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共有 4 人回复了该问答cIEF检测单抗,各峰相对丰度不稳定
 回复v2983592发表于:2020/1/14 9:47:22悬赏金额:1积分 状态:未解决
最近在做一个中性单抗的cIEF方法,用的是贝克曼PA800plus。在对标准品进行分析的时候发现,不同时间检测的结果,各峰的相对丰度会有变化,最高峰有时候是第二个,有时候是第四个。样品、仪器、人员、缓冲体系等条件都是一样的。各峰的pI值也很稳定。这种情况是正常的吗,这样的结果很不利于对各峰制定标准,不知道大家都是怎么做的?
我采用的方法和体系基本都与贝克曼提供的一致,尿素浓度采用6M,聚焦时间是12.5min.对聚焦时间进行过优化,分别考察了10min,12.5min,15min,17.5min和20min,除了10min分离度不好外,其他结果图谱基本一致,考虑到节省时间选了12.5min。最近对结果进行分析的时候,发现各时间的电流图有点差异。聚焦结束时,17.5min电流降到最低大概1.5uA,15min 大概1.6uA,而12.5min大概1.7,1.8uA这样。
是不是我选择的聚焦时间不够导致了相对丰度会有变化?如何判断聚焦时间,是电流降到最低表示聚焦充分吗?
急等大神回答
 回复  1# nini2006  回复于:2020-01-16 11:12:22
1、标准品有没可能发生降解?
2、是否有分子量、性质都很接近的蛋白质?因为这样的蛋白质本来分得就不是很开,条件稍微有变化的时候就显示出数量不同的峰。
3、分离得到的峰个数不同,相对丰度当然会有变化。
4、理论上,应该是聚焦结束的时候电流最小

没做过,纸上谈兵,仅供参考
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