备液,是将34.0克的磷酸二氢家钾溶液在500毫升的蒸馏水中,用1摩尔/升的氢氧化钠溶液调节到7.2±0.5,然后再加蒸馏水到1升。把1.25毫升的磷酸盐缓冲储备液和50毫升的氯化镁溶液(38克氯化镁/升蒸馏水)加蒸馏水到1升,分装到瓶子或试管里,分装的量以蒸馏水之后能维持99±2.0毫升或9±0.2毫升为度。 2.3在任何稀释水中制备细菌悬浮液后,不要在室温下待留30分钟以上,因为细菌的死亡或繁殖都可能发生。 2.4营养琼脂培养基 蛋白胨 10.0克 牛肉膏 3.0克 氯化钠 5.0克 琼脂 15.0克 蒸馏水 1升 以蒸压(121℃)灭菌15分钟,PH在7.4到7.6之间。注配置后的澄清度有无沉淀、PH变化、细菌的发育,对异常者不能使用 3. 水样的稀释和量取 3.1选择稀释度:以期在平皿上的菌落总数介于30和300之间 3.2水样的稀释:用1毫升灭菌吸管吸取水样1毫升注入到99毫升的空白稀释水中。当吸取水样时,不要把吸管尖插入液面之下2.5厘米深。放出水样时,吸管尖不要触及稀释水。振摇稀释瓶混合均匀,作成1:100的均匀稀释水样 3.3另取一支1毫升灭菌吸管,吸取1:100的均匀稀释水样,做100倍递增稀释到1:1000的均匀稀释水样 3.4稀释水样的量取 每从一个不同的稀释水样做转移、接种时,要各用一支不同的无菌细管。当放出一定量的水样时,握住吸管尖端与培养皿底成450的角度相接,皿盖要适当提起,使吸管恰足以插入,容许2-4秒的时间,让液面从吸管上的1好升的刻度线排出到吸管尖。 将吸取的1毫升水样转移到无菌培养皿中后,加入融化的培养基。 4. 平皿的操作 4.1融化培养基:把盛放无菌的固态琼脂培养基的容器放在沸水中,使培养基融化。若发现融化的培养基中含有沉淀物就应该弃去不用。不可对灌皿用的培养基再行蒸压灭菌。 融化的培养基可置于45±1℃水浴中保温,到使用之前才取出。 4.2灌皿:从第一个水样的稀释开始到对最后一个平皿施以灌皿,时间不得超过20分钟(以10分钟为最好),稀释水样转到平皿后,应及时将凉至45±1℃营养琼脂培养基灌入平皿至少10-12毫升,灌皿之后将融化的培养基和其中定量的试验水样彻底混合。方法是握住平皿,先往一个方向画圆,再朝相反方向回转,不要使混合液溅到培养皿的边缘,让平皿培养基于水平位置静止10分钟左右固化。固化之后,倒置平皿,在培养箱中进行培养。 4.3无菌控制:将培养基灌入加有1毫升稀释水的无菌平皿内作空白对照,检查培养基和稀释水的无菌性。 5. 培养 5.1在培养箱中叠放平皿,不可使平皿过于拥挤 5.2一般水样的标准平皿记数应在35±0.5℃之下培养48±3小时 6. 记数和记录 6.1培养之后,取出平皿,立即数出皿中所有的菌落数。(如果记数暂缓施行,平皿存放在5—10℃且不超过24小时) 6.2在决定标准平皿记数的时候,应选择具有30-300个菌落的平皿 6.3如果平皿中的菌落数远超过300,不要在记录中写成“多不克记” 6.4对平皿上有蔓延菌落生长,应写上。

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